实验动物房技术手册
实验动物饲养管理和使用手册
实验动物饲养管理和使用手册
在制定和评审动物管理和使用方案时，应注意下列要点： ①申请使用动物的理由和目的。 ②对申请的动物种类和数量阐明理由，对申请的动物数量应尽可能按统计学方法阐述。 ③是用较少侵害性的操作措施、其他动物种类、离体器官制品、细胞或组织培养物或计算机模 拟等代用方法的可行性或适宜性(参见附录 A，“替代方法”)。 ④参与实际操作的从业人员有足够的训练和经验。 ⑤特殊的饲养管理条件。 ⑥适当的镇静、镇痛和麻醉措施(疼痛或侵害性的分级可能有助于《方案》的制定和评审；参见 附录 A，“麻醉、疼痛和外科手术”)。 ⑦实验项目不必要的重复。 ⑧多项重大手术操作的实施。 ⑨预先设想有关适时干预、从研究项目中撤换动物或者因剧痛或精神紧张而采取安乐死术等的 判断准则和处理方式。 ⑩手术后的护理。 11 对动物实行安乐死术或处理的方法。 12 从业人员工作环境的安全。 《方案》有时可包含以往为未曾遇到过的或可能会引起无法确切控制的疼痛或压抑的操作措施。 这类操作可包括：动物保定、多项重大活体外科手术、饮食限制、佐剂使用、以死亡作为重点的研 究、有害刺激物的使用、皮肤或角膜刺激试剂、容留肿瘤过度负荷、心内或眶窦血液采样或异常环 境条件的利用。涉及研究项目的操作与目的的有关客观资料，应从文献资料、兽医人员、研究人员 及关于对动物作用的其他知识来源查询。如果对某种具体操作不很了解，较为适宜的方法是，可在 IACUC 的监督下，设计一套有限度的探索性的研究项目，以评定该种操作对动物的影响。本节中将 论述对其中若干方法的评定准则，但这类准则并不是在所有情况下都能适用。 动物保定 动物保定就是用手工或器械的手段部分或全部限制动物的正常活动能力，以达到检查、采集样 本、施用药物、治疗或实验操作等目的。在大多数科研项目中，动物保定的时间不长，通常是数分 钟。 动物可用手工或保定装置进行短时的物理保定。保定装置的规格、形制和操作应当适宜，以尽 量减少对动物引起不舒适或伤害。多数犬、灵长类(例如，Reihardt，199l，1995)及其他动物都可通 过“正向强化”(Positive reinforcement)训练，会伸出肢体或保持安静，接受简易的操作。 除非是为达到科研目的有必要、并经 IACUC 核准的情况下，一般应避免进行长时间保定，包括 对灵长类的椅式保定。 应当使用不致妨碍动物调整正常体位的、限制性较少的保定方式，例如，对灵长类的细绳(链) 方式，对必需的枷套方式等，只要适合《方案》的目的(Bryant，1980；Byrd，1979；Grandin，1991； McNamee 等，1984；Morton 等，1987；Wakeley 等，1974)，所用的保定装置都应按用其他手段不 可能或无法完成的科研目标进行专门设计，还要防止伤害动物或工作人员。 保定措施的重要准则列述如下： ①不可人为保定装置是通常的关养措施。 ②不应简单地以保定装置作为控制或管理动物的便利方法。 ③保定的时间应限制在为完成科研目的的所需的最低限度。 ④拟使用保定装置的动物应对其进行训练，使之适应器械操作和工作人员。 ⑤应作出规定按 IACUC 去额定的适当间隔对动物进行观察。 ⑥如发现因保定而引起损伤或发病时，应安排兽医护理。损伤、发病或明显的行为变化的发生， 往往会迫使动物暂时或永久性抗拒保定措施。
动物房SOP操作规程
动物房SOP操作规程食品工程与生物技术学院实验动物屏障环境管理制度目的：加强动物实验屏障环境管理，确保设施安全运行，保证实验动物和动物实验的质量。
范围：动物实验屏障环境职责：动物实验屏障环境全体工作人员内容：1.对工作的要求1.1 本实验室是我校科研工作质量管理的重要组成部分，直接反映我校科研管理工作的整体水平，因此日常管理工作受科技处的监督。
1.2 本实验室面向校内各相关专业开放，承担着科学研究与人才培养的双重责任。
要求本实验室全体人员不断提高自身素质，做好本职工作。
1.3凡在本实验室工作的人员必须接受学院的领导和工作安排。
1.4本实验室的管理、实验、饲养和辅助人员应接受专门培训和进修，并持证上岗。
1.5 在本实验室工作和进行动物实验的全体人员，必须严格执行《动物实验屏障环境标准操作规程（SOP）》。
1.6凡需进入本实验室工作的人员，需申请、经同意并参加培训后，方可进入实验室。
1.7工作时间内保持各动物实验室内的安静，不可大声喧哗。
1.8未经消毒的物品以及私人用品一律不准带入屏障系统。
凡需带入屏障环境与实验有关的仪器设备，必须提前申请，经同意后严格按照实验室操作规程传递进入实验室。
1.9本动物实验室为非感染性实验室，不得进行感染性实验。
2．设施管理要求2.1本设施属于单走廊布局的实验动物实验设施，洁净区内洁净度为l万级。
2.2本设施启用前或已停止使用一段时间后应按照使用工艺要求进行消毒程序。
2.3设施日常运行应严格按照设备使用手册要求进行，严格执行本部制定的屏障设施运行操作规程（SOP）进行操作。
2.4设施内的环境指标值应符合“实验动物环境及设施”(GBl4925— )的要求。
为保证设施安全运行，每季度应进行一次自检。
天津科技大学食品工程与生物技术学院动物实验屏障环境标准操作规程（SOP）二O一一年十一月一、动物实验屏障环境管理人员工作流程目的：保障屏障系统安全运行。
SPF级实验动物房设计建设方案SICOLAB
SPF级实验动物房设计建设方案SICOLAB1.房间结构：SPF级实验动物房通常需要分为动物栖息区、操作区、清洁区、供气区、供电区、供水区等区域。
栖息区是动物居住和活动的区域，需要确保动物养殖环境的无菌状态；操作区是进行与动物有关的各种操作的区域，如喂养、实施实验等；清洁区是进行清洁和消毒工作的区域；供气区是提供新鲜空气的区域；供电区是提供电力的区域；供水区是提供清洁饮用水的区域。
2.空气净化系统：SPF级实验动物房需要引入高效过滤系统，以确保空气中的微生物小于一定的标准，通常要求达到H14级别。
该系统需要包括预过滤器、高效过滤器、空气净化器、空气调节器等设备。
3.温度和湿度控制：SPF级实验动物房需要保持一定的温度和湿度，以保证动物的舒适度和健康状态。
通常要求温度控制在20-24℃，湿度控制在45-60%之间。
4.光照控制：SPF级实验动物房需要提供适宜的光照条件，以保持一个良好的生物钟节律和光照环境。
通常要求提供12小时的光照和12小时的黑暗。
5.防护措施：SPF级实验动物房需要安装防护设施，以防止外部病菌和微生物污染进入房间。
可以采用双门或单门紧密贴合的设计，避免空气交流和病菌传播。
6.物料管理：SPF级实验动物房需要合理管理和储存进入房间的物料，如饲料、垫料、药物等。
要保持物料的无菌状态，可以采用密封的储存柜和合适的储存条件。
7.消毒措施：SPF级实验动物房需要定期进行消毒工作，以保持无菌状态。
可以采用紫外线灯、高温蒸汽和化学消毒剂等方法进行消毒。
总结起来，SPF级实验动物房设计建设方案需要考虑房间结构、空气净化系统、温度和湿度控制、光照控制、防护措施、物料管理和消毒措施等方面。
这些设计和措施能够保证实验动物繁殖和养殖的无菌化环境，从而提高实验结果的准确性和可靠性。
实验动物饲养管理和使用手册
实验动物饲养管理和使用手册实验动物饲养管理和使用手册1、引言1.1 目的本手册的目的是提供实验动物饲养管理和使用的详细指南，确保实验动物的福利和符合法律法规的要求。
1.2 适用范围本手册适用于所有实验室、研究机构和相关机构，对于饲养、管理和使用实验动物的人员参考。
2、饲养设施2.1 动物房间2.1.1 房间布局2.1.2 温度和湿度控制2.1.3 照明2.1.4 通风2.1.5 噪音控制2.1.6 环境清洁和消毒2.2 笼具和笼舍2.2.1 笼具选择2.2.2 笼具清洁和消毒2.2.3 笼具标识2.3 饲料和水的供给2.3.1 饲料选择2.3.2 饲料存放和保质期2.3.3 饮水设备和水的质量控制3、动物管理3.1 动物购买和检疫3.1.1 供应商选择3.1.2 动物购买和运输3.1.3 动物检疫程序3.2 健康监测3.2.1 常规健康检查3.2.2 疾病筛查和畸形检测3.2.3 动物隔离和治疗3.3 实验动物的饲养3.3.1 饲养群体大小和组合3.3.2 饲养环境的标准化3.3.3 饲料供给和特殊饮食要求4、动物使用和实验操作4.1 使用动物前的准备4.1.1 动物编号和记录4.1.2 麻醉和术前操作4.1.3 实验操作的技术培训4.2 实验操作的注意事项4.2.1 采集样本和标本处理4.2.2 注射和给药方法4.2.3 手术操作和实验操作步骤4.3 死亡、安乐死和人道处置4.3.1 动物死亡的记录和报告4.3.2 安乐死的程序和规定4.3.3 人道处置准则和流程附件：1、实验动物饲养记录表格2、动物购买和供应商信息表格3、健康监测结果记录表格4、实验操作记录表格法律名词及注释：1、动物福利法：指保护和提高动物福利的法律法规。
2、动物实验伦理委员会（IACUC）：负责审核和监督实验动物使用的委员会。
3、3R原则：Replace（替代）、Reduce（减少）、Refine（改进），指在实验动物使用中，替代动物、减少使用动物、改进使用方法的原则。
动物检测实验室技术标准
动物检测实验室技术标准一、动物检测实验室基本要求动物检测实验室要保证安全啦，这安全包括很多方面呢。
首先就是环境安全，实验室的选址得合理，不能在那种很容易受到污染的地方，像靠近垃圾处理厂之类的就不行。
