第二章 核酸的基本操作技术
基因工程知识点
基因工程各章知识点第一章绪论1.基因工程的首例操作实验三大理论基础:DNA是遗传物质、DNA的双螺旋结构和半保留复制、遗传密码的破译和遗传物质传递方式的确定三大技术基础:限制性核酸内切酶的发现与DNA的切割、DNA连接酶的发现与DNA片段的连接、基因工程载体的研究与应用基因工程的诞生:72年,P.Berg首次实现体外DNA重组:体外用EcoRI分别切割SV40和λDNA,并用T4 DNA连接酶连接成为重组的杂种DNA分子73年,S.Cohen 体外重组DNA并转化:具Kanr的E.Coli质粒R6-5和具Tetr的E.Coli质粒pSC101切割并连接转化的大肠杆菌具有双重抗性S.Cohen 和H.Boyer首次实现真核基因在原核中表达:将非洲爪蟾的DNA与E.Coli质粒(pSC101)体外切割并连接,转化大肠杆菌2.基因工程的基本概念基因工程是指将一种生物体(供体)的基因与载体在体外进行拼接重组,然后转入另一种新物体(受体)内,使之稳定遗传并表达出新产物或具有新性状的DNA体外操作技术,也称为分子克隆或重组DNA 技术。
供体、载体、受体是基因工程的三大基本元件。
3.基因工程的基本操作过程a分离目的DNA片段:酶切、PCR扩增、化学合成等。
b重组:体外连接的DNA和载体DNA,形成重组DNA分子。
c转化:将重组DNA分子导入受体细胞并与之一起增殖。
d筛选:鉴定出获得了重组DNA分子的受体细胞。
e对获得外源基因的细胞或生物体通过培养,获得所需的遗传性状或表达出所需要的产物。
第二章载体1.理解用PBR322和PUC18作载体的克隆外源基因的原理。
答案不确定PBR322作载体的克隆外源基因的原理:PBR322质粒具有12 种限制性内切酶的单一识别位点:Tet r 基因内有7个酶切位点:Bam HⅠ,SalⅠ:Amp r基因内有3 个酶切位点:PstⅠ。
Eco RⅠ和HindⅢ不在抗生素基因内,不导致插入失活。
核酸pcr操作流程
核酸pcr操作流程
核酸PCR(聚合酶链式反应)是一种用于扩增DNA片段的技朧,广泛应用于分子生物学、医学诊断、法医学等领域。
下面将介绍核
酸PCR的操作流程。
首先,准备PCR反应体系。
通常包括DNA模板、引物(primer)、dNTPs(四种脱氧核苷酸)、聚合酶、缓冲液和水。
DNA模板是待扩
增的DNA片段,引物是用于引导DNA合成的短链DNA片段,dNTPs
提供DNA合成所需的四种碱基,聚合酶是催化DNA合成的酶,缓冲
液用于维持反应的pH值。
其次,进行PCR反应。
将PCR反应体系加入PCR管中,放入
PCR仪中进行反应。
PCR反应通常包括三个步骤:变性、退火和延伸。
在变性步骤中,将反应体系加热至94-98摄氏度,使DNA双链解旋
成两条单链。
在退火步骤中,将反应体系降温至50-65摄氏度,引
物与DNA模板结合。
在延伸步骤中,将反应体系加热至72摄氏度,聚合酶在引物的引导下合成新的DNA链。
最后,进行PCR产物的分析。
PCR反应结束后,可以通过凝胶
电泳、实时荧光定量PCR等方法对PCR产物进行分析。
凝胶电泳可
以将PCR产物按照大小分离成不同的条带,从而确定PCR反应是否
成功。
实时荧光定量PCR可以实时监测PCR反应的进程,得到更加
准确的结果。
总的来说,核酸PCR是一种快速、灵敏、特异的DNA扩增技术,广泛应用于科研和临床实验中。
熟练掌握核酸PCR的操作流程对于
科研人员和临床医生来说至关重要,可以帮助他们更好地进行实验
和诊断工作。
核酸试剂操作方法
核酸试剂操作方法核酸试剂是用于提取、纯化和测定核酸分子的化学试剂。
核酸试剂的操作方法可以大致分为以下几个步骤:样品处理、溶解、纯化、测定等。
下面我将详细介绍每个步骤的操作方法。
1. 样品处理:在进行核酸提取前,首先需要对样品进行处理。
根据实验的目的和样品的性质,可以选择不同的样品处理方法。
比较常见的样品处理方法包括:细胞裂解、血浆或血清的凝固、骨髓抽提等。
在样品处理过程中要注意采用无菌操作,避免污染。
2. 溶解:将处理后的样品或沉淀加入适当的溶解液中,使核酸完全溶解。
常用的核酸溶解液包括:TE缓冲液、含EDTA的去离子水等。
在样品溶解时,需轻轻摇晃或轻轻慢搅拌,避免生成气泡。
3. 核酸纯化:核酸溶解后,需要进行纯化以去除与核酸有关的杂质,如蛋白质、盐类和酶等。
常用的核酸纯化方法有酚-氯仿法、硅胶柱法、离心柱法等。
不同的纯化方法适用于不同的样品类型和实验需求。
在纯化过程中,需要根据试剂的使用说明进行操作,以保证纯化效果。
4. 核酸测定:核酸纯化后,可以通过一系列测定手段来确定核酸的浓度和纯度。
测定核酸浓度和纯度的方法有:比色法、荧光法、紫外吸收法等。
在进行核酸测定时,需要根据试剂的使用说明和仪器的操作步骤进行操作,确保结果的准确性。
除了上述操作步骤外,核酸试剂的操作还需要注意以下几点:1. 实验室条件:进行核酸实验需要在洁净、无菌的实验环境下进行,避免外源性DNA和RNA的污染。
2. 消毒处理:实验前需要将操作台面、试剂瓶盖、离心管等实验器材进行消毒处理,以避免细菌、病毒的污染。
3. 无菌操作:在进行核酸提取和纯化操作时,需采用无菌技术,包括用纯化的试剂和器皿、带手套、使用滤芯枪头等。
4. 试剂保存:核酸试剂的保存条件需根据试剂的要求进行,常见的存储条件包括-20保存、避光保存等。
5. 操作技巧:在进行核酸试剂操作时,需熟悉试剂的用途和使用方法,并掌握相关实验技巧,以保证试剂的有效使用。
总之,核酸试剂的操作方法涉及样品处理、溶解、纯化和测定等步骤。
新冠核酸检验操作规程
新冠核酸检验操作规程新冠核酸检验是一种常用的方法来检测新型冠状病毒感染,以下是新冠核酸检验的操作规程。
一、实验室准备工作:1. 确保实验室内有足够的试剂和耗材,包括核酸提取试剂、PCR试剂盒、纯化试剂盒、标本采集和保存耗材等;2. 检查实验室内的设备完好,并及时进行维护和校准;3. 准备好标本接收和处理的工作区域,并保持清洁和消毒。
二、标本采集和处理:1. 选择适当的采集方法和采集器具,如采用鼻咽拭子或喉拭子;2. 采集标本时,确保操作人员戴好一次性手套、口罩和护目镜,并遵循相关的操作规范;3. 将采集的标本放入含有病毒保存液的标本管中,并确保标本管密封良好;4. 标本采集完毕后,及时送至实验室进行处理。
三、核酸提取:1. 根据核酸提取试剂盒的使用说明,准备好提取试剂和相关的试剂盒;2. 根据提取试剂盒的操作规程,将采集的标本转移到提取试剂中,并进行充分混合;3. 按照试剂盒的说明,采用相应的方法进行病毒核酸的提取;4. 注意防止交叉污染和保持操作区域的清洁;5. 提取完成后,将提取得到的核酸样品保存在低温条件下,以备后续的PCR扩增。
