设计引物软件使用方法及个人体会
引物设计心得、Primer5.0 使用
引物设计、选择核酸内切酶、酶切位点之Primer5.0使用下面以目的基因CD63 为例,介绍一下真核表达载体PcDNA3.1(+)-CD63的构建过程1 cd63基因序列的获取打开NCBI-选择输入cd63 回车找到第16条编码为 1 的打开后可见该积基因的详细信息,找到CDS(编码序列)可见其编码序列为第146到862位碱基,继续往下拉,可见基因序列,选中编码序列(146-862)复制,打开Primer 5.0(起始密码子)ATG gc ggtggaagga ggaatgaagt gtgtcaagtt181 tttgctctac gttctcctgc tggccttctg cgcctgtgca gtgggattga tcgccattgg241 tgtagcggtt caggttgtct tgaagcaggc cattacccat gagactactg ctggctcgct301 gttgcctgtg gtcatcattg cagtgggtgc cttcctcttc ctggtggcct ttgtgggctg361 ctgtggggcc tgcaaggaga actactgtct catgattaca tttgccatct tcctgtctct421 tatcatgctt gtggaggtgg ctgtggccat tgctggctat gtgtttagag accaggtgaa481 gtcagagttt aataaaagct tccagcagca gatgcagaat taccttaaag acaacaaaac541 agccactatt ttggacaaat tgcagaaaga aaataactgc tgtggagctt ctaactacac601 agactgggaa aacatccccg gcatggccaa ggacagagtc cccgattctt gctgcatcaa661 cataactgtg ggctgtggga atgatttcaa ggaatccact atccataccc agggctgcgt721 ggagactata gcaatatggc taaggaagaa catactgctg gtggctgcag cggccctggg781 cattgctttt gtggaggtct tgggaattat cttctcctgc tgtctggtga agagtattcg841 aagtggctat gaagtaatg t ag 其中 tag((UAG)终止密码子,设计引物的时候需要将其删除,因为,真核表达载体上多含有标签序列,目的基因与载体链接后,在目的基因的下游即为标签序列,如果不去除上述终止密码子,则目的基因转录的时候就会在此终止,标签序列就不会得到表达,为后续帅选阳性克隆等实验带来困难!点击 file-new-DNA sequence-将编码序列复制(ctrl V)选择 As is2 限制性内切酶的选择通过查看 PcDNA3.1(+)载体图谱,选择合适的内切酶,筛选的标准是,目的基因序列内不存在该酶的酶切位点,以及选择实验室内常用的已有的酶。
primer premier5引物设计步骤
primer premier5引物设计步骤
引物是在PCR反应中用于扩增目标DNA片段的短链寡核苷酸序列。
Primer Premier 5是一款常用的引物设计软件,以下是引物设计的一般步骤:
1. 目标序列准备:将目标DNA序列输入到Primer Premier 5软件中。
确保序列准确无误,并确定要扩增的目标区域。
2. 引物设计参数设置:根据实验需求和PCR反应条件,设置引物设计的相关参数。
包括引物长度、引物的GC含量、引物间的碱基对数目等。
3. 引物设计策略选择:根据需求选择合适的引物设计策略,如末端限制酶切位点、避免引物间的二聚体形成等。
4. 引物设计和评估:软件将自动生成多个候选引物序列,并根据一定的评估标准对其进行评估,包括引物的互补性、引物之间的二聚体形成、GC含量等。
5. 引物的选择和优化:根据评估结果选择一个或多个最合适的引物序列。
根据需要,可以对引物进行进一步优化,如修改引物长度、GC含量、碱基组成等。
6. 引物合成和实验验证:根据设计的引物序列进行引物合成,并进行PCR 实验验证引物的扩增效果和特异性。
引物设计是PCR实验中至关重要的步骤,引物的质量和合适性直接影响PCR 反应的效果。
Primer Premier 5软件提供了便捷的引物设计工具和功能,可以帮助研究人员高效地设计和评估引物序列。
《2024年利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究》范文
《利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究》篇一一、引言随着分子生物学技术的飞速发展,聚合酶链式反应(PCR)已成为实验室研究中不可或缺的技术之一。
PCR引物设计是PCR实验成功的关键步骤之一,它直接影响到PCR的特异性和效率。
因此,选择合适的引物设计工具对于科研工作者来说至关重要。
本文将介绍如何利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究。
二、PrimerPremier5.0软件简介PrimerPremier5.0是一款功能强大的引物设计软件,它能够根据用户提供的DNA序列信息,自动设计出合适的PCR引物。
该软件具有操作简便、引物设计效率高、特异性好等优点,广泛应用于分子生物学实验研究中。
三、PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的步骤1. 输入DNA序列信息:打开PrimerPremier5.0软件,将待设计的DNA序列信息输入到软件中。
2. 设置引物参数:根据实验需求,设置引物的长度、GC含量、退火温度等参数。
3. 设计引物:点击“Design Primers”按钮,PrimerPremier5.0将自动设计出符合要求的引物。
4. 评估引物:PrimerPremier5.0会给出每个引物的评估结果,包括引物的特异性、效率等。
用户可以根据评估结果选择合适的引物。
5. 输出引物信息:将选定的引物信息输出,以便进行后续的PCR实验。
四、PCR引物设计的注意事项1. 引物长度:一般来说,引物长度应在18-27bp之间,过短或过长的引物可能会影响PCR的特异性和效率。
