荷兰百合新品种索尔邦的快繁技术研究
“索邦”百合高产优质栽培技术
“索邦”百合高产优质栽培技术“索邦”百合原产地荷兰，属东方百合杂种系切花品种。
该品种植株高80～120cm；茎秆硬度大，叶较狭长呈披针形，亮绿有光泽；花呈粉红色，边缘具狭窄白边，红色乳突分布于花瓣中部以下，有香味。
“索邦”百合适宜生长温度在18～25℃之间，在5℃以下、28℃以上生长受到一定影响，若温度超过30℃则会出现“盲花”的现象。
1选好种球根据不同的消费要求和上市时间选择种球。
初春种植初夏上市选用周径为10～12cm的种球以减少叶焦病的发生；春节前后上市应选周径为16～18cm的种球，以提高花的品质。
2整地、种植2.1选地选择前茬未种植过百合科、石蒜科等植物的土质疏松、排水良好、肥沃的砂壤土，若土壤肥力太低可在耕翻晒白土地时施入已腐熟的芝麻渣（每亩施400kg）作基肥。
种植前半个月起高畦，畦宽1～1.2m，畦高25～30cm；在畦面横向挖20cm深的种植沟，在沟中施入培养基质（基质用蘑菇土4份、椰糠2份、砂4份经充分堆沤腐熟）；然后再用70%敌克松可湿性粉剂1000倍进行全园泼施进行土壤消毒。
2.2植前催芽用经过消毒、湿润的基质（椰糠混河砂3∶1）覆盖种球10cm，放在室内进行催芽约10天。
当球茎芽的基部出现明显的茎生根点时即可移栽到大田种植。
通过催芽可以达到：①形成良好根系和整齐健壮的幼芽利于大田管理；②减少田间病害的传染；③缩短大田栽培时间，催芽种植比不催芽提早采收约5天。
2.3种植在已施放培养基质的种植沟中进行点植，按株距端正摆放种球，种球顶端覆土8～10cm。
春季种植按12cm×15cm的株行距，每亩种植周径10～12cm的种球约1.8万个；秋季种植按10cm×15cm的株行距每亩种植周径16～18cm约2.5万个。
边种边浇定根水。
3田间管理3.1水分管理百合全生长期要求表土保持湿润（以手握紧表土有水渗出而不滴下为度）而不能积水。
当园土变白、叶片略下垂时要及时浇水，浇水时间应于每天上午10点前，忌傍晚浇水。
荷兰对百合生产技术的研究
荷兰对百合生产技术的研究百合是一种美丽的花卉，在荷兰有着非常广泛的种植和应用。
荷兰作为全球最大的花卉生产国之一，一直在致力于改进百合的生产技术，以提高百合的产量和质量。
本文将详细介绍荷兰对百合生产技术的研究情况。
高效的育苗技术在百合的生产过程中，育苗是至关重要的一步。
荷兰的研究人员一直在探索新的育苗技术，以提高百合的出苗率和生长速度。
目前，荷兰使用的主要育苗技术包括种子萌发和鳞茎分化。
种子萌发是将百合种子种植在营养土中，通过适当的温度和湿度条件促进种子的发芽；而鳞茎分化则是通过将百合鳞茎放置在恰当的温度和湿度条件下促进鳞茎分化。
这些育苗技术不仅能够提高百合的产量和质量，还能够缩短生产周期，提高生产效益。
环境控制技术的应用在百合的种植过程中，环境因素是影响百合生长发育和产量的重要因素。
荷兰的研究人员通过研究百合的生态环境和生长规律，开发了一系列环境控制技术，包括温室控制技术、光照控制技术、水肥管理技术等。
荷兰使用的温室控制技术可以根据不同的生长阶段和不同的气候条件，精确控制温室的温度、湿度、光照等环境因素，以提高百合的生长速度和产量。
荷兰的光照控制技术则可以通过安装自动化设备，精确控制百合的光照时间和光照强度，以促进百合的生长和开花。
此外，在水肥管理方面，荷兰使用的是先进的自动喷灌装置，可以根据百合的生长阶段和需求，精确施肥和浇水，使百合获得充足的水分和养分，从而提高百合的产量和质量。
常规的病虫害防治技术在百合的生产过程中，病虫害是一个常见的问题，会对百合的生长和产量造成不良影响。
针对这个问题，荷兰的研究人员开发了许多常规的病虫害防治技术。
其中，针对常见的百合病害，荷兰采用了植物病理学的原理，通过使用生物农药等手段控制百合的病害。
针对常见的百合害虫，荷兰采用了化学药剂和天敌防治相结合的方法，既能有效防治害虫，又能保护环境和生态系统。
新兴的基因编辑技术除了传统的生物育种和环境控制技术，荷兰的研究人员还在探索新的基因编辑技术，以改进百合的产量和品质。
荷兰对百合生产技术的
01
荷兰百合产业概述
荷兰百合产业规模
产业规模大
荷兰是全球重要的百合生产国之一，其百合产业规模较大，拥有多个专业生产 和出口基地。
市场份额
荷兰在全球百合市场的份额逐年上升，尤其在鲜切花和盆栽百合领域具有较高 的竞争力。
荷兰百合产业特点
01
02
03
专业化分工
荷兰的百合产业从种球培 育、生产、采后处理到销 售等环节都实现了专业化 分工，提高了生产效率。
科技创新
荷兰百合产业注重科技创 新，不断研发和引进新品 种和新技术，提高产品质 量和生产效益。
采用无土栽培技术，使用珍珠 岩、蛭石等轻质基质，优化百 合生长环境。
光照控制
采用LED灯具，模拟不同季节 的光照条件，满足百合生长所 需的光照强度和时长。
病虫害防治
定期检查百合生长情况，发现 病虫害及时采取防治措施，避 免病虫害扩散。
企业市场开拓与品牌建设的案例分析
市场定位
专注于高品质百合产品的生产与销售 ，以满足高端消费者和礼品市场的需 求。
注重细节和数据分析，实现精细化管理， 提高生产效益。
市场洞察力
品牌建设
敏锐捕捉市场需求和变化，及时调整生产 和销售策略。
注重品牌形象塑造和推广，提升产品附加 值和市场竞争力。
感谢您的观看
THANKS
品牌形象
通过参加国际花卉展览、举办品牌活 动等方式，提升品牌知名度和影响力 。
销售渠道
通过花卉批发商、零售商、电商平台 等渠道销售产品，覆盖全球市场。
荷兰对百合生产技术的研究
荷兰对百合生产技术的研究荷兰是世界上最大的百合生产国家之一，其对百合生产技术的研究始终处于领先地位。
在为期数十年的研究中，荷兰的科学家和农业专家不断地进行试验和改进，不断改进百合种植的技术和方法，以提高产量和质量，并推动百合的生产和市场销售。
荷兰的百合生产技术主要包括五个方面：种植环境建设、品种筛选和培育、肥料和施肥方法、病虫害控制和采收和贮存。
以下是对这些技术的简要描述。
首先，种植环境建设是百合生产的最基本条件。
荷兰的百合种植一般采用温室和露地两种方法，温室可以确保百合在全年都有较为稳定的生长环境，露地则可以利用自然资源，减少能源消耗。
温室建设中需要考虑的问题包括遮光、通风、加热等问题，露地则需要考虑土壤质量、排水情况等因素。
荷兰的农业专家也在不断探索利用可再生能源、提高环保性等方面的技术。
其次，品种筛选和培育对于提高百合产量和质量具有重要作用。
荷兰的百合生产中主要采用两种品种，一种是“东方百合”，一种是“Casablanca”，前者生长快、适应性强，后者品质高、花期长，两种品种可以互相消补优缺点。
荷兰也在不断地进行品种改良，利用遗传学、生理学等手段，通过自然杂交和基因编辑技术等方法提高品种的适应性、耐病性等性质，以更好地适应市场需求。
第三，肥料和施肥方法是保证百合充分生长的关键。
荷兰的农业专家通过研究百合营养需求、肥料类型和成分、施肥数量等因素，确定最佳的施肥方案，以提高百合生长速度和花卉质量。
