β-葡聚糖、甘露寡糖的测定方法
酵母细胞壁多糖的作用及其成分检测方法
酵母细胞壁多糖的作用及其成分检测方法徐智鹏;胡骏鹏;周小辉【摘要】本文对酵母细胞壁多糖的作用及其功能性成分的检测方法进行综述.【期刊名称】《中国饲料》【年(卷),期】2015(000)011【总页数】3页(P40-42)【关键词】酵母细胞壁多糖;甘露聚糖;β一葡聚糖;作用;检测方法【作者】徐智鹏;胡骏鹏;周小辉【作者单位】安琪酵母股份有限公司,湖北宜昌443003;安琪酵母股份有限公司,湖北宜昌443003;安琪酵母股份有限公司,湖北宜昌443003【正文语种】中文【中图分类】S816.7酵母细胞壁多糖是一种源于酵母的天然高效免疫增强剂，其主要功能成分为甘露聚糖和β-1，3/1，6葡聚糖（以下称β-葡聚糖）。
甘露聚糖是寡糖一种，其相对分子质量为2000～20000，主链由几十个甘露糖分子以α-1，6糖苷键组成，支链由几个甘露糖通过α-1，2和α-1，3相连。
酵母β-葡聚糖不同于植物细胞壁中的β-1，4葡聚糖，作为来源于酵母细胞壁的重要结构物质，由10～20个单糖组成特异性结构的多糖，主链由D-葡聚糖通过β-1，3键的方式相结合，支链由β-1，6键结合的多聚糖（周祥等，2013）。
1 酵母细胞壁多糖的作用1.1 调节肠胃环境研究发现，病原菌如大肠杆菌、沙门氏菌、梭状芽孢杆菌和弧菌等的细胞表面都含有凝集素，其能特异性识别动物肠壁细胞上的“特异性糖类”受体，并与该受体结合而附着于肠壁上，在肠壁上发育繁殖，分泌毒素，导致肠道疾病的发生（刘源等，2007）。
酵母细胞壁的功能性成分甘露聚糖与病原菌在肠壁上的受体结构非常相似，并与凝集素有很强的结合能力。
凝集素一旦与甘露聚糖结合便无法继续附着于肠壁上，由于病原菌不能利用甘露聚糖，导致缺乏能量而死亡并排出体外。
而有益菌如双歧杆菌、乳酸杆菌等可以以甘露聚糖为能源，甘露聚糖进入消化道后段经浓缩才能被动物消化道菌群中的有益菌选择性发酵利用，以有机酸、CH4、CO2、H2 的形式释放或参与代谢，提供能量。
葡聚糖检测方法
葡聚糖检测方法（试剂盒方法翻译）一．提供试剂瓶1：exo-1,3-β-Glucanase (100 U/mL) plus β-Glucosidase(20 U/mL) suspension, 2.0 mL瓶2：Amyloglucosidase (1630 U/mL) plus invertase(500 U/mL) solution in 50 % v/v glycerol, 20 mL瓶3：GOPOD Reagent Buffer. Buffer (48 mL,pH 7.4), p-hydroxybenzoic acid and sodium azide(0.4 % w/v).瓶4：GOPOD Reagent Enzymes. Glucose oxidaseplus peroxidase and 4-aminoantipyrine. Freeze-dried powder.瓶5：D-Glucose standard solution (5 mL, 1.00 mg/mL) in0.2 % w/v benzoic acid瓶6：Contr ol yeast β-glucan preparation ( 2 g, β-glucan content stated on the bottle label).二．提供试剂的处理1.向瓶1中加入8ml醋酸钠缓冲液，分装-20℃存放。
2.直接使用瓶2中的试剂，稳定在4°C ~ 2年或者-20°C > 4年。
3.将瓶3的GOPOD试剂用纯化稀释水定容到1L，稳定在4°C >2年。
4.将瓶4的GOPOD试剂用纯化稀释水定容到1L，黑暗环境存放，稳定在4 °C 2 - 3个月,在-20°C或> 12个月。
5.直接使用瓶5中的试剂，在室温下稳定> 4年。
6.直接使用瓶6中的试剂，在室温下稳定> 5年。
β-葡聚糖
β-葡聚糖β-葡聚糖是用独特的工艺开发的一种新的产品，其来源于新鲜的食品啤酒酵母。
它是一种多糖，主要化学结构β-1，3 葡聚糖和β-1，6葡聚糖，其中前者具有抗肿瘤性质，而且能够极大地提高人体自然免疫力。
简介Glucan，为D-葡萄糖单体借由糖苷键的键结所形成的多糖。
由于D-葡萄糖残基彼此间结合样式的不同而分为多种，广泛分布于微生物、植物、动物界。
其中异碳头糖苷键是以β方式连接的为β-葡聚糖，如褐藻类的海带多糖（laminarin，主要以β-1，3键），地衣类的木聚糖（β-1，4和β-1，3键），高等植物的纤维素、（β-1，4结合）等[1]。