2. GC含量:引物的GC含量应适中,一般建议在40%-60%之间,以避免因GC含量过高或过低而导致的PCR失败。
3. 退火温度:退火温度是PCR过程中非常重要的参数之一,它直接影响到引物的特异性和PCR的效率。
因此,在选择引物时,应尽量选择退火温度适中的引物。
4. 特异性:引物的特异性是PCR成功的关键因素之一,因此,在设计引物时,应尽量避免出现自我互补、错配等情况。
引物设计软件使用
3、Molecular Beacon
1 SYBR Green 法工作机理
SYBR Green 能结合到双链DNA的小沟部位
SYBR Green SYBR Green 只有和双链DNA结合后才发荧光 变性时,DNA双链分开,无荧光 复性和延伸时,形成双链DNA, SYBR Green 发荧光, 在此阶段采集荧光信号。
好不超过2℃
四 GC含量
1 GC含量一般40-60%(45-55%)
– GC含量太低导致引物Tm值较低,使用较低的退火温度不利于 提高PCR的特异性
– GC含量太高也易于引发非特异扩增。
2 避免多个重复碱基,尤其是4或超过4个的G碱基 3 上下游GC含量需相接近
五 二级结构
1 引物无回文对称结构,否则会形成发夹结构;
2.适用:常规PCR和 Real-time PCR
Primer express 3.0
1.ABI公司开发RealtimePCR仪器配套引 物设计软件
2.适用:Real-time PCR 局限性:
主要适用Taqman法。 考虑到“探针,及探 针与上下游引物的联 系”!条件限制很窄
四 实验设计及引物设计软件的选定
产物大小范围
引物长度
28对引物
引物分值 100分为满分
4 搜索结果
每对引物的信 息
双击选中一对 引物
回到主窗口 5 引物信息
引物及产物信息
是否出现 hairpin,dimer,false priming and cross
dimer
一对理想的引物应当不存在任何一种 上述结构,因此最好的情况是最下面 的分析栏没有
But …
6 引物编辑
引物编辑
Edit primer here
oligo 使用教程及心得
在正式进行引物设计前,我们首先面临的一个任务就是向Oligo程序导入模板序列,根据不同的实验情况,导入模板有三种方法:1,直接用键盘输入:a,点击file菜单中的New Sequence 浮动命令,或直接点击工具栏中的New Sequence 命令,进入序列展示窗口;b,此时即可键入DNA序列;c,如果需要的话,Oligo提供碱基回放功能,在边键入时边读出碱基,防止输入错误。
点击Edit菜单中的“Readback on”即可。
2,利用复制和粘贴:当我们序列已经作为TXT文件存在或其它oligo不能直接open 的文件格式,如word文件.html格式,这个功能就显得很有用了。
在相应文件中复制序列后在序列展示窗口粘贴,oligo会自动去除非碱基字符。
当序列输入或粘贴完成后,点击Accept/Discard菜单中的Accept浮动命令,即可进入引物设计模式。
3,如果序列已经保存为Seq格式或者FASTA,GenBank格式时,oligo就可以直接打开序列文件。
点击File菜单中的“Open”浮动命令,找到所需文件,打开即可。
进入引物设计模式后,oligo一般会弹出三个窗口,分别是6-碱基频率窗口,碱基退火温度窗口,以及序列内部碱基稳定性窗口.其中的退火温度窗是我们引物设计的主窗,其它的两个窗口则在设计过程中起辅助作用,比如6-碱基频率窗口可以使我们很直观地看到所设计引物在相应物种基因组中的出现频率,如果我们的模板是基因组DNA或混合DNA时,该信息就显得有用了,而内部稳定性窗口则可以显示引物的5’端稳定性是否稍高于3’端等。
一,普通引物对的搜索:以Mouse 4E(cDNA序列)为例。
我们的目的是以Mouse 4E(2361 bp)为模板,设计一对引物来扩增出600-800bp长的PCR产物。
1,点击“Search“菜单中的”For Primers and Probes“命令,进入引物搜索对话框;2,由于我们要设计的是一对PCR引物,因此正、负链的复选框都要选上,同时选上Compatible pairs.在Oligo默认的状态下,对此引物对的要求有:a,无二聚体;b,3’端高度特异,GC 含量有限定,d,去除错误引发引物等。
利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究
利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究引言:PCR (Polymerase Chain Reaction) 是一种广泛应用于分子生物学和基因工程领域的技术,通过引物(primers)的选择和设计,能够扩增特定的DNA片段。
PCR引物设计的质量和合理性对PCR扩增的成功与否起着至关重要的作用。
PrimerPremier5.0 是一款被广泛使用的引物设计软件,具有许多功能,可以辅助研究人员选择高质量的引物。
本文旨在研究和探讨利用PrimerPremier5.0软件进行PCR引物设计的方法和优势。
方法:1. 引物设计目标:在PCR实验中,为了获得准确和高效的扩增结果,引物设计时需要考虑以下几个因素:- 引物长度:通常情况下,引物的长度应在18到30个碱基对之间。
- GC含量:GC含量应尽量控制在40%到60%之间,过高或过低都会影响引物的特异性和扩增效率。
- 引物间的互补性:引物之间应避免互补性或三联体结构的形成,以避免非特异性扩增。
- 引物的熔解温度(Tm):引物的Tm值应接近,以确保特异性扩增。
2. PrimerPremier5.0软件的使用:- 安装并启动PrimerPremier5.0软件。
- 导入所需扩增区域的目标序列。
- 在软件中设置引物的参数,如长度、GC含量和Tm值等。
- 执行引物设计程序,软件会根据设置的参数,自动在目标序列中搜索合适的引物。
结果与讨论:通过PrimerPremier5.0软件的使用,可以高效地选择到符合设计要求的引物。
软件会根据设定的参数,自动搜索并筛选出多个候选引物。
1. 引物长度:为了确保引物能够与模板DNA进行特异性结合,通常将引物长度设定在18到30个碱基对之间。
经过软件筛选后,可得到一组长度适当的引物。
2. GC含量:合适的GC含量可以提高引物的稳定性和特异性。
软件会自动根据设定的GC含量范围,筛选出具有适当GC含量的引物。
引物设计软件
引物设计软件引物设计软件是一种用于设计DNA引物的软件工具。
