淀粉酶的制备及活力测定
淀粉酶活力的测定方法
淀粉酶活力的测定方法淀粉酶是一类能够催化淀粉水解的酶,在生物体内和工业生产中都具有重要的作用。
准确测定淀粉酶的活力对于研究酶的性质、生物体的代谢过程以及相关工业应用都具有重要意义。
下面将介绍几种常见的淀粉酶活力测定方法。
一、碘淀粉比色法碘淀粉比色法是一种较为经典且常用的测定方法。
其原理是淀粉经淀粉酶水解后,剩余的淀粉与碘液反应生成蓝色复合物,颜色的深浅与剩余淀粉的量成正比。
通过比色法测定反应后溶液的吸光度,即可计算出淀粉酶的活力。
具体操作步骤如下:首先,准备一系列含有不同浓度淀粉溶液的试管,并向其中加入适量的淀粉酶溶液,在一定的温度和 pH 条件下反应一段时间。
然后,迅速向各试管中加入碘液,使反应终止。
最后,使用分光光度计在特定波长下测定各试管溶液的吸光度。
根据事先绘制的标准曲线,将吸光度值转换为剩余淀粉的浓度,从而计算出淀粉酶水解淀粉的量,进而得出淀粉酶的活力。
这种方法的优点是操作相对简单、成本较低,但缺点是灵敏度相对较低,对于低活力的淀粉酶测定可能不够准确。
二、DNS 法(3,5-二硝基水杨酸法)DNS 法是另一种常用的测定淀粉酶活力的方法。
其原理是淀粉在淀粉酶的作用下水解为还原糖,还原糖能与 3,5-二硝基水杨酸在碱性条件下共热,被还原成棕红色的氨基化合物。
在一定范围内,还原糖的生成量与淀粉酶的活力成正比,通过比色测定棕红色物质的吸光度,即可计算出淀粉酶的活力。
操作过程如下:将淀粉溶液与淀粉酶溶液在适宜条件下反应一定时间后,取出适量反应液,加入DNS 试剂,在沸水浴中加热一段时间,使反应充分进行。
冷却后,使用分光光度计测定溶液在特定波长下的吸光度。
与碘淀粉比色法相比,DNS 法的灵敏度较高,能够更准确地测定低活力的淀粉酶,但操作过程相对复杂一些。
三、斐林试剂法斐林试剂法也是基于淀粉水解产生还原糖的原理。
斐林试剂由硫酸铜和酒石酸钾钠的氢氧化钠溶液组成,还原糖能将斐林试剂中的二价铜离子还原为一价铜离子,生成砖红色的氧化亚铜沉淀。
[总结]淀粉酶活力的测定方法
淀粉酶活力的测定方法淀粉酶主要包括α-淀粉酶、β-淀粉酶、葡萄糖淀粉酶和R-酶,它们广泛存在于动物、植物和微生物界。
不同来源的淀粉酶,性质有所不同。
植物中最重要的淀粉酶是α -淀粉酶和β-淀粉酶。
α -淀粉酶随机作用于直链淀粉和支链淀粉的直链部分α -1,4糖苷键,单独使用时最终生成寡聚葡萄糖、α-极限糊精和少量葡萄糖。
Ca 2+能使α-淀粉酶活化和稳定,它比较耐热但不耐酸,pH 3.6 以下可使其钝化。
β-淀粉酶从非还原端作用于α-1,4糖苷键,遇到支链淀粉的α -1,6键时停止。
单独作用时产物为麦芽糖和β-极限糊精。
β-淀粉酶是一种巯基酶,不需要Ca 2+ 及Cl —等辅助因子,最适pH偏酸,与α -淀粉酶相反,它不耐热但觉耐酸,60 ℃保温15min 可使其钝化。
通常提取液中α -淀粉酶和β-淀粉酶同时存在。
可以先测定(α + β)淀粉酶总活力,然后在60 ℃加热15 min ,钝化β-淀粉酶,测出α -淀粉酶活力,用总活力减去α - 淀粉酶活力,就可求出β- 淀粉酶活力。
淀粉酶活力大小可用其作用于淀粉生成的还原糖与3,5- 二硝基水杨酸的显色反应来测定。
还原糖作用于黄色的3,5- 二硝基水杨酸生成棕红色的3- 氨基-5- 硝基水杨酸,生成物颜色的深浅与还原糖的量成正比。
以每克样品在一定时间内生成的还原糖(麦芽糖)量表示酶活大小。
1 酶活测定方法(1)标准曲线的制作(见下表)①取7支20 ml具塞刻度试管,预先洁净灭菌干燥,编号,按表加入试剂。
②摇匀,至沸水浴中煮沸5 min。
取出后流水冷却,加蒸馏水定容至20 ml,以1号管作为空白调零点,在520 nm的波长下比色测定吸光度值。
并建立通过吸光度值求麦芽糖含量的回归方程。
表1 标准麦芽糖溶液成分表及OD测定值试剂 1 2 3 4 5 6 7 麦芽糖标准液(mL)0 0.2 0.6 1.0 1.4 1.8 2.0 H2O(mL) 2.0 1.8 1.4 1.0 0.6 0.2 0 3,5-二硝基水杨酸(mL) 2.0 2.0 2.0 2.0 2.0 2.0 2.0 麦芽糖含量(mg)0 0.2 0.6 1.0 1.4 1.8 2.0 OD520(2)粗酶液淀粉酶活力测定①待测粗酶液的制备:发酵24 h后发酵液4000 r/ min离心10 min,去除菌体,在上清液中加入65%饱和度的硫酸铵,待硫酸铵充分溶解后于4℃盐析2h,然后5000r/min离心20min,得到初步纯化的淀粉酶。
淀粉酶的制备及活力测定
• 3、酶活力的测定:取5支干净的试管,编号,按表 进行操作
反应顺序 样品(重 复3个)
标准空白
样品空白
样品稀释液 (ml)
蒸馏水 依次加入淀粉 溶液(ml) 依次加入DNS 试剂(ml) 加入蒸馏水至 总体积(ml)
1
0 0 60℃预热5min 1.5
1
1
0
1.5
1.5
混合60℃保温30min 1.5 1.5 1.5
二、实验原理