然后就是设施设备，得有合适的检测仪器，这些仪器要定期校准，就像我们每天要对表一样，这样才能保证检测数据准确。
还有实验室的布局也很重要，不同的检测区域要分开，避免交叉污染。
比如说检测病毒的区域和检测细菌的区域，要是混在一起，那检测结果肯定乱套了。
二、检测样本采集技术标准1. 动物血液采集采集动物血液的时候啊，要根据动物的种类和大小选择合适的采集方法。
像采集小鼠的血液，就可以用尾尖采血法，但是这个方法得小心，不能让小鼠太疼啦。
对于大型动物，像牛啊，就可以用静脉采血法。
采血的器具也要保证无菌，不然采到的血液被污染了，检测就不准了。
2. 动物组织采集采集组织的时候，要选择合适的部位。
比如说要检测肝脏的情况，那就要准确地采集到肝脏组织。
采集的时候手法要轻柔，不能把组织弄碎了，就像对待一件很脆弱的宝贝一样。
而且采集完要尽快送到实验室检测，不能在路上耽搁太久，不然组织会变质的。
三、检测分析技术标准1. 微生物检测检测微生物的时候，要先对样本进行预处理。
然后用合适的培养基培养，观察微生物的生长情况。
不同的微生物在培养基上的生长形态是不一样的，我们要能准确分辨。
比如说大肠杆菌在伊红美蓝培养基上会呈现出金属光泽的菌落。
2. 基因检测基因检测就更高级一点啦。
要先提取动物的DNA，这个过程可不能马虎。
然后用PCR技术扩增特定的基因片段，再通过电泳等方法分析基因的情况。
这就像是在基因的海洋里找到我们想要的那一小片宝藏一样。
四、实验室人员技术标准1. 专业知识要求实验室的人员得有扎实的动物学、微生物学、遗传学等相关专业知识。
不能一问三不知呀，要像个知识小百科一样。
2. 操作技能要求操作技能也很关键，要熟练掌握各种检测仪器的使用方法。
生物实验室操作规范安全手册
实验室操作规范本规程中列出了最基本的实验室操作和程序，他们是微生物学操作技术规范的基础。
在规划实验室和国家级实验室项目时,可以根据这些规程来制订实验室安全操作的书面程序。
每个实验室都应该采用“安全手册”或“操作手册",其中定义了已知的和潜在的危害，并规定了特殊的操作程序来避免或尽量减小这种危害。
规范的微生物学操作技术是实验室安全的基础，而专门的实验设备仅仅是一种补充,绝不能替代正确的操作规范。
下面列出了一些最重要的概念。
进入规定1、在处理危险度2 级或更高危险度级别的微生物时，在实验室门上应标有国际通用的生物危害警告标志（图1）.2、只有经批准的人员方可进入实验室工作区域。
3、实验室的门应保持关闭。
4、儿童不应被批准或允许进入实验室工作区域。
5、进入动物房应当经过特别批准。
6、与实验室工作无关的动物不得带入实验室。
人员防护1、在实验室工作时，任何时候都必须穿着连体衣、隔离服或工作服。
2、在进行可能直接或意外接触到血液、体液以及其他具有潜在感染性的材料或感染性动物的操作时,应戴上合适的手套。
手套用完后，应先消毒再摘除,随后必须洗手。
3、在处理完感染性实验材料和动物后,以及在离开实验室工作区域前，都必须洗手。
4、为了防止眼睛或面部受到泼溅物、碰撞物或人工紫外线辐射的伤害，必须戴安全眼镜、面罩（面具）或其他防护设备.5、严禁穿着实验室防护服离开实验室，（如去餐厅、咖啡厅、办公室、图书馆、员工休息室和卫生间）。
6、不得在实验室内穿露脚趾的鞋子。
7、禁止在实验室工作区域进食、饮水、吸烟、化妆和处理隐形眼镜。
8、禁止在实验室工作区域储存食品和饮料。
9、在实验室内用过的防护服不得和日常服装放在同一柜子内。
操作规范1、严禁用口吸移液管。
2、严禁将实验材料置于口内。
严禁舔标签。
3、所有的技术操作要按尽量减少气溶胶和微小液滴形成的方式来进行。
4、应限制使用皮下注射针头和注射器。
除了进行肠道外注射或抽取实验动物体液,皮下注射针头和注射器不能用于替代移液管或用作其他用途。
SPF小动物房操作
报名后，加QQ群：316034876，下载 材料
考核合格者，楼层管理员在申请 者的《门禁开通申请表》上签字
按照邮件通知的时间地点准时接受 中心的理论培训 根据自身情况进行现场考核（完整复述整 个人员物品进出流程），请注意细节 理论培训结束后，按照培训人员商定的时间 参加统一的理论考试
理论上经过3次现场培训后
物品进出401SPF动物房流程图
二类物品：一般物品 三类物品：无菌试剂 类物品等 一类物品：耐高温物品
喷洒0.2%过氧乙酸
高压灭菌 喷洒0.2%过氧乙酸，等 待5到10分钟后 个人在实验室高 压灭菌 喷洒0.2%过氧乙 酸
传递仓照射紫外20min
到401号楼统一高 压灭菌
准备间内侧取出
传递仓照射紫外20min 进入屏障 传递仓内侧开门取出物品
进入清洁走廊，穿拖鞋
进行各项实验相关活动
物品进入钟
适用物品 1. 金属类：各类金属手术器械、小型仪器、容器等可以高压的金 属制品。 2. 玻璃类：试管、烧杯、量桶、培养皿等可高压玻璃器皿。 3. 耐高压塑料制品：笼盒、 EP 管、小鼠运输盒等可高压塑料制品。 4. 棉、纱类、纸制品：净化服、口罩、抹布、棉花、纱布、卷纸、 平板纸、包装用纸盒、小鼠标牌等。 5. 小鼠饲养用品：小鼠饮用水、垫料、瓜子。 6.实验记录纸制品
1. 不可高压的塑料和橡胶制品：文具、一次性手套。 2. 不可高压的仪器、设备：天平、接线板、血糖仪、环境监测仪 二、传递仓紫外灯照射 - 等。 20min 3. 不可高压的食物：果冻、饲料等。 ( 紫外线消毒仅限于表面，4. 消毒液：酒精、过氧乙酸等。 请一定要将物品 摊开成 （真空包装的饲料、垫料等必须先喷洒过氧乙酸（0.2%）后，再通 单层) 过紫外照射进入） 三、过氧乙酸喷洒 ( 利用 0.2% 的过氧乙酸 , 喷洒物体表面及 传递仓 内 ,10 分钟后可拿入动物 房) 1. 不能高压的试剂：激素、麻醉剂等。 2. 小鼠笼盒外壁：只有通过检疫，符合SPF级饲养标准的小鼠才可 以进入SPF动物房，并由动物房相关负责人操作,任何人都不允许将 未经许可的小鼠私自拿进动物房。
动物房SOP操作规程
动物房SOP操作规程一、前言动物房是用于养殖实验动物、进行研究和教学的场所，为了保障动物的健康和实验结果的可靠性，制定一套科学、规范的操作规程是非常重要的。
本文将围绕动物房的规范操作、动物饲养管理、实验操作和安全措施等方面进行规程的制定。
二、动物房规范操作1.出入动物房前，必须穿戴干净的实验服、口罩、手套和鞋套，并对其进行消毒处理。
2.所有工作人员需严格按照动物房管理人员的指示进行操作，不得擅自开展与工作任务无关的活动。
3.动物房内不得吸烟、进食、饮水或存放个人物品，以确保动物房的清洁和安全。
4.动物房内各个区域必须保持整洁，工作完成后及时收拾工作台面、床笠、废弃物等，确保无异味、无虫鼠。
三、动物饲养管理1.动物房内的动物笼、饮水器、饲料等设备每周进行清洗消毒，确保无污染。
2.动物饲料应保持新鲜，按照动物的需求量进行定量供给，剩余的饲料要及时清理。
3.饮水器每天更换饮水，以确保动物的饮水安全。
4.动物饮水器和饲料均不得接触地面，必须放在适当高度，以防止被污染。
四、实验操作1.在进行任何实验操作之前，必须进行充分的实验准备，包括阅读实验方案、收集所需材料和设备等。
2.在实验操作过程中，必须穿戴实验服、手套和口罩，以防止实验物质对人体的伤害。
3.实验操作完成后，必须清理实验台面和设备，保持实验环境整洁。
五、安全措施1.动物房内必须安装防火设备，并定期进行检查和维护。
2.动物实验操作涉及有害物质时，必须佩戴合适的防护设备，如呼吸器、防护手套等。
3.实验操作前必须了解每种实验物质的性质和安全操作方法，防止事故的发生。
4.动物房内必须保持良好的通风和温度，防止动物因环境条件不适引起的异常行为或死亡。
六、检测和记录1.动物房内的动物必须定期进行健康检查，发现异常情况要及时报告，并进行适当的处理。
2.所有动物房内的操作和实验结果都必须记录在相关的记录表中，包括动物饲养记录、实验操作记录和实验结果记录等。
七、制定和更新1.动物房SOP操作规程应定期进行审查和更新，以适应新的技术和法规要求。
实验动物中心屏障动物房进出标准操作规范
动物使用情况的登记
点击 注册并登记动物数量种类
1.直接从传递窗或传递通道出（及时在登记本上登出动物）。
2.用运输盒将动物包装好以后在拿出（适用于把动物带出到其它单位进行实验）。
1.用75%酒精或5 %碘伏仔细擦拭消毒物品表面后经传递窗传入（适用于细胞样品）。
5.口罩、手套、帽子、鞋套为一次性物品,用过பைடு நூலகம்就应丢弃,灭菌工作服可放在一更,中心工作人员会对其进行处理。
意外情况的处理
1.遇到停电时切勿慌张，可用动物房内电话与外界联系。
2.动物房内有温度或湿度异常请及时与管理人员联系。
3.被动物咬伤后要冲洗伤口，用碘酊消毒，并到疾控中心注射疫苗。
收费制度
实验动物中心实行预付款制度，主要收取动物饲养费、人员进出耗材费和设备维修费。
动物尸体处理
动物尸体和动物器官应密封在塑料袋中，袋口扎紧，放入十楼的专用冰柜中，不得将动物尸体丢弃在屏障系统内或垃圾桶里。
废弃物处理
1.垫料等废弃物与动物笼盒一起从缓冲间Ⅲ出系统
2.注射器等尖锐物品套上套子后再放入垃圾桶,以防刺伤工作人员
3.屏障内无排水系统,液体废弃物请传出系统后再处理
4.废弃的动物包装盒从灭菌通道出系统
2.传递窗紫外灯照射15min后传入（适用于一般物品）。
3.小型仪器经灭菌通道喷雾消毒后传入
经传递窗或传递通道出
IVC标准操作程序
原则：一切IVC操作均在超净工作台中进行
动物的探视
要求每三天进动物房去探视动物一次，包括饮水、饮食、状态等。