引物是一段能够与目标DNA序列特异性结合的短链核酸,常用于PCR、测序和基因克隆等实验中。
引物设计软件帮助研究人员快速、高效地设计出合适的引物,提高实验成功率和结果准确性。
引物设计软件通常具有以下几个主要功能:1. 目标序列输入:研究人员可以将目标DNA序列输入到软件中。
目标序列可以是特定基因的片段、全基因组序列等。
2. 引物设计:软件会根据输入的目标序列,自动设计出合适的引物。
设计引物时,软件会考虑引物的长度、GC含量、互补性、目标序列内部二级结构等因素,以确保引物的特异性和稳定性。
3. 引物评估:设计好的引物需要经过一系列评估指标来判断其质量。
软件可以提供引物的峰值温度(Tm)、二级结构预测、互补性检测等功能,帮助研究人员评估引物的性能。
4. 引物优化:根据评估结果,软件可以提供引物优化的建议,如调整引物长度、更改引物序列等。
优化后的引物能够提高引物的特异性和扩增效率。
5. 引物存储:软件可以保存设计好的引物信息,方便后续的实验操作和数据记录。
与传统的引物设计方法相比,引物设计软件具有以下优势:1. 自动化:引物设计软件能够自动完成引物设计和评估的过程,大大节省了研究人员的时间和劳动力。
2. 准确性:软件可以通过算法和数据库的支持,从大量的引物和目标序列中筛选出最佳的引物,提高了设计的准确性和成功率。
3. 综合性:引物设计软件通常会整合多种引物设计算法和工具,提供多个引物设计方法和选项,帮助研究人员选择最适合自己实验的引物设计策略。
4. 可视化:软件通常会以图形界面的形式呈现引物设计结果,以便研究人员更直观地了解和分析设计的引物。
总之,引物设计软件是一种重要的工具,对于提高实验效率和科学研究的准确性具有重要作用。
未来随着技术的进一步发展,引物设计软件将会越来越智能化、自动化和个性化,为研究人员提供更好的设计和分析引物的体验。
primer5和Oligo结合设计引物步骤及心得
primer5和Oligo结合设计引物步骤及心得一、引物设计step by step1、在NCBI上搜索到目的基因,找到该基因的mRNA,在CDS选项中,找到编码区所在位置,在下面的origin中,Copy该编码序列作为软件查询序列的候选对象。
2、用Primer Premier5搜索引物①打开Primer Premier5,点击File-New-DNA sequence, 出现输入序列窗口,Copy目的序列在输入框内(选择As),此窗口内,序列也可以直接翻译成蛋白。
点击Primer,进入引物窗口。
②此窗口可以链接到“引物搜索”、“引物编辑”以及“搜索结果”选项,点击Search按钮,进入引物搜索框,选择“PCR primers”,“Pairs”,设定搜索区域和引物长度和产物长度。
在Search Parameters里面,可以设定相应参数。
一般若无特殊需要,参数选择默认即可,但产物长度可以适当变化,因为100~200bp的产物电泳跑得较散,所以可以选择300~500bp.③点击OK,软件即开始自动搜索引物,搜索完成后,会自动跳出结果窗口,搜索结果默认按照评分(Rating)排序,点击其中任一个搜索结果,可以在“引物窗口”中,显示出该引物的综合情况,包括上游引物和下游引物的序列和位置,引物的各种信息等。
④对于引物的序列,可以简单查看一下,避免出现下列情况:3’不要出现连续的3个碱基相连的情况,比如GGG或CCC,否则容易引起错配。
此窗口中需要着重查看的包括:Tm 应该在55~70度之间,GC%应该在45%~55%间,上游引物和下游引物的Tm值最好不要相差太多,大概在2度以下较好。
该窗口的最下面列出了两条引物的二级结构信息,包括,发卡,二聚体,引物间交叉二聚体和错误引发位置。
若按钮显示为红色,表示存在该二级结构,点击该红色按钮,即可看到相应二级结构位置图示。
最理想的引物,应该都不存在这些二级结构,即这几个按钮都显示为“None”为好。
PCR 引物设计及软件使用技巧
PCR 引物设计及软件使用技巧自从1985 年Karny Mullis 发明了聚合酶链式反应以来,PCR 技术已成为分子生物学研究中使用最多、最广泛的手段之一[1],而引物设计是PCR 技术中至关重要的一环。
使用不合适的PCR 引物容易导致实验失败:表现为扩增出目的带之外的多条带(如形成引物二聚体带),不出带或出带很弱,等等。
现在PCR 引物设计大都通过计算机软件进行。
可以直接提交模板序列到特定网页,得到设计好的引物,也可以在本地计算机上运行引物设计专业软件。
一般来说,专门进行PCR 引物设计的专业软件功能更为强大,但使用起来却不太容易。
本文将就引物设计原则及软件使用问题进行探讨。
(1)引物设计的原则引物设计有3 条基本原则:首先引物与模板的序列要紧密互补,其次引物与引物之间避免形成稳定的二聚体或发夹结构,再次引物不能在模板的非目的位点引发DNA 聚合反应(即错配)。
具体实现这3 条基本原则需要考虑到诸多因素,如引物长度(primer length),产物长度(product length),序列Tm 值(melting temperature),引物与模板形成双链的内部稳定性(internal stability, 用?G 值反映),形成引物二聚体(primer dimer)及发夹结构(duplex formation and hairpin)的能值,在错配位点(false priming site)的引发效率,引物及产物的GC 含量(composition),等等。
必要时还需对引物进行修饰,如增加限制性内切酶位点,引进突变等。
根据有关参考资料和笔者在实践中的总结,引物设计应注意如下要点:1. 引物的长度一般为15-30 bp,常用的是18-27 bp,但不应大于38,因为过长会导致其延伸温度大于74℃,不适于Taq DNA 聚合酶进行反应[2]。
2. 引物序列在模板内应当没有相似性较高,尤其是3’端相似性较高的序列,否则容易导错配。
详尽的引物设计心得及具体流程操作
详尽的引物设计⼼得及具体流程操作本⽂作者:张慧慧(长沙湘雅附⼆)本⽂系参加解螺旋段⼦⼿招募作品查看更多段⼦⼿招募详情,请回复“悬赏”1 克隆载体: 表达载体⼀般需要的是编码序列(起始密码⼦ATG到终⽌密码⼦TAA/TGA/TGA的序列),也就是NCBI的 coding sequence(CDS)。
⼀般情况是全长序列,直接取ATG开始的20bp为上游引物,TAA/ TGA/ TAG端的20bp的反向互补序列反向引物。
根据载体的酶切位点、读码框的要求在引物的5’端碱基即可。