一些研究还揭示了不同施肥方案的影响因素，例如施肥时间、肥料种类等因素，为百合生产提供了丰富的经验和技术支持。
第四，病虫害控制是百合生产中不可避免的问题。
荷兰的生产者和农业专家通过提高生产条件、选择抗病品种、进行病虫害监测和预测等方法，控制百合病虫害的发生和蔓延，保证百合季节的产量和质量。
这些措施还有助于减少农药的使用和环境污染，提高百合的环保性和推广效果。
最后，采收和贮存是百合生产的最后一道环节。
荷兰的生产者和农业专家通过对百合花芽的大小、颜色、形状等特征的评估，以确定最佳的采收时间和方法。
百合种质资源鉴定与组培快繁技术体系研究的开题报告
百合种质资源鉴定与组培快繁技术体系研究的开题报告一、研究背景随着社会经济的发展和人们生活水平的提高，百合作为一种重要的观赏和食用植物，受到了越来越广泛的关注。
但是由于百合物种数量众多、遗传背景复杂，加之采集传统的种质资源存在一定的困难，因此百合种质资源的鉴定和保护面临许多问题。
组培快繁技术是一种在无菌条件下，利用人工营养基、植物生长调节剂等物质进行多倍体无性繁殖的技术，可以快速扩繁、改良和保护珍贵植物种质资源。
因此，应用组培快繁技术对百合进行繁殖和改良，是目前百合保护和利用中的热点研究方向。
二、研究目的和意义本研究旨在建立一套适用于百合种质资源鉴定和组培快繁的技术体系，以提高百合的种质资源采集、挖掘、鉴定和保护，为百合的优化利用提供保障。
具体研究内容如下：1. 对百合种质资源进行鉴定和收集，筛选出具有重要经济和生态价值的优良品种。
2. 利用组培快繁技术进行多倍体无性繁殖和快速扩繁，以获得大量优质苗木。
3. 通过对不同生态环境下的百合进行细胞学和分子生物学分析，研究不同百合品种的遗传变异情况和基因组分布规律。
4. 建立百合组织培养技术，研究不同组织类型的增殖和分化能力，探索组织培养对百合栽培和品质的影响。
5. 利用分子标记技术对不同百合品种之间的亲缘关系进行分析，建立百合种质资源遗传多样性数据库，为百合新品种选育提供重要的遗传素材。
三、研究内容和方法1. 百合种质资源鉴定和收集采用多种传统和现代方法对野生和栽培品种进行鉴别和采集，包括形态学特征、病虫害检测、分子标记等技术手段，并建立百合种质资源数据库。
2. 组培快繁技术体系的建立以鳞茎为材料，建立组培快繁技术体系，包括营养液配方、培养基配制、激素组合等方面的优化和探索。
3. 遗传变异和基因组分布规律研究通过细胞学、分子生物学技术对不同百合品种的细胞倍数、核型、染色体特征等进行图像分析和统计，以及对基因组大小、组成和结构等进行分析和比较。
4. 组织培养技术研究建立百合的愈伤组织、愈疮组织和植株再生系统，探讨百合组织培养对增殖和分化能力的影响，并分析不同培养条件下百合植株质量和品质的变化。
荷兰对百合生产技术的研究
荷兰对百合生产技术的研究百合在花卉市场上一直是深受欢迎的花卉，尤其近年来发展更多栽培于温室密闭系统内之品种，所以在技术上更要克服室内环境上遭遇到的不利因素。
位于荷兰Lisse的球根研究中心（Dutch Further Research Center, PPO），近年来以水耕栽培百合为其研究重点，但似乎难以达到预期目标，栽培者尝试以各种方法加以改善，其中方式是将球根固定在二层铁丝网之间，避免百合的根部在生长时摇晃，同时将水位加到球根基部，让根部浸在水中，水中并给予通气及施加肥料，并且在栽植槽上覆盖不透光塑料布以避免光线照射下藻类的滋生，当根系生长旺盛后，要渐渐增加水位高度，以上这个试验生产出的百合比土耕栽培者其茎部要短约10%，而重量要轻约20%。
在PPO研究百合的学者Hans Kok先生表示，在土壤内生长的百合其茎部比较粗壮，可能是因为植物根系在土中可以较快吸收到养分，针对这点，研究中心试图在百合生长初期增加水位高度以利根茎吸收养分，但这个方法并没有成功。
负日夜温差（Negative DIF）Hans Kok最近也研究有关「负日夜温差」（即是夜温比日温高）的试验，同时测量球茎内蔗糖浓度以作为避免冻伤的指针。
他表示百合在水耕栽培法出现茎部变得柔弱细长的情形，可应用负日夜温差的方式矫正此问题。
他在1998年开始试验，环境条件设定日夜温差负10℃（日温12℃，夜温22℃），日长12小时，结果茎的长度减少14～21％，然而负温差10℃的栽培条件，对荷兰栽培业者而言生产成本太高，难以达到经济效益（译者注：在荷兰尤其是冬季，在夜间要将温度提高到22℃实属不易）。
一般种植者栽培亚洲型百合是把日长设定为16小时，而东方型则要20小时，进一步的试验证实足够的日照时数可以将日夜温差值降低，而其缩短茎长的效果也是一样的，1999年Hans Kok继续有关负日夜温差试验并将其减至负6℃，即以夜温19℃日温13℃，光期16小时之条件，结果显示茎的长度平均减少10～17%，差异依品种不同而有异，LA杂交型百合减少茎长度的效果最差。
荷兰对百合生产技术的研究(下)
1小时，然后送回输送带。运输过程中，每隔一段时间将 介质从4米高的输送带掉落下来以达到降温的效果。当温 度降至20℃左右时，将介质运回装填区。每
隔6周取介质样品测pH值，同时监控并调整其成分。每隔 一段时间加入10%的新介质补充自然耗损的量。箱植栽培 所用的箱子是一种黑色塑料箱，可以重复
个花苞为二级。10支捆成1束，二级的花茎切短5厘米， 这样方便分辨级别。花茎基部10厘米处去除叶片，每束 花用塑料袋包裹起来。东方百合插水4小时
，亚洲百合则需要浸在含有硫化银的保鲜液中，整束放 入大箱子中，然后送去拍卖。（完）摘自《台湾花卉园 艺》杂志
感谢观赏，再见！
铜压铸 /
使用。当百合采收后，箱子从温室中被送往一个大型的 仓库中。百合每周种植一次，全年进行。无论是箱植栽 培，还是土耕栽培，在生长结束时都要翻动泥炭或
土壤。整理完后，利用机器打穴，每行20个栽植穴。4个 人坐在播种机后面，平均每小时可以种植7000多粒种球。 箱子装满清洁的泥炭土。每个箱子依百
合球茎大小及品种不同，种植12至16粒，浇水后置于9℃ 的冷房中。球根可维持植株最初两三周的养分，之后将 会被新的根系所取代。 人工光源改善品
质 亚洲百合冬季需要24小时的光照，东方百合只需16小时 即可改善其品质。人工光照从早上11点至下午3点。在荷 兰，法令禁止晚间光线从温室照射
Hale Waihona Puke 出来，因此必须将隔板降下。这些隔板同时具有能量贮 存的作用，在夏季还可提供60％的遮阴，以防温室内温 度太高。若是需要加温，可经由热水输送管（水
温为40℃）供应至植株附近的管路，以促进百合生长。 分级包装保鲜销售 百合切花依照花苞的数目来分级，一支花中有5个花苞以 上的为一级，三四
荷兰百合索尔邦的离体组织培养
的培养基接种索尔邦百合鳞片愈伤组织 ，研究其诱导出芽
效 果 （ ２ ； 时选 取 不 同部 位 的 百合 鳞 片 材料 进 行 接 种 表 ）同