• α -淀粉酶是内切酶,酶的作用点仅限于淀粉链的α -1,4 糖苷键,对α -1,6糖苷键不能作用,但能越过α -1,6糖 苷键,将α -1,4糖苷键随机切断成长短不一的短链糊精, 而使淀粉对碘呈蓝紫色的特异性反应逐渐变红棕色。 • 在酶解的最初阶段,α -淀粉酶对淀粉的水解速度很快,但 当水解到一定程度后,水解虽在继续进行,水解速度却变得 缓慢。该酶的最小作用底物是麦芽三糖以上的低聚糖,对麦 芽三糖的作用很弱,对麦芽糖没有水解能力。 • 枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)是当今工业酶制剂的主要生 产菌种之一,主要用于生产淀粉酶、蛋白酶和脂肪酶等。 • 本实验利用高产α -淀粉酶的枯草芽孢杆菌T2生产α -淀粉 酶用于制备淀粉水解糖。
三、材料、试剂与仪器
• 实验材料:萌发的小麦种子(芽长1厘米左右) • 仪器:722光栅分光光度计,恒温水浴锅,离心机,容量 瓶,小台秤,研钵,具塞刻度试管,试管,移液器,烧杯 • 试剂:① 1%淀粉溶液(称取1克可溶性淀粉,加入80ml蒸 馏水,加热熔解,冷却后定容至100ml); ② pH5.6的柠檬缓冲液: • A液(称取柠檬酸20.01克,溶解后定容至1L) • B液(称取柠檬酸钠29.41克,溶解后定容至1L) • 取A液5.5ml、B液14.5ml混匀即为pH5.5柠檬酸缓冲液;
淀粉酶的活力测定与制备 打印
淀粉酶的制备与活力测定基础知识淀粉酶是水解淀粉(包括糖原、糊精)中糖苷键的一类酶的统称,广泛存在于动植物和微生物中。
它是研究较多、生产最早、产量最大和应用最广的一类酶。
1.α-淀粉酶的结构目前,已对很多不同种类和来源的α-淀粉酶(黑曲霉、米根霉、人和猪胰腺、人唾液腺、大麦种子和地衣芽孢杆菌)的晶体结构进行了X-射线衍射研究,并得到了高分辨率的晶体结构图。
研究表明所有α-淀粉酶均为分子量在50ku 左右的单体,由经典的三个区域(A、B、C)组成:中心区域A由一个(β/α)8圆筒构成;区域B由一个小的β-折叠突出于β3和α3之间构成;而C-末端球型区域C则由一个Greek-key基序组成,为该酶的活性部位,负责正确识别底物并与之结合。
为保持α-淀粉酶的结构完整性和活性,至少需要一个能与之紧密结合的Ca2+,而Cl-往往是α-淀粉酶的变构激活因子,并且在所有Cl-依赖性的α-淀粉酶中,组成催化三联体的残基都是严格保守的[10]。
2.α-淀粉酶的性质早在1967年,Jones 和Varner就对小麦中α-淀粉酶的活性进行了研究[11]。
不同来源的α-淀粉酶的酶学和理化性质有一定的区别,它们的性质对在其工业应用中的应用影响也较大,在工业生产中要根据需要使用合适来源的酶,因此对淀粉酶性质的研究也显得比较重要。
2.1底物特异性α-淀粉酶和其它酶类一样,具有反应底物特异性,不同来源的淀粉酶反应底物也各不相同,通常α-淀粉酶显示出对淀粉及其衍生物有最高的特异性,这些淀粉及衍生物包括支链淀粉、直链淀粉、环糊精、糖原质和麦芽三糖等。
2.2最适 pH和最适温度反应温度和pH对酶活力影响较大,不同来源的α-淀粉酶有各自的最适作用pH和最适作用温度,通常在最适作用pH和最适作用温度条件下酶相对比较稳定,在此条件下进行反应能最大程度地发挥酶活力,提高酶反应效率。
因此,在工业应用中应了解不同的酶最适pH和最适温度,确定反应的最佳条件,最大限度地提高酶的使用效率是很重要的。
淀粉酶的制备及活力测定方案
1
2
3
2、加蒸馏水1ml
加NaOH1ml
加HCl1ml
1
2
3
3、各加可溶性淀粉溶液2ml
1
2
3
4、放入60º C热水中
5、加斐林试剂2ml
1
2
3
60º C热水
60º C热水 温度条件保持5min
60º C热水
6、煮沸1min
1 2 3
实验器材
• 1.菌种:枯草芽孢杆菌JD-32生产法 • 2.仪器:培养皿、试管、发酵罐、灭菌 锅、振荡培养箱、高速冷冻离心机
工艺流程
保藏菌种
斜面活化
摇瓶种子 培养
厚层通风 发酵
种子罐扩 大培养
粗制品 沉淀 收集滤液 过滤
烘干 抽提 麸曲
离心洗涤沉淀ຫໍສະໝຸດ 风干粉碎精制品
实验步骤
1.培养基 的制备 与灭菌
三、实验步骤
• (一)麦芽糖标准曲线的制作:取7支干净的具塞刻度试管,编号,按表(详 教材)加入试剂。摇匀,置沸水浴中煮沸5min。取出后流水冷却,加蒸馏水 定容至20ml。以1号管作为空白调零点,在540nm波长下比色测定。以麦芽 糖含量为横座标,吸光度值为纵座标,绘制标准曲线.(二)酶液制备:称取 1g萌发3天的小麦种子(芽长约1cm),置于研钵中,加少量石英砂和2ml蒸 馏水,研磨成匀浆。将匀浆倒入离心管中,用6ml蒸馏水分次将残渣洗入离心 管。提取液在室温下放置提取15~20min,每隔数min搅动1次,使其充分提 取。然后在3000rpm下离心10min,将上清液倒入100ml容量瓶中,加蒸馏水 定容至刻度,摇匀,即为淀粉酶原液。吸取上述淀粉酶原液10ml,放入50ml 容量瓶中,用蒸馏水定容至刻度,摇匀,即为淀粉酶稀释液。(三)酶活力 的测定:取6支干净的具塞刻度试管,编号,按表(详教材)进行操作。(四) 结果计算:淀粉酶活力=C×VT/(W×Vs×T)(mg/g/min)。式中,C为从标准曲 线上查得的麦芽糖含量(mg);VT为淀粉酶原液总体积(ml);Vs为反应 所用淀粉酶原液体积(ml);W为样品重量(g);t为反应时间(min)。
固定化-淀粉酶及活性测定要点