四、 PCR扩增:1. 准备好PCR试剂盒和PCR扩增仪,并根据试剂盒的操作说明进行配置;2. 将核酸样品与PCR试剂混合,并进行扩增反应;3. 注意控制扩增反应的条件和时间,以保证扩增效果和准确性;4. 控制反应体系的污染,避免假阳性结果的发生;5. 扩增反应结束后,将反应产物进行凝胶电泳和解读结果。
五、结果分析和报告:1. 根据PCR扩增结果,分析是否存在病毒核酸的阳性;2. 结果分析应根据相关的操作规范和标准进行,确保结果的准确性;3. 对于阳性结果,应及时向相关部门进行报告,并根据相关的防控指南进行流行病学调查和隔离治疗等工作;4. 对于阴性结果,应综合考虑临床表现、流行病学史等因素,综合判断患者是否可能存在感染。
六、实验室安全和质量控制:1. 实验室操作人员应遵守相关的安全规范和操作规程,确保自身和他人的人身安全;2. 实验室应建立和维护质量控制体系,包括正控和负控样品的使用和管理;3. 定期参加质量评估和技术培训,提高实验室的技术水平和质量控制能力;4. 定期对实验室进行清洁和消毒,以保持实验室的清洁和无菌环境。
第二章核酸的基本操作技术
的目的。
要成功的提取mRNA,也应尽可能完全抑制或去除RNA酶的活性。
寡聚(dT)-纤维素柱法提纯mRNA的过程
柱平衡(以上柱缓冲液洗脱纤维素柱,至柱流出液 的pH值小于8.0)
装柱( RNA水溶液于65℃温育5min,迅速冷却后按 RNA水溶液︰ 上柱缓冲液=1 ︰ 1混合装柱 洗涤(以5-10V的上柱缓冲液将未与柱结合的RNA等
4、 影响质粒DNA产量的因素 最重要的是: 菌株的遗传背景, 质粒自身的拷贝数。
(1)受体菌株
一般要使用endA基因发生突变的大肠杆菌 菌株。如DH5、JM109、TG1等。
endA基因编码核酸内切酶Ⅰ,在Mg2+的存 在下可将双链DNA消化成7bp的寡核苷酸片段。
(2)质粒拷贝数 这是直接决定DNA产量的重要因素之一。 质粒本身的性质所决定。
② 葡萄糖
增加溶液的粘度,维持渗透压,防止DNA 受机械力(震荡)的作用而降解。
③EDTA
Mg2+、Ca 2+的螯合剂,可抑制DNA酶的活 性,防止DNA被酶降解。
④NaOH-SDS
NaOH:强碱,提供pH>12的碱性条件,使 DNA双链变性。
SDS: 溶解细胞膜蛋白和细胞内蛋白,并结 合成“蛋白—SDS”复合物,使蛋白质(包括 DNA酶)变性沉淀。
(五)动物细胞DNA的提取
提纯的思路: 动物DNA的特性:分子量较大,易断,提取
过程中应尽量避免剧烈的搅拌,并注意抑制组织 中DNase的活性。
要去除的杂质:RNA、蛋白、多糖、脂类及 各种小分子杂质。
一般过程及原理: (1)组织粉碎
动物组织剪成小块,置液氮中冻结后 研磨成细粉末。
组织培养的细胞用胰酶消化松散后直 接使用。
分子生物学第九章--分子生物学研究方法电子教案精选全文
可编辑修改精选全文完整版•第九章分子生物学研究方法1.课程教学内容(1)核酸技术1—基本操作(2)核酸技术2—克隆技术(3)核酸技术3—测序(4)基因表达和表达分析基因定点诱变(5)蛋白质与核酸的相互作用(6)其他(热点)技术2.课程重点、难点基因克隆技术、杂交技术、测序技术、蛋白质与核酸的相互作用检测技术3.课程教学要求掌握基因克隆技术、杂交技术、测序技术、蛋白质与核酸的相互作用检测等各种技术的原理。
本章内容•核酸的凝胶电泳•DNA分子的酶切割•核酸的分子杂交•基因扩增•基因的克隆和表达•细菌的转化•DNA核苷酸序列分析•蛋白质的分离与纯化•研究DNA与蛋白质相互作用的方法一、核酸的凝胶电泳基本原理:当一种分子被放置在电场当中时,它们会以一定的速度移向适当的电极。
电泳的迁移率:电泳分子在电场作用下的迁移速度,它同电场的强度和电泳分子本身所携带的净电荷成正比。
由于在电泳中使用了一种无反应活性的稳定的支持介质,如琼脂糖和丙烯酰胺,从而降低了对流运动,故电泳的迁移率又同分子的摩擦系数成反比。
在生理条件下,核酸分子的糖-磷酸骨架中的磷酸基团,是呈离子化状态的。
从这个意义上讲,DNA和RNA的多核苷酸链可叫做多聚阴离子,因此,当核酸分子放置在电场中时,它就会向正极移动。
在一定的电场强度下,DNA分子的这种迁移率,取决于核酸分子本身大小和构型。
分子量较小的DNA 分子,比分子量较大的分子,具有较紧密的构型,所以其电泳迁移率也就比同等分子量的松散型的开环DNA分子或线性DNA分子要快些。
Gel matrix (胶支持物) is an inserted, jello-like porous material that supports and allows macromolecules to move through.Agarose (琼脂糖):(1) a much less resolving power than polyacrylamide,(2)but can separate DNA molecules of up to tens of kbDNA can be visualized by staining the gel with fluorescent dyes, such as ethidium bromide (EB 溴化乙锭)Polyacrylamide (聚丙稀酰胺):(1)has high resolving capability, and can resolve DNA that differfrom each other as little as a single base pair/nucleotide.(2)but can only separate DNA over a narrow size range (1 to a fewhundred bp).Pulsed-field gel electrophoresis (脉冲电泳)(1)The electric field is applied in pulses that are orientedorthogonally (直角地) to each other.(2)Separate DNA molecules according to their molecule weight, as wellas to their shape and topological properties.(3)Can effectively separate DNA molecules over 30-50 kb and up toseveral Mb in length.