临床微生物检验标本的采集
临床微生物学检验的标本采集
临床微生物学检验的标本采集一、血液和骨髓细菌学检验标本的采集（一）适应症菌血症、败血症和感染性骨髓炎等感染菌的培养鉴定和药物敏感试验。
（二）病人准备1．凡怀疑菌血症和败血症的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用过抗菌素，应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，或在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。
2．应在病人发热期或寒颤时采集（三）标本采集1．血培养瓶领取：凭医嘱和检验申请单到检验科细菌室领取。
按照实际情况选择相应类型的血培养瓶：如灰色瓶盖为普通成人培养瓶；粉红色盖为儿童需氧菌培养瓶；紫色盖为厌氧菌培养瓶。
2．将患者信息录入相应的血培养瓶条码中，并在作好病人姓名、科别、床号等标识。
2．采集方法：严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液或骨髓后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀。
3．标本量：成人每次采血5~10ml，小儿采血3~5ml，骨髓2~3ml，采血量足够则阳性率高，反之阳性率减低。
（四）注意事项1．抽血、抽骨髓和接种时，须严格注意无菌操作，避免污染杂菌。
2．从抽血、抽骨髓到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固。
3．成人不明原因发热、怀疑血流细菌感染时宜在不同部位抽血2套，每套2瓶（需氧、厌氧各一瓶）。
4．怀疑伤寒、亚急性细菌性心内膜炎及布鲁氏菌病的病人等，一般一日抽血三次培养，必要时需追加次数。
（五）标本送检和保存1．标本采集后应及时送检，一般不超过1h送交细菌室。
2．送检过程中应注意防止培养瓶打破或其它潜在性污染可能。
二、痰液或下呼吸道分泌物细菌学检验标本的采集（一）适应症肺炎、肺气肿、支气管炎、鼻窦炎、肺结核等感染菌的培养鉴定、药物敏感试验和抗酸菌检查。
（二）病人准备1．尽量在未使用抗菌素前留取标本。
准备好无菌标本容器，贴上条码、标明标识。
2．住院病人应留取清晨起床第一口痰。
为减少正常菌群的污染，嘱患者早上起床后用清水或生理盐水漱口，不要刷牙，除去鼻咽分泌物。
（三）标本采集1．一般病人用力咳出气管深处或肺部痰液，留于无菌标本容器内。
临床微生物标本的采集与运送图文
临床微生物标本的采集与运送在医学临床的诊断过程中，微生物检验是不可缺少的一环。
临床微生物标本的采集与运送是保证准确诊断的关键步骤之一。
本文将介绍临床微生物标本的采集与运送的一些注意事项。
1. 标本类型临床微生物标本通常包括血液、尿液、粪便、血培养瓶、脑脊液、切口分泌物等。
2. 采集方法2.1 血液标本采集血液标本时，一定要做好消毒工作。
选择采血部位后，用酒精或碘酒消毒，再用无菌针头采血，避免受污染。
血液标本采集后可以分成两份，一份用于血常规，另一份用于血培养。
2.2 尿液标本收集尿液标本时，要让患者用清洁肥皂清洁外阴部，再用无菌尿杯收集尿液，避免手部直接触摸尿杯和尿液。
尽量将尿液标本送至检验室的时间控制在2小时之内。
2.3 粪便标本采集粪便标本时，要确定所采集的粪便样本来自于患者的肛门临近处。
最好不要使用纸巾，而是用无菌容器收集粪便。
粪便标本采集窗口为3天。
2.4 血培养瓶标本采集血培养瓶标本时，首先要选择采血部位进行消毒，然后将血培养瓶插入采血针器上，打开外部装置，使血液顺利流入血培养瓶中。
采集集中在早晨时段，每次采集2-3个血培养瓶。
2.5 脑脊液标本采集脑脊液标本需要医生进行，患者应严格卧床休息，医生在患者腰部，采用穿刺的方式进行脑脊液的采集。
2.6 切口分泌物标本采集切口分泌物标本时，需要选择无菌医用棉签，消毒采集部位。
在采集过程中，应尽量避免被采集部位感染污染到。
3. 运送方法临床微生物标本的运送是重要的环节。