固定化-淀粉酶及活性测定要点实验六固定化α-淀粉酶及活性测定一、实验目的:学会交联法制备固定化酶的操作技术二、实验原理:制备固定化酶的方法很多,利用双功能试剂或多功能试剂在酶分子间,酶分子与惰性蛋白间,或酶分子与载体间进行交联反应,以共价键制备固定化酶的方法称为交联法,本实验即采用这种方法。
交联剂为戊二醛,载体为甲壳素。
三、实验器材:1.恒温水浴锅2.恒温振摇仪四、实验试剂1. 5%戊二醛2. 甲壳素3. 碘原液:称取碘1.1g。
碘化钾2.2g,置于小烧杯中,加10ml 蒸馏水使之溶解,然后转入容量瓶中。
再加少量的蒸馏水洗涤烧杯数次,洗涤液均转入容量瓶中,最后定容至50ml。
摇均后放于棕色试管中备用。
4. 比色稀碘液:取碘原液2ml,加碘化钾20g,再用蒸馏水定容至5000ml。
5. 2%淀粉溶液:称取2g可溶淀粉,放入小烧杯中,加少量蒸馏水做成悬浮液。
然后在搅拌下注入沸腾的蒸馏水中,继续煮沸一分钟,冷却后加蒸馏水定容至100ml。
6. pH6磷酸氢二钠——柠檬酸缓冲液:称取磷酸二氢钠(Na2HPO4.12H2O)45.23g,柠檬酸(C6H8O7.H2O)8.07g,先在烧杯中使之溶解,然后转入容量瓶中定容至1000ml。
7. 标准终点色溶液,A液:精确称取氯化钴(CoCl.6H2O)40.2493g和重洛酸钾(K2GrO7)0.4878g,用蒸馏水定容至500ml.B液::精确称取络黑T40mg,用蒸馏水定容至100ml.同时取A液40ml、B液5ml、混合后置于冰箱中待用。
混合液在15天内使用有效。
五、实验操作1. 酶液的制备:精确称取α-淀粉酶2g,先用少量40℃pH6的磷酸二氢钠——柠檬酸缓冲液溶解,溶解过程中轻轻用玻璃棒捣研。
将上层液小心倾入100ml容量瓶,沉渣部分再加入少量上述缓冲液,如此反复捣研3—4次。
最后,将溶液与残渣全部移入容量瓶中,用缓冲液先定容摇匀后,通过四层纱布过滤,溶液供测定使用。
测定淀粉酶活性的两种方法的比较研究
测定淀粉酶活性的两种方法的比较研究一、简述淀粉酶是一种能够催化淀粉分解为糖类物质的生物催化剂,其在食品工业、生物塑料生产以及医药等领域具有广泛的应用价值。
为了更好地了解和评估淀粉酶的活性,本研究将比较分析两种常用的测定淀粉酶活性的方法:碘量法和比浊法。
该方法系通过加入碘与淀粉样液来测量淀粉的水解程度,但是它无法避免一些还原性物质的干扰。
比浊法是基于酶反应产生胶体体系的形成,据此原理可测定淀粉酶活力。
本实验旨在比较这两种方法在测定淀粉酶活性时的优缺点,并分析其可能的原因,以期找到一种更为理想和高效的测定手段。
1. 淀粉酶的简介及重要性淀粉酶是一种能够催化淀粉分解为糖类物质的生物催化剂,它在食品工业、发酵工业以及生物塑料工业等领域具有广泛的应用。
淀粉酶的活性是衡量其性能的重要指标,催化效率越好。
研究淀粉酶活性的方法对于这些行业的发展具有重要意义。
淀粉酶在食品工业中扮演着关键角色。
在制作面条、饼干等食品时,需要确保食品中的淀粉得到充分分解,从而提高食品的口感和品质。
淀粉酶能够有效分解淀粉,使其转化为糖类物质,为食品提供甜味和黏性,因此它是食品工业中不可或缺的酶制剂。
淀粉酶在发酵工业中也有重要应用。
发酵工程中常用的糖化酶就是一种淀粉酶,它能够将淀粉转化为葡萄糖,为微生物提供能量和生长所需的碳源。
通过使用不同类型的淀粉酶,可以对不同种类的微生物进行定向发酵,生产出各种有用的产品,如抗生素、酶制剂等。
淀粉酶在生物塑料工业中也有潜在的应用前景。
生物可降解塑料是一种环保型的生物塑料,其降解过程需要淀粉酶的参与。
通过利用淀粉酶降解塑料中的淀粉成分,可以降低塑料对环境的污染,为实现可持续发展提供新的途径。
淀粉酶在各个领域都具有重要的应用价值。
研究淀粉酶活性的方法,对于推动相关领域的技术进步和产业发展具有重要意义。
2. 淀粉酶活性测定的方法和目的在淀粉酶活性的研究中,有多种方法可用于测定酶活力。
本部分将详细介绍两种常见的淀粉酶活性测定方法:碘量法和比色法,并阐述它们的目的。
淀粉酶活性测定实验报告
班级:植物092 姓名:徐炜佳学号:0901080223淀粉酶活性的测定一、研究背景及目的酶是高效催化有机体新陈代谢各步反应的活性蛋白,几乎所有的生化反应都离不开酶的催化,所以酶在生物体内扮演着极其重要的角色,因此对酶的研究有着非常重要的意义。
酶的活力是酶的重要参数,反映的是酶的催化能力,因此测定酶活力是研究酶的基础。
酶活力由酶活力单位表征,通过计算适宜条件下一定时间内一定量的酶催化生成产物的量得到淀粉酶是水解淀粉的糖苷键的一类酶的总称,按照其水解淀粉的作用方式,可分为α-淀粉酶和β-淀粉酶等。
α-淀粉酶和β-淀粉酶是其中最主要的两种,存在于禾谷类的种子中。
β-淀粉酶存在于休眠的种子中,而α-淀粉酶是在种子萌发过程中形成的。
α-淀粉酶活性是衡量小麦穗发芽的一个生理指标,α-淀粉酶活性低的品种抗穗发芽,反之则易穗发芽。
目前,关于α-淀粉酶活性的测定方法很多种,活力单位的定义也各不相同,国内外测定α-淀粉酶活性的方法常用的有凝胶扩散法、3,5-二硝基水杨酸比色法和降落值法。
这3种方法所用的材料分别是新鲜种子、萌动种子和面粉,获得的α-淀粉酶活性应该分别是延迟(内源)α-淀粉酶、萌动种子α-淀粉酶和后熟面粉的α-淀粉酶活性。
本实验的目的在于掌握α-淀粉酶和β-淀粉酶的提取和测定方法。
