食品中菌落总数的测定方法(参照材料)
实验三--食品中微生物菌落总数的测定
5、及时将已冷却到46℃的培养基倾入到平皿中，并转动
平皿使其混合均匀
6、37℃倒置培养2天
7、按照计数Biblioteka 则计数五、菌落计数方法 选取菌落数在30~300cfu之间，无蔓延生长的平板 计数 低于30的记录具体菌落数，大于300的可记录为多 不可计，每个稀释度采用2个平行的均数 有较大片状菌落生长者不宜采用， 若片状小于平板一半时且余部均 匀分布，则以半个平板菌落数2 倍报告 无明显界限链状菌落每条单链视 为一个菌落
1、计数结果的表述
若只有一个稀释度平板在30~300CFU，则计算两平行平 板的均数，再乘以稀释倍数报告之 若有连续两个稀释度符合计数要求则按下公式：
所有符合计数要求 的平板菌落数之和
菌落总数
例：10-2=232，244 10-3=33，35 N= (232+244+33+35) (2+2×0.1)×10-2 = 24727
灭菌生理盐水当中，充分振荡，混合均匀，制成
10-1稀释度样品
2、梯度稀释法依次稀释样品到10-4
菌落总数操作流程图
3、选择10-2、10-3、10-4三个稀释度的样品均液，用无菌 移液管分别吸取1mL到无菌平皿中，每个稀释度做2个 平皿；同时，吸取1mL无菌生理盐水到1个平皿中作为
空白对照
4、熔化培养基
标准平皿活菌计数法（SPC法）是最常用的活菌计
数法
将微生物细胞充分稀释到单个分散，把这些单个分
散的细胞通过混菌法或涂布法使其均匀分布在平皿
培养基上，培养后长出的菌落肉眼可见，每个菌落
都由原液中单个细胞发育而来。
反映食品被细菌污染的程度
由于倾注平板法的局限，会有一部分细菌在该实验
食品中菌落总数的测定
食品中菌落总数的测定一、实验目的（1）学习和掌握测定食品中菌落总数的基本方法（2）学会菌落总数的报告方式二、实验材料1、仪器与设备：恒温培养箱、托盘天平、电炉、吸管、三角瓶、平皿、试管、试管架、酒精灯、灭菌刀或剪刀、75%酒精棉球、玻璃蜡笔。
2、培养基和试剂：75%乙醇、0.85%生理盐水、琼脂培养基：胰蛋白胨5.0g、酵母浸膏2.5g、葡萄糖1.0g、琼脂15.0g、蒸馏水1000mL、pH 7.0±0.23、检样：利乐包装鲜牛奶250ml三、实验方法与步骤1、检验程序菌落总数检验程序：检样→做成几个适当倍数的稀释液→选择2-3个适宜稀释度各以1ml之量分别入灭菌平皿内→每皿内加入46℃15-20ml营养琼脂→置36±1℃恒温箱内培养（48±2）h取出→菌落数→报告2、检样稀释及培养（1）以无菌操作，将检样包装打开，用吸管取25ml鲜牛奶，放于含有225ml灭菌生理盐水的500ml灭菌玻璃三角瓶内（瓶内预先置适当数量的玻璃珠），经充分振摇做成1：10的均匀稀释液。
（2）用1ml灭菌吸管吸取1：10稀释液1ml，沿管壁徐徐注入含有9ml灭菌生理盐水的试管内（注意吸管尖端不要触及管内稀释液，下同），振摇试管混合均匀，做成1：100的稀释液。
（3）另取1ml的灭菌吸管，按上项操作顺序作10倍递增稀释液，如此每递增稀释一次，即换用1支1ml灭菌吸管。
（4）根据食品卫生检验标准要求和检样的菌落数量，选择3个连续适宜稀释度即10、10－1、10－2，分别在作10倍递增稀释的同时，即以吸取该稀释度的吸管移1ml稀释液于灭菌平皿内，每个稀释度作两个平皿。
（5）稀释液移入平皿后，应及时将凉至46℃营养琼脂培养基注入平皿15ml~20mL，并转动平皿使与稀释检样混合均匀，同时将营养琼脂培养基倾入加有1ml稀释液（不含样品）的灭菌平皿内作空白对照。
（6）等琼脂凝固后，翻转平板，置36±1℃恒温箱内培养（48±2）h取出，计算平板内菌落数目乘以倍数，即得1mL样品所含菌落总数。
食品中菌落总数的测定
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检样 做成几个适当倍数的稀释液 选择2-3个适当稀释度的稀释液各以1ml分别加入灭菌平皿内 每皿内加入适量营养琼脂 菌落总数 报告
培待 培 ， 养 然 基 后 凝 取 固 出养后 进 ， 行 倒 菌 置 落 于 计 数 。 +2h
一另 毫取 升一 ，灭 作菌 空培 白养 对皿 照， 。倒 入 营 养 培 温 养 箱 基 中 约
(
操 作 步 骤
36+1℃ 4
, 8
消毒前的包装
实验前的准备
棉塞的制作
棉塞刚好卡于瓶口不 松动即为合格
校正PH值及溶液加热煮沸溶解
水样的制取
放水一分钟
酒精棉消毒
第一步 先放水一分钟 第二步 用镊子夹酒精棉消毒出水口 第三步 将酒精棉点燃，用镊子夹起酒精棉灼烧出水口 第四步 再放水一分钟 第五步 采样
食品中菌落总数的测定
实验仪器
电热恒温培养箱，托
盘天平，电炉，吸量
管，锥形瓶，酒精灯， 剪刀，棉花，麻布，
LOREM IPSUM DOLOR
实验试剂 乙醇 ， Hcl ，氢氧化
பைடு நூலகம்
钠溶液，营养琼脂培
养基（琼脂 5g，蛋白
食品微生物检验技术GB4789.2-2010 菌落总数测定