ａｄ ＭＳ＋ Ａ ． ｍｇＬ ｒｓｅ ｔ ｅｙ ｗｔ ｏ ｔ ｇｔ ｆａｏ ｔ２ ． 【ｏ ｃｕｉｎ Ｔ ｃ ｎｃ ｕ ｐｒ ｗ ｒ ｒｖ ｅ ｒｔｅｓ ｄ ｉｇｏ ｌ ｎ Ｉ Ａ ０５ ／ ， ｅｐ ｃｉ ｌ， ｉ ｒｏｉ ｉ ｏ ｂ ｕ ５ｄ Ｃ ｎｌｓ 】 ｅ ｈ ｉａ ｓ ｐ ｏ ｅｅｐｏｉ ｄｆ ｈ ｔ ｙｎ ｆ ｉ ｖ ｈ ｎ ｍｅ ｏ ｌ ｔ ｄ ｏ ｕ ｌｙ
维普资讯
安徽 农业 科学 ． ｕｎｌｆ ｎｕ Ａ ｒ Ｓｉ２０ ．５２ ）６４ — ０６ Ｊ ｒａ ｏ ｈ ｉ ｇ ．ｃ．０ ７３ （０ ：０ ５ ６ ｏ Ａ ｉ ４
责任编 辑 张杨 林 责 任校对 王 淼
荷 兰百 合 索尔 邦 的离体 组 织培 养
ｂｒｅ ｉｇ ｅ ｄｎ ． Ｋｅ ｒ ｓ Ｌ ｌ； ｏｂ ｎ ｅ Ｔｉｓ ｅｃ ｌｕ ｅ ｙｗｏ ｄ ｉｙ Ｓ ｒ ｏ ｎ ； ｓｕ ｕｔ ｒ
百合 （ｉｕ 为百 合科 百合 属 的多 年生 草本 植 物 ， 全 Ｌｌ ｍ） ｉ 在 世界 有 ９ 多种 ， 花色 丰富 、 ０ 百合 花形各 异 、 清雅脱 俗 、 芳香 宜 人 ， 贵切花 和盆花 ， 大部分鳞 茎 既可食用 又能 药用Ｉ１ 是名 其 １。 － ２
ＣＨＥ Ｘｕ ４ｎｅ ａ （ ｏｌ ｅｏ Ｌｆ ｃｅ ｃ， ｒ ｗ ｓＮｏｍａ ｎｖ ｒｉ ， ａ ｚＯ ， ｎ ｕ７ ０ ７ Ｎ ｅ ｉ ｔ ｌ Ｃ ｌ ｇ ｉ ｅ ｆ ｅＳ ｉｎ ｅＮｏｔ ｅｔ ｒ ｌ ｉｅｓｙ Ｌ ｎｈ Ｈ Ｇａｓ ３ ０ ０） ｈ Ｕ ｔ
Ａ ｓ ａ ｔ 【 ｂ ｃ ｖ］ ｈ ｔ ｕ ｌ ｒ ｒ ｔ ｉ ｖ ｒ ｆ ｏ ａ ｄ ｉ ｒ ｔ Ｓ ｒｏ ｎ ｅｅ ｅ ｃ ｅ， ｈ ｈ ｏｌ ｉ ｐｏ ｅ ｒｐ ｇｔ ｎｒ ｅ ｂ ｔ ｃ Ｏ ｊ ｔ ｅ Ｔ ｅ ｐｉ ｍ ｃ ｔ ｅ ｏ ｅ ｎ ｉ ｏ ｏ Ｈ ｌ ｎ ｌ ｖ ｉ ｙ ｏｂ ｎ ｅ ｒ ｓａ ｈ ｄ ｗ ｉ ｕｄ ｍ ｒ ｏ ａａ ｏ ｔ ｒ ｅｉ ｏ ｍ ｕ ｕ ｕ ｔ ｒ ｌ ｌｙ ａ ｅ ｗ ｒ ｃｃ ｖｐ ｉ ａ． ｆ ｔ０］ ｈ ｕｂ ｔ ｕ ，ｔｍ ｓｃｉｎａ ｄｌａ ｆ ｏｌｎ ｉ ａｉｔ ｏｂ ｎ ｅｗ ｒ ｅｅｔｄｆｒ ｎｖｔ ｕｔｒ．【 ｅｕｆ Ｂ ｌ ａ ｅｂ ｓ Ｍｅｈｄ Ｔ ｅｂ ｌ，ｉ ｂ ｄ ｓｅ ｅｔ ｎ ｆ ｌ ｄｌｙｖ ｒ ｙＳ ｒｏ ｎ ｅｅｓｌｃｅ ｉｏｃｌ ｅ Ｒ ｓｌ ｕｂｗ ｓｔ ｅｔ ｐ ｏ ｅ ｏＨ ａ ｌ ｅ ｏ ｒ ｕ ｌ ｈ
百合快速繁殖及脱毒研究进展
七.生根和移栽
1.王爱勤等研究表明： 1.组培苗的根长至1～1.5cm左右，经开瓶炼苗后 可移植到蛭石加草炭土上，保持70℅相对湿度， 60℅自然光，成活率可达80℅以上，铁炮百合的 组培苗有些移植到大田的当年即可开花。 2.根长范围在1～1.5cm内的苗适应性强，生长快， 生命力旺盛，适应期短，根、叶的生长量大，有 利于幼苗入土； 3.而根系较长的幼苗，刚从瓶内出来长得很旺， 但它的生长旺盛势已过，适应力降低，抗力性差， 环境稍有不适宜，就易造成根系的损伤和腐烂， 从而影响整个幼苗的生长。
Features of plant
1.地下变态器官
为无皮鳞茎，形 状、鳞片排列的 松紧程度均与品 种有关。
2.地上茎直立，不分枝 或少数上部有分枝。植 株高度通常在50150cm之间。正常茎通 常是圆柱形，表面无毛。 但也有少数种类茎上有 毛或具棱。 3.叶片线形、披针形、 卵形，一般不太宽，极 少有宽于5cm的种类。 叶片具平行叶脉，叶无 叶柄或具短柄，全缘。
百合快速繁殖及脱毒研究 进展
百合：
• 学名：Lilium spp. • 英名：Lily • 科属：百合科， 百
合属
• 产地与分部：原产
北半球温带地区，中国 是世界百合的分布中心， 现世界各地广范栽培。
Develop process
中国是百合属植物的故乡， 全世界百合属植物约90个种， 其中起源于中国的有46个种 和18个变种。 欧洲对百合记载较早的是《 旧约圣经》。1794年麝香百 合由日本传入荷兰，1819年 传入英国。20世纪以来大规 模开展了杂交育种工作。 资源丰富，历史悠久，花型 花色多样，有极高的食用及 药用价值，被誉为“球根花 卉之王”。
2.以花柱为外植体：
东方百合种球脱病毒快繁及生产技术
东方百合种球脱病毒快繁及生产技术摘要从百合实验室脱病毒、病毒检测、无毒苗快繁、驯化移栽、种球繁育、鲜切花生产、病虫害防治等方面介绍了一个带毒种球到一批标准的鲜切花的全部过程，以期指导东方百合生产。
关键词百合种球；脱病毒；快繁；生产观赏百合植株挺秀，花大色艳，是目前国内外广泛栽培的球根花卉之一。
国内百合鲜切花需求量不断增长，但由于百合一直采用营养繁殖，造成病毒猖獗，严重影响了产量和品质。
我国栽培种球仍以进口为主，百合种球国产化一直是困扰百合生产的难题。
利用茎尖培养脱病毒是主要的脱病毒方法，采用茎尖热处理结合药剂处理培养筛选出最有效的百合脱病毒技术，再将脱病毒苗快速繁殖，以繁育更多的优质商品种球用于切花生产，减少花农的投入，逐渐达到种球国产化，这是国内百合研究者急需解决的共同课题。
1种球处理从荷兰引进的东方百合品种sorbonne和siberia，对其进行高温处理。
将种球洗净用多菌灵浸泡30min，捞出晾干。
将河沙用开水烫好，并用多菌灵浸泡30min，晾凉，放在方盘里平铺，深度以埋入2/3种球为宜。
将盘放入光照培养箱内，白天38～40℃，晚上30～32℃。
变温1～2周，防止对芽的损伤，变温2周后，38℃以上恒温4～5周，中间见干喷水。
2外植体灭菌经过上述处理后将茎尖取下，用自来水冲洗干净，放在无菌烧杯内，用70%酒精浸泡30s，用0.1% HgCl灭菌，灭菌时间视外植体材料老嫩程度而定，一般为3～5min，再用无菌水冲洗4～5遍。
3茎尖剥离与培养准备好的材料，先用肉眼剥掉外部叶片，然后拿到解剖镜前继续剥，直到露出明亮的小尖，用解剖刀切下，在标尺下进行比较，达到0.5mm以下，直接接种到MS+1.0mg/L 6-BA+0.5mg/L NAA的培养基上，培养基的pH值在5.6～5.8，接种后的瓶苗培养在25～28℃恒温培养室内，光照时间为每天10h，光照强度为2 000～3 000lx。
接种后的茎尖10d以后转绿，30d后有分化，分化率在40%左右，60d后开始成苗，成苗率在10%左右，有的也形成少量的愈伤组织。
索尔邦百合试管鳞茎的诱导
在无 菌 条 件 下 ， 消毒 好 的鳞 片 切成 １ ｍＸ１ ｍ 的 将 ０ｍ ｍ ０
］
，
常采用传统 的鳞茎球繁殖 ， 繁殖 速度缓慢 ］在 。，
短期 内难 以满足市场需求 ， 而且这种 繁殖方 法会导致鳞 茎逐年变小退化［ ， ５ 百合组 培苗具 有繁殖 系数 高、 期 ］ 周 短等优点 ， 刚好 弥补 了种 球繁 育的不足 ， 而且 容易保 持 原品种的优 良观赏特性ｌ ， ６ 对保护此品种资源具有重要 ｊ
为下部与叶芽分化原基较近 ， 叶芽原基具有很 高的分化 性， 从而使下部具有 了比其它部位更 高的分 化潜能 。因 此选择材料 时， 应该 选择健康 、 观整齐 干净 的肥 厚的 外 外层下部鳞片作为外植体 。