要注意的是: ①选⽤的酶切位点在编码序列上是否存在,存在就选择其他酶切位点或者选⽤同尾酶。
②载体的标签实在插⼊序列的上游还是下游,在上游编码序列的终⽌密码就要留,在下游编码序列的终⽌密码就要去掉。
③读码框是否正确,有些酶切位点会破坏插⼊序列的读码顺序,这个时候在引物上添加碱基使其正常读码即可。
例如构建EGFP-C1-P53质粒。
① P53序列 绿⾊表⽰选取的引物位置(EGFP-C1的GFP标签在插⼊序列的上游,所以终⽌密码保留。
) 引物序列是:上游引物(与绿⾊标⽰的序列⼀致)5'-ATGGAGGAGCCGCAGTCAGA-3';下游引物(与绿⾊标⽰的序列反向互补)5'-TCAGTCTGAGTCAGGCCCTT-3' ②载体多克隆位点(MCS)分析 我选择酶的原则是价格便宜,常⽤的酶,例如XhoI/BamHI/HindIII等,这样的酶在很多载体中都会有,有时候可以通⽤。
分析p53的序列中是否有XhoI/BamHI两个酶切位点,结果是没有,那就可以放⼼的⽤这两个酶了。
于是引物可以变成 上游引物5’-CTCGAGATGGAGGAGCCGCAGTCAGA-3’(XhoI) 下游引物5’-GGATCCTCAGTCTGAGTCAGGCCCTT-3’(BamHI) 酶在发挥作⽤的时候要有个保护碱基,我认为就是给它⼀个空间让它发挥作⽤,保护碱基在百度百科可以查到,于是引物就会变成 上游引物5’-ccgCTCGAGATGGAGGAGCCGCAGTCAGA-3’ 下游引物5’-cgGGATCCTCAGTCTGAGTCAGGCCCTT-3’③读码分析 XhoI的序列CTC GAG与载体的读码框不⼀致,载体的读码是 TCT CGA GCT,当⽤XhoI/BamHI双酶切载体时,最后的CT需要插⼊序列的AT来代替,就会使插⼊的序列移码,这时候,只要在插⼊序列ATG的前⾯加CT即可,所以引物序列就变成上游引物5’-ccgCTCGAG CTATGGAGGAGCCGCAGTCAGA-3’下游引物5’-cgGGATCCTCAGTCTGAGTCAGGCCCTT-3’ 所以当你给公司发引物序列时就是上游引物5’-ccgCTCGAG CTATGGAGGAGCCGCAGTCAGA-3’下游引物5’-cgGGATCCTCAGTCTGAGTCAGGCCCTT-3’ 因为是全长序列,就表⽰引物已经定了,没有选择。
引物设计几种引物设计软件的介绍及使用_OK
11
引物编辑功能 ①
②
③ ④
按 顺 序 点 击
12
利用primer primer5.0 进行 巢Se式archPPrCimeRr 操引作后物的设计
13Biblioteka 上游引 物下游引 物
及来点 分相击 析应三 结的角 果引符
物号 序可 列出
Tm值曲线以选取72℃附 近为佳,5’到3’的下 降形状也有利于引物引 发聚合反应。
Frq曲线指标,选取引物 时,宜选用3’端Frq值 相对较低的片段。
16
17
Oligo 被认
为 是 引物 设计功能最 强大的软件, 特别是它的 Tm值预测 能力。
18
在线引物设计的站点
Primer3 Very popular primer design tool for designing primers for PCR, hybridization. Primerfinder Easy to use, free, online primer design program MethPrimer A free online program for designing primers for methylation specific PCR (MSP) and bisulfite sequencing PCR. Primo Primo online is a friendly PCR primer design tool. It reduces PCR noise by lowering the probability of random primering. Batch mode allows designing for multiple sequences. Users can also calculate the melting temperature using the nearest neighbor model.
《2024年PCR引物设计及软件使用技巧》范文
《PCR引物设计及软件使用技巧》篇一一、引言聚合酶链式反应(PCR)是现代生物学研究中常用的一种技术,而引物设计则是PCR反应成功的关键。
本文将详细介绍PCR 引物设计的基本原理、方法和注意事项,同时介绍几款常用的引物设计软件及其使用技巧。
二、PCR引物设计的基本原理和方法1. 引物设计的基本原理PCR引物是一段人工合成的寡核苷酸序列,作为PCR反应的起始点。
引物设计的核心思想是寻找合适的序列,使得引物能够有效地与模板DNA结合,从而在PCR反应中扩增出目标DNA 片段。
2. 引物设计的方法(1)选择合适的模板DNA:根据研究目的选择合适的模板DNA,确保其包含目标DNA片段。
(2)确定引物位置:根据目标DNA片段的序列信息,确定引物的位置。
通常,引物应位于目标DNA片段的两侧,且应避免位于重复序列或复杂区域。
(3)确定引物长度和碱基组成:引物的长度一般在18-25bp 之间,GC含量应适中,且碱基组成应具有随机性,以增加引物的特异性。
(4)避免形成二级结构:引物序列中应避免形成发夹结构、二聚体等二级结构,以免影响PCR反应的进行。
(5)设计内外引物:为了提高PCR反应的特异性和灵敏度,常需要设计内外两对引物。
内引物位于目标DNA片段内部,用于提高扩增的准确性;外引物则用于起始PCR反应。
三、PCR引物设计软件及使用技巧1. Oligo软件Oligo是一款常用的PCR引物设计软件,具有操作简便、功能强大等特点。
使用Oligo进行引物设计时,需注意以下几点:(1)输入目标DNA序列:将目标DNA序列导入Oligo软件中。
(2)设置参数:根据需要设置引物长度、GC含量、退火温度等参数。
(3)寻找引物:软件将自动在目标DNA序列中寻找符合条件的引物。
(4)评估引物:对找到的引物进行评估,包括二级结构预测、特异性分析等。
(5)保存并使用引物:将选定的引物保存并用于PCR反应。
2. Primer Premier 5软件Primer Premier 5是一款功能强大的引物设计软件,具有直观的操作界面和丰富的功能。
引物设计几种引物设计软件的介绍及使用
基于桌面的引物设计软件
功能强大