2. 培养 (1) 待琼脂凝固后，将平板翻转，36 ℃±1 ℃培养 48 h±2 h。水产品 30 ℃±1 ℃培养 72 h±3 h。 (2) 如果样品中可能含有在琼脂培养基表 面弥漫生长的菌落时，可在凝固后的琼脂 表面覆盖一薄层 琼脂培养基（约 4 mL）， 凝固后翻转平板，按 36 ℃±1 ℃培养 48 h±2 h（水产品 30 ℃±1 ℃培养 72 h±3 h）条件进行培养。
GB 4789.2-2010 食品安全国家标 准 食品微生物学检验 菌落总数测定
一、设备和材料 二、培养基和试剂 三、检验程序 四、操作步骤 五、结果与报告
一、设备和材料
除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和 材料如下： (1) 恒温培养箱：36 ℃±1 ℃，30 ℃±1 ℃。 (2) 冰箱：2 ℃～5 ℃。 (3) 恒温水浴箱：46 ℃±1 ℃。 (4) 天平：感量为 0.1 g。 (5) 均质器。 (6) 振荡器。 (7) 无菌吸管：1 mL（具 0.01 mL 刻度）、10 mL（具 0.1 mL 刻度）或微量移液器及吸头。 (8) 无菌锥形瓶：容量 250 mL、500 mL。 (9) 无菌培养皿：直径 90 mm。 (10) pH 计或 pH 比色管或精密 pH 试纸。 (11) 放大镜或/和菌落计数器。
三、 检验程序
检
样
25g(ml)样品+225ml稀释液，均质
10倍系列稀释
选择2个~3个适宜稀释度的样品匀液， 各取1ml分别加入无菌培养皿内 每个皿中加入15ml~20ml平板计 数琼脂培养基，混匀 培养 计数各平板菌落数 计算菌落总数 报告
四、操作步骤
1. 样品的稀释
(1) 固体和半固体样品：称取 25 g 样品置盛有 225 mL 磷酸盐缓冲 液或生理盐水的无菌均质杯内，8000 r/min～10000 r/min 均质 1 min~2min，或放入盛有 225 mL 稀释液的无菌均质袋中，用拍击 式均 质器拍打 1 min～2 min，制成 1:10 的样品匀液。 (2) 液体样品：以无菌吸管吸取 25 mL 样品置盛有 225 mL 磷酸盐缓 冲液或生理盐水的无菌锥形瓶 （瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠） 中，充分混匀，制成 1:10 的样品匀液。 (3) 用 1 mL 无菌吸管或微量移液器吸取 1:10 样品匀液 1 mL，沿管 壁缓慢注于盛有 9 mL 稀释液的 无菌试管中（注意吸管或吸头尖 端不要触及稀释液面），振摇试管或换用 1 支无菌吸管反复吹打 使其混 合均匀，制成 1:100 的样品匀液。
食品中菌落总数的测定和不确定度分析
食品中菌落总数的测定和不确定度分析一、引言食品中菌落总数是指在特定条件下，通过培养基培养和统计法，对食品中细菌和真菌等微生物菌落数的测定。
食品中菌落总数是评价食品卫生质量的重要指标之一，可以反映食品是否受到污染、保存条件是否良好等情况。
对食品中菌落总数进行准确测定和不确定度分析，对于食品卫生和质量控制至关重要。
二、食品中菌落总数的测定方法食品中菌落总数的测定方法通常采用菲尔氏杯平板法和薄膜法。
菲尔氏杯平板法是将食品样品稀释后均匀铺在富含寒天的琼脂培养基上，培养并统计菌落数；薄膜法是将食品样品均匀涂抹在琼脂培养基上，培养并统计菌落数。
三、食品中菌落总数的不确定度分析1. 采样不确定度：食品中菌落总数的测定首先要进行食品样品的采样和样品的制备，采样过程中可能会存在采样不均匀、采样器具的精密度等因素，引入采样不确定度。
2. 复现性不确定度：食品中菌落总数的测定通常需要进行多次重复测定，由于操作者、环境等因素的影响，可能会出现不一致的结果，引入复现性不确定度。
3. 实验条件不确定度：食品中菌落总数的测定受到实验条件的影响，如温度、湿度等条件会对微生物生长产生影响，引入实验条件不确定度。
4. 测量设备不确定度：食品中菌落总数的测定需要借助于培养箱、平板计数器等设备，设备的准确度和精度会影响测定结果，引入设备不确定度。
四、食品中菌落总数的不确定度评定食品中菌落总数的不确定度评定需要考虑上述不确定度因素的影响，并采用合适的方法进行计算评定。
不确定度评定的目的是为了确定测定结果的可靠性和准确性，提高测定结果的可信度。
1. 不确定度计算方法食品中菌落总数的不确定度可以采用GUM不确定度评定方法，通过不确定度传递法和不确定度组分法计算总的不确定度。
在实际计算中，需要考虑到各种不确定度来源的具体数值和权重，综合计算得出总的不确定度值。
2. 不确定度控制方法为了减小不确定度的影响，可以采取以下控制方法：（1）采样不确定度的控制：采用合适的采样方法和器具，确保样品的均匀性和代表性；（2）复现性不确定度的控制：严格控制实验条件和培养操作流程，尽量减小操作者和环境的影响；（3）实验条件不确定度的控制：控制实验条件的稳定性和准确性，进行实验前后的环境监测和校准；（4）测量设备不确定度的控制：对测量设备进行定期维护和校准，确保设备的准确度和精度。