收 稿 日期 ：ＯＯ ３ １ ２ １ —Ｏ 一Ｏ
Ａ ￣ｒ ｃ ： ｅ ｍａ ｕ ｅ ｓ ｏ ｅ ｆ ｌ ｌｎ ｎ ｔ ｙ ｉｍ ｅ ｅｉｓ Ｋｉ ｇ ） ｈｎ ．ｗｅ ｅ ｕ ｅ ｓｅ ｐ ａ ｔ ，ｉ ｕ ｕｔ ｒ ｎ ｌ ａ ｔ Ｔｈ ｔ ｒ ｐ ｒ ｓ ｄｐ ａ ｔ ｏ ｗｉ Ｌｕ ａ ｈ ｒ ｕ ｖ ｇ ｔ （ ｔ ． Ｃ ｉｇ ｕ ａ ｒ ｓ ｄ ａ ｘ ｌｎ ｓ ｔ ｓ ｅｃ ｌ ｅａ ｄ ｓ ｕ
部＞内层下部＞ 中层上部＞内层 中部＞ 内层上部 ， 分化 率最高的部位为外层下部。经 分析可以看出 ， 下部 ＞中
部 ＞ 上 部 ， 部 是 分 化 最 具 潜 力 的 部 位 ， 很 可 能 是 因 下 这
剥取鳞片 ， 将鳞片分成外 、 内 ３ ， 中、 层 最外 １ ４２层 为外层 ，～６层为 中层 ， ３ 剩下 的为 内层。将 每一层 次分
ｒｐｄ ｐ ｏ ａ ａｉｎ ｗｅｅ ｉｖ ｓｉａｅ ． ｅ ｒｓ ｌ ｈ ｗｅ ｈ ｔ１ ２ ｓ ｓｉ ｂｅ ｆｒ ｉｄ ｃ ｇ ｎ ａ ｉ ｒｐ ｇ ｔ ｒ ｎ ｅｔ ｔｄ Ｔｈ ｅｕｔ ｓ ｏ ｄ ｔ ａ ／ ＭＳ ｗａ ｕｔ ｌ ｏ ｎ ｕ ｉ ，ａ ｄ ＭＳ＋ ６Ｂ ｏ ｇ ｓ ａ ｎ － Ａ ０ ２ｎ ／ ＋ＮＡＡ ． ／ ｓｓ ｉ ｂｅｆｒｔｅｐｏ ａ ａｉｎ ｏ ｒ ｔａｌｓ ． 培 Ｌ ０ ２ｍｇ Ｌ ｗａ ｕｔ ｌ ｏ ｈ ｒｐ ｇ ｔ ｆ ｏｈ ｌ ，ＭＳ ＡＡ １ ０ｍ Ｌ ｗａ ｕｔｂｅｆｒｔｅ ａ ｏ ｐ ｕ 十Ｉ ． ｇ／ ｓｓｉ ｌ ｏ ｈ ａ ｉｄ ｃｉｎｏ ｐ ｒｐ ｙｅ ｎ ｕ ｔ ｆｓｏｏ ｈ ｔ，ＭＳ＋Ｉ ． ／ ｓｓ ｉ ｂｅｆｒｒｏｉｇ ｏ ＢＡ １０ｍｇ Ｌ ｗａ ｕｔ ｌ ｏ ｔ ． ａ ｏ ｎ
亚洲百合组织培养快繁研究的开题报告
亚洲百合组织培养快繁研究的开题报告开题报告项目名称：亚洲百合组织培养快繁研究一、研究背景和意义百合是种贵重的观赏植物，具有高经济价值和观赏价值。
在亚洲地区，百合的栽培和销售已成为一个不断扩大的产业。
同时，百合种植也可以起到改善生态环境的作用。
然而，百合的自然繁殖速度较慢，根据现有的种繁育技术，只能进行有限的品种选择和繁殖。
为了解决此问题，研究百合的组织培养快繁技术，以实现大规模的生产和繁殖成为迫切需要的任务。
本项目旨在探讨适宜的百合组织培养方法，选育适合组织培养快速繁殖的优良品种，促进现代化、科学化的百合种植和多样化发展。
二、研究内容和关键点研究内容：1、百合愈伤组织培养技术研究。
探究合适的愈伤组织培养基组成和培养条件，并优选愈伤组织快速生长的品种。
2、百合组织增殖和快速繁殖。
采用组合激素处理愈伤组织，探讨适宜的增殖条件，建立高效的组织增殖快繁体系。
3、百合组织分化诱导和植株再生。
针对不同愈伤组织分化诱导，调整组合激素的种类和浓度；调整分化培养基的组成，研究最适合百合生长的培养条件。
进而探讨最佳的植株再生方法和条件。
关键点：1、对百合组织培养基成分的筛选实验，获得最适合百合愈伤组织生长的培养基配方。
2、探究愈伤组织分裂增殖的适宜的激素种类和浓度，建立最优的分裂处理方法，实现优良品种的快速繁殖。
3、研究百合组织分化过程中影响分化进程的因素及优化分化条件，以建立快速再生百合植株的体系。
三、预期结果和应用价值1.对百合愈伤组织培养方法的系统研究，探讨适合百合组织培养和增殖的最佳方案和条件。
实现从未开发的愈伤组织能够生长和快繁。
2.培育出适合组织培养快速繁殖的百合品种，建立高效快速繁殖技术，为鲜切花、盆栽花卉、花卉饰品等领域提供优良基质。
3.建立了适合百合再生的培养方法，实现百合植株快速再生，成效显著。
4.以上技术优先在亚洲地区推广应用，实现百合种植业的现代化、科学化发展，进而为人们提供更好的观赏和利用价值。
东方百合‘索邦’的离体培养研究
中国农业科技导报，2021,23(1)：51-57Journal of Agricultural Science and Technology东方百合'索邦'的离体培养研究贾明良，方荷芳，李同建，文锋，韩兴杰，金洪光，徐玲玲，廖亮*(九江学院药学与生命科学学院，江西九江332000)摘要:东方百合'索邦’作为市售主流鲜切花百合品种，具有巨大的市场潜力。
为满足市场需求，利用花器 官作为初始材料，对东方百合'索邦’离体培养涉及的愈伤组织诱导、丛生芽增殖及生根培养等相关技术进行研究。
结果表明，子房为合适的初始诱导外植体，进一步扩繁诱导愈伤组织时适宜选用叶片下部或鳞茎片为外植体，合适的愈伤组织诱导培养基为MS+2.0mg-L-12,4-D+0.2mg-L-16-BA+30g-L-1蔗糖+6.5g-L-1琼脂,pH5.8。
丛生芽增殖培养基为MS+1.0mg・L-16-BA+0.1mg-L-1NAA+30g-L-1蔗糖+6.5g-L-1琼脂, pH5.8。
生根培养基为MS+0.5mg-L-1NAA+30g-L-1蔗糖+6.5g-L-1琼脂,pH5.8。
结果为进一步完善东方百合'索邦’的离体培养体系，进行优质种球的规模化生产提供基础。
关键词:东方百合'索邦’；愈伤诱导;增殖;生根诱导doi:10.13304/j.nykjdb.2019.0818中图分类号:Q813文献标识码:A文章编号：1008-0864(2021)01-0051-07Study on in vitro Cultivation of Lilium orential'Sorbonne'JIA Mingliang,FANG Hefang,LI Tongjian,WEN Feng,HAN Xingjie,JIN Hongguang,XU Lingling,LIAO Liang*(College of Pharmacy and Life Sciences，Jiujiang Lniversity，Jiangxi Jiujiang32000，China)Abstract:As the main market fresh cut lily variety,Lilium orential'Sorbonne'has great market potential.In order to meet the market demand，flower organs were used as initial materials to study the callus induction，cluster bud proliferation and rooting culture of L.orential'Sorbonne'in vitro culture.The results showed that ovary was the appropriate initial explant for callus induction，and the lower part of leaf or bulb was the appropriate explant for further propagation.The suitable medium for