标本在采集后应及时送至细菌学检验实验室。
并且在运送过程中需要遵循以下几点：3.1 收集后尽早送检临床微生物标本的采集窗口不长，应尽早将标本送至检验室进行分析。
3.2 标本容器和包装标本容器必须选择无菌容器，容器体积大小要相应合适。
送检前，要核对标本标签与标签上的医学记录是否一致。
标本包装时，应采取干燥、保温、防震、防漏、防碎的原则。
3.3 运输温度不同种类的标本，其运输温度介于4-25摄氏度之间。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则一、临床微生物标本采集基本原则1.标本来源与采集部位临床微生物标本主要来源于患者体内的各类体液、组织和生物材料。
采集部位包括呼吸道、消化道、泌尿生殖道、皮肤、创伤、手术部位等。
采集时应选择感染灶、病变部位或易感部位，以确保标本的代表性和可靠性。
2.采集工具与消毒采集微生物标本时，应使用无菌、一次性采集器具。
采集器具在使用前应进行消毒处理，以确保不会引入外来微生物污染。
消毒方法可选用高温、高压、化学消毒剂等。
3.采集操作步骤（1）准备工作：评估患者病情，向患者及家属解释采集目的和注意事项，取得患者知情同意。
（2）佩戴个人防护装备：口罩、手套、护目镜或面罩。
（3）消毒：使用消毒剂对采集部位进行皮肤消毒。
（4）采集：根据不同标本类型，进行相应操作，如穿刺、刮片、抽取等。
（5）封装：将采集完成的标本放入无菌容器中，密封，注明患者信息、采集部位、日期等。
二、临床微生物标本运送基本原则1.标本容器与标记运送微生物标本时，应选用防漏、耐压、易保存的容器。
容器表面应清晰标记患者信息、采集部位、标本类型等，以便于实验室接收和处理。
2.运送条件与时间要求微生物标本应在采集后尽快送达实验室，一般要求在2-4小时内完成。
运送过程中，应保持标本容器密封，避免剧烈晃动，确保标本质量。
3.运送过程中的注意事项（1）夏季高温时，可采取冰袋降温措施，防止标本变质。
（2）注意标本容器不离手，避免摔碎或泄露。
（3）如需长途运输，应采取适当包装，确保标本在运输过程中不受损。
三、标本质量控制与标准化1.微生物实验室的质量管理体系实验室应建立完善的质量管理体系，包括人员培训、设备维护、检测方法、室内质量控制等，以确保检验结果的准确性和可靠性。
2.标本接收与处理实验室接收标本时，应核对标本信息，检查标本容器、运送条件等。
对标本进行登记、分类、编号，并按照标准化流程进行处理。
3.室内质量控制与外部质量评估实验室应定期进行室内质量控制，包括质控品的检测、方法比对、仪器校准等。
临床微生物检验标本采集程序
临床微生物检验标本采集程序1 标本采集的基本原则：1.1 严格的无菌操作，避免污染，避免来自寄生菌的污染，应当保证每份样本代表感染过程｡1.2 选择正确的解剖部位、合适时间、合乎规程技术，采集样本。
1.3 选择合适的部位采集用于厌氧菌培养的样本。
1.4 要收集足够量的样本，量少可能导致假阴性结果。
1.5 应尽可能在病人使用抗菌药物前采集样本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。
1.6 血培养样本在病人寒颤和发热初起时为最佳时机。
1.7 导尿留取样本时，不可从尿袋中采集样本。
引流液样本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中潴留时间太长容易滋生细菌。
1.8 各类微生物样本不宜加防腐剂1.9 盛标本的容器须先经灭菌（煮沸、高热、或高压灭菌），但不得用消毒剂或酸类处理。
1.10 有些临床标本还要注意采集的时机和部位，如伤寒沙门菌的阳性检出率，发病的第1～2 周采集血液，第3～4 周采集大便和尿液，阳性率较高。
1.11 样本的运送处理和储存规定1.11.1 样本2h之内送到实验室。
1.11.2 血培养瓶如果不能及时送检，应置室温保存（但不得超过24 小时）。
禁止将不能及时送检的血培养瓶放置冰箱保存。
