动物生理学实验课件08家兔颈部动脉
家兔动脉血压的调节PPT课件
（二）肾上腺素能受体
α肾上腺素受体 β肾上腺素受体
肾上腺素受体激动药按照其对不同的受 体亚型的选择性而分为：
α受体激动药：如去甲肾上腺素 α、β受体激动药：如肾上腺素 β受体激动药：如异丙肾上腺素
肾上腺素受体阻断药可以分为：
α肾上腺素受体阻断药：以酚妥拉明为代表 β肾上腺素受体阻断药：以普萘洛尔为代表
当迷走神经兴奋时，节后神经元末梢释 放的递质乙酰胆碱(Ach)与心肌细胞膜 上的M受体结合，可导致心率减慢，房 室传导延迟和心肌收缩力减弱，甚至出 现房室传导阻滞。这些作用即是负性的 变时、变传导和变力作用
支配血管平滑肌的N称为血管运动N 交感缩血管神经 交感舒血管神经
中枢 分布 递质 受体 作用
①不参与血压调节 ②平时无作用
③与情绪、运动有关
阿托品
交感缩血管神经兴奋时，血管平滑肌收 缩，血管口径变小，血管外周阻力增大， 动脉血压升高。
交感舒血管神经兴奋时，血压下降。
.
9
颈动脉窦和主动脉弓
压力感受性反射起经常性调节作用 保持动脉血压的瞬时稳定。
减压反射（depressure reflex）
特点
阻断剂
血管的N支配与生理作用
交感缩血管N
延髓的缩血管中枢 (T1-L2-3侧角) 绝大多数血管 （多为单一支配）
NE α（主）、β2
交感舒血管N
皮质运动区
骨骼肌血管
Ach Ｍ
α受体→血管缩
∨ β2受体→血管舒 ①调节血压作用大 ②持续发放紧张性冲动 紧张性↑→血管缩 紧张性↓→血管舒
酚妥拉明
血管舒
普萘洛尔（心得安）：血压降低，心率 减慢。
β受体阻断药。 由于阻断心脏β1受体，可使心率减慢， 心收缩力减弱，心排出量减少，心肌耗 氧量下降，血压降低
家兔主动脉神经放电.
实验八家兔主动脉神经放电一、实验目的1、学习颈部脉神经及血管分离术2、学习在体主动脉神经冲动的引导方法3、观察主动脉神经放电特点及药物对神经冲动发放的影响二、实验原理1、主动脉神经(又称减压神经)是主动脉弓压力感受器的传入神经。
神经传入冲动的频率，在一定范围内随主动脉血压的升高或降低而相应增加或减少，从而使压力感受性反射增强或减弱，以维持动脉血压的相对稳定，即减压反射。
2、心电图导联心脏除极，复极过程中产生的心电向量，通过容积导电传至身体各部，并产生电位差，将两电极置于人体的任何两点与心电图机连接，就可描记出心电图，这种放置电极并与心电图机连接的线路，称为心电图导联（lead）。
常用的导联如下：（一）标准导联亦称双极肢体导联，反映两个肢体之间的电位差。
⏹Ⅰ导联将左上肢电极与心电图机的正极端相连，右上肢电极与负极端相连，反映左上肢（L）与右上肢（r ）的电位差。
当l 的电位高于r 时，便描记出一个向上的波形；当r 的电位高于l 时，则描记出一个向下的波形。
⏹Ⅱ导联将左下肢电极与心电图机的正极端相连，右上肢电极与负极端相连，反映左下肢（F）与右上肢（r ）的电位差。
当f 的电位高于r 时，描记出一个向上波；反之，为一个向下波。
Ⅲ导联：将左下肢与心电图机的正极端相连，左上肢电极与负极端相联，反映左下肢（F）与左上肢（l ）的电位差，当f 的电位高于l 时，描记出一个向上波；反之，为一个向下波。
3、心电图①、P波：心房除极化②、QRS：心室去极化③、T波：心室复极化T > 1/10R④、P-R间期：< 0.20s （60-90次/分）兴奋通过房室交界和房室束传导所需的时间⑤、S-T段：< 0.05 ~ 0.1 mV 心室肌细胞均处于复极化缓慢进行阶段，各部分之间没有电位差。
⑥、u波：T后0.02 ~ 0.04s，与T波方向一致，蒲肯野细胞复极化。
三、材料与方法（一）动物与器材⏹家兔⏹兔体手术台、RM6240计算机采集系统、音箱、常用手术器械、引导电极、止血钳、注射器、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水、肾上腺素（1∶5000）、乙酰胆碱（1∶10000）、石蜡油、棉花。
家兔颈总动脉插管实验报告