二、DNA分子的酶切割Restriction endonucleases (限制性内切酶) cleave DNA molecules at particular sitesRestriction endonucleases (RE) are the nucleases that cleave DNA at particular sites by the recognition of specific sequences.RE used in molecular biology typically recognize (识别) short (4-8bp) target sequences that are usually palindromic (回文结构), and cut (切割) at a defined sequence within those sequences. e.g. EcoRIThe random occurrence of the hexameric (六核苷酸的) sequence: 1/4096 (4-6=1/46)(1) Restriction enzymes differ in the recognition specificity: target sites are different.(2) Restriction enzymes differ in the length they recognized, and thus the frequencies differ.(3) Restriction enzymes differ in the nature of the DNA ends they generate: blunt/flush ends (平末端), sticky/staggered ends (粘性末端).(4) Restriction enzymes differ in the cleavage activity.三、核酸的分子杂交原理:带有互补的特定核苷酸序列的单链DNA或RNA,当它们混合在一起时,其相应的同源区段将会退火形成双链的结构。
核酸检测的操作规程
核酸检测的操作规程核酸检测的操作规程一、实验室准备1. 确保实验室设备正常运行并处于良好状态,包括核酸提取仪、PCR仪、离心机等。
2. 准备所需试剂和材料,包括核酸提取试剂盒、逆转录试剂盒、PCR试剂盒等。
3. 检查并清洁实验台面及仪器表面,以确保无任何污染。
4. 佩戴防护装备,包括实验帽、实验服、手套等,以防止实验过程中的交叉污染。
5. 核对每个样本的信息,确保准确无误。
二、核酸提取1. 提取样本之前,将样本转移到符合规定的安全实验室。
2. 根据试剂和设备的说明书,进行核酸提取。
将样本加入提取试剂中,充分混合。
3. 使用离心机进行离心分离,离心条件按照试剂盒的要求。
4. 将提取的核酸样品转移至干燥的离心管中,保存在低温条件下,避免冻融。
三、逆转录1. 准备逆转录反应液,按照试剂盒说明书中的配方比例配制。
2. 将核酸样品与逆转录反应液混合,反应温度和时间按照试剂盒要求进行设置。
3. 使用逆转录仪进行反应,注意反应过程中温度的稳定。
4. 反应结束后,检查反应液的外观,确保反应成功。
四、PCR扩增1. 准备PCR反应液,按照试剂盒说明书中的配方比例配制。
2. 将逆转录反应液与PCR反应液混合,充分混合。
3. 设定PCR仪的温度曲线和扩增时间,确保参数设置正确。
4. 在PCR扩增结束后,进行凝胶电泳检测,检查扩增产物的数量和大小。
五、结果分析和记录1. 根据凝胶电泳的结果,判定扩增产物是否存在。
2. 根据扩增产物的大小和带电泳率,判断所检测的目标基因是否存在。
3. 记录检测结果,包括样本编号、核酸提取情况、逆转录情况、PCR扩增结果等。
4. 输送结果至指定的部门或仪器进行最终结果分析和报告生成。
六、实验后处理1. 清洗实验台面和仪器设备,以确保无任何污染。
2. 妥善处理实验过程中产生的废液和废弃物,按照规定的程序进行处理。
3. 对实验室设备进行常规的维护和保养,以确保正常运行。
以上是核酸检测的操作规程,通过严格的操作流程和规范的实验室操作,可以确保核酸检测的准确性和可靠性,提供有效的数据支持。
核酸检测操作培训课件
核酸检测操作培训课件核酸检测操作培训课件随着新冠疫情的爆发和蔓延,核酸检测成为了目前最主要的病毒检测手段之一。
为了提高核酸检测的准确性和效率,许多机构和实验室都开展了相关的操作培训课程。
本文将介绍一些核酸检测操作培训课件的内容和要点。
一、核酸检测的原理和意义在介绍具体的操作步骤之前,首先需要了解核酸检测的原理和意义。
核酸检测通过提取样本中的核酸,利用特定的引物和酶的作用,扩增目标病毒的核酸片段,并通过荧光信号等方式进行检测和定量。
核酸检测的意义在于及时发现感染者,采取相应的隔离和治疗措施,有效遏制病毒的传播。
二、核酸检测的操作步骤1. 样本采集与保存核酸检测的第一步是样本采集与保存。
常见的样本包括鼻咽拭子、咽拭子、唾液等。
在采集样本时,需要注意采集器具的清洁和消毒,避免外界污染。
采集后的样本应妥善保存,避免温度过高或过低,影响核酸的稳定性。
2. 样本处理与核酸提取样本处理与核酸提取是核酸检测的关键步骤之一。
首先需要将采集的样本转移到提取管中,加入相应的提取缓冲液,破坏细胞膜和核酸的结构。
然后通过离心等操作,将核酸从其他组分中分离出来,并将其溶解在适当的缓冲液中,以便后续的扩增和检测。
3. 核酸扩增与检测核酸扩增与检测是核酸检测的核心步骤。
常用的扩增方法包括聚合酶链式反应(PCR)、实时荧光定量PCR(qPCR)等。
在扩增过程中,需要添加特定的引物和酶,以选择性地扩增目标病毒的核酸片段。
扩增后的产物可以通过荧光信号等方式进行检测和定量。
三、操作注意事项和常见问题在进行核酸检测操作时,需要注意以下几个方面的问题:1. 严格遵守操作规程和实验室安全规定,确保自身和他人的安全。
2. 保持操作环境的洁净和无菌,避免外界污染对实验结果的影响。
3. 使用高质量的试剂和耗材,确保实验的准确性和可靠性。
4. 注意样本的保存和处理方法,避免核酸的降解和损伤。
5. 定期进行设备的维护和校准,确保设备的正常运行和结果的准确性。
核酸检验操作规程
核酸检验操作规程核酸检验是一种常见的分子生物学技术,用于检测细胞或体液中的特定基因序列。
在实验室中进行核酸检验时,需要遵守一系列操作规程来确保实验的准确性和安全性。
以下是一个大致的核酸检验操作规程,供参考。
1. 实验室准备- 准备必要的实验器材,如离心机、PCR仪、电泳仪等。