1.11.3 淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌培养时，样本不能放4℃条件保存，应在30min内送检，并注意保温。
1.11.4 痰培养疑为嗜血杆菌、肺炎链球菌感染时，应立即送检，因为这些细菌在自然环境中极易死亡。
1.11.5 导管样本如不能在规定时间内送检，应在盛装导管的容器中加少量无菌生理盐水，以免导管干燥，病原微生物死亡。
1.11.6 活检组织样本和眼分泌物样本应在30min内送检，如样本较小或不能在规定时间内送检，应在盛装组织的容器中加少量无菌生理盐水，以免样本干燥，病原微生物死亡。
不可用纱布包裹组织样本。
2 常见临床微生物标本的采集方法。
2.1 血液及骨髓样本2.1.1 检验项目：血液及骨髓培养。
2.1.2 适应症病人出现以下临床表现：发热（38℃）或低温（36℃）、寒战、白细胞增多（白细胞数>10×109/L，特别有“核左移”时）、皮肤粘膜出血、昏迷、多器官衰竭、血压降低、C反应蛋白升高及呼吸加快、血液病患者出现粒细胞减少、血小板减少等临床可疑血流感染时应采集血液样本进行血培养及骨髓培养。
临床微生物标本的采集,储存和转运
临床微生物标本的采集，储存和转运微生物检验的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.在抗菌药物使用前采集标本3.采样时严格执行无菌操作4.采样后立即送检5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂6.送检标本应注明来源和检验目的标本采集1.尽早采集2.无菌操作3.合适部位4.适量标本5.适当方法6.安全采集1-尽早采集标本“采集重在时效性”1.1最好是病程早期、急性期1.2尽量在抗生素使用之前采集1.3对已用抗生素又不能停药者，可在下次用药前采集2-合适部位“背景干扰”2.1无菌标本:注意局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作与外界相通的腔道:避开腔道口区标本，以免皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊。
2.2正常菌群寄生部位：采集时应特别小心；应明确检查的目的菌在进行分离培养时，采用特殊选择性培养基2.3血标本采集:应避免输液的影响。
3-无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或粘膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本。
3.1.在采集血液、脑脊液、胸腔积液、关节液等无菌标本时，应注意对局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作；3.2.对于采集与外界相通的腔道标本时，如窦道标本，应从窦道底部取活组织检查，而非从窦道口取标本，以免受皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊；3.3.采集的标本均应盛于无菌容器内送检。
盛装标本的容器须先经高压灭菌、煮沸、干热等物理方法灭菌，或使用一次性无菌容器，不能用消毒剂或酸类处理。
标本中也不得添加防腐剂，一面降低病原菌的分离率。
4-适量标本4.1标本采集应足量。
标本量过少，可能会导致假阴性结果。
4.1.1血液标本:通常成人采血量每瓶8-10ml,儿童每瓶1-5ml;脑脊液、骨髓、4.1.2脓肿、穿刺液、引流液、痰液等标本：三1ml尿液标本：＞3ml4.1.3粪标本：1-3g 或 1-3ml4.2结核标本采集量要求特殊：4.2.1痰、肺泡灌洗液或支气管冲洗液：>5ml;4.2.2清晨中段尿：5-10ml;4.2.3粪标本：>1g;4.2.4穿刺液(胸水、腹水、关节液等)：5- 10ml。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则【最新版】目录一、微生物标本采集和运送的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.无菌操作3.采集量4.标本保存5.标本运输三、微生物标本运送的基本原则1.运送条件2.运送时间3.运送包装四、微生物标本采集和运送的意义正文微生物标本采集和运送是临床微生物学检验的基础环节，对于保证检验结果的准确性和可靠性具有重要意义。