家兔颈总动脉插管实验报告家兔颈部神经颈总动脉的分离以及动脉的插管手术家兔颈部神经颈总动脉的分离以及动脉的插管手术篇二:家兔动脉血压的神经体液调节实验报告[目的与要求]1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法2观察神经,体液因素对心血管活动的影响[基本原理]在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器,由计算机采集系统记录下来[动物与器材]家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000)【方法与步骤】1、实验仪器的准备打开计算机采集系统，接通压力传感器。
从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。
2、连通液导系统并制压将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。
上侧管供制压时排除管内空气使用。
先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体(不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管)后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。
然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住(注意:液导系统内不可有气泡)。
继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。
家兔的麻醉气管插管,颈总动脉插管精品课件
可修改 欢迎下载
气管插管：
• 由颈正中剪开一约６cm的口，钝性分离皮 下筋膜分离出气管，穿线备用；
• 在甲状软骨下方第3-4个环状软骨上作一倒 “T”形切口，插入“Y”形气管插管，并用 线固定好
可修改 欢迎下载
颈部手术、气管插管
可修改 欢迎下载
可修改 欢迎下载
颈动脉插管技术
１、沿颈正中线从甲状软骨下到胸骨上沿作一约６cm 的口。
•
15、一个人炫耀什么，说明他内心.130 9:22August 13, 2020
•
16、业余生活要有意义，不要越轨。2 020年8 月13日 星期四 9时22 分9秒09 :22:091 3 August 2020
•
17、一个人即使已登上顶峰，也仍要 自强不 息。上 午9时22 分9秒 上午9时 22分09 :22:092 0.8.13
2、钝性分离皮下筋膜。 3、分离一侧颈总动脉，穿双线备用。 4、结扎远心端，在距结扎线约2-3cm处用动脉夹夹闭
颈总动脉近心端。 5、在靠近结扎线处用眼科剪剪一“v”形切口，切口大
小约为动脉口径的1/3－1/2。 6、将连接好压力换能器的动脉插管灌满肝素，向近心
端插入动脉插管，并用线结扎牢固。 7、打开换能器开关，观察并记录结果。
谢谢大家
可修改 欢迎下载
可修改 欢迎下载
颈动脉插管
可修改 欢迎下载
可修改 欢迎下载
可修改 欢迎下载
动脉插管和血压换能器内注满肝 素生理盐水以排气抗凝
可修改 欢迎下载
可修改 欢迎下载
NOTICE
• 动脉插管和血压换能 器内注满肝素生理盐 水以排气抗凝
• 压力换能器与动物心 脏等高
• 动脉插管与颈总动脉 呈一条直线
动物生理学实验课件08家兔颈部动脉
目的要求：会颈总动脉、迷走N、减压N、
交感N分离方法 • 学习颈部总动脉插管技术
操作过程：
1.称重 2.麻醉：20%氨基甲酸乙酯 3.固定 4.颈部剪毛 5.切开颈部皮肤，钝性分离皮下组织及肌肉组
考核内容
• 自行设计一个综合性的动物生理学实验
要求: 1、要有自己的创新 2、写出设计的依据和目的 3、实验方案 4、最后一次实验课交（注明姓名，联系方式）
织（位置在气管在正上方：仰卧位） 6.气管插管 7.分离神经和血管（两侧） 8.引导减压N放电 9.动脉插管
注意：
1.麻醉注射的部位一定要从耳缘静脉的远端 开始，而且务必要慢；
2.注意气管插管； 3.注意钝性分离，分离血管神经时，首先要
确认在一侧的气管旁边的总鞘摸内找到1个 颈总动脉，3根N,并最小的开始穿线，插管 时注意远心端要结扎。 4.结束时,先要再结扎动脉近心端才能拆插管， 不要把动脉夹弄丢，并通过注射空气处死 实验动物
家兔颈动脉插管实验报告