动物房内用固定电话联系，禁止使用手机
动物处死、解剖和取样地点
如无特殊情况，一律在1004房间处死动物，进行解剖和取样。
2024动物房SOP操作规程完整
2024动物房SOP操作规程完整2024年动物房SOP（Standard Operating Procedure，标准操作规程）操作规程是为了确保动物实验室的运作符合标准，并保护动物福利而制定的。
下面是一个1200字以上的完整的2024年动物房SOP操作规程：1.引言1.1目的：本操作规程旨在确保动物实验室的运作符合国际标准，保护动物福利，并提高实验结果的可靠性。
1.2适用范围：本操作规程适用于所有在动物实验室进行实验的人员。
2.总则2.1动物使用原则：动物实验必须符合伦理原则，并尽可能减少使用动物的数量。
2.2动物福利保护：所有动物必须得到适当的照顾和保护，包括提供适宜的饲料、水和环境，以及必要的医疗保健。
2.3数据记录和报告：所有实验数据必须准确记录，并及时报告给相关人员和部门。
3.动物修养3.1动物供应和标识：动物供应必须来自合法的渠道，并按照国家法规进行标识。
3.2动物健康检查：新进动物必须进行健康检查，确保没有任何传染性或遗传性疾病。
3.3饲养条件：动物必须提供适宜的饲料和饮水，并保持适宜的温度、湿度和光照条件。
4.动物实验4.1实验方案：所有实验必须有详细的实验方案，包括实验目的、方法、动物数量、实验期限等。
4.2实验操作：实验操作必须符合相关原则和规定，并在有资质的人员指导下进行。
4.3动物监测：对动物进行定期监测，包括观察其行为、体重、体温等，及时发现异常并采取相应措施。
4.4使用药物和化学物质：使用药物和化学物质必须符合相关法规，并在有资质人员的指导下进行。
5.安全措施5.1个人防护：所有从事动物实验的人员必须佩戴适当的个人防护装备，包括口罩、手套和实验服。
5.2消毒措施：动物实验设备和空间必须定期进行消毒，以防止交叉感染。
5.3废物处理：废物必须按照相关法规进行分类和处理，以防止环境污染。
6.质量控制6.1校验和标准曲线：使用仪器必须进行校验和标准曲线的制作，以确保测量结果的准确性和可靠性。
动物实验手册说明书
A Alligators.......................................................80,219,225, 226,229,230,243,247–262 Amphibians..............................................v,1,3,4,17–30, 163,222,295,303,393,394,420,423,424 Animal welfareanesthesia (351)animal facilities.....................407,408,413,415,416 ethics.....................................407,409,410,412,421 guidelines...........................................6,272,407–429 organizations.................................407,411,412,414 protocols......................408,412,415,422–424,426 regulatory compliance..................409,412,416,426 Antibodiesalpha-tubulin................................................20,25,28 bromodeoxyuridine.......................227,231,237,238flag.....................................................................64,109 gamma-tubulin....................................................20,28 IgM...................................................................69,324 MAPK (64)monoclonal antibodies..................20,64,69,72,184 phosphotyrosine..................................................64,68 PLCgamma. (64)pMAPK (64)proliferating cell nuclear antigen(PCNA) (236)Src1/2 (64)SSEA-1...................................................319,321,323 tyrosine phosphorylation (68)uroplakin III (68)vimentin (236)Antisensemorpholino.............................2,8,77,328,339,347 oligonucleotide.......................2,6,77,328,339,347 Avian.............................................99–109,248,317–325BBalbiani body(Bb)manual isolation....................................267,269,271 percoll gradient purification..................266,268–271 proteomics......................................................295–302 visualization.........................................................v,278C Calcium.....................................................41–56,85,101, 220,222,228,239,241,242,272Capillary tubes,see Micro-tubes Chick......................v,75–80,88,99,100,102,106,184 Chromatin immunoprecipitation(ChIP)............99–102, 105,109Cloning,see Somatic cell nuclear transfer(SCNT)Co-immunoprecipitation(Co-IP).......................99–101, 106,107Clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR-Cas9)CHOPCHOP................................380,382,383,388 designing guide RNA...........................378,379,386 propagation of INDELS.. (388)screening insertions/deletions(INDELS).................................................377–391 synthesis of guide RNA.........................379–381,384 Cultured cells.................................64,70,217,296,365DDNApreparation.......................................................36,150 plasmid cloning (34)template preparation...............................36,151,157, 186,194,195vector construction.............................78,82,88,150EEggactivation.................................................3,41–43,61, 63,68,71,360,367,368,370,372,373 animal-vegetal polarity........................................69,70 chorion removal............................331,332,339,362 defolliculation.................................................6,47,48 