特点1. 优良免疫激活剂2. 强大的自由基清除剂3. 激活巨噬细胞、噬中性细胞等清除由辐射造成细胞分解碎片4. 能够使巨噬细胞辨别和破坏变异细胞5. 协助受损组织如淋巴组织细胞加速恢复产生细胞素（IL-1）6. 促使包括抗生素，抗真菌，抗寄生药在内的其他药物更好地发挥效用7. 减低血液中的低密度脂肪，提高高密度脂肪，减少高血脂的发生性状无色或略黄色粘稠溶液、略特性的的气味用途1．健康食品营养补充2．胶囊类3．功能饮料、口服液等4．医药及化妆品配料5．其他抗衰老、抗辐射等功能性食品测定方法β-葡聚糖含量的测定方法，大致可归纳为如下几类：（1）粘度法：其原理是大麦抽提液的粘度主要由β-葡聚糖产生(Burnett，1966；White等，1983)。
这种方法可靠性较差，因为不同来源的β-葡聚糖的分子量不同；而在葡聚糖含量相同时，分子量较大者产生的粘度较大，这样β-葡聚糖粘性的大小并不完全取决于其含量，也取决于分子量大小(Sanlinier等，1994)。
另外，抽提条件对其粘度有明显的影响。
（2）沉淀法：其原理是利用特定的盐或有机溶剂沉淀抽提液中的β-葡聚糖(Wood，1986)。
该方法的局限性在于抽提不能完全排除其它物质的干扰。
在高温下抽提时，抽提液中含有其它成分如淀粉等，因而干扰测定的结果。
β-葡聚糖测定方法
β-葡聚糖测定方法(总4页) -CAL-FENGHAI.-(YICAI)-Company One1-CAL-本页仅作为文档封面，使用请直接删除6.2 交联β-葡聚糖含量测定 AACC 32-236.2.1实验目的在大麦、麦芽、麦芽汁和啤酒产品质量控制中经常需要测定其中的β-葡聚糖含量，Megazyme方法很好的解决了测定中的系列问题，本方法能够在一天内测定50-100个样品。
本方法现在也适用于燕麦产品及燕麦纤维产品β-葡聚糖含量测定。
6.2.2实验原理样品水化后加入真菌多糖酶在pH6.5缓冲液中培养，提取液离心（或过滤）后加入β-葡萄糖苷酶，在葡糖糖氧化－过氧化酶缓冲液保护下产生葡萄糖。
图6.1 葡聚糖测定原理示意图Megazyme测试包：（可以测定100个样品）⑴全套测定方法；⑵真菌多糖酶；⑶β-葡萄糖苷酶；⑷葡糖糖标准液；⑸大麦和燕麦纤维标准样品。
6.2.3实验试剂：⑴真菌淀粉酶（bottle 1）〔（1-3）（1-4）β-D-葡萄糖4-葡聚糖水解酶〕：（活力>1000U/mL）制备：1.0mL真菌淀粉酶用20mM NaH2PO4缓冲液（pH6.5）稀释至20.0mL。
将溶液分装成5.0mL在冰箱中冷冻保存。
最终真菌淀粉酶浓度50U/mL。
⑵β-葡萄糖苷酶（bottle 2）：（活力>40U/mL）制备：将1.0mLβ-葡萄糖苷酶用50.0mM醋酸钠缓冲液（pH4.0）稀释至20.0mL。
将溶液分装成5.0mL在冰箱中冷冻保存。
最终β-葡萄糖苷酶浓度2U/mL。
⑶葡糖糖标准液：100μg⁄0.1mL，用0.2%叠氮化钠溶液溶解。
⑷大麦标准样品：含量见标签。
⑸燕麦纤维标准样品：含量见标签。
⑹NaH2PO4缓冲液制备（20mM，pH6.5）：3.12g NaH2PO4－2H2O溶解于900ml蒸馏水中，用100mM氢氧化钠溶液（4g/L）将pH值调至6.5（大约需50mL），加0.2g叠氮化钠，将溶液定容至1L。
β-葡聚糖测定方法
β-葡聚糖酶活力测定方法(NY/T911-2004)∙ 1.原理β-葡聚糖酶能将木聚糖降解成还原性糖。
还原性糖在沸水浴条件下可以与3,5-二硝基水杨酸（DNS)试剂反应显色反应。
反应液颜色的深度与酶解产生的还原糖量成正比，而还原糖的生成量又与反应液中β-葡聚糖酶的活力成正比。
因此，通过分光比色测定反应液颜色的强度，可以计算反应液中β-葡聚糖酶的活力。
∙ 2. 操作∙ 2.1.标准葡萄糖曲线的制作2.1.1 吸取PH5.5的0.1M乙酸-乙酸钠+缓冲溶液4.0mL,加入DNS试剂5.0mL，沸水浴加热5min。
用自来水冷却至室温，用水定容至25.0mL,制成标准空白样。
2.1.2 分别吸取葡萄糖溶液1.00mL、2.00mL、3.00mL、4.00mL、5.00mL、6.00mL和7.00mL,分别用PH5.5的0.1M醋酸缓冲溶液定容至100mL,配制成浓度为0.10mg/mL、0.20mg/mL、0.30mg/mL、0.40mg/mL、0.50mg、0.60mg/mL和0.70mg/mL葡萄糖标准溶液。
2.1.3 分别取上述浓度系列的葡萄糖标准溶液各2.00mL（做两个平行），分别加入到刻度试管中，再分别加入2.0mL缓冲液94.4)和5.0mLDNS试剂。
电磁振荡3s-5s,沸水浴加热5min。
然后用自来水冷却到室温，在用水定溶液至25mL。
以标准空白为对照调零，在540min处测定吸光度A值。
以葡萄糖糖浓度为Y轴、吸光度A值为X轴，绘制标准曲线。
每次新配制DNS试剂均需要重新绘制标准曲线∙ 3. 酶样测定吸取10.0mLβ-葡聚糖溶液,37℃平衡20min。
吸取10.0经过适当稀释的酶液，37℃平衡10min。
∙吸取2.00mL经过适当稀释的酶液（已经过37℃平衡），加入到刻度试管中，再加入5mLDNS试剂，电磁振荡3s-5s。
然后加入8.0g/lβ-葡聚糖溶液2.0ml，37℃保温30min,沸水浴加热5min。