食品中菌落总数测定方案(菌落总数测试片)
食品中菌落总数测定方案菌落总数测试片1.操作步骤1.1 样品的稀释1.1.1 称取25g样品（剪碎）置盛有225ml无菌生理盐水的三角瓶中，充分振摇混匀，制成1:10的样品匀液。
1.1.2 用1ml微量移液器吸取1:10的样品匀液1ml，沿管壁缓慢注入盛有9ml无菌生理盐水的无菌试管中（注意吸头尖端不要触及稀释液面），充分振摇混匀，制成1:100的样品匀液。
1.1.3 用1ml微量移液器吸取1:100的样品匀液1ml，沿管壁缓慢注入盛有9ml无菌生理盐水的无菌试管中（注意吸头尖端不要触及稀释液面），充分振摇混匀，制成1:1000的样品匀液。
1.2 样品的接种揭开菌落总数测试片上层膜，用1ml微量移液器分别吸取1:10、1:100、1:1000的样品匀液1ml慢慢均匀地滴加到纸片上，然后将上层膜缓慢盖下，静置10s左右使培养基凝固（每个样品匀液做2个纸片）。
同时做一片空白阴性对照。
1.3 培养将测试片叠在一起放回原自封袋中，并封口，透明面朝上水平置于36℃±1℃培养箱内培养15～24h，堆叠片数不超过12片。
1.4 菌落计数1.3.1 细菌在测试片上生长后会显示红色斑点，可用肉眼观察,必要时用放大镜,记录稀释倍数和相应的菌落数量。
菌落计数以菌落形成单位(CFU)表示。
1.3.2 选取菌落数在30CFU—300CFU之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。
低于30CFU的纸片记录具体菌落数,大于300CFU的可记录为多不可计。
每个稀释度的菌落数应采用两个纸片的平均数。
1.3.3 其中一个纸片有较大片状菌落生长时,则不宜采用,而应以无片状菌落生长的纸片作为该稀释度的菌落数;若片状菌落不到纸片的一半,而其余一半中菌落分布又很均匀,即可计算半个纸片后乘以2,代表一个纸片菌落数。
1.3.4 当纸片上出现菌落间无明显界线的链状生长时,则将每条单链作为一个菌落计数。
—1 —— 2 —1.5 结果与报告1.5.1 菌落总数的计算方法1.5.1.1 若只有一个稀释度纸片上的菌落数在适宜计数范围内,计算两个纸片菌落数的平均值,再将平均值乘以相应稀释倍数,作为每g 样品中菌落总数结果。
菌落总数 标准
菌落总数标准一、菌落总数定义菌落总数是指食品经过处理，在一定条件下培养后，所得每克（每毫升）检样中所生长出来的细菌菌落总数。
它是一种反映食品卫生状况的重要指标，用以判定食品被污染的程度。
二、菌落总数测定方法1. 按照国家标准方法，将样品进行稀释，取一定量稀释液接种到培养基上，置于恒温箱中培养。
2. 观察每个培养基上的菌落数量，并记录。
3. 根据稀释倍数和培养基上的菌落数量，计算出每克（每毫升）样品中的菌落总数。
三、菌落总数卫生标准根据国家卫生部门的规定，食品中的菌落总数应符合以下标准：1. 饮料、饮用水：≤100cfu/ml。
2. 植物性食品、罐头食品：≤1000cfu/g。
3. 肉制品、乳制品：≤50000cfu/g。
4. 调味品、粮谷类食品：≤1000cfu/g。
5. 冷饮食品：≤2000cfu/g。
四、菌落总数食品卫生要求1. 食品生产过程中，应采取有效措施控制菌落总数的污染，确保食品的安全卫生。
2. 生产过程中使用的原料、水源、容器等应符合卫生要求，避免污染。
3. 食品加工设备、器具、管道等应定期清洁消毒，保持良好的卫生状况。
4. 成品储存应避免污染，严格控制温度、湿度等条件，确保菌落总数不超标。
五、菌落总数环境卫生要求1. 生产场所应保持清洁卫生，定期进行清洁消毒，保持良好的卫生状况。
2. 生产场所的通风、照明等设施应符合卫生要求，防止细菌滋生。
3. 生产过程中产生的废弃物、污水等应及时处理，防止污染环境。
六、菌落总数检验规则1. 按照国家规定的标准方法进行检验，确保数据的准确性。
2. 检验时应选取具有代表性的样品，确保样品的代表性。
3. 对于不合格的样品，应进行复检，以确认数据的可靠性。
4. 对于批量生产的食品，应按比例抽样检验，确保整批产品的质量。
七、菌落总数标识、储存、运输要求1. 标识：产品标签上应注明菌落总数指标，以提示消费者注意食品的卫生质量。
2. 储存：食品应储存在清洁卫生的环境中，避免污染。
菌落总数的测定标准
菌落总数的测定标准一、采样方案1.1 采样对象：本标准适用于各类食品、药品、化妆品等产品。
1.2 采样量：根据产品类型及实际需要，一般采样量为10-50g（mL）。
1.3 采样方法：用无菌采样器随机取样，然后将样品混匀，制成1:10的稀释液。
二、培养基2.1 选择培养基：使用国家规定的标准培养基，如营养琼脂、孟加拉红培养基等。
2.2 培养基配制：按照培养基说明书进行配制，加入适量添加剂以满足实验要求。
三、培养温度3.1 培养温度：菌落总数培养温度为36℃±1℃。
3.2 恒温培养：培养过程中需保持恒温，不得超过±2℃。
四、培养时间4.1 培养时间：菌落总数培养时间为48小时±2小时。
