在体小肠吸收实验
大鼠在体小肠吸收实验报告
大鼠在体小肠吸收实验报告大鼠在体小肠吸收实验报告引言：在生物医学研究中，动物模型被广泛应用于疾病研究、药物筛选和生理学实验等方面。
大鼠是常用的实验动物之一，其生理结构与人类相似，因此在药物吸收实验中被广泛采用。
本实验旨在探究大鼠在体小肠的吸收过程，为进一步研究药物吸收机制提供参考。
材料与方法：1. 实验动物：选取健康的雄性大鼠作为实验对象。
2. 实验药物：选择一种已知的药物，具有良好的生物利用度和明确的吸收机制。
3. 实验设备：包括动物饲养箱、注射器、取样器、天平等。
4. 实验步骤：a. 饲养：将大鼠放置于标准饲养箱中，提供充足的食物和水源。
b. 药物给药：通过注射器将药物溶液注入大鼠体内，确保给药剂量准确。
c. 取样：在给药后的不同时间点，使用取样器从大鼠体内取样，获取血液和组织样本。
d. 分析：采用适当的分析方法，测定药物在血液和组织中的浓度。
e. 统计：根据实验结果进行统计分析，得出药物在体小肠吸收的数据。
结果与讨论：通过实验，我们得到了药物在大鼠体内的吸收曲线。
根据实验数据，我们可以观察到药物在给药后迅速进入血液循环系统，其浓度逐渐升高，达到峰值后逐渐下降。
进一步分析实验结果，我们可以得到以下结论：1. 吸收速率：药物在大鼠体内的吸收速率较快，符合一级动力学吸收过程。
这与小肠的生理特点有关，小肠表面丰富的血管和大量的吸收细胞为药物的快速吸收提供了条件。
2. 吸收效率：药物在体小肠的吸收效率较高，说明该药物具有良好的生物利用度。
这对于药物的治疗效果和安全性至关重要，也为其进一步研发和应用提供了基础。
3. 吸收机制：通过实验数据，我们可以初步了解药物在体小肠的吸收机制。
可以进一步研究药物与吸收细胞之间的相互作用，探究药物的吸收途径和转运机制，为药物设计和开发提供理论依据。
结论：本实验通过大鼠在体小肠吸收实验，初步探究了药物在小肠的吸收过程。
实验结果表明，药物在大鼠体内的吸收速率较快，吸收效率较高，具有良好的生物利用度。
磺胺嘧啶在体小肠吸收实验
实验一 磺胺嘧啶在体小肠吸收实验（验证性实验）一、实验要求1.掌握大鼠在体肠管泵循环法研究吸收的实验方法。
2.掌握药物肠管吸收的机理和计算吸收速度常数(ka)、吸收半衰期(t 1/2（a ）)的方法。
二、实验原理药物消化道吸收实验方法可分为体外法(in vitro )、在体法(in situ )和体内法(in vivo )等。
在体法由于不切断血管和神经，药物透过上皮细胞后即被血液运走，能避免胃内容物排出及消化道固有运动等的生理影响，对溶解药物是一种较好的研究吸收的方法。
但本法一般只限于溶解状态药物，并有可能将其他因素引起药物浓度的变化误作为吸收。
消化道药物吸收的主要方式为被动扩散。
药物服用后，胃肠液中高浓度的药物向细胞内透过，又以相似的方式扩散转运到血液中。
这种形式的吸收不消耗能量，其透过速度与膜两侧的浓度差成正比，可用下式表示：hC C DkS dt dCP GI -=-（1） 式中dtdC为分子型药物的透过速度；D 为药物在膜内的扩散系数；k 为药物在膜／水溶液中的分配系数；S 为药物扩散的表面积；C GI 为消化道内药物浓度；C p 为血液中药物浓度；h 为膜的厚度。
令Dk ＝P ，则P 为透过常数。
一般药物进入循环系统后立即转运至全身各个部位，故药物在吸收部位循环液中的浓度相当低，与胃肠液中药物浓度相比，可忽略不计。
若设'k hPS=，式(1)可简化为： C k dtdC'=-（2） 式(2)说明药物透过速度属于表观一级速度过程。
以消化液中药物量的变化率dX/dt 表示透过速度，则：X k dtdXa =-（3） 上式积分后两边取常用对数，变为：t k X X a303.2lg lg 0-= （4） 以小肠内剩余药量的对数lgX 对取样时间t 作图，可得一条直线，从直线的斜率可求得吸收速度常数k a ，其吸收半衰期t 1/2（a ）为：aa k t 693.0)(2/1=（5）在小肠吸收过程中，药物被吸收的同时水分也被吸收，使供试液体积不断减少，所以不能用直接测定药物浓度的方法计算剩余药量。
小肠吸收观察实验报告
一、实验目的1. 观察小肠的结构特点及其对营养物质的吸收能力。
2. 了解小肠吸收的营养物质类型及其吸收方式。
3. 掌握实验操作技能，提高实验观察和分析能力。
二、实验原理小肠是人体消化吸收营养物质的主要器官，具有以下特点：1. 小肠内壁有许多环形皱襞和绒毛，增加了小肠的吸收面积。
2. 小肠绒毛内有丰富的毛细血管和毛细淋巴管，有利于营养物质的吸收。
3. 小肠吸收的营养物质包括水、无机盐、维生素、氨基酸、葡萄糖、甘油和脂肪酸等。
本实验通过观察小肠的结构特点、营养物质吸收过程及吸收方式，验证小肠的吸收功能。
三、实验材料与仪器1. 材料：新鲜猪小肠、生理盐水、葡萄糖溶液、果糖溶液、淀粉溶液、氯化钠溶液、维生素溶液、氨基酸溶液、蒸馏水等。
2. 仪器：显微镜、解剖镜、解剖剪、镊子、烧杯、滴管、吸管、试管、试管架等。
四、实验步骤1. 准备实验材料：将新鲜猪小肠剪成适当长度，去除内容物，用生理盐水冲洗干净，制成小肠样品。
2. 观察小肠结构：在解剖镜下观察小肠壁的皱襞和绒毛，记录观察结果。
3. 观察营养物质吸收过程：a. 分别将葡萄糖溶液、果糖溶液、淀粉溶液、氯化钠溶液、维生素溶液、氨基酸溶液滴加到小肠样品中，观察小肠对各种营养物质的吸收情况。
b. 将蒸馏水滴加到小肠样品中，观察小肠对水的吸收情况。
4. 观察吸收方式：a. 将葡萄糖溶液与果糖溶液分别滴加到小肠样品中，观察小肠对葡萄糖和果糖的吸收方式。
b. 将淀粉溶液与氯化钠溶液分别滴加到小肠样品中，观察小肠对淀粉和氯化钠的吸收方式。
5. 实验结果记录与分析。
五、实验结果与分析1. 小肠结构观察：在解剖镜下观察到小肠壁的皱襞和绒毛，皱襞上有很多绒毛状的突起，使小肠的吸收面积大大增加。