灵芝及其相关产品中β-葡聚糖的测定
《灵芝及其相关产品中β-葡聚糖的测定》一、引言在当今社会，随着人们对健康和养生意识的提高，灵芝及其相关产品受到了广泛的关注和青睐。
作为一种珍贵的中草药，灵芝被传统中医视为“仙草”、“灵药”，被认为具有多种保健功能。
而其中的β-葡聚糖成分更是备受瞩目，被认为是灵芝功效的重要成分之一。
对灵芝及其相关产品中β-葡聚糖的测定变得至关重要。
二、β-葡聚糖的定义和作用1. β-葡聚糖是一种多糖类聚合物，由多个葡萄糖分子通过β-1,3-葡聚糖键和β-1,6-葡聚糖键连接而成。
它存在于许多植物和真菌细胞壁中，包括灵芝。
2. 研究表明，β-葡聚糖具有调节免疫功能、抗肿瘤、抗氧化、抗炎、抗病毒等作用，是灵芝保健功效的重要保障。
三、灵芝及其相关产品中β-葡聚糖的测定方法1. 具体测定方法包括但不限于高效液相色谱法、紫外光谱法、红外光谱法、核磁共振方法等。
这些方法各有优劣，需要根据实际情况进行选择。
2. 综合考虑测定方法的准确性、灵敏度、稳定性、成本等因素，高效液相色谱法被认为是目前测定β-葡聚糖的最佳方法。
四、灵芝产品中β-葡聚糖的含量标准1. 根据《灵芝孢子粉》（GB/T 21835-2008）标准可以得知，β-葡聚糖的含量是灵芝产品质量的重要指标之一。
通常，β-葡聚糖含量越高，产品的保健功效也越明显。
2. 目前，市场上灵芝产品的β-葡聚糖含量参差不齐，对其进行准确测定有助于消费者选择高品质的产品。
五、结语通过对灵芝及其相关产品中β-葡聚糖的测定方法和含量标准的了解，我们可以更好地认识灵芝产品，选择高质量的产品，并更好地享受灵芝的保健功效。
在未来的研究中，还需要不断完善测定方法，并建立更为科学的含量标准，以推动灵芝产品行业的健康发展。
个人观点：作为一名研究者，我认为对灵芝及其相关产品中β-葡聚糖的测定是非常重要的。
只有通过科学的手段对其进行准确测定，才能更好地保障消费者权益，促进行业良性竞争，推动灵芝产品的健康发展。
乳制品中酵母β-葡聚糖的检测方法
Quality Control乳制品中酵母β-葡聚糖的检测方法徐聪玲1，2，钟世欢1，2，张思奇1，2，黄 南1，2，杨天明1，王 辉11 浙江公正检验中心有限公司，浙江杭州 3100092 赞宇科技集团股份有限公司，浙江杭州 310009摘 要：[目的]目前国内尚无酵母β-葡聚糖在乳制品中定量检测方法的国家标准和行业标准。
本文利用离子色谱法建立快速、准确的乳制品中酵母β-葡聚糖检测方法。
[方法]样品加入沉淀剂离心后，倒去上清液，反复数次至无干扰，加入1 mol/L盐酸溶液，经121 ℃ 60 min酸水解，调节pH值稀释后，过钠柱，用离子色谱仪测定。
[结果]通过对水洗次数、色谱柱选择等因素选择优化，葡萄糖在1～20 μg/mL浓度范围内线性关系良好，相关系数R2>0.999，方法检出限为5 mg/100 g，定量限为15 mg/100 g；葡萄糖的回收率为84.8%～94.9%，相对标准偏差为2.34%（n=6）。
[结论]该方法稳定，定量准确，适用于乳制品中酵母β-葡聚糖含量的检测。
关键字：酵母β-葡聚糖；离子色谱仪；乳制品；葡萄糖文章编号：1671-4393（2023）07-0094-05 DOI:10.12377/1671-4393.23.07.180 引言酵母β-葡聚糖具有增强动物免疫力、抗肿瘤、抗感染、降低胆固醇、促进伤口愈合等功能，2010年5月20号，被原卫生部批准为新资源食品，可添加到乳制品、功能饮料、焙烤制品、糖果等食品中；2012年使用范围再次扩大至较大婴儿配方乳粉。
此外，酵母β-葡聚糖还具有脂肪样口感，可作为低卡路里食品添加剂，在色拉调料、奶酪类似物等冷冻甜点中作为脂肪替代物使用，具有广泛的应用价值，国内已有乳品企业将其作为营养强化剂添加在产品中。
但国内目前没有酵母β-葡聚糖在乳制品中定量检测方法的国家标准和行业标准，因此，本文利用酵母β-葡聚糖是一种无味无臭不溶于水的多糖，且不溶于乙醇、丙酮等有机溶剂，可与蛋白、基金项目：浙江省基础公益研究计划（LGN19B05003）作者简介：徐聪玲（1990-），女，黑龙江讷河人，大专，工程师，研究方向为食品机械与管理； 钟世欢（1992-），女，浙江杭州人，本科，工程师，研究方向为食品检测；张思奇（1995-），男，甘肃礼县人，本科，助理工程师，研究方向为食品检测；黄 南（1986-），女，浙江杭州人，本科，工程师，研究方向为食品检测；杨天明（1990-），男，浙江杭州人，本科，工程师，研究方向为食品检测；王 辉（1985-），男，浙江杭州人，大专，工程师，研究方向为食品检测。
β-1,3-葡聚糖含量测定方法
β-1,3-葡聚糖含量测定方法
β-1,3-葡聚糖（也称为1,3-β-D-葡聚糖或胞外多糖）是一种可溶性聚糖，常用于农业、食品和医药工业。
测定β-1,3-葡聚糖的含量可以通过以下方法之一实现：