4.2 时间记录：记录每个平皿的培养时间，以获得准确的菌落计数。
五、结果报告5.1 计数方法：使用菌落计数器对各稀释度平皿进行计数，并记录每个稀释度的平均菌落数。
5.2 结果报告：根据平均菌落数计算出每克（mL）样品中的菌落总数，并按照规定格式填写结果报告。
六、精度要求6.1 重复精度：同一稀释度同一平皿的菌落数偏差不得超过10%。
6.2 仪器精度：菌落计数器的精度应符合国家相关标准要求。
七、空白对照7.1 空白培养基：取适量空白培养基放入恒温培养箱中，观察其是否受到污染。
7.2 空白样品：取适量空白样品（如无菌水）进行实验，观察其是否受到污染。
八、重复试验8.1 重复次数：同一批次样品至少进行两次独立实验，以验证实验结果的可靠性。
8.2 异常情况处理：如出现异常数据或不符合要求的数据，应重新进行实验或采用备用样品进行实验。
食品中菌落总数的测定
任务四 平板制备
选择适宜的稀释样液根据对标本情况的估计,选择 3个 适宜稀释度,吸取该稀释度1mL稀释液于空平皿内。
待培养基冷却至46℃左右，以无菌操作倒入无菌培养 皿中。每个平皿倒入约15-20mL培养基，并转动平皿使其 混合均匀。放至水平面上自然冷却凝固，切勿随意晃动而 使培养基表面不平整影响涂布操作。
从样品稀释到平板 制备要求在15min 内 完成。
任务五、培养计数
待琼脂凝固后,倒置平板,置36±1℃温箱内培养48+2h。 平板取出,计算平板内菌落数目,乘以稀释倍数,即得每
g(或mL)样品所含菌落总数。 菌落计数以平板内菌落形成单位（CFU）表示。
恒平 温板 培计 养数
食品中菌落总数的测定
检测依据
GB 4789.2-2010
任务一 仪器试剂准备
• 所用器具干净、烘干、灭菌，既不能存在活菌也不能存在 抑菌物质。
• 应注意无菌操作。
任务二 仪器试剂灭菌
玻璃器皿
----干热灭菌160-170℃ 1-2h
平皿可以用牛皮纸或 双层报纸包扎成捆， 或放入金属筒内再灭 菌。
在吸管粗头顶端约 0.5cm处，塞上一 小段棉花，后用45cm宽的报纸将其 包好。
内部框架 带盖外筒பைடு நூலகம்
电热恒温干燥箱
培养基、生理盐水-----湿热灭菌121 ℃ 15-30min
任务三 样品稀释制备
全过程遵循无菌操作程序
⑴检样处理 以无菌操作取经过充分摇 匀的检样25mL，放入含有225mL灭菌 生理盐水的灭菌广口瓶内做成1:10的均 匀稀释液。
⑵样品稀释 用1mL灭菌吸管,吸取1:10 稀释液1mL,沿管壁徐徐注入含有9mL灭 菌生理盐水或其他稀释液的试管内（注 意吸管尖端不要触及管内稀释液),充分 振摇试管，使之混合均匀,制备成1:100 的稀释液。另取1mL灭菌吸管,按上项操 作顺序，作10倍递增稀释液,如此每递增 稀释一次,即换用1支1mL灭菌吸管。
食品安全国家标准 菌落总数测定
食品安全国家标准食品微生物学检验菌落总数测定1 范围本标准本标准规定了食品中菌落总数（Aerobic plate count）的测定方法。
本标准适用于食品中菌落总数的测定。
2 术语和定义2.1 菌落总数 aerobic plate count食品检样经过处理，在一定条件下（如培养基、培养温度和培养时间等）培养后，所得每g（mL）检样中形成的微生物菌落总数。
3 设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：3.1 恒温培养箱：36 ℃±1 ℃，30 ℃±1 ℃。
3.2 冰箱：2 ℃～5 ℃。
3.3 恒温水浴箱：46 ℃±1 ℃。
3.4 天平：感量为0.1 g。
3.5 均质器。
3.6 振荡器。
3.7 无菌吸管：1 mL（具0.01 mL 刻度）、10 mL（具0.1 mL 刻度）或微量移液器及吸头。
3.8 无菌锥形瓶：容量250 mL、500 mL。
3.9 无菌培养皿：直径90 mm。
3.10 pH 计或pH 比色管或精密pH 试纸。
3.11 放大镜或/和菌落计数器。
4 培养基和试剂4.1 平板计数琼脂培养基：见附录A 中A.1。
4.2 磷酸盐缓冲液：见附录A 中A.2。
4.3 无菌生理盐水：见附录A 中A.3。
5 检验程序菌落总数的检验程序见图1。
图1 菌落总数检验程序6 操作步骤6.1 样品的稀释6.1.1 固体和半固体样品：称取25 g 样品置盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内，8000 r/min～10000 r/min 均质1 min～2 min，或放入盛有225 mL 稀释液的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打1 min～2 min，制成1:10 的样品匀液。
6.1.2 液体样品：以无菌吸管吸取25 mL 样品置盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中，充分混匀，制成1:10 的样品匀液。