这类软件需要在用户的计算机上安装后才能使用。与 基于Web的引物设计软件相比,基于桌面的引物设计 软件通常具有更强大的功能和更高的灵活性。用户可 以根据自己的需求定制引物设计的参数和条件,进行 更精细化的设计。此外,基于桌面的引物设计软件通 常支持多种文件格式的导入和导出,方便用户与其他 软件进行数据交换。
基于移动设备的引物设计软件
01
便携易用
02
这类软件可以在手机或平板电脑上使 用,方便用户随时随地进行引物设计 。基于移动设备的引物设计软件通常 具有简洁明了的界面和易于操作的手 势控制,使用户可以快速完成引物设 计。此外,这类软件通常支持云存储 和同步功能,方便用户在不同设备之 间共享和更新设计结果。
特点
引物设计软件具有自动化、高效性、 精确性和可重复性等特点,能够根据 用户需求提供多种引物设计方案,并 评估引物的特异性和有效性。
引物设计软件的重要性
提高实验效率
01
引物设计软件能够快速筛选出适合的引物,缩短实验周期,提
高实验效率。
保证实验准确性
02
通过软件设计的引物可以减少人为误差,提高实验的准确性。
基于桌面的引物设计软件的优缺点
1 2
安装繁琐
需要下载和安装额外载新版本,安装过程相对繁琐。
3
跨平台兼容性差
可能只支持特定操作系统。
基于移动设备的引物设计软件的优缺点
便携性
用户可以随时随地使用手机或平板电脑进行引物设计。
简单易用
软件界面简洁,操作方便。
基于移动设备的引物设计软件的优缺点
根据使用习惯选择合适的引物设计软件
要点一
界面友好型
要点二
PCR引物设计之个人心得篇
记得当初写本科论文,感到不知道讨论什么问题好。
愣是写了一大段的PCR条件摸索的讨论。
后来PCR成为实验最基本的一步了,但是发现在PCR中还是有许多需要注意的地方。
PCR的第一步就是引物设计了。
引物设计需要注意的地方很多,在大多数情况下,我们都是在知道已知模板序列时进行PCR扩增的。
在某些情况比如构建文库的时候也会在不知道模板序列的情况下进行设计。
这个时候随机核苷酸序列就与模板不是完全匹配。
我们通常指的设计引物都是在已知模板序列的情况下进行。
设计的目的是在两个目标间取得平衡:扩增特异性和扩增效率。
引物分析软件将试图通过使用每一引物设计变化的预定值在这两个目标间取得平衡。
设计引用有一些需要注意的基本原理:①引物长度一般引物长度为18~30碱基。
总的说来,决定引物退火温度(Tm值)最重要的因素就是引物的长度。
有以下公式可以用于粗略计算引物的退火温度。
在引物长度小于20bp时:[4(G+C)+2(A+T)]-5℃在引物长度大于20bp时:62.3℃+0.41℃(%G-C)-500/length-5℃另外有许多软件也可以对退火温度进行计算,其计算原理会各有不同,因此有时计算出的数值可能会有少量差距。
为了优化PCR反应,使用确保退火温度不低于54℃的最短的引物可获得最好的效率和特异性。
总的说来,每增加一个核苷酸引物特异性提高4倍,这样,大多数应用的最短引物长度为18个核苷酸。
引物长度的上限并不很重要,主要与反应效率有关。
由于熵的原因,引物越长,它退火结合到靶DNA上形成供DNA聚合酶结合的稳定双链模板的速率越小。
② GC含量一般引物序列中G+C含量一般为40%~60%,一对引物的GC含量和Tm值应该协调。
若是引物存在严重的GC倾向或AT倾向则可以在引物5’端加适量的A、T或G、C尾巴。
③退火温度退火温度需要比解链温度低5℃,如果引物碱基数较少,可以适当提高退火温度,这样可以使PCR的特异性增加;如果碱基数较多,那么可以适当减低退火温度,是DNA双链结合。
Oligo—引物设计软件电子教程
[原创]Oligo—引物设计软件电子教程(引物设计和评估)Oligo使用方法介绍作为目前最好、最专业的引物设计软件,Oligo的功能很强,在这里我们介绍它的一些主要功能:如:普通引物对的搜索、测序引物的设计、杂交探针的设计以及评估引物对质量等等。
在正式进行引物设计前,我们首先面临的一个任务就是向Oligo程序导入模板序列,根据不同的实验情况,导入模板有三种方法:1,直接用键盘输入:a,点击file菜单中的New Sequence 浮动命令,或直接点击工具栏中的New Sequence命令,进入序列展示窗口;b,此时即可键入DNA序列;c,如果需要的话,Oligo提供碱基回放功能,在边键入时边读出碱基,防止输入错误。
点击Edit菜单中的“Readback on”即可。
2,利用复制和粘贴:当我们序列已经作为TXT文件存在或其它oligo不能直接open的文件格式,如word文件.html格式,这个功能就显得很有用了。
在相应文件中复制序列后在序列展示窗口粘贴,oligo会自动去除非碱基字符。
当序列输入或粘贴完成后,点击Accept/Discard菜单中的Accept浮动命令,即可进入引物设计模式。
3,如果序列已经保存为Seq格式或者FASTA,GenBank格式时,oligo 就可以直接打开序列文件。
点击File菜单中的“Open”浮动命令,找到所需文件,打开即可。
进入引物设计模式后,oligo一般会弹出三个窗口,分别是6-碱基频率窗口,碱基退火温度窗口以及序列内部碱基稳定性窗口,其中的退火温度窗口是我们引物设计的主窗口,其它的两个窗口则在设计过程中起辅助作用,比如6-碱基频率窗口可以使我们很直观地看到所设计引物在相应物种基因组中的出现频率,如果我们的模板是基因组DNA或混合DNA时,该信息就显得有用了,而内部稳定性窗口则可以显示引物的5’端稳定性是否稍高于3’端等。
一,普通引物对的搜索:以Mouse 4E(cDNA序列)为例。
引物设计的详细步骤
一、引物设计step by step1、在NCBI上搜索到目的基因,找到该基因的mRNA,在CDS选项中,找到编码区所在位置,在下面的origin中,Copy该编码序列作为软件查询序列的候选对象。
2、用Primer Premier5搜索引物①打开Primer Premier5,点击File-New-DNA sequence,出现输入序列窗口,Copy目的序列在输入框内(选择As),此窗口内,序列也可以直接翻译成蛋白。
点击Primer,进入引物窗口。
②此窗口可以链接到“引物搜索”、“引物编辑”以及“搜索结果”选项,点击Search按钮,进入引物搜索框,选择“PCR primers”,“Pairs”,设定搜索区域和引物长度和产物长度。
在Search Parameters里面,可以设定相应参数。