dejellying.................................21,307,308,311,312 enucleation....................................................353,362, 363,366,367,370extrusion............................................9,119,125,304 laying........................................6,9,11,78,119–121, 123,125,249,306–308,310–312,314,325Francisco J.Pelegri(ed.),Vertebrate Embryogenesis:Embryological,Cellular,and Genetic Methods,Methods in Molecular Biology, vol.1920,https:///10.1007/978-1-4939-9009-2,©Springer Science+Business Media,LLC,part of Springer Nature2019431Embryosasters...........................................................18,22,394 bead implantation.. (77)blastomeres............................................266,393,394 bleaching embryos..............................................22,24 cell-free extracts..................................................37,47, 48,50,52,67,69,270,271cell implantation (167)cell shape.................................................393–395,404 chromatin fragmentation. (103)clearing............................................................213,225 crosslinking.....................................................102,104 cytoplasmic collection......................................49,164 dechorionation.....................121,332,334,337,365 dissociation...........................102,104,334,339,365 electroporation............................................77,78,80, 83,90,91,95,106,248,252,254,256 ex ovo culture..............................................77,79,83, 84,90,96,248,250,252,255,261explant culture....................................................77,79, 82–86,96,100,102,166,248,255explant processing............................................78,251 ex utero culture..............................................163–179 incubation....................................................77,78,86, 207,211,324in ovo culture................................77–79,82,83,248 live imaging.....................................................18,112, 169,170,172–175,179,296,393lysis..............................................................35,37,103 membrane microdomains(MD)........................67–70 microtubules........................................................17–30 mitotic spindle...................................17,28,126,394 mounting...................................................26,27,148, 149,153,156,165nucleic acid electroporation.............................78,165 RNA extraction (34)spindle positioning.........................................394,398 tissue sectioning....................................133,140,216 Expression systemsß-galactosidase (205)fluorescent protein............................33,78,165,183 luciferase.. (33)nanoLuc (34)reporter constructs.............................................33,82, 183,205,217,261,286,344tomo-seq (130)FFertilizationin vitro fertilization.......................................6,11,18, 63,67,68,112,114,119,125,353–355,360,361,363–365,368–370,372,374,419 mating systems...............................................354,363 strain selection.........................................................353GGeckoanesthesia...............................................222,234,242 biopsy.....................................................222,225,234 husbandry.............................221–224,228,232,233 perfusion................................................222,233,242 sex determination...........................................221,223 Gene expression librariesamplified RNA (136)cDNA synthesis.............................130,131,134–137 gene library preparation........................131,137,138 Gene functiongain of function............................................78,82,88 genetic screen. (123)knockdown......................................77,78,82,87,88 Genome editing,see CRISPR-Cas9Germ cellsblastomere transplant (329)germ cell transplant.......................................317–325, 331,334,335germ line chimera..........................................327–329 host embryo