二、实验原理萌发的种子中存在两种淀粉酶,分别是α-淀粉酶和β-淀粉酶,β-淀粉酶不耐热,在高温下易钝化,而α-淀粉酶不耐酸,在pH3.6下则发生钝化。
本实验的设计利用β-淀粉酶不耐热的特性,在高温下(70℃)下处理使得β-淀粉酶钝化而测定α-淀粉酶的酶活性。
酶活性的测定是通过测定一定量的酶在一定时间内催化得到的麦芽糖的量来实现的,淀粉酶水解淀粉生成的麦芽糖,可用3,5-二硝基水杨酸试剂测定,由于麦芽糖能将后者还原生成硝基氨基水杨酸的显色基团,将其颜色的深浅与糖的含量成正比,故可求出麦芽糖的含量。
常用单位时间内生成麦芽糖的毫克数表示淀粉酶活性的大小。
淀粉酶活性测定实验报告
淀粉酶活性测定实验报告2 淀粉酶活性测定实验报告一、实验目的1. 学习使用淀粉酶活性测定方法来评估淀粉酶的活性。
2. 了解淀粉酶在不同条件下的活性变化规律。
3. 探究影响淀粉酶活性的因素。
二、实验原理淀粉酶是一种水解淀粉的酶,可将淀粉水解为糖。
淀粉酶活性的测定方法是通过测定淀粉酶作用下淀粉水解产生的糖的含量来评估淀粉酶的活性。
实验中使用碘液来检测淀粉的含量,通过比色法测定样品中碘与淀粉结合生成的淀粉-碘复合物的光吸收值,进而计算淀粉酶的活性。
三、实验步骤1. 准备工作(1)将淀粉酶溶液和淀粉溶液放置在室温下适应30分钟。
(2)调整分光光度计波长为550nm。
(3)用0.1mol/L HCl稀释0.1mol/L NaOH。
2. 样品处理(1)分别取10ml淀粉酶溶液和10ml淀粉溶液分别放入两个试管中作为对照组。
(2)取10ml淀粉酶溶液和10ml淀粉溶液混合放入一个试管中作为实验组。
(3)将试管放入37℃恒温水浴中反应10分钟。
3. 反应终止(1)将样品分别取出,加入5ml稀释后的HCl。
(2)用1%淀粉溶液稀释碘液。
(3)向每个试管中加入1ml稀释后的碘液。
4. 比色测定(1)将试管放入分光光度计中,设置波长为550nm。
(2)调零分光光度计,记录对照组和实验组的吸光度值。
5. 计算淀粉酶活性(1)计算对照组的吸光度平均值,并减去实验组的吸光度值。
(2)根据标准曲线,计算实验组中淀粉的含量。
(3)根据淀粉-碘复合物生成的酶解糖的量,计算淀粉酶的活性。
四、实验结果对照组吸光度平均值为0.3,实验组吸光度值为0.6,经过计算,实验组中淀粉的含量为2mg。
根据淀粉-碘复合物生成的酶解糖的量,计算得到淀粉酶的活性为20U。
五、实验讨论根据实验结果,淀粉酶的活性为20U。
通过对照组和实验组的吸光度值的比较,可以看出淀粉酶在实验组中得到了激活,使淀粉水解为糖的速度加快。
这表明淀粉酶在37℃的条件下具有较高的活性。
实验一α淀粉酶活力测定
颜色变化终点要照像,并多媒体型实验结果 单独标注班级和小组名提交或图片型实验结果 直接写入在实验报告书里。
[实验报告书书写要求]
1. 实验报告书的编写要参考教师提出的写作格式规范。 2. 即:题目、作者(包括同组成员)、单位(班级和组别)、
缓冲液
④
5 mL
淀粉液
20 mL
混合液
2.0 mL
⑥
酶液
0.5 mL
50mL
10 mL 溶解
煮沸
冷却 100 mL
30 s
⑦
60 s
⑤
1. 5 mL
碘液
90 s 120 s
0.5 mL
60℃ 60℃,5 min
60℃
180 s 210 s
[实验结果计算]
α-淀粉酶活力
1 g酶粉(或l mL酶液)在60℃、pH6.0条件下, 以1 h(60 min) 液化可溶性淀粉的克数(或毫克数)为1酶活 力单位,即1IU,单位为可溶性淀粉量(g) /mL·min。
实验步骤实验步骤样品测定步骤混合液缓冲液淀粉液606030min605minml20ml603005ml05mlml20ml80ml10ml50ml1000250ml150ml淀粉酶50ml溶解10ml可溶性淀粉20g煮沸冷却100ml2淀粉液淀粉酶活力淀粉酶活力ml酶液在60ph60条件下以1h60min液化可溶性淀粉的克数或毫克数为1酶活力单位即1iu单位为可溶性淀粉量gmlmin
1、在饴糖、酶法味精上的应用 淀粉浆浓度为16-17B,调PH至6.2-6.4,并加入 0.2%氯化钙(按原料重量计算),然后将淀粉酶加入淀粉浆中(每克原料用酶6-8个 单位),充分混合后,加热至85 -90℃,液化30分钟左右。 2、在啤酒生产上的应用 使用大米、玉米为辅料时先磨粉通过40目以上筛孔, 在糊化锅中调浆后加淀粉酶,加酶量在6个单位/克原料左右,在85 -90℃液化30 分钟。 3、在纺织品退浆上的应用 使用精制的液体淀粉酶作为退浆剂,适用于不耐高 温的丝绸、化纤、棉毛织品的退浆工艺,加酶量在0.2%(2000u/g)左右,在水浴 50 -80℃ 20-40分钟。 4、其它工业 一般控制在加酶量在每克淀粉6-8个酶活力单位,钙离子浓度 150ppm。 储存:本品系生物活性物质,日光、温度、湿度要引起酶失活。应防止太阳直晒, 宜放在低温干燥处。
淀粉酶活性测定实验报告-样本
专业:姓名:学号:实验报告多效唑处理对小麦种子α-淀粉酶活力的影响一、实验原理萌发的种子中存在两种淀粉酶,分别是α-淀粉酶和β-淀粉酶,β-淀粉酶不耐热,在高温下易钝化,而α-淀粉酶不耐酸,在pH3.6下则发生钝化。
本实验的设计利用β-淀粉酶不耐热的特性,在高温下(70℃)下处理使得β-淀粉酶钝化而测定α-淀粉酶的酶活性。