callus induction was MS+ 2.0mg•L-12,4-D+0.2mg•L-16-BA+ 30g・L-1sucrose+6.5g*L-1agar,pH5.8.Cluster bud proliferation medium was MS+l.0mg・L-16-BA+0.l mg・L-1 NAA+30g・L-1sucrose+6.5g•L-1agar,pH5.8.Rooting culture medium was MS+0.5mg•L-1NAA+30g•L-1 sucrose+6.5g*L-1agar,pH5.8.The results provided a basis for further improving the in vitro culture system of L.orential'Sorbonne'and for large-scale production of high-quality seed bulbs.Key words:Lilium orential'Sorbonne'；callus induction；proliferation；roots induction百合为百合科百合属的多年生观赏植物，其品种丰富，花色多样，具有非常高的观赏价值。
亚洲百合组织培养快繁研究
亚洲百合组织培养快繁研究本试验选用新中心、布鲁诺两个亚洲百合品种的鳞片，新中心的鳞茎内叶片为外植体进行培养，分别在无性培养系建立，胚性愈伤组织的增殖和分化，不定芽的增殖，生根结鳞茎和移栽五个阶段进行了研究，得出以下结果：1．无性培养系建立用新中心和布鲁诺的鳞片作为外植体接种到各种培养基中进行培养，对其污染率、诱导分化率等进行比较。
试验结果表明，新中心随着6-BA和NAA浓度的提高，诱导率也有所提高，在所试验的培养基中，MS+6-BA3.0(单位：mg/L，下同)+NAA0.1培养基最适合新中心鳞片的分化，分化率为82.4％；而布鲁诺则随着6-BA和NAA浓度的提高，其诱导率随之下降，在MS+6-BA1.0+NAA0.2配比的培养基上分化率最高，可达84.6％。
用新中心鳞茎内叶片作为外植体建立无性培养系，试验结果表明，叶片的分化时间短，分化率和分化系数高。
在所试的培养基中，MS+6-BA2.0+NAA0.2培养基的分化效果比较好。
无菌苗叶片基部诱导不定芽的试验表明，新中心的较适合培养基为MS+6-BA2.0+NAA0.1，布鲁诺为MS+6-BA2.0+NAA0.2。
2．胚性愈伤组织增殖及分化在鳞茎胚性愈伤组织增殖及分化的试验中，6-BA浓度为2.0～2.5mg／L时较适合愈伤组织的增殖和分化，新中心的较适培养基为MS+6-BA2.5+NAA0.2，布鲁诺为MS+6-BA2.0+NAA0.1。
3．不定芽增殖在不定芽增殖培养中，6-BA配合低浓度(0.1～0.2mg/L)的NAA 对两种百合不定芽增殖有促进作用，其中新中心的增殖系数较高，以MS+6-BA3.0+NAA0.2的配比较佳，增殖系数为9.6；而布鲁诺的增殖系数较低，以MS+6-BA2.0+NAA0.2的配比较佳，增殖系数为2.7。
4．生根结鳞茎在生根结鳞茎培养中，糖浓度和大量元素浓度对百合生根结鳞茎都有影响。
糖有助于两种百合生根结鳞茎，较适浓度均为60g/L。
东方百合快繁培养基优化及多倍体诱导
东方百合快繁培养基优化及多倍体诱导前言百合（Lilium spp.）是多年生草本球根植物，百合科(Liliaeeae)百合属(Lilium)植物。
百合花大，色彩丰富，花姿优美，是世界名贵花种之一。
东方百合（L.tenuifolium oriental hybrid）是利用天香百合(L. auratum)的花型和药百合(L.speciosum)的深红、深粉、粉色等艳丽的花色及其芳香宜人的遗传特性培育出的[1]，其花型靓丽，色泽鲜艳，是栽培的主要新品种，在切花生产中占据重要地位。
西伯利亚（Siberia）和索邦（Sorbonne）是东方百合杂种群的两个品种。
一、国内外研究现状目前国际上百合育种主要以荷兰、日本、北美为首，研究方向集中在栽培与观赏性状的改良、育种策略及技术的创新与完善等方面，在种质资源的收集保存及濒危稀有物种的保护等方面也有一些研究[2]。
我们国家对百合的研究目前较集中在对百合快繁体系的优化以及脱毒处理和培育新品种上。
目前我国在生产百合时主要是从荷兰进口种球，据统计，2000年我国进口百合种球约5000万粒，且每年以20％的速度递增，需要花费大量外汇，且种球质量难以控制，病害日益增多[3]。
这种局面严重制约了中国百合鲜切花的发展，要改变这种局面，实现百合种球的国产化、降低生产成本的主要办法是通过组织培养繁育大量的优质种球。
其中选择合适的培养基是组织培养中关键的一步。
多倍体因其巨大性、低孕性、抗逆性及克服远源杂交的不育性等特点而被园艺育种家所青睐。
目前已成功地培育出无籽西瓜、无核葡萄、三倍体甜菜、毛白杨、郁金香、多倍体金鱼草等优良品种[2]。
百合多倍体研究在国内外已有报道，国外育种家Schenk(1987)[4]研究发现四倍体植株高大，具有更多的开花物质。
我国有关百合多倍体育种的工作多集中在离体条件下利用秋水仙素溶液处理百合鳞茎来获得多倍体[5]。
黄济明[6](1983年)诱导台湾百合(Lilium formosanum)×麝香百合(Lilium longiflorum)杂种F1，Adventure品系、Rainbow hybrid获得四倍体植株，并且茎秆、叶片、花果都显著大于二倍体类型；连雪斌[7]对兰州百合(Lilium davidii vaF．unicolor Cotton)进行多倍体诱导试验，并获得多倍体小鳞茎；谢晓阳，武全安[8]报道了在云南西北部川百合(Lilium davidii Duchautre)群体中，发现了该种三倍体个体，形态特征研究显示三倍体的数量性状如株高、茎粗、花果数等优于同一群体的二倍体植株，张兴翠等[9](2003)诱导得到药用百合多倍体植株；郑思乡[10]等(2004)也曾通过体细胞加倍的方法获得了百合多倍体：后来郑思乡[11]等(2005)又用秋水仙素处理获得了2n雌配子；还有何林[2]等(2006)用秋水仙素处理东方百合Tiber的鳞茎获得了多倍体植株。
3种百合组培快繁体系的优化