食品微生物学检验 菌落总数测定4789
食品安全国家标准食品微生物学检验 菌落总数测定１ 范围本标准规定了食品中菌落总数（Ａｅｒｏｂｉｃｐｌａｔｅｃｏｕｎｔ）的测定方法。
本标准适用于食品中菌落总数的测定。
２ 术语和定义２．１ 菌落总数 犪犲狉狅犫犻犮狆犾犪狋犲犮狅狌狀狋食品检样经过处理，在一定条件下（如培养基、培养温度和培养时间等）培养后，所得每ｇ（ｍＬ）检样中形成的微生物菌落总数。
３ 设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：ａ） 恒温培养箱：３６℃±１℃，３０℃±１℃。
ｂ） 冰箱：２℃～５℃。
ｃ） 恒温装置：４８℃±２℃。
ｄ） 天平：感量为０．１ｇ。
ｅ） 均质器。
ｆ） 振荡器。
ｇ） 无菌吸管：１ｍＬ（具０．０１ｍＬ刻度）、１０ｍＬ（具０．１ｍＬ刻度）或微量移液器及吸头。
ｈ） 无菌锥形瓶：容量２５０ｍＬ、５００ｍＬ。
ｉ）无菌培养皿：直径９０ｍｍ。
ｊ） ｐＨ计或ｐＨ比色管或精密ｐＨ试纸。
ｋ） 放大镜或／和菌落计数器。
４ 培养基和试剂４．１ 平板计数琼脂培养基：见Ａ．１。
４．２ 菌落总数测试片：应符合ＧＢ４７８９．２８中平板计数琼脂培养基质量控制要求，且主要营养成分与平板计数琼脂培养基配方一致。
４．３ 无菌磷酸盐缓冲液：见Ａ．２。
４．４ 无菌生理盐水：见Ａ．３。
５ 检验程序菌落总数的检验程序见图１。
图１ 菌落总数的检验程序６ 操作步骤６．１ 样品的稀释６．１．１ 固体和半固体样品：称取２５ｇ样品置于盛有２２５ｍＬ无菌磷酸盐缓冲液或无菌生理盐水的无菌均质杯内，８０００ｒ／ｍｉｎ～１００００ｒ／ｍｉｎ均质１ｍｉｎ～２ｍｉｎ，或放入盛有２２５ｍＬ稀释液的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打１ｍｉｎ～２ｍｉｎ，制成１∶１０的样品匀液。
６．１．２ 液体样品：以无菌吸管吸取２５ｍＬ样品置于盛有２２５ｍＬ无菌磷酸盐缓冲液或无菌生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内可预置适当数量的无菌玻璃珠）中，充分混匀，或放入盛有２２５ｍＬ稀释液的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打１ｍｉｎ～２ｍｉｎ，制成１∶１０的样品匀液。
饮料菌落总数的测定平板计数法(参照模板)
FSPYL025 饮料菌落总数的测定 平板计数法 F_SP＿YL＿025饮料—菌落总数的测定—平板计数法1 范围本方法采用平板计数法测定饮料中的菌落总数。
本方法适用于饮料中菌落总数的测定。
2 原理饮料检样经过处理，在一定条件下培养后(如培基成分、培养温度和时间、pH、需氧性质等)，通过计数得到1mL(g)检样中所含菌落的总数。
本方法规定的培养条件下所得结果，只包括一群在营养琼脂上生长发育的嗜中温性需氧的菌落总数。
3 试剂3.1 营养琼脂培养基3.1.1 成分蛋白胨 10g牛肉膏 3g氯化钠 5g琼脂 20g蒸馏水 1000mL3.1.2 制法将除琼脂以外的各成分溶解于蒸馏水中，加入15％氢氧化钠溶液约2mL，校正pH至7.2～7.4。
加入琼脂，加热煮沸，使琼脂溶化。
分装烧瓶，121℃高压灭菌15min。
3.2 磷酸盐缓冲稀释液3.2.1 储存液磷酸二氢钾 34g1mol／L氢氧化钠溶液 175mL蒸馏水 825mL先将磷酸盐溶解于500mL蒸馏水中，用1 mol／L氢氧化钠溶液校正pH7.2后，再用蒸馏水稀释至1000mL。
3.2.2 稀释液取储存液1.25mL，用蒸馏水稀释至1000mL。
分装每瓶100mL或每管10mL，121℃高压灭菌15min。
3.3 生理盐水3.4 乙醇，75％（V/V）4 设备和材料4.1 温箱，36±1℃4.2 冰箱，0～4℃4.3 恒温水浴，46土l℃4.4 天平4.5 电炉4.6 吸管4.7 广口瓶或三角瓶，容量为500mL4.8 玻璃珠，直径约5 mm4.9 平皿，直径为90 mm4.10 试管4.11 放大镜4.12 菌落计数器4.13 酒精灯4.14 均质器或乳钵4.15 试管架4.16 灭菌刀或剪子4.17 灭菌镊子5 操作步骤5.1 检样稀释及培养5.1.1 以无菌操作，将检样25 g(或mL)放于含有225mL灭菌生理盐水的灭菌玻璃瓶内(瓶内预置适当数量的玻璃珠)或灭菌乳钵内，经充分振摇或研磨均匀，做成1∶10的均匀稀释液。
菌落的总数实验报告
一、实验目的1. 掌握菌落总数的测定原理和方法。
2. 了解菌落总数在食品卫生学评价中的意义。
3. 通过实验，学会正确操作实验仪器和试剂，提高实验技能。
二、实验原理菌落总数是指在一定条件下，单位体积（或重量）样品中生长的细菌菌落数量。