一般若无特殊需要,参数选择默认即可,但产物长度可以适当变化,因为100~200bp的产物电泳跑得较散,所以可以选择300~500bp.③点击OK,软件即开始自动搜索引物,搜索完成后,会自动跳出结果窗口,搜索结果默认按照评分(Rating)排序,点击其中任一个搜索结果,可以在“引物窗口”中,显示出该引物的综合情况,包括上游引物和下游引物的序列和位置,引物的各种信息等。
④对于引物的序列,可以简单查看一下,避免出现下列情况:3’不要出现连续的3个碱基相连的情况,比如GGG或CCC,否则容易引起错配。
此窗口中需要着重查看的包括:T m应该在55~70度之间,GC%应该在45%~55%间,上游引物和下游引物的T m值最好不要相差太多,大概在2度以下较好。
该窗口的最下面列出了两条引物的二级结构信息,包括,发卡,二聚体,引物间交叉二聚体和错误引发位置。
若按钮显示为红色,表示存在该二级结构,点击该红色按钮,即可看到相应二级结构位置图示。
最理想的引物,应该都不存在这些二级结构,即这几个按钮都显示为“None”为好。
但有时很难找到各个条件都满足的引物,所以要求可以适当放宽,比如引物存在错配的话,可以就具体情况考察该错配的效率如何,是否会明显影响产物。
《2024年利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究》范文
《利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究》篇一一、引言PCR(聚合酶链式反应)是分子生物学和遗传学中常用的一种实验技术,它对于特定基因序列的克隆、分析、鉴定和扩增具有重要意义。
在PCR技术中,引物设计是一个关键的步骤,其成功与否直接影响着PCR反应的效果和准确度。
随着生物信息学的发展,引物设计软件为研究人员提供了更加方便快捷的途径。
本篇文章旨在研究并阐述如何利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计。
二、PrimerPremier5.0简介PrimerPremier5.0是一款专门用于设计PCR引物的软件,具有友好的界面和强大的功能。
它可以针对特定基因序列进行引物设计,同时还可以根据用户的需求进行参数调整,如引物的长度、GC含量、退火温度等。
此外,该软件还具有自动筛选和优化引物的功能,大大提高了引物设计的效率和准确性。
三、利用PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的步骤1. 打开PrimerPremier5.0软件,输入需要设计的基因序列。
2. 根据实验需求设置引物设计的参数,如引物长度、GC含量、退火温度等。
3. 软件将自动分析基因序列,并在可能的位置设计引物。
用户可以根据需要调整引物的位置和参数。
4. 软件将给出所有可能的引物组合,用户可以根据引物的质量、特异性等指标进行筛选。
5. 对筛选出的引物进行优化,如调整引物的长度、GC含量等,以提高PCR反应的效率和准确性。
6. 保存并导出设计的引物序列,用于后续的PCR实验。
四、注意事项1. 在进行引物设计时,应尽量选择特异性较高的区域进行设计,以避免非特异性扩增。
2. 引物的长度和GC含量应适中,以保证PCR反应的效率和准确性。
3. 退火温度是PCR反应中一个重要的参数,应根据引物的具体情况进行调整。
4. 在使用PrimerPremier5.0进行引物设计时,应遵循软件的操作指南,以保证设计的准确性和效率。
PCR引物设计总结
引物设计一、软件使用●推荐软件:Primer Premier 5.0●优点:操作简单、显示各种参数改变和可能的二聚体、异二聚体、发夹结构等●缺点:没有明显缺点●本地同类软件:DNAClub;Oligo 6.22;Vector NTI Suit;Dnasis;Omiga;Dnastar;DNAMAN(Lynnon Biosoft, Quebec, Canada).●网上同类软件:Primer3(Whitehead Institute 开发);JaMBW(European Molecular BiologyLaboratory of Heidelberg 开发)。
http://210.72.11.60网站已引进并调试好这两种软件。
独特之处在于:对全基因组PCR的引物设计,可以将设计好的引物对后台核酸数据库进行比对,发现并排除引发错配的引物。
因此建议经常做全基因组PCR的用户试用。
二、推荐操作●引物搜索:Primer Premier 5.0●引物评价:Oligo 6.22三、引物设计的原则首先引物要跟模板紧密结合,其次引物与引物之间不能有稳定的二聚体或发夹结构存在,再次引物不能在别的非目的位点引起DNA聚合反应(即错配)。
围绕这几条基本原则,设计引物需要考虑诸多因素,如引物长度(primer length)、产物长度(product length)、序列Tm值(melting temperature)、ΔG值(internal stability)、引物二聚体及发夹结构(duplex formation and hairpin)、错误引发位点(false priming site)、引物及产物GC 含量(composition),有时还要对引物进行修饰,如增加限制酶切点,引进突变等。
以使用Oligo 软件分析设计引物为例,笔者总结出以下的要点:1.引物的长度一般为15-30bp,常用的是18-27bp,但不能大于38,因为过长会导致其延伸温度大于74℃,即Taq 酶的最适温度。
PCR引物设计及软件使用技巧
PCR引物设计及软件使用技巧PCR引物设计及软件使用技巧PCR(聚合酶链反应)是一种重要的分子生物学技术,在基因测序、基因突变检测、基因定量等领域具有广泛的应用。
而PCR引物的设计是PCR反应成功与否的关键因素之一。
本文将介绍PCR引物设计的原理和方法,并向读者介绍一些常用的PCR引物设计软件及其使用技巧。
一、PCR引物设计的原则和策略PCR引物设计的目标是选取一对特异性的引物,使其能在目标DNA序列的两侧结合并扩增出特定的DNA片段。
PCR引物的设计应遵循以下原则和策略:(一)特异性PCR引物应与目标DNA序列特异结合,避免与其他非目标DNA 序列结合产生非特异性扩增。
为了确保特异性,引物的设计中应避免高度保守的序列,尽量选择低度保守区域。
(二)长度和GC含量PCR引物的长度通常应在18-30个碱基对之间,过短会降低特异性,过长可能会导致扩增效率降低或产生非特异性扩增。
另外,引物的GC含量应在40%-60%之间,过高或过低都会影响扩增效果。