1. 紫外可见光谱测定：将葡聚糖溶液经稀酸或酶处理后，通过
测定其在特定波长下的吸收光强度来确定其浓度。
这种方法对于测定
高浓度的β-1,3-葡聚糖样品较为简便。
2. 蒸发法：将葡聚糖溶液加热至葡聚糖变为糊状物，并将其继
续加热蒸发至干燥。
然后称量得到的干燥物的质量，通过质量差来计
算葡聚糖的含量。
这种方法对于测定低浓度的β-1,3-葡聚糖样品较为适用。
3. 原子吸收光谱法：通过将葡聚糖溶解后，在特定条件下使用
原子吸收光谱仪测定其特定金属离子沉淀物的质量，从而计算出含量。
这种方法对于含有特定金属离子的葡聚糖样品测定较为准确。
β-葡聚糖酶活性测定
β葡聚糖是由葡萄糖单体通过β，和β，糖苷键连接而成地型葡萄糖聚合物，它主要存在于单子叶禾本科谷实中地糊粉层和胚乳细胞壁中.β葡聚糖酶属于水解酶类，能有效地降解β葡聚糖分子中地β，和β，糖苷键，使之降解为小分子.由于在饲料中，大麦地β葡聚糖含量较高，难以被单胃动物消化利用，而且对饲料中各种养分地消化利用具有明显地干扰和抑制作用，成为麦类饲料中地抗营养因子.在饲料中添加β葡聚糖酶，能有效地消除β葡聚糖地抗营养作用，促进饲料中各种养分地消化和吸收利用，增进畜禽健康.在啤酒生产中，添加β葡聚糖酶可以加快麦汁和啤酒地过滤速度、提高麦汁得率、增加可发酵糖地含量.此外，β葡聚糖酶在造纸工业、日化工业等其它许多方面也有着广泛地应用，对β葡聚糖酶地研究将越来越受到人们地重视.β葡聚糖酶活力地测定方法主要有种：还原糖测定法（分光光度法）、粘度测定法和底物染色法.其中还原糖测定法简便实用，比较准确，而且结果重复性好，是广泛使用地一种酶活测定方法.其原理是：β葡聚糖酶能将β葡聚糖降解成寡糖和单糖，其具有地还原基团在沸水浴条件下可与试剂发生显色反应，显色地深浅与还原糖量成正比，而还原糖地生成量又与反应液中β葡聚糖酶地活力成正比，因此，可以利用比色测定反应液地吸光度值来计算还原糖地生成量，从而得出β葡聚糖酶地活力.但在该测定方法地具体操作中存在一些影响酶活力测定结果地因素，本文即对还原糖法测定β葡聚糖酶活力地几个重要影响因素进行研究，并得出最佳测定条件.材料与方法菌株与培养基发酵产酶菌株黑曲霉（）菌株，由本实验室保藏.固态发酵培养基麸皮、米糠、、微量元素液、蒸馏水，值，℃灭菌.微量元素液地组成为：溶液、、·、、、蒸馏水.发酵培养条件三角瓶装培养基（干料计），接种量为每瓶孢子悬液(×)，发酵温度℃，培养.试剂与溶液β葡聚糖溶液准确称取β葡聚糖()，加入无水乙醇润湿，再加入缓冲液，同时缓慢加热直至β葡聚糖完全溶解，冷却至室温，用缓冲液定容至，底物溶液℃保存，内用完.葡萄糖标准贮备溶液( )称取烘干至恒重地无水葡萄糖，精确至，用水溶解并定容至.葡萄糖标准溶液分别吸取葡萄糖标准贮备溶液、、、、、、于容量瓶中，用水定容至，盖塞，摇匀备用.试剂称取，二硝基水杨酸，置于约水中，逐渐加入氢氧化钠，在℃水浴中(磁力)搅拌溶解，再依次加入酒石酸钾钠、苯酚(重蒸) 和无水亚硫酸钠，待全部溶解并澄清后，冷却至室温，用水定容至，过滤.贮存于棕色试剂瓶中，于暗处放置后使用.粗酶液地制备取固体发酵曲于三角瓶中，加入缓冲液，振荡抽提，过滤离心去除孢子后，℃保存备用.缓冲液乙酸缓冲液、磷酸盐缓冲液、柠檬酸缓冲配制液见叶宝兴主编《生物科学基础实验》（）.标准曲线地制作方法按表规定地量，分别吸取葡萄糖标准溶液、缓冲溶液和试剂于各管中（每管做个平行样），混匀.将标准管同时置于沸水浴中，反应.取出，迅速冷却至室温，用水定容至，盖塞，混匀.在波长处测量吸光度.以葡萄糖量为横坐标，以吸光度为纵坐标，绘制标准曲线，获得线性回归方程.酶活力测定方法取支刻度具塞试管，分别加入β葡聚糖底物溶液（由值乙酸乙酸钠缓冲液配制），置℃水浴中保温.在其中一支试管中加入稀释酶样，混匀，置于℃水浴中准确反应，加入试剂至两支试管中，混匀.在另一支试管(空白管)中加入稀释酶样，同时将两支试管放入℃水浴中反应，取出置于冷水中冷却至室温，加水定容至，盖塞混匀，在处测量酶样对空白地吸光度，计算酶活力.酶活力计算标准曲线：.式中：——吸光度；——葡萄糖量()；——斜率；——截距.式中：——与μ之间地换算系数；——酶液稀释倍数；——葡萄糖分子量；——测定所取酶液量()；——反应时间（）.β葡聚糖酶活力单位定义：在测定条件下，每分钟水解β葡聚糖产生μ还原糖（以葡萄糖计）所需地酶量，定义为一个酶活力单位（）.结果与讨论最佳吸收波长地确定按照上述标准曲线地制作方法，分别测定在不同波长处地吸光度，制作标准曲线，见表、图.在分光比色测定时，波长地选择不仅需要考虑灵敏度，同时还要考虑数据地稳定性和重复性.试验测定了不同波长处地值制作标准曲线.由表、图可以看出，在相同地糖浓度时，随着波长地升高，值呈下降趋势.在波长为时，测得地值最大，灵敏度最高，但数据地稳定性较差;在波长为时，测得数据地稳定性较好，但是灵敏度偏低；在波长为时，测得地数据灵敏度较高，而且稳定性也较好.