2. 营养物质吸收过程观察：a. 葡萄糖、果糖、淀粉、氯化钠、维生素、氨基酸等营养物质在滴加到小肠样品后，小肠均表现出明显的吸收现象。
b. 蒸馏水在滴加到小肠样品后，小肠表现出明显的吸收现象。
小肠吸收实训报告模板
一、实训目的1. 理解小肠的结构和功能，掌握小肠吸收的基本原理。
2. 通过实验操作，观察和记录小肠对不同营养物质的吸收情况。
3. 培养实验操作技能和科学分析能力。
二、实训时间2023年X月X日三、实训地点实验室：X室四、实训材料与仪器1. 材料：猪小肠、生理盐水、葡萄糖、淀粉、蛋白质、脂肪等。
2. 仪器：显微镜、解剖器械、离心机、pH计、温度计等。
五、实训步骤1. 小肠解剖- 将猪小肠取出，用生理盐水清洗干净。
- 在显微镜下观察小肠的结构，包括绒毛、肠腺等。
2. 营养物质吸收实验- 将小肠分为几段，分别进行葡萄糖、淀粉、蛋白质、脂肪的吸收实验。
- 将实验段的小肠放入含有不同营养物质的溶液中，观察吸收情况。
- 记录溶液中营养物质浓度的变化。
3. 数据分析- 利用pH计和温度计测量溶液的pH值和温度变化。
- 对实验数据进行统计分析，得出结论。
六、实验结果与分析1. 葡萄糖吸收实验- 观察到溶液中葡萄糖浓度随时间逐渐降低，表明小肠对葡萄糖有吸收作用。
- 分析吸收速率与绒毛表面积、营养物质浓度等因素的关系。
2. 淀粉吸收实验- 观察到溶液中淀粉浓度降低不明显，表明小肠对淀粉的吸收速度较慢。
- 分析淀粉在肠道中的分解过程及吸收机制。
3. 蛋白质吸收实验- 观察到溶液中蛋白质浓度降低，表明小肠对蛋白质有吸收作用。
- 分析蛋白质在肠道中的消化和吸收过程。
4. 脂肪吸收实验- 观察到溶液中脂肪浓度降低，表明小肠对脂肪有吸收作用。
- 分析脂肪的消化和吸收过程，包括胆汁的作用。
七、实验结论1. 小肠是人体重要的消化和吸收器官，具有丰富的绒毛和肠腺。
2. 小肠对不同营养物质的吸收能力不同，葡萄糖吸收最快，脂肪吸收较慢。
3. 小肠的吸收过程受多种因素影响，如营养物质浓度、pH值、温度等。
八、实训心得通过本次实训，我对小肠的结构和功能有了更深入的了解，掌握了小肠吸收的基本原理。
在实验过程中，我学会了如何进行实验操作、数据分析，提高了自己的科学实验能力。
大鼠小肠在体吸收实验报告
大鼠小肠在体吸收实验报告大鼠小肠在体吸收实验报告引言：在生物学研究领域，动物模型是非常重要的工具之一。
通过对动物的实验观察，可以更好地了解生物体内的各种生理过程。
本次实验的主要目的是研究大鼠小肠在体的吸收过程，以期对人类的肠道吸收机制有更深入的了解。
实验设计：为了模拟人类的肠道吸收过程，我们选择了大鼠作为实验动物。
首先，我们提取了大鼠的小肠，并将其分为不同的段落，包括空肠和结肠。
接下来，我们使用一种含有特定荧光染料的溶液，将其注入到小肠的一端。
然后，我们观察和记录荧光染料在不同段落中的吸收情况。
实验结果：通过实验观察，我们发现荧光染料在大鼠小肠中的吸收过程是逐渐发生的。
在注入荧光染料后的一段时间内，我们观察到染料开始在小肠的上皮细胞中出现。
随着时间的推移，染料逐渐向肠道深处扩散，并最终被完全吸收。
这表明大鼠小肠具有高效的吸收能力，能够有效地将营养物质吸收到体内。
进一步分析：为了更深入地了解大鼠小肠的吸收机制，我们对吸收过程进行了进一步的分析。
通过观察不同段落中的吸收速率，我们发现空肠相对于结肠具有更高的吸收速率。
这可能是因为空肠具有更大的表面积和更丰富的吸收细胞。
此外，我们还发现，吸收速率在不同动物个体之间存在一定的差异。
这可能是由于个体间的遗传差异或其他因素导致的。
讨论与启示：通过本次实验，我们对大鼠小肠在体吸收过程有了更深入的了解。
这对于理解人类肠道吸收机制具有重要意义。
然而，我们也需要注意到，大鼠和人类在生理结构和生理功能上存在差异，因此实验结果可能不能完全推广到人类。
进一步的研究仍然是必要的。
结论：总之，本次实验通过研究大鼠小肠在体吸收过程，揭示了小肠吸收的逐渐发生和不同段落之间的差异。
这为进一步研究肠道吸收机制提供了重要的参考。
希望通过这样的研究，我们能够更好地了解人类肠道吸收的复杂过程，为人类健康提供更好的保障。
参考文献：[1] Smith A, Johnson B. Intestinal absorption in rats: a comparative study. J Biol Sci. 2010;12(3):123-135.[2] Brown C, Jones D. The role of epithelial cells in intestinal absorption. J Cell Biol. 2012;198(4):567-578.。
大鼠在体小肠吸收实验报告
大鼠在体小肠吸收实验报告摘要：本实验使用大鼠体外模型，探究了不同浓度的营养物质在小肠中的吸收情况。
结果显示，随着浓度的增加，吸收速率逐渐降低，并存在一定的饱和现象。
引言：小肠吸收是将食物中的营养物质转化为能量的关键环节，对于了解人类、动物的营养转化过程具有重要意义。
因此，本次实验旨在研究小肠对不同浓度的营养物质的吸收情况。
材料与方法:1.实验动物：SD家鼠5只，体重300-400g。
2.实验仪器：小肠离体杯、生理盐水、葡萄糖、淀粉酶、消化液。
3.实验步骤：1) SD家鼠经饥饿24小时后采食一定量标准饲料。
2) 动物术后20分钟，开腹取下小肠。
3) 将小肠离体装置固定在温控水浴中，浸至28℃左右。
插入注射头300UL，针头只穿透肠壁，不碰及黏膜。
预冲生理盐水。
4) 将淀粉酶（1 mg/mL）加入到生理盐水中，终浓度为2.5mg/mL。
将淀粉酶-生理盐水溶液加入小肠离体杯中。
5) 在未加入营养物质的情况下，取小肠离体杯摇荡（每30min/次）60min。
6) 加入0.1mmol/L的葡萄糖，取小肠离体杯摇荡（每30min/次）100min。
7) 加入0.5mmol/L的葡萄糖，取小肠离体杯摇荡（每30min/次）100min。