sterilization.......................328–330,332 host-transfer..................................................324–325, 334–338,346–349isolation..........................................................296,334 migration........................................................328,329 Germplasm..............................................2,265–274,295 IInterspecies hybrid (vi)In vitro transcription(IVT)...........35,36,131,136,137 LLabelingAlcian blue.............................................225,229,234 Alizarin red............................................225,229,234 alkaline phosphatase (200)bromodeoxyuridine (227)calcium indicators................................................48–52 DAPI.................................................................29,286 DiOC6...........................................281,286,287,292 DNA dyes............................................................20,25 Fixation...............................................21–23,91,191, 196–198,202–204,206–209,234–238,256–259,288–290,323Harris hematoxylin counterstain (236)immunofluorescence............225,230,231,236,237 immunohistochemistry.........................184,278,286 in situ hybridization.............184,186,210,248,286 MitoTracker....................................................286,292 TO-PRO-3...................................................20,25,29 vital dyes...................................9,286,299,324,337 YO-PRO-1..........................................................20,29432V ERTEBRATE E MBRYOGENESIS:E MBRYOLOGICAL,C ELLULAR,AND G ENETIC M ETHODS IndexMMaternal genes....................................1–3,277,343,344 Micro-computed tomography(microCT).................248, 250,252,255,257,261 Microinjection...................................................5,8,9,12, 35–37,49–51,94,145,158,248,297,298,300,319,324,330–333,339,345,347,350,356,366,367,369,370Micro-tubescalibration (152)injection..............................................8,36,152,331, 332,334,337,349–350transplantation in adults..........................10,346–349 transplantation in embryos....................324,332–338 Mount.........................................................19,21,22,26, 27,49,147,159,184,186,187,189,191,193,196–198,200,201,203–209,211,216,217,235–237,324Mousepostimplantation embryo.............................167,168, 170,174–176,178preimplantation embryo...............................166,167, 169,172–174mRNA microinjection (36)mRNA sequencing(RNA-Seq) (129)NNeedles,see Micro-tubesOOocyteculture..........................................................1–13,273, 279,281,284,286,291,292,296,298 dissociation............................................279,285,286 endoplasmic reticulum..........................277,286,295 extract..........................................................18,38,47, 48,52,53,55,281follicle.........................................................7,8,12,46, 54,284–286,347,350histology (286)immunohistochemistry.................................278,282, 286,287,289,292maturation...............................................9,12,42,60, 61,71,72,284,291,351mitochondria.................................................265,267, 270,272,273,277,281,286–288,295 ovary dissection..............................................284,285 sorting....................................................279,281,286 transplantation......................3–5,317,345–347,351 Oogenesis............................................................1,59–72, 265,269,277,344,357Optogenetics........................................................143–161 Ovaries.............................................................5–8,12,28, 46,59,270,278,281,284–287,289,291,292,297,298,300,344–346,348,350,351PPloidygynogenesis (112)gynogenetic diploid.......................................121,122 haploid...................................................112,117,120 heat shocked (123)tetraploid.......................................113,117,120–122 triploid (303)Ploidy analysischromosome