酶活性的测定是通过测定一定量的酶在一定时间内催化得到的麦芽糖的量来实现的,麦芽糖的浓度利用比色法测得。
二、材料、试剂与仪器材料:萌发3d的小麦种子。
试剂:1%淀粉溶液、蒸馏水、3,5-二硝基水杨酸溶液、麦芽糖标准液、1M NaOH。
仪器:分光光度计、水浴锅、离心机、天平;容量瓶、移液管、刻度试管、研钵等。
三、实验方法1.麦芽糖标准曲线的制作取7支干净的具塞刻度试管,按下表加入试剂摇匀,置沸水浴中煮沸5 min,取出后流水冷却,加蒸馏水定容至10 mL。
用分光光度计测定吸光值A540。
以麦芽糖含量为横坐标,吸光度值A540为纵坐标,绘制标准曲线。
表 1 麦芽糖标准曲线制备方法试剂试管编号1 2 3 4 5 6 71mg/mL麦芽糖标准液(mL)0 0.1 0.3 0.5 0.7 0.9 1.0 蒸馏水(mL) 1.0 0.9 0.7 0.5 0.3 0.1 0 3, 5-二硝基水杨酸(mL) 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0 麦芽糖浓度(mg/mL)0 0.1 0.3 0.5 0.7 0.9 1.02. 酶液制备称取1 g萌发3天的小麦种子,置于研钵中,加少量的石英砂和2 mL 蒸馏水,研磨至匀浆。
将匀浆倒入离心管中,用6mL 蒸馏水分3次将残渣洗入离心管。
提取液在室温下放置提取20 min,每隔3分钟搅动1次,使其充分提取。
然后再3000 r/min下离心10 min,将上清液倒入100 mL容量瓶中,加蒸馏水定容至100 mL,摇匀,即为淀粉酶原液。
3. 酶活力的测定变化取2支干净的具塞刻度试管,按表2加入试剂并进行相应处理,用分光光度计测定吸光值A540。
淀粉酶活性测定实验报告
班级:植物092 姓名:徐炜佳学号:0901080223淀粉酶活性的测定一、研究背景及目的酶是高效催化有机体新陈代谢各步反应的活性蛋白,几乎所有的生化反应都离不开酶的催化,所以酶在生物体内扮演着极其重要的角色,因此对酶的研究有着非常重要的意义。
酶的活力是酶的重要参数,反映的是酶的催化能力,因此测定酶活力是研究酶的基础。
酶活力由酶活力单位表征,通过计算适宜条件下一定时间内一定量的酶催化生成产物的量得到淀粉酶是水解淀粉的糖苷键的一类酶的总称,按照其水解淀粉的作用方式,可分为α-淀粉酶和β-淀粉酶等。
α-淀粉酶和β-淀粉酶是其中最主要的两种,存在于禾谷类的种子中。
β-淀粉酶存在于休眠的种子中,而α-淀粉酶是在种子萌发过程中形成的。
α-淀粉酶活性是衡量小麦穗发芽的一个生理指标,α-淀粉酶活性低的品种抗穗发芽,反之则易穗发芽。
目前,关于α-淀粉酶活性的测定方法很多种,活力单位的定义也各不相同,国内外测定α-淀粉酶活性的方法常用的有凝胶扩散法、3 ,5-二硝基水杨酸比色法和降落值法。
这3 种方法所用的材料分别是新鲜种子、萌动种子和面粉,获得的α-淀粉酶活性应该分别是延二、实验原理萌发的种子中存在两种淀粉酶,分别是α-淀粉酶和β-淀粉酶,β-淀粉酶不耐热,在高温下易钝化,而α-淀粉酶不耐酸,在pH3.6下则发生钝化。
本实验的设计利用β-淀粉酶不耐热的特性,在高温下(70℃)下处理使得β-淀粉酶钝化而测定α-淀粉酶的酶活性。
酶活性的测定是通过测定一定量的酶在一定时间内催化得到的麦芽糖的量来实现的,淀粉酶水解淀粉生成的麦芽糖,可用3,5-二硝基水杨酸试剂测定,由于麦芽糖能将后者还原生成硝基氨基水杨酸的显色基团,将其颜色的深浅与糖的含量成正比,故可求出麦芽糖的含量。
常用单位时间内生成麦芽糖的毫克数表示淀粉酶活性的大小。
然后利用同样的原理测得两种淀粉酶的总活性。
实验中为了消除非酶促反应引起的麦芽糖的生成带来的误差,每组实验都做了相应的对照实验,在最终计算酶的活性时以测量组的值减去对照组的值加以校正。
淀粉酶活性测定实验报告
实验七淀粉酶活性的测定一、研究背景及目的酶是高效催化有机体新陈代谢各步反应的活性蛋白,几乎所有的生化反应都离不开酶的催化,所以酶在生物体内扮演着极其重要的角色,因此对酶的研究有着非常重要的意义。
酶的活力是酶的重要参数,反映的是酶的催化能力,因此测定酶活力是研究酶的基础。
二、实验原理萌发的种子中存在两种淀粉酶,分别是α-淀粉酶和β-淀粉酶,β-淀粉酶不耐热,在高温下易钝化,而α-淀粉酶不耐酸,在pH3.6下则发生钝化。
本实验的设计利用β-淀粉酶不耐热的特性,在高温下(70℃)下处理使得β-淀粉酶钝化而测定α-淀粉酶的酶活性。
酶活性的测定是通过测定一定量的酶在一定时间内催化得到的麦芽糖的量来实现的,淀粉酶水解淀粉生成的麦芽糖,可用3,5-二硝基水杨酸试剂测定,由于麦芽糖能将后者还原生成硝基氨基水杨酸的显色基团,将其颜色的深浅与糖的含量成正比,故可求出麦芽糖的含量。
常用单位时间内生成麦芽糖的毫克数表示淀粉酶活性的大小。
然后利用同样的原理测得两种淀粉酶的总活性。
实验中为了消除非酶促反应引起的麦芽糖的生成带来的误差,每组实验都做了相应的对照实验,在最终计算酶的活性时以测量组的值减去对照组的值加以校正。
在实验中要严格控制温度及时间,以减小误差。
并且在酶的作用过程中,四支测定管及空白管不要混淆。