(三)避免二聚体和内外引物二聚体PCR引物设计时应避免引物之间以及引物与内外引物之间形成二聚体。
二聚体会影响引物的特异性和扩增效率,甚至导致PCR反应失败。
因此,引物设计时可以利用一些在线工具进行二聚体分析。
(四)避免引物间的交叉杂交和截断引物引物间的交叉杂交会导致非特异性扩增,而截断引物会导致扩增结果缺失或产物截断,因此引物设计时应避免以上情况的发生。
(五)引物间距和末尾相对于PCR引物的设计目标,引物间距相对固定,一般为100-500bp之间。
此外,引物的末端设计也要考虑,如添加限制性酶切位点、引入位点或尾部,以方便后续的克隆操作。
二、PCR引物设计的方法PCR引物设计可以采用多种方法,如序列比对、限制性酶切位点分析、引物簇设计等。
下面介绍一些常用的PCR引物设计方法。
(一)序列比对法序列比对法是一种简单易行的PCR引物设计方法。
通过将目标序列与参考序列进行比对,找出保守区域来设计引物。
beacon designer 8设计引物的步骤
设计引物是PCR实验中的重要步骤,它直接影响到PCR反应的准确性和稳定性。
设计引物需要考虑到多个因素,包括目标基因的序列特点、引物之间的相互作用以及引物与模板DNA的结合情况等。
在Beacon Designer 8软件的辅助下,设计引物的步骤可以更加高效和准确。
一、输入基因序列打开Beacon Designer 8软件,进入引物设计界面。
在界面上方的输入框中,粘贴或输入目标基因的序列。
这一步是引物设计的基础,需要确保输入的序列准确无误。
二、设定PCR参数设定PCR参数对引物设计非常重要。
在Beacon Designer 8软件中,用户可以设定PCR反应的温度范围、引物长度、GC含量等参数。
根据实验条件和目的,合理设定PCR参数可以有效提高引物的设计准确性。
三、分析引物性能Beacon Designer 8软件可以对输入的基因序列进行多种分析,包括引物特性分析、引物之间的碱基相互作用分析以及引物与模板DNA的结合性分析等。
通过这些分析,用户可以了解每个引物的性能表现,为后续的引物设计提供参考。
四、设计引物在经过上述分析的基础上,Beacon Designer 8软件会自动给出最优的引物设计方案。
用户可以根据软件给出的建议,对引物进行微调或进一步优化。
在设计引物的过程中,要注意引物的特异性和稳定性,尽量避免引物之间的相互作用和引物与模板DNA的非特异性结合。
五、验证引物设计好引物后,需要进行引物的验证实验。
这一步可以通过引物合成后进行聚合酶链式反应(PCR)实验,或者进行引物与模板DNA的结合实验等来验证引物的性能。
根据验证实验的结果,可以进一步优化引物设计方案。
六、总结通过Beacon Designer 8软件的辅助,设计引物的步骤更加高效和准确。
在设计引物时,用户可以根据实验需要设定PCR参数,分析引物性能,设计引物并进行验证实验,最终得到符合实验要求的引物设计方案。
设计引物是PCR实验中至关重要的一步,合理、准确的引物设计可以为实验结果的准确性和稳定性提供保障。
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研究生必备——设计引物篇一、引物设计step by step1、在NCBI上搜索到目的基因,找到该基因的mRNA,在CDS选项中,找到编码区所在位置,在下面的origin中,Copy该编码序列作为软件查询序列的候选对象。
2、用Primer Premier5搜索引物①打开Primer Premier5,点击File-New-DNA sequence, 出现输入序列窗口,Copy 目的序列在输入框内(选择As),此窗口内,序列也可以直接翻译成蛋白。
点击Primer,进入引物窗口。
②此窗口可以链接到“引物搜索”、“引物编辑”以及“搜索结果”选项,点击Search 按钮,进入引物搜索框,选择“PCR primers”,“Pairs”,设定搜索区域和引物长度和产物长度。
在Search Parameters里面,可以设定相应参数。
一般若无特殊需要,参数选择默认即可,但产物长度可以适当变化,因为100~200bp的产物电泳跑得较散,所以可以选择300~500bp.③点击OK,软件即开始自动搜索引物,搜索完成后,会自动跳出结果窗口,搜索结果默认按照评分(Rating)排序,点击其中任一个搜索结果,可以在“引物窗口”中,显示出该引物的综合情况,包括上游引物和下游引物的序列和位置,引物的各种信息等。
④对于引物的序列,可以简单查看一下,避免出现下列情况:3’不要出现连续的3个碱基相连的情况,比如GGG或CCC,否则容易引起错配。
此窗口中需要着重查看的包括:T m应该在55~70度之间,GC%应该在45%~55%间,上游引物和下游引物的T m 值最好不要相差太多,大概在2度以下较好。
该窗口的最下面列出了两条引物的二级结构信息,包括,发卡,二聚体,引物间交叉二聚体和错误引发位置。
若按钮显示为红色,表示存在该二级结构,点击该红色按钮,即可看到相应二级结构位置图示。
最理想的引物,应该都不存在这些二级结构,即这几个按钮都显示为“None”为好。
但有时很难找到各个条件都满足的引物,所以要求可以适当放宽,比如引物存在错配的话,可以就具体情况考察该错配的效率如何,是否会明显影响产物。
对于引物具体详细的评价需要借助于Oligo来完成,Oligo自身虽然带有引物搜索功能,但其搜索出的引物质量感觉不如Primer5.⑤在Primer5窗口中,若觉得某一对引物合适,可以在搜索结果窗口中,点击该引物,然后在菜单栏,选择File-Print-Current pair,使用PDF虚拟打印机,即可转换为Pdf 文档,里面有该引物的详细信息。
3、用Oligo验证评估引物①在Oligo软件界面,File菜单下,选择Open,定位到目的cDNA序列(在primer 中,该序列已经被保存为Seq文件),会跳出来两个窗口,分别为Internal Stability(Delta G)窗口和Tm窗口。
在Tm窗口中,点击最左下角的按钮,会出来引物定位对话框,输入候选的上游引物序列位置(Primer5已经给出)即可,而引物长度可以通过点击Change-Current oligo length来改变。
定位后,点击Tm窗口的Upper按钮,确定上游引物,同样方法定位下游引物位置,点击Lower按钮,确定下游引物。
引物确定后,即可以充分利用Analyze菜单中各种强大的引物分析功能了。