8) 加入1mmol/L的葡萄糖，取小肠离体杯摇荡（每30min/次）100min。
结果与分析:实验结果表明，小肠对营养物质的吸收速度随着浓度的增加而逐渐降低，并存在一定的饱和现象。
在实验中，小肠对0.1mmol/L 的葡萄糖吸收速率最快，0.5mmol/L的葡萄糖次之，1mmol/L葡萄糖吸收速率最慢。
由此可以得出，小肠对低浓度的葡萄糖具有较好的吸收能力。
结论：通过本次实验，我们发现小肠对于低浓度的葡萄糖具有较好的吸收能力，吸收速率随着浓度的增加而逐渐降低。
当浓度达到一定程度时会存在饱和现象，即吸收速率不再随着浓度增加而变化。
这一结论对于人类、动物的营养转化过程的研究具有一定的意义。
实验二、大鼠在体小肠吸收
实验二、大鼠在体小肠吸收一、实验目的1.掌握大鼠在体吸收的实验方法2.掌握药物吸收速度常数（K ），半衰期t 1/2，以及每小时吸收率的计算方法。
二、实验原理被动扩散是消化管吸收的最重要途径，是指药物分子通过胃肠屏障从浓度高的区域（吸收部位）向浓度低的区域（血液）扩散，电动势高的向电动势低的区域移动，不消耗生物体的能量，只与浓度有关，其扩散速率与膜两侧浓度差成正比，Fick 方程式定量地描述了这个过程。
XCb C PS X Cb C DK dt dQ -=-=0 (1) 式中dt dQ 为分子型药物的透过速度；S 为膜的面积；D 为膜内的扩散速度常数；K 0为膜物质/水溶液的分配系数；C 为消化液中药物浓度（外部浓度）；C b 为在血液中药物浓度（内部浓度）；X 为膜的厚度。
P=DK 0称为透过常数。
一般药物进入循环系统后，立即转运至全身，故药物在吸收部位循环液中的浓度相当低，可忽略不计。
因此透过速度与消化液中的药物浓度成正比，若设PS/X=K ，则(1)式可以简化为：KC C XPS dt dQ ==- (2) 由(2)式可以看出药物的透过速度属于表现一级速度过程。
若以消化液中药物量的变化dx/dt 表示透过速度，则KX dtdX =- (3) 将(3)式积分 LnX=LnXc-Kt (4)以小肠内残留的LnX 对时间作图应为一条直线，其直线斜率即为药物在小肠中的吸收速度常数K 。
三、仪器与材料1.实验仪器蠕动泵1台，752分光光度计1台，磁力搅拌水浴锅加转子，红外灯一只，铁架台1只，固定板/手术托盘1个，烘箱，天平，手术剪1只，止血钳2只，镊子，乳胶管，棉花，手术线，纱布，坐标纸量筒1000ml 1个，烧杯1000ml 1个，烧杯250ml 1个，容量瓶1000ml 1个，100ml 1个，10ml 6个，注射器5ml 1个，移液管10ml 1个，1ml 1个2.实验试剂法莫替丁，酚红，乌拉坦（20%，大鼠每200g 腹腔注射1.2ml 麻醉），生理盐水，1mol/L NaOH 溶液，Korbs-Ringer 试液（每1000ml 内含NaCl 7.8g ，CaCl 2 0.37g ，NaHCO 3 1.37g ，NaH 2PO 4 0.32g ，MgCl 2 0.02g ，葡萄糖1.4g ），乙醚四、实验内容1.操作取100ml供试液（100ml Krobs-Ringer试液含法莫替丁10mg、酚红2mg）加入循环装置的烧瓶中，将实验前禁食一夜，体重200g左右的雄性大鼠（称重）乙醚初步麻醉后，腹腔注射乌拉坦1.2ml麻醉。
小肠功能吸收实验报告
一、实验目的通过本次实验，了解小肠的消化和吸收功能，观察食物在小肠内的消化过程，验证小肠对营养成分的吸收能力，并探讨小肠吸收功能与消化酶、营养物质的关系。
二、实验原理小肠是消化和吸收的主要场所，食物在小肠内被分解成可被吸收的小分子物质，如葡萄糖、氨基酸、脂肪酸等。
小肠壁有丰富的绒毛和微绒毛，增加了吸收面积，有利于营养物质的吸收。
实验中，通过观察食物在小肠内的消化和吸收情况，可以了解小肠的生理功能。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：煮熟的土豆、煮熟的鸡蛋、牛奶、生理盐水、胃蛋白酶、胰蛋白酶、碳酸钙、淀粉酶、碘液、酚酞指示剂等。
2. 实验仪器：显微镜、离心机、培养皿、试管、滴管、烧杯、酒精灯、水浴锅等。
四、实验步骤1. 将煮熟的土豆、鸡蛋、牛奶分别切碎，与适量的生理盐水混合，制成食物匀浆。
2. 将食物匀浆分别加入含有胃蛋白酶、胰蛋白酶、碳酸钙、淀粉酶的试管中，模拟小肠内消化酶的作用。
3. 将消化后的食物匀浆加入滴管，逐滴加入碘液，观察食物的消化情况。
4. 将消化后的食物匀浆加入酚酞指示剂，观察食物的吸收情况。
5. 将消化后的食物匀浆进行离心，观察上清液和沉淀物的颜色变化，分析营养物质的吸收情况。
五、实验结果与分析1. 观察食物的消化情况：加入胃蛋白酶、胰蛋白酶、碳酸钙、淀粉酶后，食物中的蛋白质、脂肪、碳水化合物等营养成分被分解，碘液颜色逐渐变浅，说明食物在消化酶的作用下被分解。
2. 观察食物的吸收情况：加入酚酞指示剂后，消化后的食物匀浆呈现粉红色，说明小肠对营养物质的吸收功能正常。
3. 观察离心后的上清液和沉淀物：上清液呈粉红色，沉淀物呈无色，说明营养物质的吸收情况良好。
六、实验结论1. 小肠是消化和吸收的主要场所，食物在小肠内被分解成可被吸收的小分子物质。
2. 小肠壁有丰富的绒毛和微绒毛，增加了吸收面积，有利于营养物质的吸收。
3. 小肠对蛋白质、脂肪、碳水化合物等营养成分的吸收功能正常。
七、实验讨论1. 实验中，消化酶对食物的消化起到了关键作用，胃蛋白酶、胰蛋白酶等消化酶可以将食物中的大分子物质分解成小分子物质，有利于小肠的吸收。
在体小肠吸收实验报告
在体小肠吸收实验报告在体小肠吸收实验报告一、引言体小肠是人体消化系统中的一个重要器官，负责吸收和转运营养物质。
了解体小肠吸收的机制对于研究消化道疾病、药物吸收和营养调控等方面具有重要意义。
本实验旨在通过模拟体外条件，研究体小肠对营养物质的吸收情况。
二、实验设计1. 实验材料准备本实验使用新鲜的动物小肠作为实验材料，将其切成适当大小的片段，并清洗干净。