三、材料、试剂与仪器1、实验材料:萌发的小麦种子(芽长1厘米左右)2、仪器:722光栅分光光度计:DK-S24型电热恒温水浴锅:离心机:3、试剂:①1%淀粉溶液(称取1克可溶性淀粉,加入80ml蒸馏水,加热熔解,冷却后定容至100ml);②pH5.6的柠檬缓冲液:A液(称取柠檬酸20.01克,溶解后定容至1L)B液(称取柠檬酸钠29.41克,溶解后定容至1L)取A液5.5ml、B液14.5ml混匀即为pH5.5柠檬酸缓冲液;③3,5-二硝基水杨酸溶液(称取3,5-二硝基水杨酸1.00克,溶于20ml 1M氢氧化钠中,加入50ml蒸馏水,再加入30克酒石酸钠,待溶解后,用蒸馏水稀释至100ml,盖紧瓶盖保存);④麦芽糖标准液(称取0.100克麦芽糖,溶于少量蒸馏水中,小心移入100ml容量瓶中定容);⑤0.4M NaOH四、实验步骤1. 酶液的制备称取2克萌发的小麦种子与研钵中,加少量石英砂,研磨至匀浆,转移到50ml容量瓶中用蒸馏水定容至刻度,混匀后在室温下放置,每隔数分钟振荡一次,提取15-20分钟,于3500转/分离心15分钟,取上清液备用。
酶活力的测定方法
实验四α-淀粉酶实验活力的测定方法一、实验目的了解并掌握淀粉酶的测定步骤,掌握其方法。
二、实验原理液化型淀粉酶(α-淀粉酶)能催化水解淀粉,生成分子较小的糊精和少量的麦芽糖及葡萄糖。
本实验利用呈色反应来测定液化型淀粉酶水解淀粉作用的速度,从而测定淀粉酶活力的大小。
三、器材和试剂1.器材多孔白瓷斑、50ml三角瓶或大试管(25mm*200mm)、恒温水浴箱、烧杯、容量瓶、漏斗、吸管、纱布。
2.试剂(1)原碘液称取I211g、KI22g,加少量水完全溶解后,再定容至500ml,于棕色瓶中保存。
(2)稀碘液吸取原碘液2ml,加入KI20g,用蒸馏水溶解定容至500ml,于棕色瓶中保存。
(3)标准“终点色”溶液。
①准确称取氯化钴40.2439g、重铬酸钾0.4878g,加水溶解并定容至500ml。
②0.04%铬黑T溶液。
准确称取铬黑T40mg,加水溶解定容至100ml。
取①液80ml与②液10ml混合,即为标准色。
冰箱保存。
(4)2%可溶性淀粉称取烘干可溶性淀粉2.00g,先一少许蒸馏水混匀,倾入80ml沸水中。
继续煮沸至透明,冷却后用水定容至100ml。
此溶液需要新鲜配制。
(5)0.02mol/L、pH6.0磷酸氢二钠溶液称取Na2HPO4·12H2O45.23g和C6H8O7·H2O8.07g,用蒸馏水溶解定溶至1000ml,配好后以酸度计或精密试纸校正pH。
(6)α-淀粉酶粉。
四、操作步骤1.待测酶液的制备(1)精密称取酶粉1-2g,放入小烧杯中。
(2)用少量的40℃0.02mol/L(恒温水浴箱中进行) pH6.0的磷酸氢二盐-柠檬酸缓冲液溶解,并用玻璃棒捣研3-4次,最后全部转入容量瓶中,用缓冲溶液定容至刻度,摇匀,通过四层纱布过滤,滤液供测定用。
(如为液体样品,可直接过滤,取一定量滤液入容量瓶中,加入缓冲溶液稀释至刻度,摇匀,备用。
)2.测定(1)将“标准色”溶液滴于白瓷板的左上角空穴内,作为比较终点色的标准。
淀粉酶活力的测定
5 min时刻还原糖mg数 0 min时刻还原糖mg数
二者相减,计算酶活力。 1 U=1 mg 还原糖/min·mL 酶*稀释倍数
本实验中两次加入NaOH溶液的意义是什么?
2
在测定酶活力时应注意哪些反应条件?为什么?
1
七.思考题
01
三种酶活力大小顺序是怎样,为什么是这样?
实验七 淀粉酶活力的测定
单击此处添加副标题
202X/XX/XX
汇报人姓名
一、实验目的
掌握测定淀粉酶活力的原理和基本方法
202X/XX/XX
汇报人姓名
二、实验原理
酶是一种具有高度专一性的催化剂。其催化能力的大小用酶的活力来表示。酶活力也称酶活性,是以酶在最适温度、最适pH等条件下,催化一定的化学反应的初速度来表示。
02
酶液的稀释倍数是否要改变。
03
计算酶液的总活力、回收率。
八、分析
试管排列顺序
装约20 mL淀粉溶液,标记,转至37℃水浴锅中
因淀粉中含有少量还原糖,某些溶液有色素、杂质,需查看酶不水解淀粉的情况
37 ℃
室温
实验编号 操作
0号管
粗酶液 (1)
盐析液 (2)
脱盐液 (3)
0时刻
5min时刻
0时刻
5min时刻
0时刻
5min时刻
B1
B1’
F1
F1’
B2
本实验是以一定量的α-淀粉酶液,于37 ℃ 、pH6.8的条件下,在一定的初始作用时间内将淀粉转化为还原糖,然后通过与DNS试剂作用,比色测定求得还原糖的生成量,从而计算出酶反应的初速度,即酶的活力
01
项目二-淀粉酶的制备及活力测定
五、实验结果
编号 吸光值 计算用的吸光值
I-1 0.022 0
I-2 0.047 0.025
I-3 0.115 0.093
(三)α-淀粉酶活力测定: ① 取试管3支 ② 于每管中各加入酶液1mL,在70℃±0.5℃恒温 水浴中准确加热15min,钝化β-淀粉酶。取出 后迅速用流水冷却。 ③ 在对照管中加入4mL0.4mol/L氢氧化钠。 ④ 在4支试管中各加入1mLpH5.6柠檬酸缓冲液。 ⑤ 将4支试管置于恒温水浴中,40℃±0.5℃保温 15min,再向各管分别加入40℃下预热的1%淀 粉液2mL,摇匀,立即放入40℃恒温水浴准确计 时保温5min。取出后向测定管迅速加入 4mL0.4mol/L氢氧化钠,终止酶活动,准备测糖。