- 检查实验室设备的工作状态和安全性,确保设备正常运转,并符合相关安全标准。
- 准备所需试剂和材料的清单,确保一切准备就绪。
2. 样本处理- 根据实验目的选择相应的样本类型,如血液、组织或细胞。
- 确保样本采集的操作无菌,并在采集后及时储存或运送样本到实验室。
- 样本到达实验室后,及时登记记录样本信息,包括样本编号、来源、保存条件等。
3. 样本提取- 根据不同样本类型选择相应的提取方法,如血液基因提取试剂盒、组织DNA提取试剂盒等。
- 严格按照提取试剂盒的使用说明进行操作,确保样本的完整性和提取效果。
- 在提取过程中,注意避免污染,使用一次性试剂和消毒工具,避免交叉污染。
4. PCR扩增- 根据实验要求设计或选择适当的引物,确保扩增目标序列的特异性和灵敏度。
- 准备PCR反应液,按照所用试剂盒的使用说明进行操作,确保试剂能够充分反应。
- 设置PCR仪的反应程序和温度条件,包括预变性、循环数和延伸温度等。
- 将样本DNA加入PCR反应管中,注意避免交叉感染,使用无菌操作和正常的实验室防护措施。
5. PCR产物分析- 完成PCR扩增后,将反应产物进行凝胶电泳或其他分析技术的分析。
- 按照分析的需要,准备相应的试剂和试剂盒,如凝胶电泳试剂盒、DNA分子量标记等。
- 按照试剂盒的使用说明,进行凝胶电泳分析,记录并分析结果,评估实验的准确性和可重复性。
6. 结果解读- 考虑实验的条件和方法的特异性,对实验结果进行解读和判断。
- 将实验结果与对照组、负对照和阳性对照进行比较,确保结果的可靠性和准确性。
- 结合临床病史和其他检测结果,给出综合的结果解释和诊断建议。
核酸提取与纯化
核酸提取与纯化1. 引言核酸提取与纯化技术是分子生物学研究中的一项基本操作。
随着分子生物学研究的深入,核酸提取与纯化技术变得越来越重要。
通过提取和纯化核酸,可以从生物样本中分离出DNA和RNA,并用于后续的实验分析,如PCR、测序、基因克隆等。
本文将介绍核酸提取与纯化的基本原理、常用方法以及注意事项,以帮助读者更好地理解和应用这一技术。
2. 核酸提取与纯化的基本原理核酸提取与纯化的基本原理是利用不同物质间的化学和物理性质的差异实现核酸的分离和纯化。
一般情况下,核酸提取与纯化的基本步骤包括细胞破碎、核酸溶解、核酸分离、纯化和沉淀。
下面将逐步介绍每个步骤的原理。
2.1 细胞破碎细胞破碎是核酸提取与纯化的第一步,目的是将细胞破坏,释放出细胞内的核酸。
常见的细胞破碎方法包括机械破碎、化学破碎和酶解。
机械破碎是通过物理力量(如搅拌、振荡、高压等)破坏细胞结构,使细胞内的核酸释放。
化学破碎则是利用化学物质(如酸、碱、溶剂等)破坏细胞膜和核酸结构,使核酸溶解。
酶解则是利用特定酶(如蛋白酶、核酸酶等)降解细胞内的蛋白质和核酸,使核酸得以释放。
2.2 核酸溶解核酸溶解是在细胞破碎后,将核酸从其他组分中溶解出来。
核酸的溶解需要满足一定的条件,如适当的温度、pH值和离子浓度等。
常见的核酸溶解缓冲液包括Tris-HCl缓冲液、EDTA缓冲液和含有盐的缓冲液等。
这些缓冲液能够提供适当的pH值和离子浓度,有利于核酸的稳定和溶解。
2.3 核酸分离核酸分离是将溶解的核酸与其他杂质分离的过程。
核酸的分离可通过差速离心、柱层析和电泳等方法实现。
差速离心是利用离心力将核酸与其他物质分离的方法。
由于核酸的分子量较大,其在离心过程中沉降速度较慢,从而与其他物质分离。
柱层析则是利用柱状填料的吸附、分配和排除等原理,通过溶液在柱中的流动进行分离,将核酸与其他组分分离。
电泳是利用核酸在电场中的迁移速度的差异进行分离的方法。
2.4 核酸纯化核酸纯化是将分离的核酸进一步纯化,去除可能存在的杂质。
核酸检测实验的操作规范和流程
核酸检测实验的操作规范和流程本文档旨在规范核酸检测实验的操作步骤,确保实验进行的准确、可靠和安全。
请根据以下流程进行操作。
实验前准备1. 确保工作台面干净整洁,并备齐所需的实验器材。
2. 检查实验器材的完整性和消毒情况。
3. 将试剂室保持洁净,并检查试剂的标签和有效期。
4. 穿戴实验室服装和个人防护装备,包括实验手套、防护眼镜和口罩。
核酸提取1. 取样前,将样本标识清晰地写在试管上,并确保与记录一致。
2. 使用无菌技术,使用专用取样器具采集样本,并放入已标识的试管中。
3. 使用适当的提取试剂盒,按照说明书的要求进行样本提取。
注意遵守实验室的安全操作规程。
核酸扩增1. 将样本提取后的核酸溶液,按照扩增试剂盒说明书的要求,加入扩增试剂反应体系。
2. 启动扩增仪器,设置好反应条件,如温度、时间等。
3. 按照试剂盒要求,制备必要的阴性对照和阳性对照。
4. 将样品、对照和负控物分别加入扩增试剂反应体系中,注意控制反应体系的杂交和污染风险。
PCR产物分析1. 终止扩增反应后,将PCR产物置于4°C冰上保存。
2. 使用凝胶电泳或其他适当的分析方法,对PCR产物进行分析验证。
确保正确的扩增结果,并评估目标基因的存在与否。
结果解读1. 根据PCR产物分析结果,判断目标基因的存在与否。
2. 结果解读应结合实验目的,结合相关样本信息,进行科学合理的判断和分析。
实验后清理1. 将使用过的试剂瓶、试管和其他实验器材分类清理,并正确处理。
2. 清洗工作台面,保持实验环境整洁。
3. 按照实验室废物管理规定,进行废物处理。
以上是核酸检测实验的操作规范和流程,请按照要求严格执行,确保实验结果的准确性和可靠性。
习题2核酸分子杂交技术
.第二章核酸杂交技术(一)名词解释1.原位杂交2.核酸分子杂交技术3.探针4.反向点杂交5.缺口平移标记法6.随机引物标记法7.末端标记法8.Southern blot杂交9.荧光原位杂交10.菌落杂交(二)选择题【A型题】1.DNA链的Tm值主要取决于核酸分子的()A G-C含量B A-T含量C A-G含量D A-C含量E T-G含量2.液相杂交是下列哪一种()A Southem印迹杂交B Northem印迹杂交C Dot印迹杂交D Slot印迹杂交E RPA实验3.研究得最早的核酸分子杂交种类是()A 菌落杂交B Southern杂交C Northern杂交D 液相杂交E 原位杂交4.Southern杂交通常是指()A DNA和RNA杂交B DNA和DNA杂交C RNA和RNA杂交D 蛋白质和蛋白质杂交E DNA和蛋白质杂交5.最容易降解的核酸探针是( )A cDNA探针B dsDNA探针C ssDNA探针D gDNA探针E: RNA6.探针基因芯片技术的本质就是()A 核酸分子杂交技术B 蛋白质分子杂交技术C 聚合酶链反应技术D 基因重组技术E 酶切技术7.DNA探针的长度通常为( )A 1000 ~ 2000个碱基B 500 ~ 1000个碱基C 400 ~ 500个碱基D 100 ~ 400个碱基E. <100个碱基8.