3种百合组培快繁体系的优化崔祺;贾桂霞【摘要】为优化百合组培快繁体系,以东方百合‘索邦’、野生淡黄花百合及新铁炮百合‘雷山3号’为研究对象,采用组织培养技术,研究不同外植体诱导分化、组培苗继代增殖和鳞茎增大的最佳培养条件.结果表明:淡黄花百合种子萌发的适宜培养基为MS+0.01 mg/L NAA+60 g/L蔗糖;适宜‘索邦’、‘雷山3号’鳞片诱导不定芽的适宜培养基分别为MS+2.0 mg/L 6-BA+ 0.3 mg/L NAA和MS+0.5 mg/L 6-BA+ 0.2 mg/L NAA;适宜这3种百合组培苗增殖培养的培养基为MS+2.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA;适宜‘索邦’无菌苗鳞茎增大的培养基为3MS+0.5 g/L AC+3.0 mg/L PP333+80 g/L蔗糖.【期刊名称】《湖南农业大学学报（自然科学版）》【年(卷),期】2014(040)006【总页数】6页(P621-626)【关键词】百合;再生体系;组织培养;快速繁殖【作者】崔祺;贾桂霞【作者单位】北京林业大学园林学院,北京100083;北京林业大学园林学院,北京100083;国家花卉工程技术研究中心,北京100083;花卉种质创新与分子育种北京市重点实验室,北京100083【正文语种】中文【中图分类】Q813.1+21.1 材料供试材料为淡黄花百合(L. sulphureum Baker)的成熟果实和新铁炮百合‘雷山3号’( L. formolongi ‘Raizan 3’)及东方百合‘索邦’(L. Oriental‘Sorbonne’)的种球。
试验所用基本培养基均为MS培养基，其中含6.5 g/L 琼脂粉和30 g/L蔗糖，并附加了不同质量浓度的植物生长调节剂6–BA、NAA。
培养基的pH值为5.85。
培养基在121 ℃高温下灭菌20 min。
培养条件：温度25 ℃，光照强度2 000 lx，每天光照时间12 h，相对空气湿度70%～80%。
百合组培快繁技术研究
百合组培快繁技术研究王永江;张振臣;张丽芳;乔奇;靳秀兰【期刊名称】《河南农业科学》【年(卷),期】2004(000)005【摘要】以食用百合鳞片作外植体,以MS为基本培养基,对其组培快繁技术进行了研究.结果表明,适宜的芽诱导培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+1.0 mg/L KT;适宜的快繁培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.01 mg/L NAA+0.5 mg/L KT;适宜的生根培养基为MS+0.1 mg/L IBA;芽诱导和快繁较适宜的条件为光照16 h/d、温度(25±1) ℃;在光照12 h/d、温度(25±1) ℃条件下较易生根.【总页数】4页(P55-58)【作者】王永江;张振臣;张丽芳;乔奇;靳秀兰【作者单位】河南省农业科学院植物保护研究所,河南,郑州,450002;河南省农业科学院植物保护研究所,河南,郑州,450002;河南省农业科学院植物保护研究所,河南,郑州,450002;河南省农业科学院植物保护研究所,河南,郑州,450002;河南省农业科学院植物保护研究所,河南,郑州,450002【正文语种】中文【中图分类】S644.1【相关文献】1.亚洲百合Strawberry and Cream花器官组培快繁技术研究 [J], 孙红梅;宋胜利;申屠玥;董航2.百合“西伯利亚”组培快繁及栽培技术研究 [J], 王艺;李荣琼系列百合‘Eyeliner’花器官组培快繁技术研究 [J], 张杰;李洋;孙红梅4.野生毛百合与松叶百合组培快繁技术研究 [J], 汪娜;郭太君;李雪;陈少鹏5.绿花百合组培快繁技术研究 [J], 杜帅;李丹;杜喜春;丁群英因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
索尔邦百合试管鳞茎的诱导
索尔邦百合试管鳞茎的诱导
祁宏英;徐洪国;张志
【期刊名称】《北方园艺》
【年(卷),期】2010(000)010
【摘要】以东方百合'索尔邦'鳞片为外植体,研究了不同因子对百合试管鳞茎的诱导及快速繁殖的影响.结果表明:鳞片不同部位对分化率影响的大小依次为:外层下部＞外层中部＞中层下部＞外层上部＞中层中部＞内层下部＞中层上部＞内层中部＞内层上部,分化率最高的部位为外层下部;百合鳞片诱导分化的最佳培养基为
MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L+蔗糖30 g/L,最适pH 5.8,分化率为88.3%.【总页数】2页(P180-181)
【作者】祁宏英;徐洪国;张志
【作者单位】齐齐哈尔大学,生命科学与农林学院,黑龙江,齐齐哈尔161006;齐齐哈尔大学,生命科学与农林学院,黑龙江,齐齐哈尔161006;齐齐哈尔大学,生命科学与农林学院,黑龙江,齐齐哈尔161006
【正文语种】中文
【中图分类】S682.2+9
【相关文献】
1.百合试管鳞茎诱导及膨大技术的研究 [J], 张洁;蔡宣梅;林真;郭文杰;方少忠
2.亚洲百合试管鳞茎诱导 [J], 赵家敏;祁宏英;李赟;张佳美;尹帮果
3.东方百合OT系列试管鳞茎的诱导与植株再生体系的建立 [J], 廖晴;周斌;玛尔哈
巴;刘巧玲;盛玮
4.百合试管鳞茎诱导技术研究 [J], 朱志国
5.用正交试验法优化香水百合试管鳞茎的诱导 [J], 祁宏英;徐洪国;杨伟丽
因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
两种东方系百合组织培养快繁技术
两种东方系百合组织培养快繁技术梁芳;蒋素华;崔波;李霞【期刊名称】《河南科学》【年(卷),期】2017(035)002【摘要】The scales of bulb from Lilium×sorbonne and Lilium×siberia were cultured on basic medium MS adding with different concentration of NAA,6-BA,TDZ,KT,IBA and 2,4-D. We screened the optimal culture medium for induction,propagation and differentiation of callus and produced the roots of regenerated plantlets. The results showed that,forLilium×sorbonne,the optimum medium was MS+IBA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L for callus induction, MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L for proliferation and MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L for differentiation. For Lilium×siberia,the optimum medium was MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L for induction and proliferation,and MS+IBA 1.0 mg/L+KT 0.5 mg/L for differentiation. The optimum rooting medium both was MS+IBA 1.0 mg/L+KT 0.5 mg/L. The results were useful for massive production and detoxication of Lilium.