spreads.....................113,117,121,122fluorescence-assisted cell sorting(FACS).............113, 118,122,123genetic markers (371)Polymerase chain reaction(PCR).................................88, 117,122,127,130,131,138,140,147,151,156,157,194,195,257,320,323,325,371,379–381,385,387,388,390,420Primordial germ cell,see Germ cellProtein analysisCoomassie Brilliant Blue (68)immunoblotting (69)mass-spectrometry (70)SDS-PAGE..........................................................68–70 silver staining.......................................................68,70 two-dimensional gel electrophoresis (70)Protein-DNA interactions.............................99–109,377 Protein-protein interactions...................................99–109R Rehydration.............................................20,22,213,251 Reptilia (219)RNA(mRNA)concentration..................................................37,136, 137,152,158,386–388microinjection..........................................36,333,347 purification. (66)synthesis.........................................................147,150, 152,157,212,260,379–381,384–386,388,390 S Sectioning.....................................................19,130,131, 133,140,191,203,205,211,216,235–237 Signal transduction (43)Somatic cell nuclear transfer(SCNT)egg enucleation (366)microinjection...............................356,366,367,369V ERTEBRATE E MBRYOGENESIS:E MBRYOLOGICAL,C ELLULAR,AND G ENETIC M ETHODSIndex433Somatic cell nuclear transfer(SCNT)(cont.)preparation of nucleus-donor cells........................355, 356,365,366,369Spermextraction (359)in vitro fertilization............................................63,67, 68,112,369polyspermy (61)UV-inactivation....................120,121,123–125,127 Src............................................................................42,45, 54,63,64,68,71,72Subcellular protein localization...........................143–161 T3D modelinginput imaging stack........................................397–399 Mathworks Matlab.. (394)simulations.............................................394,398,401 surface evolver................................................394–396 Time-lapse...........................................................161,164, 166,169,175 Transfection.............................................................64,66, 78,88,248,254,261Transgenic..................................................118,123,124,127,146,183,205,286,318,348,357,365,369,373,411,419Turtles......................................v,219–221,240,247–262 XXenopus laevis...................................................v,4,17–19, 41,44,59–72,265–274,303Xenopus tropicalis...................................................19,303 Y Yolk.......................................................18,25,37,47,59,67,76–79,82–84,90,93,95,96,102,121,122,126,179,220,249,298,332,333,337,364,386,393,398,400–402,404Yolk clearing (25)ZZebrafish......................................................v,1,111–127,131,133,143,146,152,154,155,158,163,248,277–293,295–302,327–340,343–351,353–374,377–391,411,417,419,420,426434V ERTEBRATE E MBRYOGENESIS:E MBRYOLOGICAL,C ELLULAR,AND G ENETIC M ETHODS Index。
miRNA动物实验技术手册 说明书
miRNA动物实验技术手册— agomir & antagomir 应用案例集锦GUANGZHOU RIBO BIOTECHNOLOGY CO., L TD.经过几年的实践检验，锐博生物推出的micr ON TM agomir 和micr OFF TM antagomir 被证明具有良好的动物实验效果，已经应用于脑，鼻窦，骨，附睾，脾脏，肝脏，心脏等各种动物模型的miRNA 动物实验。
这些采用miRNA agomir 和antagomir miRNA 动物实验中，大多数采用局部注射给药方式或尾静脉给药方式，给药周期需依据实验内容而定。
BrainOncogene. 2011Spinal cordJ. Neurotrauma. 2013DermisAm. J. Pathol. 2012Subcutaneous Tumor Hepatology. 2010J. Hepatol. 2013Cancer Cell. 2011Oncogene. 2011BoneJ. Clin. Invest. 2009Nat. Med. 2013Cauda Epididymidis PLoS One. 2011Spleen Tumor J. Hepatol. 2013Liver Tumor Cancer Cell. 2011Breast Tumor J. Cancer 2013HeartCirculation 2010Nasal SinusesAm. J. Respir. Crit. Med. 2011图1. micr ON TM agomir 和 micr OFF TM antagomir 已经应用于各种动物模型的动物实验应用实例：各种组织及器官Silencing of microRNAs in vivo with 'antagomirs'.Krützfeldt J, et al. Nature. 2005来自哈尔滨医科大学的研究人员使用风湿性心脏病房颤患者的心房标本及利用快速起博诱导房颤的实验犬心房标本，通过miRNA表达谱芯片及定量PCR分析，发现miR-223、miR-328及miR-664在房颤标本中表达上调而miR-101、miR-320及峭miR-449则表达下调。