寡核苷酸探针的最大的优势是()A 杂化分子稳定B 可以区分仅仅一个碱基差别的靶序列C 易标记D 易合成E 易分解9.在Southern印迹中常用的核酸变性剂是( ) A 甲醛B 乙醛C 氢氧化钠D 碳酸钠E 盐酸10.盐酸硝酸纤维素膜最大的优点是()A 脆性大B 本底低C 共价键结合D 非共价键结合E 高结合力11.最常用的DNA探针标记方法是( )A 随机引物B 切口平移C 3′ -末端标记D 5′ -末端标记E PCR法12.为了除去探针,重复使用滤膜,以下哪种情况不可以发生()A 探针在预杂交与除去探针之间的过程中曾经干燥过B 探针在预杂交与除去探针之间的过程中曾经湿润过C 探针在预杂交与除去探针之间的过程中曾经温浴过D 探针在预杂交与除去探针之间的过程中曾经漂洗过E 探针在预杂交与除去探针之间的过程中曾经标记过13.5′一末端的DNA探针标记主要依靠的酶是( )A T4多聚核苷酸激酶B 末端转移酶C AKPD DNA polⅡE DNA pol14.血友病是一种()A 染色体病B X连锁遗传病C 先天性代谢缺陷病D 先天畸形E 常染色体隠性遗传病15.预杂交中最常用的封闭剂是( )A Denhavdt's溶液B 5×TBEC 1×TBED 1×TAEE 1×TPE16.检测目标是RNA的技术是()A Southern杂交B Western杂交C Northern杂交D Eastern杂交E 杂交淋巴瘤17.检测靶序列是DNA的技术是()A Southern杂交B Western杂交C Northern杂交D Eastern杂交E 杂交淋巴瘤18.DNA双螺旋之间氢键断裂,双螺旋解开,DNA 分子成为单链,这一过程称()A 变性B 复性C 复杂性D 杂交E 探针19.具有碱基互补区域的单链又可以重新结合形成双链,这一过程称()A 变性B 复性C 复杂性D 杂交E 探针20.一种标记核酸与另一种核酸单链进行配对形成异源核酸分子的双链,这一过程称()A 变性B 复性C 复杂性D 杂交E 探针21.点/狭缝杂交可以用于()A 快速确定是否存在目的基因B 不仅可以检测DNA样品中是否存在某一特定的基因,而且还可以获得基因片段的大小及酶切位点分布的信息C 用于基因定位分析D 阳性菌落的筛选E 蛋白水平的检测22.放射自显影时反射光产生的潜影在低温下较稳定,最适温度是( )A -70℃B -30℃C -20℃D -10℃E 4℃23.Southern印迹杂交可以用于()A 不仅可以检测DNA样品中是否存在某一特定的基因,而且还可以获得基因片段的大小及酶切位点分布的信息B 检测的目标是RNAC 用于基因定位分析D 阳性菌落的筛选E 蛋白水平的检测24.寡核苷酸探针的Tm简单计算公式为( )A Tm=4(G+C)+2(A+T)B Tm=2(G+C)+4(A+T)C Tm=6(G+C)+4(A+T)D Tm=2(G+C)+6(A+T)E Tm=6(G+C)+2(A+T)25.Northern印迹杂交可以用于()A 快速确定是否存在目的基因B 不仅可以检测DNA样品中是否存在某一特定的基因,而且还可以获得基因片段的大小及酶切位点分布的信息C 检测的目标是RNAD 用于基因定位分析E 阳性菌落的筛选2626.荧光原位杂交可以用于()A 快速确定是否存在目的基因B 检测的目标是RNAC 用于基因定位分析D 阳性菌落的筛选E 蛋白水平的检测27.以等位基因特异的寡核苷酸探针杂交法诊断某常染色体隐性遗传病时,若能与突变探针及正常探针接合,则该样本为()A 正常人B 杂合体患者C 纯合体患者D 携带者E 不能确定28.在pH为下述何种范围时,Tm值变化不明显( )A pH为3~5B pH为4~5C pH为5~6D pH为5~9E pH为8~1129.一般来说,设计的寡核苷酸探针的长度为()A 2-10bpB 17-50bpC 60-100bpD 100-200bpE 200-300bp30.变性剂可使核酸的Tm值降低,常用的变性剂是( )A 甲酰胺B 氢氧化钠C 浓盐酸D 稀盐酸E 甲醇31.下列有关cDNA探针的描述不正确的为()A 利用mRNA通过RT-PCR在体外反转录可制备大量的cDNA探针B cDNA探针不包含内含子C cDNA探针不包含大量的高度重复序列D 由于cDNA探针自身所携带的poly(dT),有可能产生非特异性杂交的问题E cDNA探针合成方便,成为探针的重要来源32.一般来说核酸杂交的温度低于其Tm值的多少度进行( )A 15~25℃B 10~15℃C 5~10℃D 30~40℃E 40~50℃33.对于寡核苷酸探针,杂交温度一般般低于其Tm 值( )A 30~40℃B 20~30℃C 15~30℃D 10~15℃E 5℃34.一般情况下,不含变性剂甲酰胺时,杂交反应常在多少℃下进行( )A 90B 80C 75D 68E 5835.在含50%甲酰胺时,杂交反应在多少℃进行( )A 70B 65C 55D 42E 3536.杂交时的温度与错配率有关,错配率每增加1%,则Tm值下降( )A 0.5℃B 1~1.5℃C 2~2.5℃D 3~3. S℃E 4~4.5℃37.RNA/RNA的杂交体的Tm值一般应增加( )A 1~5℃B 5~10℃C 10~15℃D 15~20℃E 20~25℃38.杂交的时间一般为Cot1/2的( )A l倍B 1~3倍C 3 ~5倍D 5~8倍E 10倍以上39.为封闭非特异性杂交位点,可在预杂交液中加入( )A ssDNAB 1×SSCC 10×SSCD 5×TBECE 50×TAE40.随机引物法标记探针常用的A、G、C、T聚合体的数目是( )A 4个B 6个C 8个D 10个E 12个【X型题】41.下列哪些是影响DNA复性的因素( )A DNA浓度B DNA的分子量C 温度D 碱基组成E DNA的来源42. DNA探针的优点有()A 制备方法简单B DNA探针易降解C DNA探针的标记方法成熟,有多种方法可以选择D 克隆在质粒载体中,可以无限繁殖,取之不尽E 单链,不存在竞争性的自身复性43.以下哪些方法可以用于探针的全程标记()A DNA加尾法B DNA切口平移标记法C 随机引物标记法D 末端标记E 尾端标记44.关于DNA变性的描述正确的是( )A 二级结构破B 一级结构破坏C 黏度降低D 生物活性丧失E 浮力密度增加45.以下哪些因素可以使DNA变性()A 增加溶液的浓度B 加热C 改变溶液的pH值D 有机溶剂E 冷藏46.