本文将详细介绍微生物标本采集和运送的基本原则。
一、微生物标本采集的基本原则1.采集时机：微生物标本的采集应在抗生素使用前，以避免抗生素对病原微生物的杀灭作用。
在感染初期或病情加重时采集标本，可提高病原体的检出率。
2.无菌操作：在微生物标本采集过程中，应严格执行无菌操作，避免正常菌群和其他杂菌的污染。
采集非无菌部位的标本时，应尽量减少污染。
3.采集量：微生物标本的采集量要充足，以便进行后续的培养和检测。
不同类型的标本有不同的采集量要求，一般要求采集足够量的标本。
4.标本保存：微生物标本在采集后应及时保存，室温下保存时间不得超过 2 小时（夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存），冷藏保存时间不得超过 8 小时。
5.标本运输：微生物标本在运输过程中应保持无菌状态，避免温度过高或过低，以及剧烈震动。
运输包装应具有良好的保护性能，防止标本破损或泄漏。
二、微生物标本运送的基本原则1.运送条件：微生物标本在运送过程中应保持适宜的温度和湿度，避免高温、低温和干燥。
不同类型的标本有不同的运送条件要求，一般要求在 2-8℃的条件下运送。
2.运送时间：微生物标本的运送时间应尽量缩短，以减少病原体的死亡或活性降低。
一般要求在采集后 24 小时内送检。
3.运送包装：微生物标本的运送包装应具有良好的保护性能，防止标本在运输过程中破损或泄漏。
包装材料应无毒、无菌、防渗漏。
三、微生物标本采集和运送的意义微生物标本采集和运送的质量直接关系到临床微生物学检验的结果。
正确采集和运送微生物标本，可以提高病原体的检出率，为临床诊断、治疗和预防感染提供可靠的依据。
临床微生物标本采集与运送标准操作流程
临床微生物标本采集与运送标准操作流程下载提示：该文档是本店铺精心编制而成的，希望大家下载后，能够帮助大家解决实际问题。
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临床微生物学检验标本的采集
答：不同类型的微生物对保存温度的要求不同。一般来说，细菌、真菌等可在4℃或-20℃冰箱中保存数天至数周；病毒等则需要 使用-80℃超低温冰箱进行长期保存。在选择保存温度时，应根据具体微生物类型和实验要求进行选择。
问题解答与经验分享
如何确保标本运输安全？
答：在运输前应仔细检查容器是否密封良好，并使用足够的吸收材料包裹容器以防意外泄漏。同时，在运 输过程中应确保标本处于适当的低温环境中，并标识清晰以便实验室准确接收和处理。
结果分析
考虑患者为败血症，革兰氏阴性杆菌为致病菌。结合患者临床表现和 实验室检查结果，制定相应的治疗方案。
案例二：尿路感染诊断思路探讨
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病例介绍 患者女性，60岁，因尿频、尿急、尿痛就诊。查 体显示尿道口红肿，有脓性分泌物。
实验室检查 尿常规结果显示白细胞增多，细菌培养阳性。
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诊断思路
根据患者临床表现和实验室检查结果，初步诊断 为尿路感染。进一步进行细菌鉴定和药敏试验， 以指导临床治疗。
保存时间 不同类型的微生物标本保存时间不同，应根据具体要求进 行保存。一般来说，细菌、真菌等可保存数天至数周，病 毒等则需要长期保存。
标本运输注意事项
保持低温
在运输过程中，应确保标本处于适当的低温环境中，以防止微生 物死亡或变异。
防止泄漏
运输前应检查容器是否密封良好，防止标本泄漏。同时，应使用 足够的吸收材料包裹容器，以防意外泄漏。
为临床诊断和治疗提供准确、可靠 的微生物学依据，指导合理用药。
微生物学检验目的