一、实验目的1. 掌握家兔颈动脉插管操作技术。
2. 观察并记录家兔颈动脉血液动力学指标的变化。
3. 分析颈动脉插管对家兔生理功能的影响。
二、实验原理颈动脉插管是一种常用的实验操作技术，通过将导管插入家兔颈动脉，可以直接采集血液样本，测定动脉血压、血氧饱和度等指标。
本实验旨在通过颈动脉插管，观察并记录家兔颈动脉血液动力学指标的变化，分析颈动脉插管对家兔生理功能的影响。
三、实验材料1. 实验动物：健康家兔一只（体重2.5-3.0kg）。
2. 实验器材：手术器械一套、颈动脉插管、动脉夹、生理盐水、肝素生理盐水、注射器、血压计、心电监护仪等。
3. 实验试剂：1%普鲁卡因、生理盐水、肝素钠等。
四、实验步骤1. 家兔麻醉：将家兔放入麻醉箱中，吸入1%异氟醚麻醉，待家兔意识丧失后，将其固定在手术台上。
2. 颈部皮肤消毒：用碘伏对家兔颈部皮肤进行消毒。
3. 颈部切开：在颈部正中做一长约3cm的切口，钝性分离皮下组织，暴露气管。
4. 颈动脉分离：用镊子钝性分离颈动脉，并用动脉夹夹住近心端，防止血液流出。
5. 颈动脉插管：将颈动脉插管插入颈动脉，插入深度约2cm，用动脉夹固定插管。
6. 生理盐水冲洗：用肝素生理盐水冲洗插管，确保插管通畅。
7. 血液采集：抽取动脉血液，测定动脉血压、血氧饱和度等指标。
8. 实验结束：将家兔颈动脉插管拔除，缝合颈部切口，观察家兔恢复情况。
五、实验结果1. 家兔颈动脉插管操作顺利，插管成功。
2. 家兔颈动脉血液动力学指标如下：- 动脉血压：插管前后血压无明显变化。
- 血氧饱和度：插管前后血氧饱和度无明显变化。
3. 家兔恢复情况良好，无明显并发症。
六、实验讨论1. 家兔颈动脉插管是一种常用的实验操作技术，可广泛应用于生理学、药理学等研究领域。
2. 本实验结果表明，家兔颈动脉插管操作简便，插管成功率高，对家兔生理功能影响较小。
3. 颈动脉插管有助于直接采集血液样本，测定动脉血压、血氧饱和度等指标，为实验研究提供准确的数据支持。
家兔动脉血压的测定 ppt课件
动脉血压的直接测定及其影响因素 方法：
1、2.称重、固定
7
动脉血压的直接测定及其影响因素
3. 麻醉 腹腔注射10%水合氯醛进行麻醉 （剂量350mg/kg） 换算为10%水溶液则为3.5ml/kg 麻醉药用量= 3.5ml/kg×兔体重kg
8
动脉血压的直接测定及其影响因素
4.选择手术视野 . 剪毛
5.由颈正中剪开 一约６cm的切口
9
动脉血压的直接测定及其影响因素
6.钝性分离皮下筋膜 和肌肉、暴露气管。 7.分离气管2侧颈总动 脉、2侧迷走神经、1 侧减压神经。
10
动脉血压的直接测定及其影响因素
8.在右侧插动脉 插管
11
动脉血压的直接测定及其影响因素 观察项目：
正常血压图：
血压变化
P53 12
笨，没有学问无颜见爹娘 ……” • “太阳当空照，花儿对我笑，小鸟说早早早……”
4
动脉血压的直接测定及其影响因素
影响因素： 心输出量、心率、外周阻力、主动脉和大动脉的弹性、 循环血量与血液系统容量比
5
动脉血压的直接测定及其影响因素 目的：
学习家兔动脉血压的直接测量方法 观察某些因素对动脉血压的影响并分析 其作用机制
•家兔动脉血压的测定
动脉血压的直接测定及其影响因素
血压:血液在血管中流动时对血管壁造成的侧压力 动脉血压的概念
2
精品资料
3
• 你怎么称呼老师？ • 如果老师最后没有总结一节课的重点的难点，你
是否会认为老师的教学方法需要改进？ • 你所经历的课堂，是讲座式还是讨论式？ • 教师的教鞭 • “不怕太阳晒，也不怕那风雨狂，只怕先生骂我
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
注意：
1.麻醉注射的部位一定要从耳缘静脉的远端 开始，而且务必要慢；
2.注意气管插管； 3.注意钝性分离，分离血管神经时，首先要
确认在一侧的气管旁边的总鞘摸内找到1个 颈总动脉，3根N,并最小的开始穿线，插管 时注意远心端要结扎。 4.结束时,先要再结扎动脉近心端才能拆插管， 不要把动脉夹弄丢，并通过注射空气处死 实验动物
考核内容
• 自行设计一个综合性的动物生理学实验
要求: 1、要有自己的创新 2、写出设计的依据和目的 3、实验方案 4、最后一次实验课交（注明姓名，联系方式）