本实验采用平板计数法，通过将样品进行稀释，涂布在琼脂平板上，在一定条件下培养，统计菌落数量，从而估算样品中的菌落总数。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 食品样品（如蛋糕、饮料等）- 稀释剂（如无菌生理盐水）- 营养琼脂平板- 铅笔- 灭菌棉签- 灭菌镊子- 培养箱- 移液器- 移液管- 计数器2. 实验仪器：- 电子天平- 高压蒸汽灭菌锅- 恒温水浴锅- 超净工作台四、实验步骤1. 样品准备：- 称取适量样品，用无菌生理盐水进行10倍稀释。
- 将稀释后的样品涂布在营养琼脂平板上。
2. 培养与观察：- 将涂布好的平板放入培养箱中，在适宜的温度下培养24小时。
- 观察平板上的菌落生长情况。
3. 菌落计数：- 选择菌落数量适中的平板，用铅笔在平板背面标记菌落位置。
- 用计数器对菌落进行计数。
- 根据稀释倍数，计算样品中的菌落总数。
五、实验结果与分析1. 实验结果：- 蛋糕样品的菌落总数为5.0×10^6 CFU/g。
- 饮料样品的菌落总数为1.2×10^5 CFU/mL。
2. 分析：- 蛋糕样品的菌落总数较高，可能是由于生产过程中受到污染或保存不当。
- 饮料样品的菌落总数相对较低，可能是由于生产过程中严格把关，保证了产品的卫生质量。
六、实验讨论1. 影响菌落总数测定的因素：- 样品处理方法：样品处理不当会导致菌落总数测定结果不准确。
- 稀释倍数：稀释倍数过大或过小都会影响菌落总数的测定。
- 培养条件：培养温度、湿度等条件会影响菌落的生长。
2. 提高菌落总数测定准确性的方法：- 严格遵循实验操作规程，确保样品处理、稀释、涂布等步骤的正确性。
- 选择合适的稀释倍数，保证菌落数量适中。
微生物菌落总数的测定—菌落总数的计数方法
混合均匀。
•
6、 待琼脂凝固后，翻转平板，置36±1℃温
箱内培养48±2h，水产品30±1℃温箱内培养72±3h。
•
如样品中可能含有在琼脂培养基表面弥漫生
长的菌落时，可在凝固后的琼脂表面覆盖一薄层琼
脂培养基（约4毫升），凝固后培养。
• （二） 菌落记录方法 做平板菌落数记录时，可用肉眼观察，必要
菌落总数的测定
三 、 材料
1、 食品检样 2、 培养基 平板计数培养基，无菌生理盐水或磷酸盐缓冲液 3、 其它 无菌培养皿，无菌吸管，电炉、恒温培养箱等。
四、 流程
• 1、检样 • 2、做几个适当倍数的稀释液 • 3、选择2~3个适宜稀释度各1 mL,分别加入
灭菌平皿内 • 4、平皿内倾注15～20 mL琼脂培养基，混匀 • 5、36 ±1℃培养48±2小时或（24±2）小时 • 6、记录稀释倍数和相应的各平板菌落数量 • 7、 计算菌落总数 → 报告
10-4
3.1x106
• 2、若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜
计数范围内时，应以两者比值决定。若其比值小 于2，应报告两者的平均数；若大于等于2，则报 告稀释度较小的菌落数。
试样 稀释度
例次 10-2
10-3
1
380
52
平
2 均 526
205
菌
3 落 271
60
数
4
284
152
菌量
10-4 选定计数稀释度 /(个/g 或mL)
菌量
10-4 选定计数稀释度 /(个/g 或mL)
18
10-3
5.2x104
32
10-3，10-4
2.6x105
12
国标菌落总数检测方法
国标菌落总数检测方法国标菌落总数检测方法是一种常用的微生物检测方法，用于评估给定样品中的微生物污染水平。
该方法可以应用于食品、环境、水源等多个领域，以评估样品中微生物的数量。
下面将详细介绍国标菌落总数检测方法的步骤和原理。
一、步骤1.准备培养基：根据需要进行培养的菌种不同，可以选择适当的培养基。
通常，使用含水解鱼肉膏、蛋白胨、肉汤、大豆胨等成分的富含营养物质的琼脂培养基。
2.准备样品：样品可以是食品、水样、环境表面样品等。
根据不同的样品，采取适当的方法进行取样，确保样品代表性。
3.稀释样品：为了获得适当的菌落数，通常需要对样品进行稀释。
将一定数量的样品与适量的稀释液混合均匀，得到一系列不同浓度的稀释液。
4.涂布方法：将上一步稀释好的样品涂布于琼脂培养基上。
可以采用平板涂布法或膜过滤法。
平板涂布法是将稀释好的样品倒入已凝固的琼脂平板上，用涂布棒均匀涂布。
膜过滤法是将稀释好的样品过滤到已凝固的膜上，将膜放在培养基上。
5.培养条件：根据需要培养的菌种不同，选择合适的培养温度和时间。
一般而言，大多数细菌在30-37℃下培养24-48小时。
6.菌落计数：培养一定时间后，可以观察到样品中的菌落。
使用显微镜或计数板等工具，对菌落进行计数。
7.统计和计算：根据计数结果和稀释倍数，可以计算出原始样品中的菌落总数。
二、原理微生物培养基提供了微生物生长所需的营养物质。
在适当的温度和湿度下，微生物会在培养基上生长形成菌落。
每个菌落代表一种或多种微生物。
根据菌落的形态、大小和颜色等特征，可以初步推测菌种。
计数并统计菌落总数可以评估样品中微生物的数量。
在菌落总数检测方法中，样品的稀释是为了确保菌落的数量适宜且分散均匀。
过高的菌落数量可能导致菌落过于密集，不容易准确计数。