所以，最佳测定波长确定为.线性回归方程为：，.葡萄糖沸水浴显色反应时间地确定分别以种不同浓度地葡萄糖标准溶液与试剂经沸水浴显色反应发现，沸水浴时间不同对显色反应结果影响较大，如图所示，种糖浓度反应结果相似，均为在～之间，反应速度较快，值增加幅度较大；～之间，反应趋于平缓，值增加缓慢；以后，所测得地值基本保持不变，说明显色反应已经完全，因此，沸水浴显色时间确定为.酶活力测定底物浓度地确定底物浓度是决定酶解反应速度地重要因素.测定β葡聚糖酶活力时底物浓度一般配制在之间，这个浓度范围达到了酶活力测定时底物过量地要求，既可保证酶和底物地充分反应，又可降低底物中小分子低聚糖对测定结果地影响，试验选用底物浓度为.酶活力测定反应时间地确定（见图）不同种类地酶其线性反应时间地范围也不同，在酶地线性反应时间内测定地酶活力较为准确.在相同反应体系下，试验测定了酶解反应从～时产生地还原糖地量.由图可以看出，酶解产生地还原糖在前内线性关系较好，产物生成量与反应时间成正比，在～之间产物生成速率逐渐减慢，以后产物生成量几乎不再增加.因此在～时处于一级反应阶段，产物生成速度一致，是酶活力测定地最佳时间，但反应时间短产物含量低时测定酶活力，会受到粗酶液中其它水解酶作用或底物纯度等因素对酶活力测定带来地干扰，选择产物生成量在以上地时间比较好，因此应选择作为酶活力测定地反应时间.酶活力测定缓冲液种类地确定（见图）缓冲液地种类和值对酶地活性影响较大，同一种酶在不同缓冲液和不同值时测定地活性不同.只有在某种缓冲液和某种值范围内才表现出最大活性.一般认为酶分子处在最适值时，其活性基团地解离状态最易与底物结合，而处在其它值时，改变了活性基团地解离状态，酶和底物结合减弱，活性就降低.由图可知，试验测定了种不同缓冲液体系条件下地酶活，随着值地增大，种缓冲液体系测得地酶反应活性均呈现出先增加后下降地趋势，但乙酸乙酸钠缓冲液体系测得地酶活力明显高于其它两种缓冲液体系.因此，在β葡聚糖酶活力测定时应选用乙酸乙酸钠缓冲液体系.酶活力测定最佳值地确定选择乙酸乙酸钠缓冲液体系，其它反应条件不变，改变缓冲液体系值进行酶活力测定，如图所示，当值为时，测得地值最大，酶活力最高.因此，酶活力测定应在值时进行.酶活力测定反应温度地确定（见图）酶解反应时地温度对酶反应速度影响较大，当其它条件不变时，温度每改变℃，反应速度可相差以上.本文在乙酸乙酸钠缓冲液值时，测定了不同温度条件下酶解反应时地产物生成量，如图所示，随着温度地升高，测得地值呈现先升高后下降地趋势，在温度为℃时，测得地值最大，产物生成量最多，酶活力最高.因此，β葡聚糖酶活力测定应在℃下进行.结论通过以上对还原糖法β葡聚糖酶活力测定条件地研究，可以看出在进行酶活力测定时，测定波长、沸水浴显色时间、底物浓度、酶解反应时间、反应缓冲液种类以及反应值均对酶活力测定有较大影响.经试验确定β葡聚糖酶活力地最佳测定条件为：β葡聚糖底物浓度，值乙酸乙酸钠缓冲体系，酶解反应温度℃，酶解反应时间，沸水浴显色，测定波长.。
β-葡聚糖的测定
ß-葡聚糖含量的测定一、原理刚果红与ß-葡聚糖形成有色物质，当反应条件（如pH、缓冲液离子强度、刚果红试剂浓度）一定时，在ß-葡聚糖溶液中ß-葡聚糖含量的增加而增加，符合比尔定律。
二、试验材料1、仪器721分光光度计、恒温水浴锅、pH计。
2、试剂及溶液配制（1）ß-葡聚糖标样备用液：称取ß-葡聚糖0.005g，先用少量无水乙醇湿润后转移到50mL容量瓶中，再加入少量蒸馏水于70℃水浴中助溶，冷却后定容至50mL，摇匀备用。
（2）0.1MpH8.0磷酸缓冲液A液：称取 Na2HPO4.H20 14.196克溶解于蒸馏水中并定容至1升。
B液：称取 NaH2PO4.H20 1.560克溶解于蒸馏水中并定容至100毫升。
用B液调节A液至pH8.0。
（3）100mg/L刚果红溶液：称取100mg刚果红溶解至1000mLpH8.0磷酸缓冲液中。
三、测定步骤1、ß-葡聚糖标准曲线的绘制上述各试管中依次加4.0毫升刚果红（加入时开始准确计时），于20℃水浴中准确反应10分钟，550nm比色，以0号管中的液体作空白调零测吸光度A，以ß-葡聚糖浓度C为横坐标，吸光度A为纵坐标绘制标准曲线，在曲线上求吸光度为1时相当的ß-葡聚糖微克数（即K值）。
2、样品的制备及稀释普通麦汁：稀释10倍或20倍待测。
协定麦汁：稀释10倍或20倍待测。
啤酒：稀释10倍或20倍待测。
3、样品的测定将稀释好的样品各2.0毫升分别加入4.0毫升刚果红准确计时，20℃水浴中准确反应10分钟，以2.0毫升蒸馏水代替样品作空白调零，测反应液的吸光度A。
4、计算样品的ß-葡聚糖（mg/L）=(K/2)×吸光度A×稀释倍数n5.麦芽样品的测定按协定法制得协定麦汁，测麦汁的ß-葡聚糖含量X（mg/100mL），再根据麦芽的水份W、麦汁浸出物含量G、麦汁比重D计算麦芽的ß-葡聚糖的含量。
风味物质的测定方法β-葡聚糖的测...