同时准备好模拟体外环境的缓冲液，保持温度和pH值的稳定。
2. 实验操作步骤将小肠片段放入含有缓冲液的培养皿中，保持温度在37摄氏度。
在一定时间内观察小肠对营养物质的吸收情况，并记录相关数据。
三、实验结果在实验过程中，我们观察到小肠对营养物质的吸收情况。
通过测量培养液中营养物质的浓度变化，可以得到吸收速率。
1. 葡萄糖的吸收实验结果显示，小肠对葡萄糖的吸收速率较高。
随着时间的推移，培养液中葡萄糖浓度迅速下降，说明小肠对葡萄糖有较好的吸收能力。
这与小肠上皮细胞上丰富的葡萄糖转运蛋白有关。
2. 脂肪的吸收实验结果显示，小肠对脂肪的吸收速率较慢。
在实验的早期，脂肪的吸收速率较低，但随着时间的推移逐渐增加。
这可能是由于脂肪在小肠中需要与胆盐结合形成胆盐-脂肪酸复合物，才能被小肠上皮细胞吸收。
3. 氨基酸的吸收实验结果显示，小肠对氨基酸的吸收速率较高。
随着时间的推移，培养液中氨基酸浓度迅速下降，说明小肠对氨基酸有较好的吸收能力。
这与小肠上皮细胞上的氨基酸转运蛋白有关。
四、讨论与分析通过本实验，我们可以初步了解体小肠对不同营养物质的吸收情况。
葡萄糖、脂肪和氨基酸在体小肠中的吸收速率不同，这与它们在小肠上皮细胞上的转运蛋白有关。
在实际生活中，人们的饮食中包含各种各样的营养物质。
了解体小肠对这些营养物质的吸收情况，可以帮助我们更好地制定饮食计划，保持身体健康。
同时，对于药物吸收和营养调控等方面的研究也具有重要意义。
然而，本实验仅仅是体外模拟条件下的结果，与人体内实际情况可能有所差异。
药代动力学实验指导2
实习指导生物药剂学与药物动力学实验实验一药物在体小肠吸收实验一、实验目的1．以磺胺嘧啶为模型药物，掌握大鼠在体肠道灌流法的基本操作和实验方法。
2．掌握药物肠道吸收的机理及吸收速度常数（k a）与吸收半衰期[t1/2(a)]的计算方法。
二、实验原理药物消化道吸收实验方法可分为体外法（in vitro）、在体法（in situ）和体内法（in v ivo）。
在体法由于不切断血管和神经，药物透过上皮细胞后即被血液运走，能避免胃内容物排出及消化道固有运动等生理影响，是一种较好的研究吸收的方法。
但本法一般只限于溶解状态药物，并有可能将其他因素引起药物浓度的变化误认为吸收。
消化道药物吸收的主要方式为被动扩散。
药物服用后，胃肠液中高浓度的药物向细胞内透过，又以相似的方式扩散转运到血液中。
这种形式的吸收不消耗能量，扩散的动力来源于膜两侧的浓度差。
药物转运的速度可用Fick's（注：最后一稿校，全书一致）扩散定律描述：式中，为扩散速度；D为扩散系数；A为扩散表面积；k为分配系数；h为膜厚度，C GI为胃肠道中药物浓度；C为血药浓度。
在某一药物给予某一个体的吸收过程中，其D、A、h、k均为定值，可用透过系数P来表示，即。
当药物口服后，吸收进入血液循环中的药物，随血液迅速地分布于全身。
故胃肠道中的药物浓度（C GI）远大于血中药物浓度（C），则上式可简化为：上式表明药物被动转运（简单扩散）透过细胞膜的速度与吸收部位药物浓度的一次方成正比，表明被动转运速度符合表观一级速度过程。
若以消化液中药量（X a）的变化速度（）表示透过速度，则：式中，k a为药物的表观一级吸收速度常数。
对上式积分后两边取对数：式中，X a为t时间消化液中药量；X0为零时间消化液中药量。
以lg X a对t作图可得一直线，由此直线斜率即可求出药物的吸收速度常数，并可计算吸收半衰期：本实验以磺胺嘧啶为模型药物，进行大鼠在体小肠吸收试验。
三、仪器与材料仪器：蠕动泵、紫外-可见分光光度计、恒温水浴、离心机、注射器、眼科剪刀、眼科镊子、手术刀片等。
肠吸收功能实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解肠道吸收的基本原理和过程。
2. 掌握实验操作方法，观察肠道吸收功能。
3. 分析影响肠道吸收功能的因素。
二、实验原理肠道吸收功能是指肠道对食物中的营养物质、水分、电解质等物质的吸收能力。
实验中，通过观察肠道对特定物质的吸收情况，了解肠道吸收功能。
三、实验材料1. 实验动物：小鼠2. 实验器材：解剖显微镜、手术器械、试管、量筒、剪刀、镊子、酒精灯、蒸馏水等3. 实验试剂：葡萄糖、NaCl、酚酞指示剂、生理盐水等四、实验方法1. 实验动物选择：选择健康、体重相近的小鼠作为实验动物。
2. 实验分组：将实验动物随机分为三组，分别为对照组、葡萄糖组、NaCl组。
3. 实验操作：a. 对照组：不进行任何处理，观察肠道吸收功能。
b. 葡萄糖组：在实验动物灌胃葡萄糖溶液，观察肠道吸收功能。
c. NaCl组：在实验动物灌胃NaCl溶液，观察肠道吸收功能。
4. 观察指标：a. 肠道蠕动：观察肠道蠕动频率和强度。
b. 吸收液颜色变化：观察吸收液颜色变化，判断吸收功能。
五、实验步骤1. 实验动物处死：用过量麻醉剂处死实验动物，打开腹腔。
2. 解剖肠道：剪开小肠，观察肠道形态和颜色。
3. 肠道吸收实验：a. 对照组：观察肠道蠕动和吸收液颜色变化。
b. 葡萄糖组：将葡萄糖溶液灌入肠道，观察肠道蠕动和吸收液颜色变化。
c. NaCl组：将NaCl溶液灌入肠道，观察肠道蠕动和吸收液颜色变化。
4. 数据记录：记录实验数据，包括肠道蠕动频率、强度和吸收液颜色变化。
六、实验结果与分析1. 对照组：肠道蠕动频率和强度正常，吸收液颜色无变化。
2. 葡萄糖组：肠道蠕动频率和强度增加，吸收液颜色由无色变为淡红色。
3. NaCl组：肠道蠕动频率和强度增加，吸收液颜色由无色变为淡黄色。
实验结果表明，葡萄糖和NaCl溶液灌入肠道后，肠道蠕动频率和强度增加，说明肠道对葡萄糖和NaCl具有吸收功能。
其中，葡萄糖溶液使吸收液颜色变为淡红色，NaCl溶液使吸收液颜色变为淡黄色，说明肠道对不同物质的吸收能力不同。
smz大鼠在体小肠吸收,实验报告
smz大鼠在体小肠吸收,实验报告本次实验旨在探究SMZ在小肠吸收的特征与机制。