过低的菌落数量可能导致菌落太稀疏，有些菌落容易被忽略。
选择合适的稀释倍数可以使得菌落数量适宜，方便计数并计算菌落总数。
总结起来，国标菌落总数检测方法是一种常用的微生物检测方法，通过样品的稀释、涂布、培养和计数等步骤，评估给定样品中的微生物数量。
食品中菌落总数的测定方法
食品中菌落总数的测定一、实验目的（1）学习与掌握测定食品中菌落总数的基本方法（2）学会菌落总数的报告方式二、实验材料1、仪器与设备:恒温培养箱、托盘天平、电炉、吸管、三角瓶、平皿、试管、试管架、酒精灯、灭菌刀或剪刀、75%酒精棉球、玻璃蜡笔。
2、培养基与试剂:75%乙醇、0、85%生理盐水、琼脂培养基:胰蛋白胨5、0g、酵母浸膏2、5g、葡萄糖1、0g、琼脂15、0g、蒸馏水1000mL、pH 7、0±0、23、检样:利乐包装鲜牛奶250ml三、实验方法与步骤1、检验程序菌落总数检验程序:检样→做成几个适当倍数的稀释液→选择2-3个适宜稀释度各以1ml之量分别入灭菌平皿内→每皿内加入46℃15-20ml营养琼脂→置36±1℃恒温箱内培养(48±2)h取出→菌落数→报告2、检样稀释及培养(1)以无菌操作,将检样包装打开,用吸管取25ml鲜牛奶,放于含有225ml灭菌生理盐水的500ml灭菌玻璃三角瓶内(瓶内预先置适当数量的玻璃珠),经充分振摇做成1:10的均匀稀释液。
(2)用1ml灭菌吸管吸取1:10稀释液1ml,沿管壁徐徐注入含有9ml灭菌生理盐水的试管内(注意吸管尖端不要触及管内稀释液,下同),振摇试管混合均匀,做成1:100的稀释液。
(3)另取1ml的灭菌吸管,按上项操作顺序作10倍递增稀释液,如此每递增稀释一次,即换用1支1ml灭菌吸管。
(4)根据食品卫生检验标准要求与检样的菌落数量,选择3个连续适宜稀释度即10、10－1、10－2,分别在作10倍递增稀释的同时,即以吸取该稀释度的吸管移1ml稀释液于灭菌平皿内,每个稀释度作两个平皿。
(5)稀释液移入平皿后,应及时将凉至46℃营养琼脂培养基注入平皿15ml~20mL,并转动平皿使与稀释检样混合均匀,同时将营养琼脂培养基倾入加有1ml稀释液(不含样品)的灭菌平皿内作空白对照。
(6)等琼脂凝固后,翻转平板,置36±1℃恒温箱内培养(48±2)h取出,计算平板内菌落数目乘以倍数,即得1mL样品所含菌落总数。
食品微生物菌落总数测定方法
食品微生物菌落总数测定方法1 主题内容与适用范围本标准规定了食品中菌落总数的测定方法。
本标准适用于食品中菌落总数的测定。
2 术语菌落总数是指食品检样经过处理,在一定条件下培养后(如培基成分、培养温度和时间、pH、需氧性质等),所得1mL(g)检样中所含菌落的总数。
本方法规定的培养条件下所得结果,只包括一群在营养琼脂上生长发育的嗜中温性需氧的菌落总数。
菌落总数主要作为判定食品被污染程度的标志,也可以应用这一方法观察细菌在食品中繁殖的动态,以便对被检样品进行卫生学评价时提供依据。
3 引用标准GB 4789.28 食品卫生微生物学检验 染色法、培养基和试剂4 设备和材料4.1 温箱：36±1℃。
4.2 冰箱：0～4℃。
4.3 恒温水浴：46±1℃。
4.4 天平。
4.5 电炉。
4.6 吸管。
4.7 广口瓶或三角瓶：容量为500mL。
4.8 玻璃珠：直径约5mm。
4.9 平皿：直径为90mm。
4.10 试管。
4.11 放大镜。
4.12 菌落计数器。
4.13 酒精灯。
4.14 均质器或乳钵。
4.15 试管架。
4.16 灭菌刀或剪子。
4.17 灭菌镊子。
5 培养基和试剂5.1 营养琼脂培养基：按GB 4789.28中4.7规定。
5.2 磷酸盐缓冲稀释液：按GB 4789.28中3.22规定。
5.3 生理盐水。
5.4 75％乙醇。
6 检验程序菌落总数的检验程序如下。
┌─────┐│ 检 样 │└─────┘↓┌─────────────┐│ 做成几个适当倍数的稀释液 │└─────────────┘↓┌──────────────┐│ 选择2～3个适宜稀释度 ││ 各以1mL分别加入灭菌平皿内 │└──────────────┘↓┌─────────────┐│ 每皿内加入适量营养琼脂 │└─────────────┘36±1℃ ↓ 48±2h┌─────┐│ 菌落计数 │└─────┘↓┌──────┐│ 报告 │└──────┘7 操作步骤7.1 检样稀释及培养7.1.1 以无菌操作,将检样25g(或mL)剪碎放于含有225mL灭菌生理盐水或其他稀释液的灭菌玻璃瓶内(瓶内预置适当数量的玻璃珠)或灭菌乳钵内,经充分振摇或研磨做成1∶10的均匀稀释液。
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食品中菌落总数的测定
一、实验目的
（1）学习和掌握测定食品中菌落总数的基本方法
（2）学会菌落总数的报告方式
二、实验材料
1、仪器与设备：恒温培养箱、托盘天平、电炉、吸管、三角瓶、平皿、试管、试管架、酒精灯、灭菌刀或剪刀、75%酒精棉球、玻璃蜡笔。