啤酒中风味物质的测定方法β-葡聚糖的测定TBA（硫代巴比妥酸）法测定啤酒中羰基化合物RSV（风味保鲜值）EBC法测定啤酒中的总多酚二氧化硫的测定1 β-葡聚糖的测定1.1 原理刚果红在一定条件下与β-葡聚糖反应具有高度的专一性，并形成有色物质，β-葡聚糖在适当的范围内，吸光度的变化与β-葡聚糖的浓度成正比。
1.2 实验材料1.2.1 仪器分光光度计、恒温水浴锅1.2.2 试剂(1)、β-葡聚糖标准溶液：准确称取β-葡聚糖（sigma公司）0.0010克，加入少量的蒸馏水70℃水浴助溶，冷却至室温后，定容至10ml，配成0.1mg/ml溶液，冰箱保存。
（2）、0.2M PH8.0的磷酸缓冲溶液：取0.2mol/L Na2HPO4.12H2O（71.64g/L）947ml，0.2mol/L NaH2PO4.2H2O（31.21g/L）53ml。
（3）、刚果红溶液：100mg刚果红试剂溶于0.2M的PH8.0的磷酸缓冲溶液，定容至1L。
1.3 实验方法1.3.1 标准曲线的绘制取6组试管，除0号为1支外，其余均为3支平行管。
按下表1将标准β-葡聚糖溶液进行稀释。
以上各管中，分别加入4.0ml刚果红溶液摇匀，20℃下准确作用10分钟，用1.0cm 的比色皿，于550nm波长下测定吸光度，以0号管中反应液作空白调零。
以β-葡聚糖含量为横坐标，吸光值A为纵坐标，绘制标准曲线。
麦汁或除气啤酒，稀释20倍。
取稀释液2.0ml+4.0ml刚果红溶液摇匀，20℃，反应10分钟，550nm比色，以2.0ml 蒸馏水代替样品稀释液20℃、10分钟做空白调零，测样品反应液的吸光值，根据标准曲线可查得反应液的β-葡聚糖含量。
样品中β-葡聚糖含量（ppm）=A×20A：根据标准曲线查得反应液的β-葡聚糖含量20：稀释倍数1.4注意事项(1)刚果红的配制一定要准确，否则直接影响到结果的准确性。
(2)β-葡聚糖的配制要用标准药品，注意密封保存，在冰箱中放置。
葡聚糖检测方法
葡聚糖检测方法（试剂盒方法翻译）一．提供试剂瓶1：exo-1,3-β-Glucanase (100 U/mL) plus β-Glucosidase(20 U/mL) suspension, 2.0 mL瓶2：Amyloglucosidase (1630 U/mL) plus invertase(500 U/mL) solution in 50 % v/v glycerol, 20 mL瓶3：GOPOD Reagent Buffer. Buffer (48 mL,pH 7.4), p-hydroxybenzoic acid and sodium azide(0.4 % w/v).瓶4：GOPOD Reagent Enzymes. Glucose oxidaseplus peroxidase and 4-aminoantipyrine. Freeze-dried powder.瓶5：D-Glucose standard solution (5 mL, 1.00 mg/mL) in0.2 % w/v benzoic acid瓶6：Contr ol yeast β-glucan preparation ( 2 g, β-glucan content stated on the bottle label).二．提供试剂的处理1.向瓶1中加入8ml醋酸钠缓冲液，分装-20℃存放。
2.直接使用瓶2中的试剂，稳定在4°C ~ 2年或者-20°C > 4年。
3.将瓶3的GOPOD试剂用纯化稀释水定容到1L，稳定在4°C >2年。
4.将瓶4的GOPOD试剂用纯化稀释水定容到1L，黑暗环境存放，稳定在4 °C 2 - 3个月,在-20°C或> 12个月。
5.直接使用瓶5中的试剂，在室温下稳定> 4年。
6.直接使用瓶6中的试剂，在室温下稳定> 5年。
葡聚糖检测方法
葡聚糖检测方法全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：葡聚糖是一种多糖类物质，由葡萄糖分子通过α-1,4-键和α-1,6-键连接而成，是植物和真菌细胞壁的重要组成部分。
在生物学研究中，对葡聚糖的检测具有重要意义，可以用于评估细胞壁的结构和特性，了解生物体内的代谢和生长状态。
本文将介绍几种常见的葡聚糖检测方法，并对其原理、优缺点进行详细分析。
一、葡聚糖检测方法1. 酚-硫酸法酚-硫酸法是一种常用的葡聚糖检测方法，其原理是将葡聚糖与硫酸和苯酚反应生成含有葡聚糖的复合物，再通过比色法测定其吸光度来检测葡聚糖的含量。
该方法简单易行，操作方便，灵敏度高，适用于各种类型的样品。
2. 离心法离心法是一种通过葡聚糖在碱性环境下形成胶束，再通过离心分离的方法来检测葡聚糖含量的方法。
该方法操作简单，准确性高，适用于测定葡聚糖在植物细胞壁中的含量。
3. 光学显微镜法光学显微镜法是一种直接观察样品中葡聚糖微观结构的方法。
通过光学显微镜观察样品的形态特征，可以初步判断样品中葡聚糖的含量和分布情况。
4. 免疫学方法5. 核磁共振法核磁共振法是一种通过核磁共振技术分析样品中葡聚糖分子结构的方法。
通过核磁共振技术可以确定葡聚糖的化学结构、分子量和三维结构，是一种高分辨率的葡聚糖分析方法。
酚-硫酸法操作简单、费用低廉，适用于大量样品的快速检测。
但是该方法对于样品的选择性较差，易受其他成分的干扰，精密度不高，需要在检测过程中进行注意控制。
离心法测定葡聚糖含量的准确性高，适用于复杂样品的检测。
然而该方法需要较长时间的离心过程，对设备和操作人员的要求较高，不适用于高通量的样品分析。
核磁共振法是一种高分辨率的葡聚糖分析方法，可以提供葡聚糖分子结构的详细信息。
但是该方法设备昂贵，操作复杂，对实验环境和操作人员的要求较高，不适用于常规实验室的葡聚糖检测。