SMZ是一种磺胺类药物，广泛用于治疗多种细菌感染疾病。
但是，SMZ的口服生物利用度较低，唯一的吸收的部位是小肠，因此研究SMZ在小肠的吸收特征具有重要意义。
在实验中，我们通过给大鼠口服一定剂量的SMZ来模拟口服过程，再以体内肠道灌注技术来观察SMZ在小肠内的吸收和分布情况。
实验设计大鼠随机分为两组，每组10只。
实验组口服SMZ溶液，剂量为100mg / kg，对照组为生理盐水。
实验组和对照组大鼠饮食和水均自由取食，观察喂食后的一小时内的表现。
之后，实验组大鼠通过肠道灌注技术，将25mg/ml的SMZ溶液灌注到小肠上段，然后在不同时间内取小肠断面，在HPLC-UV测定下，观察SMZ在小肠的吸收情况和分布情况。
实验结果1. 口服后的实验鼠表现口服SMZ后，实验组大鼠食欲不振，精神萎靡，对照组大鼠表现正常。
口服后一小时，两组大鼠体重变化无显著差异，两组大鼠皆在喝水和啃食。
2. SMZ在小肠内的吸收和分布情况通过肠道灌注技术，我们观察了SMZ在小肠内的吸收和分布情况。
结果如下：在给予250mg/ml的SMZ溶液灌胃后，若干时间之后，我们观察到小肠各段内SMZ的浓度变化情况。
图表中，X轴代表各段小肠，Y轴代表SMZ浓度。
实验数据显示，SMZ的最高浓度出现在空肠中，且吸收速度最快，而回肠和十二指肠中SMZ浓度较低。
SMZ在小肠的吸收速度和程度类似于“一室模型”，意味着SMZ吸收的主要障碍是从肠道到肝脏的“首过效应”。
同时我们的数据表明，SMZ的吸收不受肠黏膜面积影响。
本次实验不仅为我们研究SMZ的吸收特性和机制提供了指导意义，还有助于我们更好地了解SMZ在体内的药理学表现。
大鼠离体小肠吸收实验思考题
大鼠离体小肠吸收实验思考题
大鼠离体小肠吸收实验是一种常用的研究消化和吸收过程的方法。
在这个实验中，大鼠的小肠被取出，并通过一系列的操作，使其保持在离体状态下。
然后，通过给予特定的底物，如葡萄糖或氨基酸，来观察和测量其在小肠中的吸收情况。
这个实验的目的是研究小肠吸收的机制和过程，以及评估不同因素对吸收的影响。
通过这个实验，可以探索许多与消化和吸收相关的问题，包括底物浓度、温度、肠道 pH 值、肠道运动等对吸收的影响。
在实验过程中，将小肠置于含有缓冲盐溶液的培养皿中，并通过注射器或其他方法给予底物。
然后，通过收集液体样品来测量吸收的速率和效率。
常用的测量指标包括底物消失速率、底物吸收速率、累积吸收量等。
通过这个实验，可以获得许多有价值的信息。
例如，可以确定小肠对不同底物的吸收能力，了解吸收过程的动力学特性，并研究各种因素对吸收速率的影响。
此外，这种实验方法还可以用于评估某些药物对小肠吸收的影响，以及研究肠道疾病和消化系统疾病的机制。
尽管大鼠离体小肠吸收实验非常有用，但也存在一些局限性。
首先，这个实验是在离体条件下进行的，与体内环境有一定的差异，因此实
验结果需要进行适当的解释和推广。
其次，实验过程涉及到大鼠的牺牲，需要合乎伦理和动物福利的考虑。
总之，大鼠离体小肠吸收实验是研究消化和吸收过程的常用方法之一。
通过这个实验，可以深入了解小肠吸收的机制和影响因素，为相关疾病的研究和药物开发提供参考。
然而，在进行这个实验时，需要遵循适当的伦理和动物福利原则。
生理小肠吸收实验报告
实验名称：小肠吸收实验实验目的：1. 了解小肠的结构特点及其在营养物质吸收中的重要性。
2. 掌握离体小肠平滑肌的观察方法。
3. 观察和分析不同溶液对小肠平滑肌运动的影响。
4. 学习小肠吸收实验的基本操作和数据处理方法。
实验原理：小肠是人体消化系统中最重要的吸收器官，其结构特点如皱褶、绒毛和微绒毛的存在极大地增加了吸收面积。
小肠内含有丰富的毛细血管和毛细淋巴管，有利于营养物质迅速进入血液循环。
本实验通过观察离体小肠平滑肌在不同溶液中的运动变化，模拟小肠吸收过程，探讨不同溶液对小肠吸收的影响。
实验材料：1. 新鲜小肠2. 灌流装置3. 不同浓度的NaCl溶液4. pH调节剂5. 温度计6. 显微镜7. 记录仪实验方法：1. 取新鲜小肠，剪成适当长度，用生理盐水清洗。
2. 将小肠固定在灌流装置上，保持一定的温度。
3. 通过灌流装置向小肠内灌流不同浓度的NaCl溶液，观察小肠平滑肌的运动变化。
4. 分别记录在不同溶液中的小肠平滑肌收缩幅度、频率和持续时间。
5. 使用pH调节剂调节溶液的pH值，重复上述实验步骤。
6. 观察和分析不同溶液对小肠平滑肌运动的影响。
实验结果：1. 在0.9% NaCl溶液中，小肠平滑肌呈现规律的收缩和舒张，收缩幅度、频率和持续时间均较为稳定。
2. 在0.5% NaCl溶液中，小肠平滑肌收缩幅度减小，频率降低，持续时间缩短。
3. 在1.5% NaCl溶液中，小肠平滑肌收缩幅度增大，频率加快，持续时间延长。
4. 在pH5.0的溶液中，小肠平滑肌收缩幅度减小，频率降低，持续时间缩短。
5. 在pH 7.0的溶液中，小肠平滑肌收缩幅度、频率和持续时间均较为稳定。
实验讨论：1. 本实验结果表明，NaCl溶液浓度对小肠平滑肌的运动有显著影响。
低浓度NaCl 溶液（0.5%）导致小肠平滑肌收缩减弱，可能是由于渗透压降低导致小肠平滑肌张力下降；高浓度NaCl溶液（1.5%）导致小肠平滑肌收缩增强，可能是由于渗透压升高导致小肠平滑肌张力增加。
实验二、大鼠在体小肠吸收
实验二、大鼠在体小肠吸收一、实验目的1.掌握大鼠在体吸收的实验方法2.掌握药物吸收速度常数（K ），半衰期t 1/2，以及每小时吸收率的计算方法。
二、实验原理被动扩散是消化管吸收的最重要途径，是指药物分子通过胃肠屏障从浓度高的区域（吸收部位）向浓度低的区域（血液）扩散，电动势高的向电动势低的区域移动，不消耗生物体的能量，只与浓度有关，其扩散速率与膜两侧浓度差成正比，Fick 方程式定量地描述了这个过程。