%以东方系百合索邦和西伯利亚的种球鳞片为外植体,以MS为基本培养基,添加NAA、6-BA、TDZ、KT、IBA、2,4-D等不同植物生长调节剂,筛选鳞片愈伤组织诱导、增殖、分化及再生苗生根的最佳培养基,为百合种质保存、组培快繁及脱毒奠定基础.结果表明,索邦百合在MS+IBA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L培养基中愈伤组织诱导效果最好,在MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L培养基中愈伤组织增殖最好,在MS+NAA 0.3 mg/L+TDZ 0.1 mg/L+KT0.2 mg/L培养基中分化最好;西伯利亚百合在MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L培养基中愈伤组织的诱导和增殖最好,在MS+IBA 1.0 mg/L+KT 0.5 mg/L 培养基中分化效果最好.二者均在1/2 MS+NAA 0.1 mg/L+IBA 0.01 mg/L培养基中生根最好.【总页数】5页(P209-213)【作者】梁芳;蒋素华;崔波;李霞【作者单位】郑州师范学院生物工程研究所,郑州 450044;郑州师范学院生物工程研究所,郑州 450044;郑州师范学院生物工程研究所,郑州 450044;郑州好日子园艺有限公司,郑州 450064【正文语种】中文【中图分类】Q945.6【相关文献】1.东方百合索邦的组织培养及鳞茎快繁研究 [J], 张永平;乔永旭;陈超;李艳梅;赵端端2.药用百合组织培养快繁技术研究 [J], 金亚征;俞凤芳;车瑞香;张荣梅;丁丽梅;方华3.丹东野生香百合的组织培养和快繁技术研究 [J], 陈景红4.南川百合种子萌发及组织培养快繁技术研究 [J], 张梅;张杰;王强;李懿5.百合组织培养及快繁技术研究 [J], 马少梅因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
北方园艺2007(9):191～192・生物技术・第一作者简介:李卫锋(1976Ο),男,陕西安康人,讲师、在读研究生,主要从事园艺植物细胞工程。
基金项目:中国工程物理研究院横向合作研究资助项目(2003205)。
收稿日期:2007-04-23荷兰百合新品种索尔邦的快繁技术研究李卫锋,王 丹,黄海涛(西南科技大学生命科学与工程学院,四川绵阳621002) 摘 要:选用荷兰百合品种索尔邦鳞茎、顶芽、茎段、叶等不同部位进行离体,以鳞茎为最佳外植体,以MS +6ΟBA 2.0mg/L +IAA 1.0mg/L 的培养基诱导丛生芽效果最好,其诱导率为96.7%,而且鳞片诱导中鳞茎中部表现出较大的器官发生潜力。
百合继代增殖培养以MS +BA 1.0mg/L +IAA 0.4mg/L 培养基为宜,组培苗在MS +IAA 0.5mg/L 的培养基中较易生根,生根时间为25d 左右。
关键词:百合;索尔邦;组织培养中图分类号:S 682.2+.9 文献标识码:A 文章编号:1001-0009(2007)09-0191-02 百合(L ilium ),百合科百合属的多年生草本植物,在全世界有90多种,百合花色花形各异,清雅脱俗,芳香宜人,是名贵的切花和盆花,其大部分鳞茎既可食用又能药用[1,3]。
全球范围内的百合球根生产主要集中在10个国家,生产面积最大的是荷兰,荷兰已生产的22.1亿百合球根,产值达1.2亿美元[4]。
荷兰百合索尔邦花色鲜艳,为百合中的名贵种类,深受人们的欢迎,在国内外市场上需求量很大,其种苗供不应求。
百合的繁殖主要靠鳞茎、分株进行,繁殖速度慢,而离体培养为加快繁殖,满足市场需求提供了理想的途径。
自1957年Robb [2]首次发表了百合的组织培养文章后,到现在成功的百合组织培养方法已有40多种[3]。
试验利用荷兰百合索尔邦的不同组织作外植体进行离体培养,找到最佳离体培养途径,大幅度提高繁殖速度,以便取得更大的经济效益。
同时,为百合辐射育种提供技术支持。
1 材料与方法荷兰百合来自云南隆格兰园艺公司,百合品种索尔邦直接来源荷兰。
取百合鳞茎去冷冻后于2005年10月16日播种,2006年2月20日,采用百合鳞片、叶片、茎段、花瓣作为外植体进行离体组织培养,用自来水将百合磷片冲洗干净后,在超净工作台上用70%酒精浸泡30s ,无菌水冲洗后,再用0.1%氯化汞溶液浸泡10min ,无菌水冲洗6～7次[7,8]。
用已消毒滤纸吸干鳞片表面水分,将外植体在无菌条件下切成0.5cm 2的小块,接种于诱导培养基上,基本培养基为MS ,琼脂0.7%,蔗糖3%,培养基p H 值为5.8,以121℃高温高压灭菌20min ,培养温度22～25℃,光照强度1500～2000lx ,光照时间10～12h/d 。
2 结果与讨论2.1 不同分化培养基对不同外植体小鳞茎分化的影响在4种分化培养基上分别接种鳞片切块、顶芽、茎段和叶片切块进行分化效果的试验,试验结果见表1。
表1 不同激素配比对不同外植体分化效果的影响外植体激素种类及配比6-BA IAA NAA/mg ・L -1接种外植体数开始分化(膨大)/d 形成小鳞茎或芽数/60d 分化率/%鳞片2.01.5060105693.32.0 1.006095896.72.00 1.060125591.72.00 1.560105083.3顶芽2.0 1.5060183456.72.0 1.0060224575.02.00 1.060253660.02.00 1.560283865.0茎段2.0 1.5060273456.72.0 1.0060252745.02.00 1.060322948.32.00 1.560292236.7叶片2.0 1.5060无002.0 1.006023002.00 1.060无002.01.560无 由表1可见,不同外植体在不同激素配比的培养基中,分化效果不同;鳞片切块的分化率最高,其最适分化培养基均为MS +6ΟBA 2mg/L +IAA 1mg/L ,其开始分化的天数最短,最高分化率达96.7%;其次是顶芽和茎段,分化率最低的叶片,仅为0。
表1中还反映出不同外植体在同一激素配比下分化率不同[7],这可能与不同外植体的生理状态差异有关。
2.2 不同激素浓度对索尔邦百合鳞片诱导出芽效果影响结果表明(表2):低浓度6ΟBA 的诱导培养基,对鳞片诱导出芽都有一定效果,但随着6ΟBA 浓度的升高,诱导效果反而有下降的趋势,其中以(2)号培养基MS +6ΟBA 2.0+IAA 1.0诱导出芽效果最好。
于接种9d 后191・生物技术・北方园艺2007(9):191～192鳞片明显增厚变红,15d后切口部位出现淡绿色愈伤组织,25d后切口出现绿色芽点。