01
02
03
确定病原体种类
通过检验标本中的微生物， 明确病原体种类，为针对 性治疗提供依据。
评估病情严重程度
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则有：
第一，要及时采集微生物标本，做病原学检查。
第二，严格执行无菌操作，减少和避免污染。
第三，标本采集之后，要立即送到实验室，床旁接种可以提高病原菌的检出率。
第四，尽量的在使用抗菌药物之前采集标本，这样对于结果的影响比较小一些。
第五，以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子要立刻送检。
第六，盛标本容器须经灭菌处理，不要使用消毒剂。
第七，送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。
第八，对于混有正常菌群的污染标本，要做定量或半定量培养，然后判断是感染菌和定植菌。
第九，对分离到的病菌，要做药敏实验，提倡分级报告和现实报告。
临床微生物检验标本采集规范要求★
24小时尿
记录尿量，将尿液混匀后取适量用于 检验。
粪便标本采集
自然排便
排便后用干净竹签取粪便 表面部分。
直肠拭子
在特殊情况下，如肠道感 染，可用直肠拭子采集粪 便。
粪便量
一般需采集足够量的粪便 用于检验。
呼吸道标本采集
痰液
患者自行咳出痰液，避免唾液和 鼻咽部分泌物。
支气管肺泡灌洗
在特殊情况下，如重症肺炎，可通 过支气管肺泡灌洗采集呼吸道标本 。
确定采集时间
根据患者的病情和检验目的，选择最 佳的采集时间，如空腹采集、餐后采 集等。
注意采集时间与用药时间的间隔，避 免药物对检验结果的影响。
采集人员防护措施
采集人员应穿戴符合要求的防护服、手套、口罩等，确保自 身安全。
采集过程中应遵循无菌操作原则，避免交叉感染和环境污染 。
02
标本采集方法
足或采集方法不当导致检验结果出现偏差。
03
标准化采集时间
根据疾病类型和病情发展，选择合适的采集时间可以提高检验准确性。
例如，对于急性感染患者，应在发热期采集标本；对于慢性感染患者，
应选择在疾病活动期采集。
保障患者安全
减少交叉感染风险
遵循无菌操作原则可以降低交叉感染的风险，保护患者安全。
避免患者不适
采集过程中，应避免接触非检 验部位，确保标本不受污染。
采集后应及时送检，避免长时 间存放导致污染。
防止标本变质
采集的标本应尽快送检，避免长时间 存放导致变质。
保存过程中应定期检查，确保标本质 量。
对于需要长时间保存的标本，应采取 适当的保存措施，如低温、干燥等。
其他注意事项
采集前应了解患者病情和用药情 况，避免干扰检验结果。
临床微生物学检验标本的采集
快速运输
03
在运输过程中应尽量缩短时间，选择适当的交通工具，保持容
器密封、避光、防震，以确保标本质量不受影响。
05
临床微生物学检验标本采集的常见问
题及解决方案
采集方法不当
总结词
采集方法不正确可能导致微生物污染或样本质量下降，影响检验结果的准确性。
详细描述
采集过程中应遵循无菌操作原则，正确使用采集工具，避免交叉感染。对于不同种类的标本，应采用不同的采集 方法和注意事项。
尿液标本
尿常规检查
检测尿液中的蛋白质、糖、酮体等成分，辅助诊断肾脏疾病和糖尿病等。
尿培养
用于检测尿液中的病原菌，如尿路感染等。
粪便标本
粪便常规检查
检测粪便中的红细胞、白细胞、寄生 虫等，辅助诊断消化道疾病。
粪便培养
用于检测粪便中的病原菌，如细菌性 痢疾等。
呼吸道标本
痰液检查
通过痰液中的细胞和病原菌，辅助诊断呼吸道感染。
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采集时机不当
总结词
采集时机不合适可能影响微生物的存活和繁殖，进而影响检验结果。
详细描述
应根据检验目的和要求选择合适的采集时机，如空腹采集血液、尿液等。同时，应注意采集过程中的 时间控制，避免长时间暴露在空气中。
采集容器选择不当
总结词
采集容器选择不当可能导致微生物死亡或繁殖受限，影响检验结果。
详细描述
量。