预杂交中,下列能起封闭作用的是( )A ssDNAB BSAC 小牛胸腺DNAD 脱脂奶粉E DTT47.变性的DNA会发生哪些理化性质的变化()A 粘度下降B 沉降速度增加C 浮力下降D 紫外光吸收增加E 紫外光吸收减少48.下列物质适于非放射性探针标记的是( )A AKPB ACPC 生物素D 地高辛E 荧光素49.关于人工合成的寡核苷酸探针,下列描述正确的是( )A 特异性高B 可依赖氨基酸序列推测其序列C 分子量小D 可用于相似基因顺序差异性分析E 可用末端转移酶进行5′端标记50.通过哪些措施可以提高杂交反应的速度()A 采用大片段探针B 少量的反应体积C 高反应温度D 不断的振摇E 大量的反应体积51.关于切口平移法下述正确的是( )A 可标记线性DNAB 可标记松散螺旋DNAC 可标记超螺旋DNAD 可标记存在缺口的双链DNAE 可标记随机引物52.以下哪些方法可以用于从凝胶上转移DNA()A 毛细转移B 真空转移C 负压转移D 电泳转移E 冷冻转移53.关于随机引物法标记探针下述正确的是( )A 可标记单链DNAB 可标记双链RNAC 可标记单链RNAD 比活性高达108cpm/µg DNA以上E 常经过SephadexG-50纯化才可使用54.可以采用哪些方法来标记探针()A 杂交标记法B 切口平移标记法C 5’-末端的标记D 3’-末端的标记E 化学法延长标记55.整个杂交反应主要以下哪些步骤组成()A 预杂交B 杂交C 洗脱D 固定E 转移56.放射自显影可以被分为()A 直接放射自显影B 氧化显影C 封闭显影D 间接放射自显影E 固定显影57.关于电转移下列描述正确的是( )A 快速、高效B 需要特殊设备C 缓冲液用TAE或TBED 可产生高温E 常用NC膜作为支持介质58.预杂交的主要目的是()A 平衡滤膜B 封闭非特异性杂交的位置C 提高杂交信号的检测效率D 便于从滤膜上除去探针E 清除用于杂交反应检测的显色物质59.关于非放射性探针标记,下列描述正确的是( )A 对人体危害小B 需要特殊设备C 可长时间使用D 灵敏度不如放射性探针E 重新杂交新探比较容易60.对于改变DNA片段长度的突变,可以由于缺失或插入产生,或由于限制性酶切位点改变而导致限制性片段长度改变。
DNA操作的基本技术
RNA),在一定条件下按碱基互补配对原则经 过复性处理后,形成异源双链旳过程
一、Southern 印迹可用于分析基因 拷贝数旳变化
• 由E. M. Southern在1975年提出 • 可用于分析基因拷贝数旳变化 • 基本操作过程涉及
* DNA序列分析措施旳演变和发展
• 20世纪70年代 – 双脱氧链终止法:F. Sanger – 化学裂解法:A. Maxam和W. Gilbert
• 20世纪80年代 – PCR及自动测序技术
一、DNA序列分析有双脱氧链终止法和 化学裂解法
• (一)Sanger双脱氧链终止法利用2′,3 ′ 双脱氧核苷酸掺入中
酵母单杂交技术旳基本原理
三、蛋白质-RNA相互作用也可采用酵母 三杂交系统进行分析
• 酵 母 三 杂 交 系 统 ( yeast three-hybrid system)于1996年由等首先报道
(一)用于蛋白质-RNA相互作用分析旳酵母 三杂交系统需要杂合RNA
酵母三杂交基本原理
(二)酵母三杂交系统应用范围广泛
• 可进行与特定蛋白结合旳未知RNA旳筛选; • 拟定RNA-蛋白质相互作用旳构造域; • 鉴定、分离能够辨认具有主要生理功能
RNA旳RNA结合蛋白。
蓝 ddC
ddT
荧光标识
DNA合成
毛细管电泳
测序成果展示
二、DNA序列分析能够揭示基因和 基因组一级构造变化
• 经过DNA序列分析能够鉴定基因和基因组 旳变异
• 经过DNA序列测定分析人工重组旳基因 • 经过DNA序列测定对定点突变进行确认
第四节
DNA芯片技术
RNA基本操作技术
RNA基本操作技术RNA(核糖核酸)是生物体内重要的信息传递分子,具有多种功能,包括编码蛋白质、调节基因表达等。
研究RNA的基本操作技术对于生物学研究及生物医学研究具有重要意义。
以下将介绍RNA的提取、纯化、合成以及检测等基本操作技术。
首先,RNA的提取是RNA研究的首要步骤。
常用的RNA提取方法有酚-氯仿法和离心柱法。
酚-氯仿法通过酚和氯仿的相互作用,使RNA从细胞中析出。
离心柱法则利用离心柱将细胞破碎后的混合液分离为RNA在上层,DNA和蛋白质沉淀在下层。
根据研究需求可以选择适合的提取方法。
其次,RNA的纯化是提取RNA后的必要步骤。
纯化可以去除杂质,提高RNA的纯度。
常用的RNA纯化方法包括酚醇沉淀法和离心柱法。
酚醇沉淀法通过酚和醇的相互作用,使RNA从杂质中析出。
离心柱法则利用离心柱将RNA溶液在离心过程中与柱子质量交互作用,使RNA与柱子结合,去除杂质。
纯化后的RNA用于后续实验,能够减少假阳性结果产生。
RNA的合成是RNA研究的重要环节。
合成的RNA可以用于基因组学、转录组学以及RNA修饰研究等多个领域。
常用的RNA合成方法有原位合成法和化学合成法。
原位合成法利用核酸酶的逆合成活性,在DNA模板上合成RNA。
化学合成法则利用化学方法在固相合成支持物上逐个添加核苷酸来合成RNA。
根据具体需求,可以选择不同的合成方法。
最后,RNA的检测是研究RNA功能的重要手段。
常用的RNA检测方法有逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)、Northern blot、原位杂交以及基因芯片技术等。
RT-PCR方法可以定量分析RNA的表达水平,并检测低水平的RNA。
Northern blot技术则能够检测特定长度的RNA分子,并定量测量RNA的表达水平。
原位杂交方法则可检测RNA在细胞中的位置和表达水平。
基因芯片技术则能够同时检测大量的RNA表达,并分析差异表达基因。
综上所述,RNA的基本操作技术包括提取、纯化、合成和检测等。
核酸检测操作指南
核酸检测操作指南
1. 简介
核酸检测是一种用于检测特定病原体的方法,常用于疾病诊断
和大规模筛查。
本操作指南旨在提供核酸检测的基本步骤和注意事项。
2. 操作步骤
步骤一:样本采集
1. 确保采集器具和试剂齐全,并严格按照操作要求进行消毒。
2. 使用无菌棉签或采样管收集样本。
常见的样本来源包括喉拭子、鼻拭子、唾液等。
3. 确保样本采集完整,避免交叉污染。
步骤二:核酸提取
1. 根据实验室提供的核酸提取试剂盒使用说明,进行核酸提取。
2. 注意严格按照操作要求进行样本处理,避免污染和损坏。
步骤三:核酸扩增
1. 根据实验室提供的核酸扩增试剂盒使用说明,进行核酸扩增。