待芽伸长,绿色叶片长出时,将芽切下转接到增殖培养基上。
表2 不同激素浓度对百合鳞片诱导效果培养基瓶数外植体芽苗数生长势(1)MS+6-BA1.0+IAA1.0206037++(2)MS+6-BA2.0+IAA1.0206076+++(3)MS+6-BA3.0+IAA1.0206051+++(4)MS+6-BA4.0+IAA1.0206045+(5)MS+6-BA1.0+IAA2.0206025++(6)MS+6-BA2.0+IAA2.0206037++(7)MS+6-BA3.0+IAA2.0206056++(8)MS+6-BA4.0+IAA2.0206045+ 2.3 不同部位的百合鳞片对诱导出芽效果的影响 表3 不同部位的百合鳞片诱导效果鳞片部位外植体数诱导的芽总数外部2061中部20103内部203 表3为不同部位的百合鳞片材料切成0.5cm2的块,接种60d后的观察结果,培养基均采用MS+ 6ΟBA2.0+IAA1.0。
结果表明:芽的形成与鳞片不同部位有关。
鳞茎中部的鳞片诱导出芽的能力最强,外部鳞片次之,内部鳞片几乎不能形成幼芽。
由于外部鳞片易受细菌侵染,增加了灭菌难度,故一般不采用外部鳞片。
利用中部鳞片进行组培,既能提高芽的诱导率,又能降低组培苗污染[8]。
2.4 不同激素浓度对百合丛生芽增殖的影响 表4 不同激素浓度对芽增殖效果处理培养基接种外植诱导的代号/Mg・L-1瓶数外植体芽苗数生长势(1)MS+6-BA0.5+IAA0.21030104+(2)MS+6-BA1.0+IAA0.21030113+++(3)MS+6-BA1.5+IAA0.21030124+++(4)MS+6-BA2.0+IAA0.21030107++(5)MS+6-BA0.1+IAA0.41030193++(6)MS+6-BA1.0+IAA0.41030111++(7)MS+6-BA1.5+IAA0.41030143+++(8)MS+6-BA2.0+IAA0.41030109++ 结果表明:低浓度的6ΟBA和IAA对芽增殖有较好的效果,其中以(6)号培养基对芽增殖效果最好。
将诱导出的芽转接到增殖培养基中后,20d后,芽基部膨大并分化出4～5个小芽,形成芽丛,待芽长出嫩绿叶片,长至1.5～2.0cm时可转到增殖培养基上继代培养,也可转接到生根培养基上使其生根。
30～40d继代培养1次。
2.5 生根与移栽将丛生试管芽切成单株,接种在1/2MS+IAA0.5的生根培养基上,10d后芽基部长出3～5条辐射状白色小根,25d后可全部生根。
移栽前将试管苗从培养室中移出开瓶练苗3～5d,移栽时,将苗从培养瓶中取出,洗去附着在苗上的培养基,栽于草炭+蛭石(2∶1)的基质中,保温保湿,待小苗长出侧根后可栽入大田。
3 小结利用植物组织培养技术进行百合快速繁殖,常通过5种途径诱导分化产生小植株[9]。
试验通过鳞茎诱导、腋芽发育和不定芽的产生,形成丛生芽块的过程。
百合快速繁殖使用的基本培养基有MS、LS、SH、N6、B5、Hy2 ponex等,其中最常用的是MS培养基。
在百合的快速繁殖中,应用的激素有:BA、KT、TDZ、IAA、NAA、I BA、BR、2,4ΟD[10],荷兰百合培养,选用高6ΟBA与低IAA配比的培养基较合适选用鳞茎内部组织效果最好;继代增殖培养继代培养,降低6ΟBA和IAA浓度效果较好;生根时单独使用IAA较好。
参考文献[1] 胥京宜.百合的开发与利用[J].湖北农业科学,1999(4):44.[2] ROBBSM.The culture of excised tissue from bulb scales of Lilium spe2 ciosum[J].J Exp Bot,1957(8):348Ο352.[3] 洪波.百合花卉的综述研究[J].东北林业大学学报,2000,28(2):68Ο70.[4] 赵丽辉,王艳秋,李详,等.荷兰百合引种的初步研究[J].吉林农业大学学报,2000,22(3):37Ο38,46.[5] 冷肖荀,王青华.外植体和培养因子对百合不定芽诱导的影响[J].河北林业科技,2000(1):1Ο2.[6] 谭文澄.观赏植物组织培养技术[M].北京:中国林业出版社,1991.[7] 罗丽萍,杨柏云,章敏华,等.百合的组织培养[J].中草药,2001,32(7):640Ο642.[8] 张淑娟,刘与明.组织培养法快速繁殖新铁炮百合F1植株[J].植物生理学通讯,1998,34(5):364.[9] 蒋细旺,司怀军.百合的组织培养技术综述[J].湖北农业科学,2004 (1):78Ο79.[10]陆美莲,许新萍.生物技术在百合上的应用[J].仲恺农业技术学院学报,2002,15(4):69Ο76.[11]卢其能.龙牙百合的组织培养和快速繁殖研究[J].江西农业学报, 2002,14(4):43Ο46.[12]傅玉兰,何风群.影响百合试管鳞茎增殖因素的研究.安徽农业大学学报[J].2001,28(2):179Ο181.[13]龙春林,程治英,王俐,等.兰州百合器官离体培养外植体位置效应观察[J].云南植物研究2004,26(2):221Ο225.Study on T issu e C u ltu re and P rop ag ation of H olland Lily in V itroL I WeiΟfeng,W ANG Dan,HUANG HaiΟtao(Life Science and Engineering C ollege,S outhwest University of Science and T echnology,Mianyang S ichuan621002,China)Abstract:The experiment selects Holland Lily variety S orbonne bulb,the terminal bud,the stem section,the leaf and so on,as is best,by MS+6ΟBA2.0mg/L+IAA1.0mg/L culture medium induction grows thickly,the bud effect to be best,its inductivity is96.7%,and in the scales induction,The central section displays the big organogenesis potential. The lily continues the generation of multiplication raise by MS+BA1.0mg/L+IAA0.4mg/L for is suitable,the tissue culture plant in MS+IAA0.5mg/L is easy to take root,about25days.K ey w ords:Lily;S orbonne;Tissue culture291。