(一)麦芽糖标准曲线的制作:取7支干净 的具塞刻度试管,编号,按表加入试剂。 摇匀,置沸水浴中煮沸5min。取出后流水 冷却,加蒸馏水定容至25ml。以1号管作 为空白调零点,在520nm波长下比色测定, 记录吸光度。以麦芽糖含量为横坐标,吸 光度值为纵坐标,绘制标准曲线。
管号 麦芽糖 标准液 蒸馏水 麦芽糖 含量 3,5二硝基 水杨酸
淀粉酶的制备及活力测定
指导老师:
一、淀粉酶
• 淀粉酶是水解淀粉和糖原的酶类总称,通 常通过淀粉酶催化水解织物上的淀粉浆料, 由于淀粉酶的高效性及专一性,酶退浆的 退浆率高,退浆快,污染少,产品比酸法、 碱法更柔软,且不损伤纤维。淀粉酶的种 类很多,根据织物不同,设备组合不同, 工艺流程也不同,目前所用的退浆方法有 浸渍法、堆置法、卷染法、连续洗等,由 于淀粉酶退浆机械作用小,水的用量少, 可以在低温条件下达到退浆效果,具有鲜 明的环保特色。
操作项目 I-1 淀粉酶原液 钝化β-淀粉 酶 3,5-二硝基 水杨酸 2.0 1.0
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( 4 ) 1 % 淀 粉 溶 液 : 称 取 1 g 淀 粉 溶 于
100mL0.1mol/L pH5.6的柠檬酸缓冲液中。
( 5 )
0.4M NaOH
实训步骤
1 、称取 1g 萌发 3 天的小麦种子,置于
研钵中。 2. 加入少量的石英砂和 2mL 的蒸馏水, 研磨匀浆。 3. 将匀浆倒入离心管中,用 6mL 蒸馏 水分次将残渣洗入离心管。提取液在 室温下放置提取 15 至 20 分钟。每隔数 分钟搅动一次,使其充分提取。
[3] 何国庆 , 丁立孝 . 食品酶学 . 北京 : 化学工业出版社 2009 [4] 周晓云编著.酶技术.北京:石油工业出版社,1995 [5] 罗贵民.酶工程.北京:化学工业出版社,2003 [6] /question/266186296.htm l
实训原理:
淀粉酶活力的大小与产生的还原糖的量成正比。用标准浓度 的麦芽糖溶液制作标准曲线,用比色法测定淀粉酶作用于淀 粉后生成的还原糖的量,以单位重量样品在一定时间内生成 的麦芽糖的量表示酶活力。
淀粉酶存在于几乎所有植物中,特别是萌发后的禾谷类种子, 淀粉酶活力最强,其中主要是α- 淀粉酶和β- 淀粉酶。两种 淀粉酶特性不同,α - 淀粉酶不耐酸,在pH3.6 以下迅速钝化。 β-淀粉酶不耐热,在70℃15min钝化。
( 3 )如果条件允许,各实验小组可采用不同材料,
参考文献:
[1] Gardner H W.Recent investigations into the lip oxygenase pathway of plants.Biochem Biophysical Ac ta.1991 [2] 莎娜,赵立超,陈永泉.α-淀粉酶对甘薯果脯废糖液澄 清效果的研究
项目二 淀粉酶的制备及活力测定
姓名:张婉月
班级:生物制药1311 学号:2013040829
组别:第2组
指导老师:彭加平 韦平和
目录
背景知识
实训原理
实验材料及仪器 实训步骤 注意事项 参考文献
背景知识
淀粉是植物最主要的贮藏多糖,也是人和动物的重要食物 和发酵工业的基本原料。淀粉经淀粉酶作用后生成葡萄糖、 麦芽糖等小分子物质而被机体利用。 淀粉酶属于水解酶类,是催化淀粉、糖原、糊精中糖苷键 水解的一类酶的统称。此类酶广泛存在于动植物和微生物 中。根据对淀粉的作用方式不同,可将淀粉酶分为α-淀粉 酶、β-淀粉酶、葡萄糖淀粉酶、脱支酶。
实验材料及仪器
1、材料 萌发的小麦(或稻谷)种子(芽长约
1cm)。 2、仪器设备 分光光度计;离心机;恒温水浴 (37℃,70℃,100℃);具塞刻度试 管;刻度吸管;100mL容量瓶2个; 25mL比色管15支;试管8支;电子天平; 研钵。
试剂及配制
(1)标准麦芽糖溶液(1mg/mL):精确称
3、α-淀粉酶活力测定:
① ②
取试管3支 于每管中各加入酶液1mL,在70℃±0.5℃恒温水 浴中准确加热15min,钝化β-淀粉酶。取出后迅 速用流水冷却。 在对照管中加入4mL0.4mol/L氢氧化钠。 在4支试管中各加入1mLpH5.6柠檬酸缓冲液。
③ ④
⑤
将 4 支试管置于恒温水浴中, 40 ℃± 0.5 ℃保温 15min,再向各管分别加入40℃下预热的1%淀粉液 2mL,摇匀,立即放入40℃恒温水浴准确计时保温 5min。取出后向测定管迅速加入4mL0.4mol/L氢氧 化钠,终止酶活动,准备测糖。
操作项目 I-1 淀粉酶原液 钝化β-淀粉酶 3,5-二硝基水杨 酸 预保温 1%淀粉溶液 2.0 1.0
α-淀粉酶活力测定 I-2 1.0 置70℃水浴15min,冷却 0 0 I-3 1.0
将各试管和淀粉溶液置于40℃恒温水浴中保温10min 1.0 1.0 1.0
保温
3,5-二硝基水杨 酸 0
2 活性计算
酶活力单位定义:在60℃、PH5.6条件下,每小时从2%的 可溶性淀粉溶液中释放出1mg尔麦芽糖的酶量定义为1个酶 活力单位(U) 淀粉酶活性U按下式计算: U = U = K×(A-A0)/S×(30÷60)×180×F 其中:U——样品淀粉酶活性,U/ml; K——标准曲线斜率; F——样品溶液反应前的总量,ml; S——样品测试量;表1中S=1ml; 60——1小时为60min; 30——反应时间,min。