动物房SOP操作规程
食品工程与生物技术学院实验动物屏障环境管理制度目的：加强动物实验屏障环境管理，确保设施安全运行，保证实验动物和动物实验的质量。
范围：动物实验屏障环境职责：动物实验屏障环境全体工作人员内容：1.对工作的要求1.1 本实验室是我校科研工作质量管理的重要组成部分，直接反映我校科研管理工作的整体水平，因此日常管理工作受科技处的监督。
1.2 本实验室面向校内各相关专业开放，承担着科学研究与人才培养的双重责任。
要求本实验室全体人员不断提高自身素质，做好本职工作。
1.3凡在本实验室工作的人员必须接受学院的领导和工作安排。
1.4本实验室的管理、实验、饲养和辅助人员应接受专门培训和进修，并持证上岗。
1.5 在本实验室工作和进行动物实验的全体人员，必须严格执行《动物实验屏障环境标准操作规程（SOP）》。
1.6凡需进入本实验室工作的人员，需申请、经同意并参加培训后，方可进入实验室。
1.7工作时间内保持各动物实验室内的安静，不可大声喧哗。
1.8未经消毒的物品以及私人用品一律不准带入屏障系统。
凡需带入屏障环境与实验有关的仪器设备，必须提前申请，经同意后严格按照实验室操作规程传递进入实验室。
1.9本动物实验室为非感染性实验室，不得进行感染性实验。
2．设施管理要求2.1本设施属于单走廊布局的实验动物实验设施，洁净区内洁净度为l万级。
2.2本设施启用前或已停止使用一段时间后应按照使用工艺要求进行消毒程序。
2.3设施日常运行应严格按照设备使用手册要求进行，严格执行本部制定的屏障设施运行操作规程（SOP）进行操作。
2.4设施内的环境指标值应符合“实验动物环境及设施”(GBl4925—2010)的要求。
为保证设施安全运行，每季度应进行一次自检。
天津科技大学食品工程与生物技术学院动物实验屏障环境标准操作规程（SOP）二O一一年十一月一、动物实验屏障环境管理人员工作流程目的：保障屏障系统安全运行范围：适用于动物实验屏障环境责任人：实验室饲养管理人员内容：1.管理人员走向：应按箭头所指方向行进（图-1）。
动物实验基本操作技术手册
动物实验是一项敏感和复杂的工作，必须在合乎伦理的前提下进行，且需要遵循相关法规和指南。
以下是一个基本的动物实验操作技术手册大纲，但请注意，实施动物实验前，确保已经获得了合适的伦理批准和遵循当地法规。
1. 实验前准备：-获取伦理委员会的批准。
-确保实验室和设备符合标准。
-训练实验人员，确保其了解实验目的和操作流程。
2. 动物选择和养护：-选择适当的实验动物种类。
-确保动物的健康状况和遗传背景。
-提供适当的饲料、水和住房条件。
3. 实验设计：-制定明确的实验计划和协议。
-随机分组和安排实验。
-控制实验变量，确保结果的可靠性。
4. 麻醉和手术技术：-使用适当的麻醉剂和疼痛缓解措施。
-实施外科手术时，保持严格的无菌操作。
-确保手术室环境符合标准。
5. 实验操作和数据收集：-严格遵循实验方案的步骤。
-使用精确的测量工具。
-记录和存储实验数据。
6. 动物监测：-定期监测实验动物的生理指标。
-观察动物行为和外观。
-确保动物福祉和及时干预。
7. 实验结束和处理：-完成实验后，安全地结束动物的参与。
-对实验动物进行适当的处置或重返饲养环境。
-清理和消毒实验设备和环境。
8. 数据分析和报告：-使用统计工具对数据进行分析。
-撰写实验报告，详细描述实验设计、方法和结果。
-提交实验结果给相关的科研机构或期刊。
9. 废弃物处理：-安全处理动物实验产生的废弃物。
-符合相关环境法规，确保废弃物不对环境造成污染。
10. 纪录保存和档案管理：-确保实验记录和数据的安全存储。
-遵循机构和法规的档案保存要求。
11. 反馈和改进：-定期进行实验室审核和评估。
-根据实验结果和经验，改进实验设计和操作流程。
请注意，这只是一个基本的手册大纲，具体的操作流程和技术要求可能根据实验的具体内容和动物种类而有所不同。
在进行任何动物实验之前，请确保阅读并遵循相关法规和伦理指南，以确保实验的合法性和伦理性。
2012动物房SOP操作规程完整
食品工程与生物技术学院实验动物屏障环境管理制度目的：加强动物实验屏障环境管理，确保设施安全运行，保证实验动物和动物实验的质量。
范围：动物实验屏障环境职责：动物实验屏障环境全体工作人员内容：1.对工作的要求1.1 本实验室是我校科研工作质量管理的重要组成部分，直接反映我校科研管理工作的整体水平，因此日常管理工作受科技处的监督。
1.2 本实验室面向校内各相关专业开放，承担着科学研究与人才培养的双重责任。
要求本实验室全体人员不断提高自身素质，做好本职工作。
1.3凡在本实验室工作的人员必须接受学院的领导和工作安排。
1.4本实验室的管理、实验、饲养和辅助人员应接受专门培训和进修，并持证上岗。
1.5 在本实验室工作和进行动物实验的全体人员，必须严格执行《动物实验屏障环境标准操作规程（SOP）》。
1.6凡需进入本实验室工作的人员，需申请、经同意并参加培训后，方可进入实验室。
1.7工作时间内保持各动物实验室内的安静，不可大声喧哗。
1.8未经消毒的物品以及私人用品一律不准带入屏障系统。
凡需带入屏障环境与实验有关的仪器设备，必须提前申请，经同意后严格按照实验室操作规程传递进入实验室。
1.9本动物实验室为非感染性实验室，不得进行感染性实验。
2．设施管理要求2.1本设施属于单走廊布局的实验动物实验设施，洁净区内洁净度为l万级。
2.2本设施启用前或已停止使用一段时间后应按照使用工艺要求进行消毒程序。
2.3设施日常运行应严格按照设备使用手册要求进行，严格执行本部制定的屏障设施运行操作规程（SOP）进行操作。
2.4设施内的环境指标值应符合“实验动物环境及设施”(GBl4925—2010)的要求。
为保证设施安全运行，每季度应进行一次自检。
天津科技大学食品工程与生物技术学院动物实验屏障环境标准操作规程（SOP）二O一一年十一月一、动物实验屏障环境管理人员工作流程目的：保障屏障系统安全运行范围：适用于动物实验屏障环境责任人：实验室饲养管理人员内容：1.管理人员走向：应按箭头所指方向行进（图-1）。
实验动物设施建筑技术规范
动物实验技术手册
PPT 模板下载：/moban/ 行业PPT 模板：/hangye/节日PPT 模板：/jieri/ PPT 素材下载：/sucai/PPT 背景图片：/beijing/ PPT 图表下载：/tubiao/优秀PPT 下载：/xiazai/ PPT 教程：/powerpoint/Word 教程：/word/ Excel 教程：/excel/动物实验经验交流PPT 模板下载：/moban/ 行业PPT 模板：/hangye/节日PPT 模板：/jieri/ PPT 素材下载：/sucai/PPT 背景图片：/beijing/ PPT 图表下载：/tubiao/优秀PPT 下载：/xiazai/ PPT 教程：/powerpoint/Word 教程：/word/ Excel 教程：/excel/目录常见实验动物鼠的品系大汇总01常见小鼠实验操作技能03小鼠的饲养0204肿瘤动物模型相关实验01常见实验动物鼠的品系大汇总PPT模板下载：/moban/ 行业PPT模板：/hangye/节日PPT模板：/jieri/ PPT素材下载：/sucai/PPT背景图片：/beijing/ PPT图表下载：/tubiao/优秀PPT下载：/xiazai/ PPT教程：/powerpoint/Word教程：/word/ Excel教程：/excel/PPT 模板下载：/moban/ 行业PPT 模板：/hangye/节日PPT 模板：/jieri/ PPT 素材下载：/sucai/PPT 背景图片：/beijing/ PPT 图表下载：/tubiao/优秀PPT 下载：/xiazai/ PPT 教程：/powerpoint/Word 教程：/word/ Excel 教程：/excel/实验动物是指经人工饲养、繁育，对其携带的微生物及寄生虫实行控制、遗传背景明确或者来源清楚，应用于科学研究、教学、生产和检定以及其它科学实验的动物。
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饲养房间在实验动物设施中是一个大环境，它需要对温度、相对湿度、气流、 压力及照明进行监控的可靠的监测控制系统。HVAC 的设备需要冗余及应急电源以 尽可能保持动物环境稳定和恒定不变。
图 2－1 大环境 动物饲养室是转基因啮齿类动物的 次级围护结构，维持正确的气流、温 度、湿度、光照及声响是此环境所必 需的。
品的阻隔设施
表面涂料通常要达到生物安全 2 级建筑标准 · 放置清洗、灭菌设备及用品的区
的要求，即使该房间可能并不按照 “BSL－2”
域
的规定使用。指南指出：“主要内墙所用的建 · 用于设备、饲料及垫料的高压消
筑材料要兼顾动物的各种需要和清洁卫生的
毒锅
要求…内墙建筑材料要耐久、耐腐蚀，操作 · 存放污染设备和清洁设备的区
当污染物控制至关重要时，动物实验设施内就必须要设置阻隔区和屏障区。 相比常规的动物房，这些房间要专门设计以使其对空气传播的传染物的控制保持 较高水平。这些应用都要求为灭菌、消毒和保护专门设计功能和规程。
空间类型
空间的描述
普通型