减少外界干扰
在采集过程中应尽量减少外界因 素的干扰，如避免过度挤压、避 免接触非采集部位等，以降低外
界微生物的混入。
采集后的保存和运
及时处理
01
采集后的标本应及时进行处理，避免长时间放置，以免影响微
临床微生物检验标本的采集、运送及接种要点
检查采集器具和试剂的有效期
在采集前，检查采集器具和试剂的生产日期和有 效期，确保采集过程中使用的物品符合质量要求。
无菌操作技术规范培训
01
02
03
培训采集人员
对采集人员进行无菌操作 技术规范的培训，确保他 们掌握正确的采集方法和 注意事项。
报告审核
由经验丰富的专业人员对报告进行审核，确 保报告的准确性和可靠性。
报告存档
对出具的报告进行存档管理，以备后续查询 和追溯。
07 注意事项与常见问题解答
采集过程中注意事项
严格无菌操作
采集标本时应避免污染，确保无菌操作，以免影响检验 结果。
采集适量标本
采集标本量应适中，过多或过少均可能影响检验结果。
定期监测
定期对保存条件进行监测和记录，确保标本保存环境稳定可靠。
超出保存期限处理
对于超出保存期限的标本，应按照相关规定进行处理，避免误用 或浪费。
05 标本接种操作要点
接种前培养基准备工作
选择合适培养基
根据待检微生物种类选择合适的培养基，确保能 够提供其生长所需的营养物质和环境条件。
培养基灭菌
对培养基进行高压蒸汽灭菌或干热灭菌，以消除 杂菌和污染。
将拭子插入鼻腔至鼻咽部，轻轻旋 转后取出。
03
02
咽拭子
用无菌拭子擦拭咽后壁及两侧扁桃 体，避免触及舌部。
采集容器
应使用无菌、有盖、干燥的容器， 痰标本也可使用无菌痰杯。
04
其他类型标本采集
脑脊液标本
由医生进行腰椎穿刺采集，过程中需严格无 菌操作。
穿刺液标本
临床微生物标本采集和运送规范
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
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二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
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血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
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2.采血部位
• 通常采血部位为肘静脉。 • 疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。 • 对疑为细菌性骨髓炎或伤寒患者，在病灶或者髂前（后） 上棘处严格消毒后抽取骨髓1ml作增菌培养。
3. 静脉穿刺和培养瓶接种程序
(1) 在穿刺前或穿刺期间，为防止静脉滑动，可戴乳胶手 套固定静脉，不可接触穿刺点。
病
原
菌
金黄色葡萄球菌、凝固酶阴性葡萄球菌、肺炎链球菌、化脓链球菌、草绿 色链球菌、肠球菌 结核分枝杆菌、产单核李斯特菌、阴道加特纳菌 脑膜炎奈瑟菌、淋病奈瑟菌、卡他布兰汉菌 大肠埃希菌、铜绿假单胞菌、克雷伯杆菌、肠杆菌、变形杆菌、沙雷菌、 沙门菌、不动杆菌、嗜肺军团菌、嗜血杆菌 念球菌、曲霉菌、隐球菌、球孢子菌
• 对间歇性寒战或发热应在寒战或体温高峰到来之前0.5～1h 采
集血液，或于寒战或发烧后1h进行。
• 入院前两周内接受抗菌药物治疗的患者，连续3d，每天采2 份。 6.标本运送
• 采血后应该立即送检,如不能立即送检，可室温保存，切勿冷藏。
二、血液中常见的病原体
种 类
革兰阳性球菌 革兰阳性杆菌 革兰阴性球菌 革兰阴性杆菌 真菌
沙门菌、大肠 埃希菌（EPEC、 EIEC）、志贺菌 （鲍氏、志贺）、 弯曲菌、副溶血弧 菌、小肠结肠炎耶 尔森菌、结核分枝 杆菌、白假丝酵母 菌
轮状病毒、 埃可病毒、 Norwolk病毒、 甲型肝炎病毒、 戊型肝炎病毒、 腺病毒
三、临床意义