2. 注册样本信息,确保数据的准确性和可追溯性。
步骤四:结果判读
1. 根据实验室提供的结果判读标准,对扩增反应结果进行判读。
2. 注意识别阳性和阴性结果,避免误读和漏读。
3. 注意事项
- 操作前必须戴好防护手套和口罩,做好个人防护。
- 严格按照操作要求和实验室规范进行操作,防止交叉污染。
- 对于复杂样本或结果不确定的情况,及时与实验室负责人沟
通并寻求帮助。
- 操作结束后,记得将实验器材进行消毒处理。
以上为核酸检测操作指南的简要介绍和操作步骤,希望能对您
的工作有所帮助。
> 注意:本文档内容仅供参考,请在实际操作中严格遵守相关
法规和实验室规范。
> 注意:由于核酸检测标准和操作要求可能因地区和实验室而异,请在操作前核实并了解相关指导。
采核酸的操作方法
采核酸的操作方法采核酸是一种常用的实验室技术,用于提取和纯化DNA或RNA样本。
它在医学、生物学和遗传学等领域中被广泛应用。
以下是一个完整的采核酸的操作方法,包括样本准备、DNA或RNA提取、纯化和质量检测。
请注意,此方法基于常见的实验室方法和步骤,具体的实验操作应根据实验室的具体要求和所需的核酸类型进行调整。
1. 样本准备- 选择要提取核酸的样本,可以是动物组织、细胞、血液、体液等。
根据所需的核酸类型选择相应的样本类型。
- 将样本储存在合适的容器中,避免污染和降解。
通常使用离心管或冻存管。
- 如样本为固态,使用搜集刮取的方式,如组织匀浆、刮取细胞等。
2. 细胞破碎和裂解- 将样本转移到一个适量的离心管中。
- 加入一定体积的细胞破碎缓冲液,如含有蛋白酶的Buffer P1缓冲液等。
- 使用尖端超声波器、高压灌装器、机械粉碎仪等方法将细胞破碎并释放核酸。
3. DNA或RNA提取- 加入抗凝剂,避免核酸降解。
对DNA样本通常使用乙酸铵,对RNA样本通常使用乙酸锂。
- 使用离心机将混合物离心,使细胞残渣和大分子聚集物沉淀。
- 将上清转移至新的离心管中,加入异丙醇等使核酸沉淀。
- 使用离心机将离心管离心,使核酸沉淀。
- 丢弃上清液,使用洗涤缓冲液洗涤核酸沉淀,去除残余污染物。
- 使用离心机将离心管离心,使核酸沉淀。
- 倒掉上清液,使用固体物质或酒精沉淀使核酸更纯净。
- 使用离心机将离心管离心,使核酸沉淀。
4. 核酸纯化- 倒掉上清液,使用75%乙醇溶液洗涤核酸沉淀。
- 用无水乙醇沉淀核酸,以获得更纯净的核酸样本。
- 使用离心机将离心管离心,使核酸沉淀。
- 倒掉上清液,使用洗涤缓冲液洗涤核酸沉淀,去除残余污染物。
- 使用离心机将离心管离心,使核酸沉淀。
- 使用无水乙醇去除盐和杂质,同时可利用乙醇洗涤核酸。
5. 核酸质量检测- 可使用紫外光分光光度计测量核酸的紫外吸收,以确定纯度和浓度。
- 比较260 nm和280 nm波长的吸收值,以评估核酸的纯度。
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③EDTA Mg2+、Ca 2+的螯合剂,可抑制 的螯合剂,可抑制DNA酶的活 酶 防止DNA被酶降解。 被酶降解。 性,防止 被酶降解 ④NaOH-SDS NaOH:强碱,提供 :强碱,提供pH>12的碱性条件,使 的碱性条件, 的碱性条件 DNA双链变性。 双链变性 双链变性。 SDS: 溶解细胞膜蛋白和细胞内蛋白,并结 溶解细胞膜蛋白和细胞内蛋白, 合成“蛋白—SDS”复合物,使蛋白质(包括 复合物, 合成“蛋白 复合物 使蛋白质( DNA酶)变性沉淀。 酶 变性沉淀。
(2)质粒拷贝数 ) 这是直接决定DNA产量的重要因素之一。 产量的重要因素之一。 这是直接决定 产量的重要因素之一 质粒本身的性质所决定。 质粒本身的性质所决定。
(3)质粒大小 ) 分子量大的质粒,拷贝数少。 分子量大的质粒,拷贝数少。
若干常用质粒的理论产量 质粒名 pGEM pUC pBR322 ColE1 pACYC pSC101 分子大小bp 拷贝数 分子大小 2700 2700 4400 4500 4000 9000 300-700 500-700 >25 >15 ≈10 ≈6 质粒产量 µg/ml 1.8-4.1 2.9-4.1 >0.32 >0.15 ≈0.09 ≈0.12
有时还需要加入CTAB(十六烷基三乙基溴化铵) 除 ( 十六烷基三乙基溴化铵) 有时还需要加入 去细菌多糖。 去细菌多糖。 基本原理: 可溶解细胞膜, 基本原理:CTAB可溶解细胞膜,与核酸形成复合物, 可溶解细胞膜 与核酸形成复合物, 在高盐溶液中是可溶的;在低盐溶液中沉淀, 在高盐溶液中是可溶的;在低盐溶液中沉淀,通过离心就 可将CTAB与核酸的复合物同蛋白质、多糖类物质分开; 与核酸的复合物同蛋白质、多糖类物质分开; 可将 与核酸的复合物同蛋白质 然后将CTAB与核酸的复合物沉淀溶解于高盐溶液,再加 与核酸的复合物沉淀溶解于高盐溶液, 然后将 与核酸的复合物沉淀溶解于高盐溶液 入乙醇使核酸沉淀, 溶于乙醇。 入乙醇使核酸沉淀,而CTAB溶于乙醇。 溶于乙醇 特点:能较好的去除糖类杂质, 特点:能较好的去除糖类杂质,对于含糖较高的材料 最为合适;在提取前期能同时得到高质量的 最为合适 在提取前期能同时得到高质量的DNA及RNA 在提取前期能同时得到高质量的 及
动物细胞DNA的提取 (五)动物细胞 的提取 提纯的思路: 提纯的思路: 动物DNA的特性:分子量较大,易断,提取 的特性:分子量较大,易断, 动物 的特性 过程中应尽量避免剧烈的搅拌, 过程中应尽量避免剧烈的搅拌,并注意抑制组织 的活性。 中DNase的活性。 的活性 要去除的杂质: 要去除的杂质:RNA、蛋白、多糖、脂类及 、蛋白、多糖、 各种小分子杂质。 各种小分子杂质。
(二)DNA提取的一般步骤 提取的一般步骤
准备生物材料: 准备生物材料: 选用的材料应处于提取DNA得率最高的生长期。如: 得率最高的生长期。 选用的材料应处于提取 得率最高的生长期 提取大肠杆菌质粒 提取大肠杆菌质粒DNA,菌液应培养至对数生长后期 测定 ,菌液应培养至对数生长后期(测定 质粒 对数生长后期 提取植物 植物DNA,最好选取幼嫩的部分。 幼嫩的部分 OD600值);提取植物 值 ,最好选取幼嫩的部分。 裂解细胞: 裂解细胞: 对于原核生物可用溶菌酶、冰冻和超声波等法;对于 对于原核生物可用溶菌酶、冰冻和超声波等法; 结构复杂的动植物材料先粉碎,然后用液氮研磨或匀浆。 结构复杂的动植物材料先粉碎,然后用液氮研磨或匀浆。 分离和提取DNA: : 分离和提取 氯仿等抽提; 总DNA,酚/氯仿等抽提; , 叶绿体/线粒体DNA,一般采取先提纯细胞器,再溶解 叶绿体/线粒体 ,一般采取先提纯细胞器, 细胞器膜,待释放出细胞器DNA后,再进一步提取纯化之。 细胞器膜,待释放出细胞器 后 再进一步提取纯化之。 质粒DNA,要将其与染色体 分开。 质粒 ,要将其与染色体DNA分开。 分开