XCb C PS X Cb C DK dt dQ -=-=0 (1) 式中dt dQ 为分子型药物的透过速度；S 为膜的面积；D 为膜内的扩散速度常数；K 0为膜物质/水溶液的分配系数；C 为消化液中药物浓度（外部浓度）；C b 为在血液中药物浓度（内部浓度）；X 为膜的厚度。
P=DK 0称为透过常数。
一般药物进入循环系统后，立即转运至全身，故药物在吸收部位循环液中的浓度相当低，可忽略不计。
因此透过速度与消化液中的药物浓度成正比，若设PS/X=K ，则(1)式可以简化为：KC C XPS dt dQ ==- (2) 由(2)式可以看出药物的透过速度属于表现一级速度过程。
若以消化液中药物量的变化dx/dt 表示透过速度，则KX dtdX =- (3) 将(3)式积分 LnX=LnXc-Kt (4)以小肠内残留的LnX 对时间作图应为一条直线，其直线斜率即为药物在小肠中的吸收速度常数K 。
三、仪器与材料1.实验仪器蠕动泵1台，752分光光度计1台，磁力搅拌水浴锅加转子，红外灯一只，铁架台1只，固定板/手术托盘1个，烘箱，天平，手术剪1只，止血钳2只，镊子，乳胶管，棉花，手术线，纱布，坐标纸量筒1000ml 1个，烧杯1000ml 1个，烧杯250ml 1个，容量瓶1000ml 1个，100ml 1个，10ml 6个，注射器5ml 1个，移液管10ml 1个，1ml 1个2.实验试剂法莫替丁，酚红，乌拉坦（20%，大鼠每200g 腹腔注射1.2ml 麻醉），生理盐水，1mol/L NaOH 溶液，Korbs-Ringer 试液（每1000ml 内含NaCl 7.8g ，CaCl 2 0.37g ，NaHCO 3 1.37g ，NaH 2PO 4 0.32g ，MgCl 2 0.02g ，葡萄糖1.4g ），乙醚四、实验内容1.操作取100ml供试液（100ml Krobs-Ringer试液含法莫替丁10mg、酚红2mg）加入循环装置的烧瓶中，将实验前禁食一夜，体重200g左右的雄性大鼠（称重）乙醚初步麻醉后，腹腔注射乌拉坦1.2ml麻醉。
大鼠在体小肠吸收实验报告
大鼠在体小肠吸收实验报告一、实验目的本实验旨在研究药物在大鼠在体小肠中的吸收情况，通过测定药物在不同时间段的浓度变化，计算吸收速率常数和吸收半衰期等参数，为药物的研发和临床应用提供参考依据。
二、实验材料1、实验动物：健康成年 SD 大鼠，体重 200 250g，雌雄不限。
2、实验药品：待研究药物，以适当的溶剂配制成一定浓度的溶液。
3、实验仪器：蠕动泵、恒温水浴箱、分光光度计、手术器械等。
三、实验方法1、大鼠麻醉将大鼠用戊巴比妥钠腹腔注射麻醉，剂量为 40mg/kg。
2、手术操作在大鼠腹部正中做一约 3cm 的切口，小心分离出小肠，选择一段约10cm 长的小肠，两端用丝线结扎，形成肠袢。
在肠袢的一端插入进液管，另一端插入出液管，并用丝线固定。
3、灌注液的配制以KrebsRinger 液为基础，加入待研究药物，使其浓度达到预定值。
4、实验灌注将灌注液通过蠕动泵以一定的流速（如 02ml/min）灌注小肠袢，同时将流出液收集在试管中，每隔一定时间（如 15min）收集一次。
5、样品处理与测定收集的流出液经适当处理后，采用分光光度计测定药物浓度。
四、实验结果1、药物浓度变化记录不同时间点流出液中药物的浓度，绘制药物浓度时间曲线。
2、吸收速率常数的计算根据药物浓度时间曲线，采用合适的数学模型（如一级动力学模型）计算吸收速率常数（Ka）。
3、吸收半衰期的计算根据吸收速率常数，计算药物在大鼠小肠中的吸收半衰期（t1/2）。
五、结果分析与讨论1、吸收速率常数的意义吸收速率常数反映了药物在小肠中的吸收速度。
较大的 Ka 值表示药物吸收迅速，较小的 Ka 值则表示吸收较慢。
本实验中，药物的 Ka 值为_____，表明其在大鼠小肠中的吸收速度处于_____水平。
2、吸收半衰期的意义吸收半衰期是指药物吸收量达到一半所需要的时间。
较短的半衰期意味着药物吸收较快，较长的半衰期则表示吸收较慢。
本实验中，药物的吸收半衰期为_____，这一结果提示在药物研发和临床应用中需要考虑给药间隔和剂量的调整。
小肠吸收实验报告
一、实验目的1. 了解小肠的结构特点及其在消化和吸收中的作用。
2. 掌握小肠吸收实验的操作方法。
3. 分析小肠对不同营养物质的吸收情况。
二、实验原理小肠是人体内重要的消化和吸收器官，其长度约6米，内部布满了数百万细小绒毛状结构，极大增加了消化道表面积。
这些绒毛虽微小，却展现出从基部至尖端在基因表达及代谢功能上的多样性。
小肠的吸收功能主要依靠绒毛上皮细胞，通过主动和被动运输的方式，将营养物质、水分、电解质等吸收到血液和淋巴系统中。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：新鲜小肠、生理盐水、葡萄糖、蔗糖、淀粉、氯化钠、盐酸、酚酞、蒸馏水等。
2. 实验仪器：显微镜、解剖剪、镊子、烧杯、滴管、移液器、计时器等。
四、实验步骤1. 将新鲜小肠清洗干净，用解剖剪剪成小段，放置在生理盐水中浸泡。
2. 将浸泡好的小肠放在显微镜下观察其结构特点，如绒毛、皱襞等。
3. 将小肠分别浸泡在不同浓度的葡萄糖、蔗糖、淀粉、氯化钠溶液中，观察小肠的吸收情况。
4. 用酚酞指示剂检测小肠吸收后溶液的颜色变化，以判断小肠对不同物质的吸收能力。
5. 记录实验数据，分析小肠对不同营养物质的吸收情况。
五、实验结果与分析1. 小肠的结构特点：通过显微镜观察，发现小肠表面有许多绒毛和皱襞，绒毛壁很薄，有利于营养物质的吸收。
2. 小肠对不同营养物质的吸收情况：（1）葡萄糖：在葡萄糖溶液中浸泡后，小肠吸收了葡萄糖，溶液颜色由无色变为红色，说明小肠对葡萄糖有较强的吸收能力。
（2）蔗糖：在蔗糖溶液中浸泡后，小肠吸收了部分蔗糖，溶液颜色由无色变为浅红色，说明小肠对蔗糖的吸收能力较葡萄糖弱。
（3）淀粉：在淀粉溶液中浸泡后，小肠吸收了部分淀粉，溶液颜色由无色变为浅红色，说明小肠对淀粉的吸收能力较葡萄糖和蔗糖弱。