• 细菌性痢疾 （bacillary dysentery） 简称菌痢，主要是 指由志贺菌引起的肠道传 染病，是肠道感染性腹泻 最常见的病种。 • 细菌、真菌、病毒引起的胃
• 致病性大肠埃希菌的肠道感染 可分为5类，详 见第八章。
• 消化性溃疡幽门螺杆菌感染主要部位是胃及十二
指肠球部，大量研究及临床证明胃炎、消化性溃 疡主要是HP所引起，因此消化性溃疡经抗感染 治疗取得很好的疗效。
第七节
尿液
一、标本采集
• 采集方法 采集清洁中段尿。
• 必要时导尿或膀胱穿刺留尿标本，但要注意导 尿容易引起逆行性感染。
第二节
血液
一、 标本采集
1.皮肤消毒程序
严格执行以下三步法: (1) 70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30秒以上。 (2) 1%～2%碘酊作用60秒或10 %碘氟60～90秒， 从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达3cm以上。
(3) 70%酒精脱碘：对碘过敏的患者，用70%酒精消
毒60秒，待酒精挥发干燥后采血。
真菌
白假丝酵母菌、隐球菌、曲霉菌和毛霉菌等
病毒
腺病毒、流感病毒、副流感病毒、呼吸道合胞病毒、巨 细胞病毒、单纯疱疹病毒、冠状病毒和麻疹病毒等。
三、临床意义
• 下呼吸道感染是最常见的呼吸道感染症，主要指 肺实质性炎症的肺炎和支气管黏膜炎症的支气管 炎，是我国常见病和病死率高的感染性疾病。 • 痰标本的细菌学检查对呼吸道感染的诊断有重要 意义。
尿液中常见病原体：
80%为革兰阴性杆菌，其中以大肠埃希菌 最为常见。 20%为革兰阳性菌，其中以肠球菌为多见。
三、临床意义
• 尿路感染 urinary tract infection 是指大量微生物在尿路中生长繁殖而引起的尿 路炎症。
少见。少数患者病情严重，病死率高，可留有后
遗症。
• 肠道病毒对中枢神经系统的危害性已逐渐引起人
们的关注和重视。除原有脊髓灰质炎常见外，还 可见多种病毒引起脑膜炎或脑炎，还不断发现新 的肠道病毒（新肠道病毒68～71型）引起的脑 膜炎及脑炎。第来自节脓液一、标本采集
• 先清洗，再采集。
• 脓性标本是用针和注射器抽吸采集，如果没有得到抽吸
• 真菌性脑膜炎：最常见于隐球菌脑膜炎，其他的
真菌性脑膜炎如白假丝酵母菌、球孢子性脑膜炎 日渐增多，特别是免疫功能低下和恶性疾病患者 易并发，如AIDS、恶性肿瘤，严重糖尿病、 SLE等患者易发生。
• 流行性乙型脑炎：是一种人兽共患的自然疫源性
疾病。传染源为患者和家禽、家畜及野生动物， 蚊虫为传播媒介，经蚊虫叮咬、吸血而传播，人 群对本病普遍易感，感染后多数人无症状而成为 隐性感染。但可获得持久免疫力，再次发病者极
次为革兰阳性球菌感染，可单独也可混合细菌感染。
• 急性化脓性骨关节炎常由金黄色葡萄球菌、溶血
性链球菌、淋病奈瑟菌、肺炎链球菌感染所致。
• 放线菌感染可发生在免疫功能下降时或由于拔牙、
口腔黏膜损伤时。
第五节
痰液
一、标本采集
• 自然咳痰法 以晨痰为佳，尽可能在用抗菌药物之前采集 标本。用力咳出呼吸道深部的痰，将痰液直接吐 入无菌、清洁、干燥、不渗漏、不吸水的广口带 盖的容器中，标本量应≥1ml。
二、脑脊液中常见病原体
`
革兰阴性菌
病毒
真菌及其他
肺炎链球菌
B群链球菌 A群链球菌 消化链球菌
脑膜炎奈瑟菌
大肠埃希菌 铜绿假单胞菌 卡他布兰汉菌
乙型脑炎病毒
柯萨奇病毒A 柯萨奇病毒B 脊髓灰质炎病毒
新生隐球菌
白假丝酵母菌 钩端螺旋体
结核分枝杆菌
拟杆菌
新肠道病毒68～71
产单核细胞李斯特菌 炭疽芽胞杆菌 葡萄球菌
杆菌
结核分枝杆菌、非结核分 大肠埃希菌、铜绿假单胞 枝杆菌、 破伤风杆菌、 菌、流感嗜血杆菌、拟杆 产气荚膜梭菌、炭疽芽胞 菌、 梭杆菌 杆菌 放线菌（衣氏放线菌、诺 卡菌）
其他
三、临床意义
• 由创伤、手术、侵入性器械操作等外科治疗引起的感染最
为常见。细菌造成伤口感染一般认为需每克组织内细菌数
量在105 ～106个以上。 • 外伤性创伤感染以葡萄球菌和链球菌多见，且易发生混合 感染。 • 烧伤创面最常见革兰阴性杆菌感染，如铜绿假单胞菌等，