第四步: 第四步:离心除去沉淀 上清液中含有闭合质粒DNA。 。 上清液中含有闭合质粒 第五步:纯化DNA 第五步:纯化 酚-氯仿抽提。 氯仿抽提。 氯仿抽提 第六步:沉淀DNA 第六步:沉淀 0.6倍体积的异丙醇或 倍体积的乙醇。 倍体积的异丙醇或2倍体积的乙醇 倍体积的异丙醇或 倍体积的乙醇。
细菌总DNA的制备(E.coli) 的制备( (三)细菌总 的制备 )
1.菌体培养 将活化的菌体接种于 菌体培养: 将活化的菌体接种于LB(Luria- Bertani) 菌体培养 培养基,于37 oC培养至对数生长期 然后置冰水浴20min 培养基, 培养至对数生长期,然后置冰水浴 培养至对数生长期 然后置冰水浴 2.收集菌体 离心 收集菌体: 离心(5000 g, 5 min) (50 ml) 收集菌体 , 3.菌体裂解 加5ml冷 TES(0.1 M Tris-HCl,0.1 M EDTA, 菌体裂解: 菌体裂解 冷 , 0.15 M NaCl,pH 8.0)加10 mg 溶菌酶,于37 oC 温育 min 溶菌酶, 温育10 , 加 4.去RNA: 去 加入1 加入 mg RNaseA,于室温温育 min ,于室温温育15 5.去蛋白 加入 去蛋白: 加入0.6 ml 10% SDS和Protease K(0.1mg/ml), 去蛋白 和 , 50 oC,3h,加苯酚 氯仿抽提 等体积 氯仿抽提(等体积 , ,加苯酚-氯仿抽提 等体积) 6.沉淀 沉淀DNA: 加入 加入1/10 V 的NaAc,2 V 无水乙醇以玻璃 沉淀 , 棒缠绕絮状沉淀,溶于 棒缠绕絮状沉淀,溶于TE Buffer中 中
变性
2 、所用的试剂作用 ① 溶菌酶 能水解菌体细胞壁的主要化学成分肽 能水解菌体细胞壁的主要化学成分肽 聚糖中的 , 糖苷键 中的β 糖苷键。 聚糖中的β-1,4糖苷键。 在碱性条件( 在碱性条件(pH>8)下有活性。 )下有活性。 ② 葡萄糖 增加溶液的粘度,维持渗透压 渗透压, 增加溶液的粘度,维持渗透压,防止 粘度 DNA受机械力(震荡)的作用而降解。 受机械力(震荡)的作用而降解。 受机械力
细菌质粒DNA的提取 的提取—— 碱裂解法 (四)细菌质粒 的提取 提取的思路: 提取的思路: 质粒的特性:共价闭合、环状的小分子量 质粒的特性:共价闭合、环状的小分子量DNA 要去除的物质: 要去除的物质: 基因组DNA(调节 从12.6降到 左右) (调节pH从 降到7.0左右 基因组 降到 左右) 蛋白质( 和蛋白酶变性, 蛋白质(SDS和蛋白酶变性,苯酚 氯仿 和蛋白酶变性 苯酚-氯仿 抽提) 抽提) 脂类及小分子杂质(乙醇等) 脂类及小分子杂质(乙醇等) RNA(RNase) (
⑤ NaAc-HAc缓冲液 缓冲液 冰醋酸把醋酸钠溶液的pH调到 。用来中和 冰醋酸把醋酸钠溶液的 调到4.8。用来中和 调到 NaOH变性液,使DNA复性。 变性液, 复性。 变性液 复性 ⑥ 酚-氯仿 氯仿 蛋白变性剂,进一步抽提 蛋白变性剂,进一步抽提DNA溶液中的蛋白 溶液中的蛋白 质,使蛋白质沉淀。 使蛋白质沉淀。 苯酚用来抽提蛋白,氯仿用来抽提苯酚。 苯酚用来抽提蛋白,氯仿用来抽提苯酚。
⑨ TE缓冲液 缓冲液 DNA保存液。 保存液 保存 配制。 由Tris-HCl和EDTA配制。 和 配制 Tris-HCl不含金属离子(不同于磷酸缓冲液或硼 不含金属离子( 不含金属离子 酸缓冲液),有利于以后操作; 酸缓冲液),有利于以后操作; ),有利于以后操作 EDTA抑制 抑制DNA酶,防止 被酶降解。 抑制 酶 防止DNA被酶降解。 被酶降解
第二章 核酸的基本操作技术
本章的主要内容
• 核酸的提取 • 核酸的检测与保存 • 核酸的凝胶电泳 • 核酸的分子杂交
第一节 核酸的提取
一、DNA的提取 的提取 二、RNA的提取 的提取
一、 DNA的提取 的提取
DNA是生物的主要遗传物质,因而 是生物的主要遗传物质,因而DNA的制 是生物的主要遗传物质 的制 备是基因工程的基础。由于生物形式的多样性 备是基因工程的基础。 细菌、植物、动物),以及DNA在生物体中存 ),以及 (细菌、植物、动物),以及 在生物体中存 在形式的差异(染色体、线性 ),因 在形式的差异(染色体、线性DNA、质粒),因 、质粒), 制备DNA的过程和方法也不相同。 的过程和方法也不相同。 此,制备 的过程和方法也不相同
1、原理 、
DNA双链 双链
变性 强碱 中性 复性 DNA单链 DNA单链
闭合环状的质粒DNA,在变性后不会 , 闭合环状的质粒 分离,复性快; 分离,复性快;
染色体线性 变性后双链分离, 染色体线性DNA变性后双链分离,难以 线性 变性后双链分离 复性而形成缠绕的结构,与蛋白质 ,在离心的时候沉淀下去。 沉淀下去 合物结合在一起,在离心的时候沉淀下去。
3、碱抽提法提取质粒DNA的步骤 、碱抽提法提取质粒 的步骤 第一步: 第一步:溶菌 使用“溶液Ⅰ 溶解细菌细胞壁 溶解细菌细胞壁。 使用“溶液Ⅰ”溶解细菌细胞壁。 Solution I 的配制: 的配制: 50mM葡萄糖, 葡萄糖, 葡萄糖 25mM Tris-HCl(pH8.0), , 10mM EDTA, , 4-5mg/ml溶菌酶, 溶菌酶, 溶菌酶 RNase A
⑦ 乙醇 用于沉淀 用于沉淀DNA。 沉淀 。 DNA分子以水合状态“溶于”水里, 分子以水合状态“溶于”水里, 分子以水合状态 乙醇能夺去DNA分子的水环境。 分子的水环境。 乙醇能夺去 分子的水环境 ⑧ RNase A 降解RNA渣滓。 渣滓。 降解 渣滓 以免提取后的DNA中含有小分子的 中含有小分子的RNA。 以免提取后的 中含有小分子的 。
第二步:破膜,蛋白质和DNA变性 第二步:破膜,蛋白质和 变性 溶液II 破坏细胞膜,蛋白质和DNA变性。 变性。 溶液 破坏细胞膜,蛋白质和 变性 Solution II 的配制(现用现配): 的配制(现用现配): 0.2M NaOH,1.0%SDS , 第三步:中和 第三步: 溶液III使 复性、 溶液 使DNA复性、并促使蛋白质 复性 并促使蛋白质-SDS复合物 复合物 和染色体DNA、RNA沉淀。 、 沉淀。 和染色体 沉淀 Solution III的配制: 的配制: 的配制 3M 醋酸钠(用冰醋酸调 至4.8) 醋酸钠(用冰醋酸调pH至 )