急性呼吸衰竭

急性呼吸衰竭

【摘要】

目的：学习采用窒息造成通气功能障碍，复制Ⅱ型呼吸衰竭模型；通过静脉注射肾上腺素造成家兔肺水肿，复制Ⅰ型呼吸衰竭模型。观察不同类型呼吸衰竭是血气和呼吸的变化，分析其发生机制。学习动脉取血和血气测定方法。

方法：对照组通过只在生理盐水注射前和后分别抽取动脉血，进行血气分析的比较。再取肺称重计算肺系数。

结果：对照组实验前后比较，PH降低，pCO2降低，pO2升高；实验组实验前后比较，PH降低，pCO2升高，pO2降低，Ⅱ型呼吸衰竭，实验中还可见口鼻可见粉红色液体涌出。肺系数=6.28,属于正常范围内。

结论：肾上腺素可造成家兔肺水肿，引起急性呼吸衰竭。

【关键词】呼吸衰竭肾上腺素肺水肿

Abstract

Objective: To study ventilatory dysfunction caused by asphyxiation, copy Ⅱrespiratory failure model; caused by injection of oleic acid alveolar capillary membrane damage, replication type Ⅰrespiratory failure model. Observe the different types of respiratory failure and respiratory blood gas changes is to analyze its mechanism. Blood andarterial blood gas study method.

Methods: In the control group injected with saline by only arterial blood was collectedbefore and after, respectively, for blood gas analysis comparison. Then calculated lungweight coefficient of the lung.

Results: In control experiments before and after, PH decreased, pCO2 decreased, pO2 increased; the experimental group before and after experiment, PH decreased, pCO2 increased, pO2 decreased, Ⅱ respiratory failure, the experiment also showspink nose and mouth visible liquid Bay Out. Lung coefficient = 6.28, within the normal range.

Conclusion: Epinephrine can cause pulmonary edema in rabbits, acute respiratory failure.

Key words respiratory failure epinephrine pulmonary edema

【引言】

外呼吸的基本环节包括通气和换气两个基本过程，任何引起通气和换气功能障碍的病因，都可以导致呼吸衰竭。通气功能障碍包括限制性通气障碍（通气动力减弱）和阻塞性通气功能障碍（通气不畅、阻力加大），限制性通气功能障碍的原因可为呼吸肌活动障碍、呼吸肌本身病变、中枢神经系统病变和胸廓顺应性降低；而阻塞性通气功能障碍主要为气道狭窄和阻塞。限制性或阻塞性通气不足的共同后果：肺泡换气不足，肺泡气不能及时更新，PaO2下降，Pa CO2升高，导致Ⅱ型呼吸衰竭。换气功能障碍包括弥散障碍和通气/血流比值失调。弥散障碍主要见于肺泡膜的面积减少和厚度增加；通气/血流比值失调可以是肺泡通气量的减少，血流的减少或肺内动静脉的分流。单纯弥散功能障碍可引起Ⅰ型呼吸衰竭，而通气/血流比值失调测根据代偿情况的不同导致Ⅰ型或Ⅱ型呼吸衰竭。

本实验通过缩窄家兔气道，复制通气障碍所致的急性呼吸衰竭。通过静脉注射油酸造成家兔肺水肿，复制肺泡通气/血流比值失调和气体弥散障碍所致的急性呼吸衰竭。

【材料和方法】

1.1 材料

1.1.1对象家兔（1.5kg）

1.1.2材料生理盐水，200g/L氨基甲酸乙酯，肝素,4.5ml/kg肾上腺素；生物信号采集处理系统，呼吸换能器，血气分析仪。

1.2方法

1.2.1 实验系统连接及参数设置用胶管连接流量头与气管插管，流量头连接呼吸流量换能器，再用胶管连接呼吸换能器测圧口和气管插管。然后把呼吸换能器接微机生物信号处理系统。系统参数：

RM6240系统；打开“实验”菜单，选择“呼吸运动调节”，仪器参数：时间常数为直流，滤波频率30Hz，灵敏50 ml/s（10cmH2O ），采样频率800Hz，扫描速度1ms/div。连续单激刺激方式，刺激强度5~10V，刺激波宽2ms，刺激频率30 Hz。

1.2.2 实验准备

1.2.2.1 麻醉与插管家兔称重，按5ml/kg体重剂量于耳缘静脉缓慢注射200g/L氨基甲酸乙酯，家兔麻醉后背位固定于兔手术台上。颈前部剪除被毛，切开颈部皮肤5~7cm，钝性分离肌肉组织。分离气管，在环状软骨下约1cm处做倒“T”字剪口，气管插管由剪口处向肺端插入，插时应动作轻巧，避免损伤气管黏膜引起出血，用一粗棉线将插口管结扎固定，另一棉线在切口在头端结扎止血。，记录呼吸运动曲线。分离左侧颈总动脉，穿细线备用。用玻璃分针分离左侧颈总动脉，穿线备用。在左颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，并在动脉下面预先穿一细线备用。用眼科剪在靠近动脉壁上剪一“V”字形切口，将充满0.1%肝素的动脉插管向心方向插入颈总动脉内，扎紧固定。

1.2.2.2待动物平静15min，开始记录呼吸运动曲线，测定正常呼吸频率及每分通气量；用1ml注射器抽吸0.2%肝素溶液，推动针芯，使注射器肝素化。打开动脉夹放血1-2滴后以冲去动脉插管内的死腔液，然后用肝素化注射器取血0.5ml，动脉夹夹住颈动脉，注射器迅速套上软木塞针头，并将此血液进行血气分析。

1.2.3 实验观察

1.2.3.1 复制肺水肿模型

（1）于颈外静脉快速滴注180-200d/min生理盐水100ml/kg；测定呼吸频率和每分通气量，观察家兔呼吸情况，是否急促和困难，肺部是否出现湿罗音及气管插管口是否出现粉红色泡沫样液体溢出。观察到有泡沫样液体流出时，迅速取颈动脉血作血气分析。

（2）采血后，夹闭气管，处死家兔，打开胸腔，在气管分叉处结扎气管以防止肺水肿液流出，在结扎处以上切断气管，分离心脏及血管，将肺取出。置于滤纸上，切勿挤压，准确称肺重量，并计算肺系数。肺系数=肺重量（g）/体重（kg），正常肺系数：4~5,当肺系数超出此值是就提示肺内有渗出物聚集（肺水肿）。

（3）观察肺大体改变，切开肺，注意费注意肺切面有无血性泡沫流出。

【实验结果】