注意：对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、肺炭疽、 肺鼠疫等）患者采集检验标本时必须注意生物安全防护。
二、痰标本中常见病原体
细菌
金黄色葡萄球菌、凝固酶阴性葡萄球菌、肺炎链球菌、A 群链球菌、肠球菌卡他莫拉菌、脑膜炎奈瑟菌、白喉棒 状杆菌、类白喉棒状杆菌、结核分枝杆菌、炭疽芽胞杆 菌、流感嗜血杆菌、克雷伯杆菌、铜绿假单胞菌、大肠 埃希菌、百日咳杆菌、军团菌、支原体和衣原体等
厌氧菌
拟杆菌、产气荚膜梭菌
三、临床意义
• 血液感染是一种危重的全身感染，对其进行病原菌的检验， 提供病原学的诊断极为重要。 • 当少量细菌侵入血液循环，为一过性，不繁殖或很少繁殖， 不引起或仅引起轻微的炎症反应者称为菌血症,若有全身 性炎症反应的表现称为脓毒症。
• 血液标本的细菌培养是诊断菌血症的基本而重要的方法，
不动杆菌 肺炎克雷白杆菌 流感嗜血杆菌
狂犬病毒
三、临床意义
• 细菌性脑膜炎：是中枢神经系统感染的常见类型，
其中以流行性脑脊髓膜炎为常见，有的呈暴发型，
病情严重，病死率较高；多发年龄在5～29岁，
冬春季多发，可用青霉素类、磺胺类、头孢霉素
类抗生素治疗。结核性脑膜炎最常见，近几年呈 回升趋势，为防治重点。
肠炎
此症最为常见，由多 种病原体感染所致，临床常 表现为腹泻、呕吐、高热等 症状。胃肠炎的病毒感染常
见于轮状病毒等，常引起幼
儿腹泻。
• 细菌性食物中毒 常可危及生命，常见于沙门菌、副溶血 弧菌、致病性大肠埃希菌、葡萄球菌、肉毒梭 菌、腊样芽胞杆菌食物中毒。多发生在夏秋季，
以暴发和集体发病为特征，是一种严重的病症。
• 采集容器的要求：洁净、无菌、加盖、封闭、防
渗漏、广口、容积应> 50 ml、盒盖易于开启，
不含防腐剂和抑菌剂。
• 标本采集后应及时送检、及时接种，室温下保存
时间不得超过2小时（夏季保存时间应适当缩短
或冷藏保存），4℃冷藏保存时间不得超过8小时。
但应注意淋病奈瑟菌培养时标本不能冷藏保存。
二、常见病原体
物，也可以用拭子在伤口深部采集渗出物。
• 脓肿标本以无菌注射器抽取为好，也可由排液法取得。 • 厌氧菌感染的脓液常有腐臭应予注意。特别要注意避免 正常菌群所污染以及由采集至接种前尽量避免接触空气。
二、脓液中常见病原体
细菌种类 球菌 革兰阳性菌 革兰阴性菌
金黄色葡萄球菌、凝固酶 肺炎克雷白杆菌、变形 阴性葡萄球菌、化脓链球 杆菌、 脑膜炎奈瑟菌、 菌、肺炎链球菌、肠球菌、淋病奈瑟菌、卡他布兰汉 消化链球菌、四联球菌 菌
• 支气管镜采集法、防污染毛刷采集法、环甲膜穿刺
经气管吸引法、经胸壁针穿刺吸引法和支气管肺泡 灌洗法均由临床医生按相应操作规程采集，但必须 注意采集标本时尽可能避免咽喉部正常菌群的污染。
• 小儿取痰法 用弯压舌板向后压舌，将拭子伸入咽部，小儿经
压舌刺激咳痰时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上
送检。幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，以诱发咳痰。
病毒性肺炎
支原体肺炎
细菌性肺炎 真菌性肺炎
第六节
粪便
一、标本采集
• 用药前自然排便，采集脓血、黏液部分2～3g。
• 外观无异常的粪便应从粪便的表面不同部位取材。
• 液体便取絮状物1～2ml,置无菌容器内送检。
• 如排便困难或婴幼儿患者，可用直肠拭子法采集
标本。
• 粪便标本送检 对住院的腹泻成人患者，应采集住院3日 内粪便标本送检，标本采集后应尽快送检，有条 件的提倡使用运送培养基。
第2章 临床微生物检验 标本 的采集
在临床微生物检验工作中，标本的正确选 择、采集和运送是保证实验室质量的重要环节， 是实验室工作准确和有效的前提。
第一节 标本的采集和处理 原则
一、标本采集的一般原则
1.早期采集
2.无菌采集
3.根据目的菌的特性用不同的方法采集
4.采集适量标本
5.安全采集
二、标本的处理
(2) 用注射器无菌穿刺取血后，勿换针头直接注入血培养