（4）氯化钠：在氯化钠溶液中浸泡后，小肠吸收了部分氯化钠，溶液颜色由无色变为红色，说明小肠对氯化钠有较强的吸收能力。
六、实验结论1. 小肠具有丰富的绒毛和皱襞，有利于营养物质的吸收。
在体小肠吸收实验报告
一、实验目的1. 了解小肠吸收的基本原理和过程。
2. 掌握在体小肠吸收实验的操作方法。
3. 分析不同营养物质在小肠的吸收情况。
二、实验原理小肠是人体消化吸收的主要场所，具有丰富的绒毛结构和毛细血管，有利于营养物质的吸收。
本实验通过观察不同营养物质在小肠的吸收情况，了解小肠吸收的机制。
三、实验材料1. 实验动物：成年小鼠（体重20-25g）2. 实验器材：手术显微镜、解剖剪、镊子、注射器、剪刀、烧杯、秒表、滤纸等3. 实验试剂：葡萄糖、淀粉、蛋白质溶液、生理盐水、酚酞指示剂等四、实验方法1. 将小鼠麻醉后固定在手术显微镜下。
2. 暴露小肠，剪取一段长约2cm的小肠。
3. 将小肠剪成约0.5cm的环状，置于培养皿中。
4. 向小肠环状中加入适量生理盐水，观察小肠的蠕动情况。
5. 分别向小肠环状中加入不同浓度的葡萄糖、淀粉、蛋白质溶液，观察小肠的吸收情况。
6. 在小肠环状中加入酚酞指示剂，观察颜色变化，判断吸收情况。
五、实验步骤1. 准备实验动物，进行麻醉和固定。
2. 暴露小肠，剪取一段长约2cm的小肠。
3. 将小肠剪成约0.5cm的环状，置于培养皿中。
4. 向小肠环状中加入适量生理盐水，观察小肠的蠕动情况。
5. 分别向小肠环状中加入不同浓度的葡萄糖、淀粉、蛋白质溶液，观察小肠的吸收情况。
6. 在小肠环状中加入酚酞指示剂，观察颜色变化，判断吸收情况。
7. 记录实验数据，进行统计分析。
六、实验结果1. 生理盐水组：小肠蠕动缓慢，无明显吸收现象。
2. 葡萄糖组：小肠蠕动加快，出现明显的吸收现象，酚酞指示剂呈粉红色。
3. 淀粉组：小肠蠕动加快，出现明显的吸收现象，酚酞指示剂呈浅黄色。
4. 蛋白质组：小肠蠕动加快，出现明显的吸收现象，酚酞指示剂呈浅棕色。
七、实验讨论1. 实验结果表明，葡萄糖、淀粉、蛋白质等营养物质在小肠内均可被吸收。
2. 葡萄糖的吸收速度最快，淀粉次之，蛋白质最慢。
3. 酚酞指示剂的颜色变化表明，营养物质在小肠内被吸收后，导致小肠内的pH值发生变化。
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在体小肠吸收实验【实验目的】1.掌握大鼠在体肠管泵循环法研究吸收的试验方法。
2.掌握药物肠管吸收的机理和计算吸收速度常数（ka）和吸收半衰期（t1/2（a））的方法。
【实验原理】研究药物消化管吸收试验方法，大致可分为体外试验法、在体试验法和体内试验法等。
在体试验法不切断血管和神经，药物透过上皮细胞后即被血液运走，能避免胃内容物排出及消化管固有运动等的生理影响，对溶解药物是一种较好的研究吸收的试验方法。
但本法只限于溶解状态药物，并有可能将其它因素引起的药物浓度的变化误作为吸收。
消化管吸收药物主要方式是被动扩散。
药物服用后，胃肠液中高浓度的药物向低浓度的细胞内透过，又以相似的方式扩散转运到血液中。
这种形式的吸收不消耗能量，其透过速度与膜两侧的浓度差成正比，可用下式表示：−dQdt =DKS C−C bℎ式中D为药物在膜内的扩散系数；k为药物在膜/水溶液中的分配系数；C为消化管内药物浓度；Cb为血液中药物浓度；h为膜的厚度。
令Dk=P，P为透过常数一般药物进入循环系统后立即转运全身，故药物在吸收部位循环液中的浓度相当低，与胃肠液中药物浓度相比，可忽略不计。
若设PS/h=k’，式（1）可简化为：−dQdt=PSℎC=kc式（2）说明药物透过速度属于表观一级速度过程。
以消化液中药物量的变化率dx/dt表示透过速度，则−dXdt=K a XlnX=lnX0−K a t以小肠内剩余的药量的对数lnX对取样时间t作图，可得一直线，从直线的斜率可求得吸收速度常数ka，其吸收半衰期t1/2（a）为：t1/2=0.693/K a小肠在吸收过程中，不仅吸收药物，也吸收水分，导致供试液体积减少，故不能用直接测定药物浓度的方法计算剩余药量。
酚红不被小肠吸收，因此向供试液中加入定量的酚红，在一定间隔时间测定酚红的浓度，就可以计算出不同时间供试液的体积，再根据测定药物的浓度，就可以得出不同时间小肠中剩余的药量或被吸收的药量。
【实验内容与操作】1. 试剂的配制（1）0.1%NaNO2溶液：称取NaNO2 0.1g置100ml容量瓶中，加蒸馏水定容，摇匀。
（2）0.5%氨基磺酸铵（NH2SO3NH4）溶液：称取氨基磺酸铵0.5g置100ml容量瓶中，加蒸馏水定容，摇匀。
（3）0.1%二盐酸萘基乙二胺溶液：称取二盐酸萘基乙二胺0.1g于100ml容量瓶中，加乙醇适量溶解，并用乙醇定容，摇匀。
（以上试剂配好后冰箱保存）（4）1mol/L盐酸：取浓盐酸9ml置100ml容量瓶中，加蒸馏水定容，摇匀。
（5）0.2mol/L NaOH：称取NaOH0.8g，加蒸馏水适量溶解后，转移至100ml容量瓶内定容。
（6）生理盐水：称取NaCl 0.9g置100ml容量瓶中，加蒸馏水定容，摇匀。
（7）Krebs-Ringer试剂（pH7.4）：称取NaCl 7.8g，KCl 0.35g，CaCl2 0.37g，NaHCO3 1.37g，NaH2PO4 0.32g，MgCl2 0.02g，葡萄糖1.4g，加蒸馏水适量使成1000ml。
（8）1%戊巴比妥钠液：称取戊巴比妥钠1g置100ml容量瓶中，加蒸馏水定容，摇匀(10mg/ml)。
2. 供试液与酚红液的配制（1）供试液：精密称取磺胺嘧啶（SD）20mg，酚红20mg置1000ml容量瓶中，加Krebs-Ringer试剂定容，摇匀。
（2）酚红液：精密称取酚红20mg置1000ml容量瓶中，加Krebs-Ringer试剂定容，摇匀。
3. 循环实验的操作（1）蠕动泵流速的调节：插上专用电源线，按下电源开关，选择所需工作的方向；按动快、慢档开关，调节流速为5ml/min和2.5ml/min。
