病毒中和抗体检测0001

  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

病毒中和抗体检测

1.病毒TCID50检测

TCID50是指组织培养物(细胞)半数致死剂量。它有几个性质我们必须明白:1)它表示

的是计量,不是浓度;2)它是一个单位;3)它的值等于1,实际上问它的值等于多少是一个

没有意义的问题,就像问km的值等于多少一样,如果非要说岀的的值等于多少,那我们只能说

它的值在任何情况下都等于1。理解这三个性质对于理解TCID50非常重要,但是这三个性质经

常被误解,所以导致对TCID50的理解岀现偏差。

首先我们来看一下这个表示法的意思:病毒滴度为108.2TCID50/ml 。它表示的是每ml病

毒溶液里含有108.2个TCID50的病毒,这和氯化钠的浓度为 4.5mol/L表示每L溶液中含有4.5

个mol的氯化钠是一样的道理。经常可以听到人说我的病毒的TCID50是10xx。这个说法是不

科学的,应该说我这个溶液里含有10x.x个TCID50的病毒或者说我这个溶液的病毒滴度是

10xx TCID50/ml。也可以说病毒的TCID50效价是10-x.x。

TCID50=10A5.64/0.1ml。即:将病毒悬液作10A5.64稀释后,接种细胞0.1ml,可以使50%

的细胞产生CPE。(将病毒悬液作10A5.64稀释后,0.1ml中含1个TCID50,作其他一些实验时

(如中和试验),一般常用100TCID50/0.1ml 或者100TCID50/0.05ml )

本方法的优缺点:①.优点:岀现阳性结果时间较短,且较明显;②.缺点:有时候,在用枪头吸岀细胞生长液时,容易岀现污染;

使用本方法时的注意事项:①.稀释病毒时,每做一个病毒稀释度都需要换枪头,减少浓度误差②.96孔板,每孔接种的细胞量:一般在此种测定病毒滴度的方法下,要将细胞密度适当调低,至少要比正常传代时低一些,否则细胞生长速度过快,未到7天则细胞岀现死亡対观察CPE不利.一般情况下,小塑料瓶(8-9ml液体为正常用量),培养长慢单层后,消化细胞,加入6ml培养液,吹匀,吸岀其中的2ml,到另外的瓶子,在该瓶中加入14-16ml即可,如果不放心,可以用显微镜看一下,细胞数过多则补加培养液,少则补加剩余4ml的细胞悬液;

维持液,即病毒培养液,配方为:①.MEM+2%小牛血清+3%谷氨酰胺+1%双抗+NaHC03;

②.MEM+3%谷氨酰胺+1%双抗+NaHCO3;两种维持液的不同在于是否有FBS(小牛血清).我个人曾经做过实验,在状态很好的细胞上接种病毒,分别使用两种不同的维持液,最终结果是一样的,没有什么不同,所以可以根据个人需要进行选择.另外,曾经请教过专门做中和实验的老师,他认为适当的FBS对细胞有保护作用,而且他说这是国外文献上的报道.

1 )细胞准备

1.1检查培养瓶中的单层细胞,以5ml胰酶-EDTA轻微冲洗

1.2加入4—5ml胰酶—EDTA以覆盖单层细胞

1.3放平培养瓶,37 C 5% CO2培养箱中孵育10 —20min,直到细胞脱落

1.4加入5—10ml培养液,洗下细胞后移到离心管中

1.5 以PBS洗细胞两次(12000rpm, 5min )

1.6以D-MEM重悬细胞,并用血球计数板计数

1.7以D-MEM将将细胞浓度调整到1 X10A5/ml --1.5 10A5/ml

1.8在微量培养板的各孔中加入100卩细胞,相当于?X10A4细胞/孔

1.9在37 T 5 % CO2培养箱中过夜培养(18 —22h ),用处于生长相刚达到完全融合的细胞进行病毒的滴定

2)病毒制备

3)病毒稀释

3.1取冻存的病毒,以病毒生长培养液(VGM)稀释10倍,即100微升病毒液+900微升稀释液,共1毫升。(于1.5ML EP管中进行,将混合液充分吹打振荡,很重要!)

3.2做10倍稀释

3.3在另一新1.5ML EP管中加入100卩第一管稀释病毒液(1/10 ),按10的比例进行倍比稀释,再加入900卩稀释液,将混合液充分吹打振荡。以此类推共稀释至

10X3倍。

此过程中需要使用加样器和tip头。使用前用75%乙醇擦拭加样器,并用紫外线照射20min,确保无菌。使用新高压的tip头,外包装一定在超净台(或安全柜中打开)

4)病毒接种:

4.1取细胞培养板,用多道加样器(又称排枪)吸去96孔板中的培养液,吸取

孵育液或无血清DMEM加在每孔中再轻轻吹打一次,然后吸出孵育液(此步目的是去除血清,因为血清能干扰病毒的吸附)。

4.2于各孔中加100ul各不同的病毒稀释液,每个稀释度做一列孔,即每个病毒稀释度做8个平行复孔,根据观察的习惯,一般从右到左,从上到下,从高稀释度到低稀释度到原液加样。(病毒稀释度的选择10A3 —10X2或者10A4 —10A13,因为目的基因不同,重组腺病毒滴度差距很大,应该尽量将稀释度加大,看到有人用的稀释度是10A6 —10A13)

4.3第11列和12列为阴性对照,阴性对照孔中加入100ul含5%胎牛血清的DMEM,监测细胞存活情况;切记:设置正常的细胞对照。每次实验要重复4次, 计算标准差。

4.4 37C CO2培养箱中孵育1h,取出培养板吸去病毒液(从低浓度向高浓度吸取可避免窜孔),加入维持液200山继续于37C, 5% CO2培养5--10天;

4.5逐日观察,5--10天后倒置显微镜下观察,计算每一列中出现CP(cytopathic effects,CPES的孔数。只要有一小点或是一些细胞出现CPE即为阳性,如果无法确定,可与阴性对照比较;

4.6如果阴性对照中无任何CPE且细胞生长良好,最低稀释度100%阳性而最高稀释度100%阴性,则本试验即为有效;

4.7计算每一列中出现阳性的孔数;

4.8 用Reed-MuencK计算病毒TCID50/ml。

相关文档
最新文档