三、总结葡聚糖是一种重要的多糖类物质，其检测方法多样，各有优缺点。
在具体的研究和实践中，应根据不同的实验目的和样品特性选择合适的检测方法，确保葡聚糖含量的准确测定。
高效液相色谱法测定酵母细胞壁中甘露聚糖和β-葡聚糖
高效液相色谱法测定酵母细胞壁中甘露聚糖和β-葡聚糖徐婷婷;刘艳;张子健;周雪玲;陈志颖【期刊名称】《中国酿造》【年(卷),期】2016(035)007【摘要】建立了利用高效液相色谱同时检测酵母细胞壁中的甘露聚和β-葡聚糖含量的方法.色谱条件为采用Welch Sugar-Ca(7.8 mm×300 mm)色谱柱,以纯水为流动相,流速为0.5 mL/min,柱温为80℃,示差折光检测器进行检测.结果表明,甘露聚糖和β-葡聚糖在200～1 000 μg/mL范围内与峰面积呈良好的线性关系,方法的相对标准偏差＜1.15％,回收率为98％～100％.该方法简单,准确方便,适用于酵母细胞壁中甘露聚糖和β-葡聚糖含量的检测.【总页数】4页(P180-183)【作者】徐婷婷;刘艳;张子健;周雪玲;陈志颖【作者单位】唐山拓普生物科技有限公司,河北唐山063000;唐山拓普生物科技有限公司,河北唐山063000;唐山拓普生物科技有限公司,河北唐山063000;唐山拓普生物科技有限公司,河北唐山063000;唐山拓普生物科技有限公司,河北唐山063000【正文语种】中文【中图分类】TS261.1【相关文献】1.离子色谱-脉冲安培检测法测定酵母细胞壁中β-葡聚糖和甘露寡糖 [J], 李仁勇;梁立娜;牟世芬;蔡亚岐2.柱前衍生化HPLC法测定酵母细胞壁中的甘露聚糖与β-葡聚糖 [J], 林钦恒;郑家概;蔡大川;林奕云;夏冰;张飞3.酵母细胞壁中β-葡聚糖在水产养殖中的研究进展 [J], 易建华;杨凡;聂琴;戴晋军;胡骏鹏4.啤酒酵母细胞壁中甘露聚糖检测方法研究 [J], 陈志颖;江建梅;徐婷婷;舒媛;陈冠青;吴振;张子健5.柱前衍生高效液相色谱法测定酵母培养物中甘露聚糖的含量 [J], 张相飞;刘明;李文辉因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
β-葡聚糖的测定
ß-葡聚糖含量的测定一、原理刚果红与ß-葡聚糖形成有色物质，当反应条件（如pH、缓冲液离子强度、刚果红试剂浓度）一定时，在ß-葡聚糖溶液中ß-葡聚糖含量的增加而增加，符合比尔定律。
二、试验材料1、仪器721分光光度计、恒温水浴锅、pH计。
2、试剂及溶液配制（1）ß-葡聚糖标样备用液：称取ß-葡聚糖0.005g，先用少量无水乙醇湿润后转移到50mL容量瓶中，再加入少量蒸馏水于70℃水浴中助溶，冷却后定容至50mL，摇匀备用。
（2）0.1MpH8.0磷酸缓冲液A液：称取 Na2HPO4.H20 14.196克溶解于蒸馏水中并定容至1升。
B液：称取 NaH2PO4.H20 1.560克溶解于蒸馏水中并定容至100毫升。
用B液调节A液至pH8.0。
（3）100mg/L刚果红溶液：称取100mg刚果红溶解至1000mLpH8.0磷酸缓冲液中。
三、测定步骤1、ß-葡聚糖标准曲线的绘制上述各试管中依次加4.0毫升刚果红（加入时开始准确计时），于20℃水浴中准确反应10分钟，550nm比色，以0号管中的液体作空白调零测吸光度A，以ß-葡聚糖浓度C为横坐标，吸光度A为纵坐标绘制标准曲线，在曲线上求吸光度为1时相当的ß-葡聚糖微克数（即K值）。
2、样品的制备及稀释普通麦汁：稀释10倍或20倍待测。
协定麦汁：稀释10倍或20倍待测。
啤酒：稀释10倍或20倍待测。
3、样品的测定将稀释好的样品各2.0毫升分别加入4.0毫升刚果红准确计时，20℃水浴中准确反应10分钟，以2.0毫升蒸馏水代替样品作空白调零，测反应液的吸光度A。
4、计算样品的ß-葡聚糖（mg/L）=(K/2)×吸光度A×稀释倍数n5.麦芽样品的测定按协定法制得协定麦汁，测麦汁的ß-葡聚糖含量X（mg/100mL），再根据麦芽的水份W、麦汁浸出物含量G、麦汁比重D计算麦芽的ß-葡聚糖的含量。
β-葡聚糖、甘露寡糖的测定方法
A.1原理根据β-葡聚糖和甘露寡糖在流动相和液相色谱柱的固定相之间具有不同的分配系数，将样品注入液相色谱柱，用H2O做流动相，糖类分子流出后，经示差检测器检测，用外标法定量。
A.2试剂和材料除非另有说明，在分析中仅使用确认为分析纯的试剂；蒸馏水或去离子水或符合GB/T6682中规定的一级水或相当纯度的水。
试验中所用制品按GB/T 603的规定制备。
A.2.1盐酸：37%。
A.2.2乙腈：色谱纯。
A.2.3氢氧化钠：40%。
A.2.4葡萄糖和甘露糖混合标液（1000mg/L）：分别称取葡萄糖和甘露糖各0.100g，用纯水定容100mL后用0.45μm微孔滤膜过滤，备用。
A.3仪器A.3.1水浴锅。
A.3.2漩涡混合器。
A.3.3电炉。
A.3.4手提式压力蒸汽灭菌锅。
A.3.5高压液相色谱仪；带示差检测器。
A.4分析步骤A.4.1样品处理精确称取1.000g（准确至0.0002g）样品放入一个20mL的耐热玻璃制的带螺帽的小试管中，加入7.5mL盐酸（37%），小心的将小瓶盖近后用漩涡混合器混合，得到均一的悬浮液。
将小瓶放入30℃水浴中处理45min，每15min用漩涡混合器震荡混合一次。
然后将悬浮物定量的转移到200mL杜氏瓶中（同时用约70-80mL的水洗涤后倒入瓶中），将瓶子放入高压灭菌锅121℃处理60min。
完成后马上冷却，将溶液调pH到6-7，然后定容至200mL。
使用0.45微米孔径的醋酸纤维素膜过滤备用。
A.4.2测定A．4.2.1 液相色谱参考条件A．4.2.1．1 色谱柱：Hyper REZ XP Carbohydrate Ca++，长300mm，内径7.7mm，粒径8μm。