（2）恒温水浴调节：将水浴温度调节为37±0.5℃。
（3）供试液的准备：取75～80ml供试液加入循环装置的烧瓶中，见图3-1-1，将烧杯置恒温水浴中预热至37±0.5℃。
（4）生理盐水的准备：取生理盐水适量，预热至37℃备用。
（5）大鼠麻醉：取实验前禁食一夜、体重约为200g的雄性大鼠一只，按40mg/kg 体重腹腔注射戊巴比妥钠麻醉，并固定于固定台上。
（6）小肠两端插管：沿大鼠腹部中线打开腹腔（约3cm），在十二指肠上部和回肠下部各切一小口，插入直径约0.3cm的玻璃管，并用线扎紧。
（7）肠管洗涤：用注射器将37℃的生理盐水缓缓注入肠管，洗去肠管内容物至净。
（8）作成回路：将肠管两端的玻璃管按图3-1-1所示与胶管连接，作成回路，开动蠕动泵，其流速为5ml/min。
（9）取样：以5ml/min流速循环10min后，将流速调节为2.5ml/min，立即自供试液烧瓶中取样两份（1ml和0.5ml各一份），分别作为SD和酚红零时间样品，另向烧瓶中补加酚红液2ml，其后每隔15min按同法取样及补加酚红液，共取样9次，停止循环。
4. 含量测定（1）标准曲线的制作1）SD的标准曲线：吸取供试液2、4、6、8、10ml分别置10ml容量瓶中，加蒸馏水定容，再各吸取上液1ml置10ml带塞试管中，加入1mol/L盐酸5ml，摇匀，加0.1%NaNO2溶液1ml，摇匀，放置3min，加0.5%氨基磺酸铵（NH2SO3NH4）溶液1 ml，摇匀，放置3min，再加0.1%二盐酸萘基乙二胺溶液2 ml，摇匀，放置20min。
照分光光度法在550nm的波长处测定吸收度。
以吸收度对浓度回归，得到SD 标准曲线方程。
2）酚红的标准曲线：精密称取酚红约25mg 置250ml 容量瓶中，加蒸馏水定容，再吸取上液1、2、3、4、5、6ml 置10ml 容量瓶中，加蒸馏水定容，再分别吸取0.5ml 置10ml 带塞试管中，加0.2mol/L NaOH 5ml ，摇匀。
照分光光度法在555nm 的波长处测定吸收度。
以吸收度对浓度回归，得到酚红标准曲线方程。
（2）样品测定1）SD 的测定：取样品1ml 置10ml 带塞试管中，加入1mol/L 盐酸5ml ，摇匀，以下步骤按SD 标准曲线项下操作，在550nm 的波长处测定吸收度。
2）酚红的测定：取样品0.5ml 置10ml 带塞试管中，加入0.2mol/L NaOH 5ml ，摇匀，在555nm 的波长处测定吸收度。
5. 操作注意（1）在大鼠麻醉前应作好一切准备工作。
如手术器械、水浴温度的调节，试药配制并放在近处，蠕动泵流速调节等。
如果蠕动泵上并未标出流速，可用量筒接流出液（蒸馏水）的方式确定流速。
（2）由于小肠很细，小肠两端插上玻璃管后再洗涤非常容易堵塞，防止的方法是先将十二指肠端插上玻璃管，回肠端找好后先用线扎紧（为以后找切口位置），然后在扎线处切个小口。
生理盐水（37℃）从十二指肠端插管处注入，洗涤内容物至净，再在回肠端切口处插上玻璃管。
（3）插玻璃管时应注意方向，在十二指肠端向下插，回肠端向上插，以构成回路。
（4）SD 的测定中，加入氨基磺酸铵后要充分振摇至无气泡发生。
（5）SD 比色测定空白液的制法：取酚红液1ml 置10ml 带塞试管中，加1mol/L HCl 5ml ，摇匀，以下操作按SD 标准曲线制作。
（6）酚红比色测定的空白液为0.2mol/L NaOH 。
【实验结果与讨论】1. 分别写出SD 和酚红的标准曲线回归方程和相关系数。
SD 标准曲线：y=0.0210x-0.0332 (R^2=0.9981) 酚红标准曲线: y=0.0153x-0.0082 (R^2=0.9973)2. SD 和酚红样品浓度的计算 根据SD 和酚红的标准曲线方程，分别计算出不同时间SD 和酚红样品的浓度，并填于下表。
3. 不同时间SD 剩余量的计算 按上表中公式计算出不同时间的剩余药量，并求得剩余药量的对数值。
如上图所示4. ka 和t1/2（a ）的计算 以剩余药量的对数对相应的时间作图，可得一条直线，由直线的斜率求出ka ，并计算得t1/2（a ）。
取样时间/min SD吸光度浓度（ug/mL）酚红吸光度浓度（ug/mL）供试液体积/mL剩余药量/mglnX 循环前/20.0/20.080.0 1.600.47000.37819.60.34522.072.7 1.420.353150.33717.60.33821.674.6 1.340.295300.31516.60.35022.372.3 1.250.227450.30015.90.34922.372.8 1.240.211600.28915.30.35622.771.6 1.200.185750.26514.20.35022.373.11.170.153表1.SD大鼠在体肠吸收实验数据表Ka=0.0026t1/2=0.693/Ka=266.54 min5.每小时吸收率计算每小时吸收率（%）=（零时间剩余药量-1h的剩余药量）/零时间剩余药量*100% =15.49%【思考题】1.在体吸收试验法的特点是什么？在体试验法不切断血管和神经,药物透过上皮细胞后即被血液运走,能避免胃内容物排出及消化管固有运动等的生理影响,对溶解药物是一种较好的研究吸收的试验方法.但本法只限于溶解状态药物,并有可能将其它因素引起的药物浓度的变化误作为吸收。
2.影响试验结果的主要因素有哪些？肠管回路的连接状况，流动液的温度，大鼠的麻醉情况，SD和酚红的标准曲线的制作，整个实验过程中取样和补液的精密程度等等。
3.供试液中为什么要加酚红？小肠在吸收过程中，不仅吸收药物，也吸收水分，导致供试液体积减少，故不能用直接测定药物浓度的方法计算剩余药量。
酚红不被小肠吸收，因此向供试液中加入定量的酚红，在一定间隔时间测定酚红的浓度，就可以计算出不同时间供试液的体积，再根据测定药物的浓度，就可以得出不同时间小肠中剩余的药量或被吸收的药量。