取100mg麦芽糖,用蒸馏水溶解并定容至100mL;
(2)3,5-二硝基水杨酸试剂:精确称
取1g3,5-二硝基水杨酸1g,溶于20mL1mol/L NaOH溶液中, 加入50mL蒸馏水,再加入30g酒石酸钾钠,待溶解后用蒸馏 水稀释至100mL。盖紧瓶塞,勿使 CO2 进入。若溶液混浊可 过滤后使用;
α
β - 淀粉酶从非还原端作用于α -1,4 糖苷键,遇到支
链淀粉的α -1,6 键时停止。单独作用时产物为麦芽 糖和β-极限糊精。β-淀粉酶是一种巯基酶,不需要 Ca 2+ 及 Cl —等辅助因子,最适pH偏酸,与α -淀 粉酶相反,它不耐热但觉耐酸,60 ℃保温15min可使 其钝化。
α-淀粉酶活力测定常用的方法
凝胶扩散法
降落值法
快速、省时、重现性好、 消耗的材料多,间接测 平行性好、消耗的药品 定α -淀粉酶活性大小 少,适宜于测量大量样 品
α-淀粉酶的工业应用
焙烤工业 淀粉工业 啤酒酿造 酒精工业 纺织退浆 造纸 清洁剂
实训原理:
淀粉经淀粉酶作用后生成葡萄糖、麦芽
糖等小分子物质从而被机体利用。淀粉 酶主要包括α - 淀粉酶和β - 淀粉酶两种。 α-淀粉酶可随机作用于淀粉中的α-1, 4- 糖苷键,生成葡萄糖、麦芽糖、麦芽 三糖、糊精等还原糖,同时使淀粉的黏 度降低,因此又称为液化酶。β-淀粉酶 可从淀粉的非还原末端进行水解,每次 水解下一分子麦芽糖,又被称为糖化酶。
测定方法 DNS 优点 缺点 灵敏、准确、精确度高, 测定步骤较繁,不便分 适宜精确测量小样品 析大量样品,测定范围 α -淀粉酶活性大小 较窄 简便、快速、省时、省 力,消耗材料和药品较 少,不需要特殊仪器,测 定范围较宽 边界不清晰,灵敏度与 准确度较低,不适宜精 确测量α -淀粉酶活性 的大小
在40℃恒温水浴中保温5min
2.0 2.0
4.淀粉酶总活力测定
取酶液5ml,用蒸馏水稀释至1000ml,
为稀释酶液。另取 4 支试管编号, 2 支 为对照,2支为测定管。然后加入稀释 酶液1ml。在对照管中加入4ml 0.4mol/L 氢氧化钠。 4 支试管中加入 1mlpH5.6 柠檬酸钠缓冲液。以下步骤 重复α -淀粉酶活力测定⑤步的操作, 同样准备测糖。
W为样品质量,g;
T为反应时间,min。
注意事项:
( 1 )样品提取液的定容体积和酶液稀释倍数可根
据不同材料酶活性的大小而定。
( 2 )为了确保酶促反应时间的准确性,在进行保
温这一步骤时,可以将各试管每隔一定时间依次放 入恒温水浴,准确记录时间,到达5min时取出试管, 立即加入3,5-二硝基水杨酸以终止酶反应,以便尽 量减小因各试管保温时间不同而引起的误差。同时 恒温水浴温度变化应不超过±0.5℃。 例如萌发1d、2d、3d、4d的小麦种子,比较测定结 果,以了解萌发过程中这两种淀粉酶活性的变化。
酶的活力是酶的重要参数,反映的是酶的催化能力,
因此测定酶活力是研究酶的基础。 -淀粉酶随机作用于直链淀粉和支链淀粉的直链部 分α -1,4 糖苷键,单独使用时最终生成寡聚葡萄糖、 α - 极限糊精和少量葡萄糖。 Ca 2+能使α -淀粉酶活 化和稳定,它比较耐热但不耐酸, pH 3.6 以下可使 其钝化。
试剂及配制
(3) 0.1mol/L pH5.6的柠檬酸缓冲液:
A液(0.1mol/L 柠檬酸):称取C6H8O7.H2O 用蒸馏水溶解并定容至1L;
21.01g,
B 液( 0.1mol/L 柠檬酸钠):称取 Na3C6H5O7.2H2O 29.41g,用蒸馏水溶解并定容至1L。 取A液13.7mL与B液26.3mL混匀,即为0.1mol/L pH5.6的柠 檬酸缓冲液;
2、淀粉酶液的制备
称取 1g 萌发 3 天的小麦种子(芽长约 1cm),置于研钵中, 加入少量石英砂和 2mL 蒸馏水,研磨匀浆。将匀浆倒入离 心管中,用 6mL 蒸馏水分次将残渣洗入离心管。提取液在 室温下放置提取15~20min,每隔数分钟搅动1次,使其充 分提取。然后在 3 000r/min 转速下离心 10min,将上清液 倒入 100mL 容量瓶中,加蒸馏水定容至刻度,摇匀,即为 淀粉酶原液,用于α-淀粉酶活力测定。 吸取上述淀粉酶原液10mL,放入50mL容量瓶中,用蒸馏水 定容至刻度,摇匀,即为淀粉酶稀释液,用于淀粉酶总活 力的测定。
谢谢观看!!!
麦芽糖标 准液(mL) 蒸馏水 (mL)
麦芽糖含 量(mg)
3,5-二硝基 水杨酸(mL)
0 2.0
0 2.0
0.2 1.8
0.2 2.0
0.6 1.4
0.6 2.0
1.0 1.0
1.0 2.0
1.4 0.6
1.4 2.0
1.8 0.2
1.8 2.0
2.0 0
2.0 2.0
摇匀,置沸水浴中煮沸5min。取出后流水冷却,加馏水定 容至20mL。以1号管作为空白调零点,在520nm波长下比色 测定吸光度值。以麦芽糖含量为横坐标,光密度为纵坐标, 绘制标准曲线。
4.
然后在 3000r/min 速下离心 10 分钟。 5. 将上清液过滤,倒入 100mL 容量瓶 中,加蒸馏水定容至刻度,摇匀,即 制得α -淀粉酶原液。装入试剂瓶中, 贴标签,保存于低温冰箱中,为以后 的实验使用。ຫໍສະໝຸດ 1、麦芽糖标注曲线的制作