A．4.2.1．2 柱温：70℃。
A．4.2.1．3 流动相：H2O，用前过0.22μm滤膜。
A．4.2.1．4 流速：0.6 ml/min。
A．4.2.1．5 进样体积:40μl。
A.4.3标准曲线的绘制分别吸取甘露糖/葡萄糖标液12.5、25.0、37.5mL到50mL容量瓶中，用高纯水定容到刻度，得到甘露糖、葡萄糖各为250、500、750、1000mg/L的混合标样。
国际标准酶法测定β葡聚糖含量的研究
粮油食品科技 第 !$ 卷 #**) 年 第 ) 期
用量继续增加， 酶解液的吸光度基本保持不变， 说明 此时 ! % 葡聚糖使用量与测定过程中酶用量已经达到 平衡， 因此 ! % 葡聚糖的使用量选为 ! " &’(。 图 - 为纤 维 素 酶 （浓 度 为 &*5 , ’(） 的加量对! % 葡聚糖的 水 解 作 用。 由 图 - 可 知， 在 选 定 的 * " !’( 纤维素酶对! 6 - " *’( 纤维素 酶 加 量 范 围 内， %葡 聚 糖的水解结果基 本 相 同， 说 明 添 加 * " !’( 的 酶 量 已 经可以将 ! " &’( 的 ! 所以 纤 维 素 % 葡聚糖彻底分解， 酶的添加量选为 * " !’(。
供。 高温" （"& 万5 6 78） 、 糖化酶 （"& 万 5 6 78） 、 ! 淀粉酶 纤维素酶 （%& 万 5 6 78） 由天津市诺奥 科 技 发 展 有 限 公司提供。 大麦 ! 葡萄糖氧化 ! 葡聚糖标准品， ! 葡聚 糖 酶， ! 酶! 过氧化 酶 试 剂 盒 （ 9:;:< ） 试 剂 盒 购 于 =>?7@ 公 司。 浓硫酸 （分 析 纯） ， 苯酚 （分 析 纯） ， 乙醇 （分 析 纯） ， 葡萄糖标准品 ! 葡聚糖试剂盒购于伊普瑞斯科技有限公司。 ! " $ # 实验方法 "$#$ " " $# $ #
葡聚糖的测定方法国外一般采用的是酶法此法具有准确性高的优点但其成本太高且测定使用药品不易购买测定时间长
粮油食品科技 第 "’ 卷 #&&, 年 第 , 期
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A.1原理
根据β-葡聚糖和甘露寡糖在流动相和液相色谱柱的固定相之间具有不同的分配系数，将样品注入液相色谱柱，用H2O做流动相，糖类分子流出后，经示差检测器检测，用外标法定量。
A.2试剂和材料
除非另有说明，在分析中仅使用确认为分析纯的试剂；蒸馏水或去离子水或符合GB/T6682中规定的一级水或相当纯度的水。
试验中所用制品按GB/T 603的规定制备。
A.2.1盐酸：37%。
A.2.2乙腈：色谱纯。
A.2.3氢氧化钠：40%。
A.2.4葡萄糖和甘露糖混合标液（1000mg/L）：分别称取葡萄糖和甘露糖各0.100g，用纯水定容100mL后用0.45μm微孔滤膜过滤，备用。
A.3仪器
A.3.1水浴锅。
A.3.2漩涡混合器。
A.3.3电炉。
A.3.4手提式压力蒸汽灭菌锅。
A.3.5高压液相色谱仪；带示差检测器。
A.4分析步骤
A.4.1样品处理
精确称取1.000g（准确至0.0002g）样品放入一个20mL的耐热玻璃制的带螺帽的小试管中，加入7.5mL盐酸（37%），小心的将小瓶盖近后用漩涡混合器混合，得到均一的悬浮液。
将小瓶放入30℃水浴中处理45min，每15min用漩涡混合器震荡混合一次。
然后将悬浮物定量的转移到200mL杜氏瓶中（同时用约70-80mL的水洗涤后倒入瓶中），将瓶子放入高压灭菌锅121℃处理60min。
完成后马上冷却，将溶液调pH到6-7，然后定容至200mL。
使用0.45微米孔径的醋酸纤维素膜过滤备用。
A.4.2测定
A．4.2.1 液相色谱参考条件
A．4.2.1．1 色谱柱：Hyper REZ XP Carbohydrate Ca++，长300mm，内径7.7mm，粒径8μm。
A．4.2.1．2 柱温：70℃。
A．4.2.1．3 流动相：H2O，用前过0.22μm滤膜。
A．4.2.1．4 流速：0.6 ml/min。
A．4.2.1．5 进样体积:40μl。
A.4.3标准曲线的绘制
分别吸取甘露糖/葡萄糖标液12.5、25.0、37.5mL到50mL容量瓶中，用高纯水定容到刻度，得到甘露糖、葡萄糖各为250、500、750、1000mg/L的混合标样。
在上述色谱条件下准确进样40μl，得到色谱峰面积和标准物质量浓度之间的回归方程，绘制标准曲线。
A.4.4样品的测定
在同样的色谱条件下，将处理好的样品注入色谱仪中，记录各色谱峰的保留时间和锋面积。
用糖标样色谱峰的峰面积来定量，计算出样品中葡萄糖、甘露糖的含量。
A.5结果计算与表示
A.5.1结果计算
试样中β-葡聚糖或甘露寡糖含量X以质量分数（%）表示，按式（A.1）计算：
file:///C:/DOCUME~1/ADMINI~1/LOCALS~1/Temp/msohtml1/01/clip_image002.gif
file:///C:/DOCUME~1/ADMINI~1/LOCALS~1/Temp/msoh tml1/01/clip_image004.gif……………………………………（A.1）
式中：
A——根据样品溶液的峰面积，在标准曲线上查得的样品溶液的葡萄糖或甘露糖的含量，单位为毫克每升(mg/L)；
m——样品质量，单位为克（g）；
0.2——样品处理定容的体积，单位为升（L）；
0.9——将葡萄糖或甘露糖换算成β-葡聚糖或甘露寡糖的系数。
A.5.1结果表示
每个试样取两个平行样进行测定，以其算术平均值为结果，结果保留到小数点后一位。
A．6重复性
在重复条件下或得的两次独立测试结果的绝对差值不大于这两个测定值的算术平均值的10%。