②Analyze中,第一项为Key info,点击Selected primers,会给出两条引物的概括性信息,其中包括引物的T m值,此值Oligo是采用nearest neighbor method计算,会比Primer5中引物的Tm值略高,此窗口中还给出引物的Delta G和3’端的Delta G.3’端的Delta G过高,会在错配位点形成双链结构并引起DNA聚合反应,因此此项绝对值应该小一些,最好不要超过9。
③Analyze中第二项为Duplex Formation,即二聚体形成分析,可以选择上游引物或下游引物,分析上游引物间二聚体形成情况和下游引物间的二聚体情况,还可以选择Upper/Lower ,即上下游引物之间的二聚体形成情况。
引物二聚体是影响PCR反应异常的重要因素,因此应该避免设计的引物存在二聚体,至少也要使设计的引物形成的二聚体是不稳定的,即其Delta G值应该偏低,一般不要使其超过4.5kcal/mol,结合碱基对不要超过3个。
Oligo此项的分析窗口中分别给出了3’端和整个引物的二聚体图示和Delta G 值。
④Analyze中第三项为Hairpin Formation,即发夹结构分析。
可以选择上游或者下游引物,同样,Delta G值不要超过4.5kcal/mol,碱基对不要超过3个。
Analyze中第四项为Composition and T m,会给出上游引物、下游引物和产物的各个碱基的组成比例和Tm值。
上下游引物的GC%需要控制在40%~60%,而且上下游引物之间的GC%不要相差太大。
Tm值共有3个,分别采用三种方法计算出来,包括nearest neighbor method、%GC method和2(A+T)+4(G+C)method,最后一种应该是Primer5所采用的方法,T m值可以控制在50~70度之间。
第五项为False Priming Sites,即错误引发位点,在Primer5中虽然也有False priming 分析,但不如oligo详细,并且oligo会给我正确引发效率和错误引发效率,一般的原则要使误引发效率在100以下,当然有时候正确位点的引发效率很高的话,比如达到400~500,错误引发效率超过100幅度若不大的话,也可以接受。
⑤Analyze中,有参考价值的最后一项是“PCR”,在此窗口中,是基于此对引物的PCR反应Summary,并且给出了此反应的最佳退火温度,另外,提供了对于此对引物的简短评价。
若该引物有不利于PCR反应的二级结构存在,并且Delta G值偏大的话,Oligo 在最后的评价中会注明,若没有注明此项,表明二级结构能值较小,基本可以接受。
⑥引物评价完毕后,可以选择File-Print,打印为PDF文件保存,文件中将会包括所有Oligo软件中已经打开的窗口所包括的信息,多达数页。
因此,打印前最好关掉Tm窗口和Delta G窗口,可以保留引物信息窗口、二级结构分析窗口(若存在可疑的异常的话)和PCR窗口。
4、引物确定后,对于上游和下游引物分别进行Blast分析,一般来说,多少都会找到一些其他基因的同源序列,此时,可以对上游引物和下游引物的blast结果进行对比分析,只要没有交叉的其他基因的同源序列就可以。
二、引物设计过程中的心得1、Primer 5.0搜索引物①Primer Length我常设置在18-30bp,短了特异性不好,长了没有必要。
当然有特殊要求的除外,如加个酶切位点什么的。
②PCR Product size最好是100-300bp之间,小于100bp的PCR产物琼脂糖凝胶电泳出来,条带很模糊,不好看。
至于上限倒也不必要求苛刻。
③Search parameters还是选Manual吧,Search stringency应选High,GC含量一般是40-60%。
其它参数默认就可以了。
④引物之间Tm值的差应下雨5、引物和模板之间的Tm值差应小于20较合适。
(在设计引物过程中个人的总结)⑤搜索出来的引物,按Rating排序,逐个送Oligo软件里评估。
当然,搜索出的引物,其扩增产物很短,你可以不选择它,或是引物3端≥2个A或T,或引物内部连续的G或C 太多,或引物3端≥2个G或C,这样的引物应作为次选,没得选了就选它。
对于这样的引物,如果其它各项指标还可以,我喜欢在引物末端去掉一个不满意的或加上一个碱基,看看引物的评估参数有没有变好点。
2、Oligo 6.0评估引物①在analyze里,Duplex Formation不管是上游引物、下游引物还是上下游引物之间,The most stable 3’-Dimer绝对值应小于4.5kcal/mol, The most stable Dimer overall绝对值一般应小于多少kcal/mol跟PCR退火温度有关,我几次实验感觉在PCR 退火温度在65°的时候,The most stable Dimer overall 6.7kcal/mol没有问题。
②Hairpin Formation根据黄金法则③False priming sites: Primer的priming efficiency应该是错配地方的4倍左右,更多当然更好。
④在PCR栏,丁香园战友感觉其所显示的optimal annealing temperature数值值得参考。
在PCR摸索条件的时候,退火温度为其数值加减2的范围就可以了。
⑤Internal stability很重要:我们希望引物的内部稳定性是中间高、两边低的弧形,最起码保证3端不要过于稳定。
下图引物3端过于稳定,很容易导致不适当扩增。
△G参照黄金法则,这其实很好理解:把一滴水放到大海里,这滴水就会不停的扩散分布,扩散的越厉害越稳定,所以△G绝对值越大结构越稳定。
3、其他①两个评价系统不一样,丁香园战友感觉oligo评价引物好点,primer出来的引物,一般按效率排序,再结合退火温度和引物长度,选择引物到oligo测试。
这是初步的选择,其实引物到了oligo里,退火温度也不一样。
②3端的二聚体应该避免,这个要看退火温度决定,一个50°的退火温度肯定和65°对二聚体的影响不一样了,一般来讲尽量控制在-4.5kcal/mol以下(丁香园战友观点,很多东西真得还是需要自己摸索)。
③丁香园战友感觉3端有A无A影响不大,3端有T是不是一定不行,不见得。
软件是评估,法则也不是没有例外,不是1+1=2那么确定。
④错配和二聚体谁轻谁重,丁香园战友觉得“到致命的程度”谁都重要,在设计的时候,尽量两个都不得罪。
⑤GC含量并非不重要,它直接影响引物各端稳定性,3端来两个G或C,稳定性就上去了,粘在模板上很牢。
所以丁香园战友设计引物的时候,会尽量避免这样的情况出现。