对污染物进行控制，但不象阻隔或屏障区那么引人注目
阻隔型
必须将污染物阻隔在内
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实验动物房技术手册
实验动物设施的总体要求
动物实验设施每平方英尺的造价通常大 大高于普通实验室，例如：一个普通的实验 室建筑的全部建设费是在 230－290 美元/平 方英尺（20500－26000 人民币/平方米）左右， 而一个设计合理的动物设施每平方英尺的造 价却在 375－475 美元（34000－43000 人民币 /平方米）之间。动物实验室投资高的原因在 于：在保持持续稳定性和精确控制的同时， 为承受反复的不当使用和大力度清洗，设施 建设要采用各种专门的材料和建造方式。
全面了解实验动物环境
实验动物设施，也称动物实验室，相比大多数其它类型的实验室环境，需 要其设计工程更加细致和集中精神。动物环境的稳定性和品质对于动物的舒适和 研究的完整都是至关重要的。此外，通风系统必须为看护人员创造一个安全、舒 适的工作环境。它必须保证排出被污染的和有气味的空气，同时要维持正确的房 间压力。
实验动物房技术手册
第 一 章 实验动物设施设计要点
本章将概述实验动物设施及其气流控 制系统设计的关键要素。 内容： · 通风系统的主要目标 · 暖通空调系统与实验动物产业 · 实验动物设施的总体要求
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实验动物房技术手册
通风系统的主要目标
动物实验室气流控制系统应设计满足如下要求： · 为动物提供一个稳定的环境 · 满足动物和工作人员安全和舒适的需要
余风量已被证明是获得动物实验室稳定压力的最有效方法。将压力控制到一 个特定值的压差控制法，是一个非常困难且不稳定的方法。美国国家标准研究所 （ANSI）与美国工业卫生协会（AIHA）一起，支持对实验室环境采用余风量方法 来解决压差控制问题。ANSI 的标准 Z9.5（参照通用实验室空间）中有下面这个观 点：“规定定量的压力差是糟糕的设计依据… 而真正需要的是余风量（ANSI / AIHA Z9.5，第 7 页，第 4.11.4 节）。
作人员的安全。而另一方面，设施工程师却主张将房间的 R.C. Simmonds, DVM, 设施
空气调节得更为舒适才是通风系统的主要目的。事实上， 规划手册，第 2－3 页
所有动物及工作人员的安全和舒适都应该得到保证。
图 1－1 动物实验室通风要求
可靠的通风系统要提供稳定性、安 全性及舒适性
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实验动物房技术手册
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实验动物房技术手册
第二章 实验动物设施独特的通风要求
本章将讨论为保证大、小环境的稳定性, 安全性和舒适性而对通风系统提出的设计 要求。 内容提要： · 大环境 · 小环境 · 啮齿动物饲养房 · 动物房间的气流控制 · 冗余和应急电源
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实验动物房技术手册
许多物种的动物都在实验设施中饲养和使用。水生动植物、蝙蝠、白鼬、鱼 类、青蛙、非人灵长类动物、鸽子、兔子、啮齿类动物和绵羊都是现在实验使用 的对象。本节将介绍一般动物实验室的通风设计要点，并集中介绍转基因啮齿类 动物的环境和气流控制方案，其原因是现在对密度日益增高的转基因啮齿类动物 （典型的如小鼠）饲养的强烈需要。这些动物具有被改变的遗传因子，这使得它 们在生物医学研究的许多领域都具有特殊的价值。
· 员工培训及教学室
采用具有上述特点的材料会大大增加动
· 淋浴室、污水槽、冷藏间、洗手 间及休息区
物研究建筑物的建筑造价，但比较了使用寿
命以及研究费用后，证明这是明智的选择。
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实验动物房技术手册
图 1－2 动物实验室的双走廊设计 因为这些设施特有多种需求和任务，动物实验室包含了很多类型的房间。
阻隔和屏障区
暖通空调系统与实验动物产业
许多实验动物设施都长期存在暖通空调系统问题，这些问题使得研究工作不 能按照业主的要求进行。人们必然会想办法减少或消除这些问题产生的根源，从 而使研究工作在不受环境干扰的情况下进行。
下表列出了与实验动物设施暖通空调系统相关的四种最为常见的问题：
问题 · 温度和相对湿度不稳定 · 房间压力问题 · 有较多动物时通风不足 · 气流控制设备维护量大
Phoenix 控制公司为要求苛刻的房间环境提供了一流品质的气流控制，在此 方面它已经获得了声誉，并且它被认为是实验室气流控制方面的创新带头人。本 手册为参与动物管理设施的人士提供了有用的资料，其中有对满足了这些设施环 境的特定需要的气流控制方法的描述。你还会看到一个便于使用的相关标准与指 导方针的汇编。
为达到大环境的主要目标，一定要对各种参数进行控制。其中最重要的参数 有： · 压力 · 温度及相对湿度 · 通风率（即换气次数）
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压力
在动物实验室中，采用设置压力区的方法来控制空气污染物和过敏原的路径。 通常，屏障区要维持正压，而阻隔区域要维持相对负压。
对于行业中广泛应用的单走廊屏障设施，动物饲养室压力控制有几种方法（这 里不涉及同时具有清洁及污染房间的混合设施）。其中一些将所有的动物饲养室维 持在相对正压，从而使污染物远离无病的动物；其它的则是在所有动物都没有疾 病的前提下，将所有房间保持相对负压。如果疾病在一个动物身上发生，则房间 负压将疾病遏制在这个房间中。其方法是：从病毒被查出直至被清除这段时间里， 负压将保证这种疾病被遏制在房间中。要根据研究工作要求、建筑布局和通风系 统容量确定合适的压力控制方案，有必要对每一设施进行评估。对于大多数设施 来说，压力可切换合乎需要，因为它提供了最大的灵活性。
房间建造
房间类型
（ILAR, 第 72－73 页） 空间需要用作：
· 动物饲养及管理 · 隔离动物品系 · 隔离不同的项目 · 饲料、垫料、药品、生物制品和
补给品的输送与存储 · 外科手术及特别护理 · 解剖及 X 光照相 · 实验、临床和诊断过程 · 使用危险的生物、物理、化学物
用于动物实验室内部空间的建筑材料和
原因 · 不当的气流或温度控制 · 设备不稳定或不匹配 · 系统容量不足或效率低下 · 需重新平衡、重新校准和清洗
要解决实验动物设施的诸多暖通空调系统问题，需要了解设施是如何建造的， 此外，还需要了解确保环境稳定、安全和舒适的各种通风形式。本章概括描述了 实验动物设施的建造要求，在随后的第二章中我们将讨论它的独特的通风控制需 求。
页）” 一个设计良好的暖通空调系统将把气候条件的变化减至最小，确保研究结
果在一个稳定的、可以信赖的环境下产生。
1 实验动物研究所
“要将可能造成实验数
满足动物和人员的安全和舒适需要
据混乱的行为和生理变 化减到最少，环境的稳定
生物医学研究人员会指出：在动物实验室中，通风系工
图 2-2 动物饲养室的压力 选择 大环境可能根据需要维持 在正压或负压下，而一些 设施要求房间压力是可改 变的。
负压房间
正压房间
检疫房间
外科手术室
暴露于危险物质下的动物生活区
无特定病原体动物房
非人灵长类动物饲养室
清洁设备储藏室
资料出处：实验动物管理及使用指南（ILAR 第 76 页）
实验动物设施压力控制要点有：
屏障型
污染物必须隔离在外，远离动物
污染物举例：细菌、化学药品、微生物和病毒的微粒。
所有这三种类型都依赖于特定的屏障系统以获得有效的控制。“屏障”一词在 本文中指一种系统、建筑物特征或清洁区与污染区的隔离措施。
阻隔设备举例 ·带过滤的动物笼 ·生物安全柜 / 垫料更换站 ·带通风的动物笼系统 ·通风柜
图 2-3 推荐采用余风量法解决压力控制问题 准确的余风量控制为动物及工作提供了一个稳定的环境
压力梯度 不同的设施，动物饲养室与走廊之间压差的大小是变化的。大多数情况下采
用的压力范围是 0.03 到 0.075 英寸水柱（约 7.47 到 18.67Pa，0.05″是最常用的）， 并且在压差过低时要报警。对重要房间进行压力监测有利于表明压力控制水平。
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目
录
第一章、实验动物设施设计要点 ------------------- 1 第二章、实验动物设施独特的通风要求 ------------ 7 第三章、A c c e l ® Ⅱ 型 风 阀 --------------------- 34 第四章、控 制 应 用 -------------------------------- 37 第五章、系 统 各 组 成 部 分 说 明 ---------------- 62 第六章、标 准 及 指 南 ----------------------------- 86
实验动物设施简史
五十年代以前，建造的实验动物设施差不多是被专门当作临时饲养区用来 为用于研究的动物提供居所。改进的木质或混凝土地板的马棚就像木质的或铁丝 网笼子和玻璃瓶缸一样司空见惯。动物房通风常常通过纱窗和门实现，在更加精 心设计的设施中，通风通过便携式风机得到加强。