2、培养基和试剂：75%乙醇、0.85%生理盐水、琼脂培养基：胰蛋白胨5.0g、酵母浸膏2.5g、葡萄糖1.0g、
琼脂15.0g、蒸馏水1000mL、pH 7.0±0.2
3、检样：利乐包装鲜牛奶250ml
三、实验方法与步骤
1、检验程序
菌落总数检验程序：
检样→做成几个适当倍数的稀释液→选择2-3个适宜稀释度各以1ml之量分别入灭菌平皿内→每皿内加入46℃15-20ml营养琼脂→置36±1℃恒温箱内培养（48±2）h取出→菌落数→报告
2、检样稀释及培养
（1）以无菌操作，将检样包装打开，用吸管取25ml鲜牛奶，放于含有225ml灭菌生理盐水的500ml灭菌玻璃三角瓶内（瓶内预先置适当数量的玻璃珠），经充分振摇做成1：10的均匀稀释液。
（2）用1ml灭菌吸管吸取1：10稀释液1ml，沿管壁徐徐注入含有9ml灭菌生理盐水的试管内（注意吸管尖端不要触及管内稀释液，下同），振摇试管混合均匀，做成1：100的稀释液。
（3）另取1ml的灭菌吸管，按上项操作顺序作10倍递增稀释液，如此每递增稀释一次，即换用1支1ml灭菌吸管。
（4）根据食品卫生检验标准要求和检样的菌落数量，选择3个连续适宜稀释度即10、10－1、10－2，分别在作10倍递增稀释的同时，即以吸取该稀释度的吸管移1ml稀释液于灭菌平皿内，每个稀释度作两个平皿。
（5）稀释液移入平皿后，应及时将凉至46℃营养琼脂培养基注入平皿15ml~20mL，并转动平皿使与稀释检样混合均匀，同时将营养琼脂培养基倾入加有1ml稀释液（不含样品）的灭菌平皿内作空白对照。
（6）等琼脂凝固后，翻转平板，置36±1℃恒温箱内培养（48±2）h取出，计算平板内菌落数目乘以倍数，即得1mL样品所含菌落总数。
四、检样中细菌菌落总数的计算与报告
1、菌落计算方法
（1）菌落计数方法
做平板菌落计数时，可用肉眼观查，必要时用放大镜检查，以防遗漏。
在记下各平板的菌落数后，求出同稀释度的各平板平均菌落总数。
（2）菌落计数的报告
①平板菌落数的选择
选取菌落数在30～300 CFU之间的平板作为菌落总数测定标准。
一个稀释度使用两个平板，应采用两个平板平均数，
②稀释度的选择
应选择平均菌落数在30～300 CFU之间的稀释度，乘以稀释倍数报告之。
若有两个稀释度，其生长的菌落数均在30～300之间，按以下公式计算：
N = 样品中菌落数
ΣC = 含适宜范围CFU的平板菌落数之和
n1 = 第一稀释度（低稀释度）平板个数
n2 = 第二稀释度（高稀释度）平板个数
d = 稀释因子（第一稀释度）
若所有稀释度的平均菌落数均大于300 CFU，则应按稀释度最高的平均菌落数乘以稀释倍数报告之，
若所有稀释度的平均菌落数均小于30 CFU，则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数报告
若所有稀释度及样品原液均无菌落生长，则以小于l乘以最低稀释倍数报告之，若所有稀释度的平均菌落数均不在30～300 CFU之间，其中一部分大于300 CFU或小于30 CFU时，则以最接近30 CFU或300 CFU的平均菌落数乘以稀释倍数报告之。
③菌落数的报告
菌落数小于100 CFU 时，按“四舍五入”原则修约，以整数报告。
菌落数大于或等于100 CFU 时，第3 位数字采用“四舍五入”原则修约后，取前2 位数字，后面用0 代替位数；也可用10 的指数形式来表示，按“四舍五入”原则修约后，采用两位有效数字。
若所有平板上为蔓延菌落而无法计数，则报告菌落蔓延。
若空白对照上有菌落生长，则此次检测结果无效。
称重取样以CFU/g 为单位报告，体积取样以CFU/mL 为单位报告。
3、实验结果与记录
判定所检测样品菌落总数是否符合国家标准
Phibro is required to respond to the FDA that Jianmin:
·Is Prepared to add the following tests; light absorbing impurities, related substances and particle size to their OTC COA;
·Will provide a COA as evidence that these tests have been conducted and added to the COA;
·Will update VMF 6023 to include the data and report to support validation or verification of the methods used to analyze the tests cited above; and
·Will provide us with a report or a statement to confirm that they have performed appropriate validation or verification of the methods.
如有问题，请随时沟通。