常用动物实验技术简介_PPT幻灯片
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《常用实验动物小鼠》课件
小鼠的标准环境
描述为小鼠提供标准环境的重要性。探讨温度、湿度、噪音和空气质量等因素对小鼠实验的影响，并介 绍相应的控制方法。
小鼠的体重和体表面积计算
解释如何准确测量小鼠的体重和计算体表面积。这些数据对于实验设计、用药剂量计算和结果解读至关 重要。
小鼠的性别鉴定
介绍使用外部特征或分子生物学方法鉴定小鼠性别的技术。讨论性别对实验结果和研究设计的潜在影响。
小鼠的分子生物学实验方法
探讨小鼠在分子生物学研究中的应用。介绍琼脂糖凝胶电泳、PCR、基因敲除等常用技术在小鼠实验中 的应用方法。
数据的统计分析方法
讨论在小鼠实验中数据的统计分析方法，如t检验、方差分析和生存分析。解 释不同方法的原理、适用范围和解读要点。
实验动物伦理问题及保护措施的介绍
介绍实验动物伦理问题和相关保护措施。探讨动物实验伦理的重要性和合规性，帮助保护实验动物的福 利。
小鼠的年龄判定
讨论不同方法和标志物用于判定小鼠年龄。了解小鼠的年龄对于实验设计和 结果解读的重要性。
体表取样方法
介绍不同体表取样方法，如血液采集、毛发取样和皮肤组织采集。讨论这些 方法在实验研究中常用的器官组织取样方法，如心脏、肝脏和脑组织等。介绍这些方法的 步骤和注意事项，以确保质量和可靠性。
常用实验动物小鼠
这是一份关于常用实验动物小鼠的PPT课件。通过本课件，您将了解到小鼠的 种类、生物学特征、饲养方法等重要知识，帮助您更好地进行实验研究。
研究目的和动机
为什么选择小鼠作为实验动物？你的研究的目标是什么？介绍你的动机和目的，并解释为什么选择小鼠 作为研究对象。
实验动物的意义和作用
解释实验动物在科学研究中的重要性和作用。讨论实验动物对于推动生物医学研究、药物开发和疾病治 疗的贡献。
小鼠实验的基本技术和方法ppt课件
重。
小鼠皮下注射
小鼠尾静脉注射
• （4）腹腔注射给药法：小鼠的注射量为 0.1-0.2毫升/10克 。
• （5）肌肉注射给药法： • （6）脑内注射给药法：
小鼠腹腔注射
• （四）麻醉法 • 1、吸入麻醉法：常用麻醉剂为乙醚。 • 2、腹腔麻醉法：常用麻醉剂是戊巴比妥钠，
用生理盐水配成浓度为2%的溶液，用量为 0.023毫升/10克体重。
• （五）采血法 • 1、剪尾尖法： • 2、切割尾静脉采血法：
小鼠剪尾采血
• 3、眼部采血： • （1）眼眶后静脉窦采血 • （2）摘除眼球采血法：
小鼠内眦采血
• 4、心脏采血法 • （1）穿刺法：每次采血量为0.5-0.6ml。 • （2）开胸法 ： • 5、断头采血法 ：可采血0.8-1ml。
• 三、实验材料及标本 18-22克小鼠（每人一只）。
• 四、实验内容及方法 • （一）小鼠抓取固定方法
பைடு நூலகம்
小鼠保定技术
• （二）标记法 • 1、永久标记法： • 2、短期标记法：也称染色标记法 。
• （三）给药法 • （1）口服法： • （2）强制灌胃法：
小鼠灌胃
• 2、注射给药法 • （1）皮下注射给药法： • （2）皮内注射给药法： • （3）静脉注射给药法：剂量为0.05-0.1mg/10g体
• 一、实验目的 • （一）掌握小鼠抓、取、固定的基本方法。 • （二）熟悉鼠类的染色、标记的基本方法。 • （三）掌握鼠类的给药、麻醉的基本操作技术和
方法。 • （四）熟练掌握小鼠基本采血技术和方法。
• 二、实验用品 • 1ml注射器、5毫升注射器、针头、500毫升
烧杯、手术剪、镊子、止血钳、灌胃针头、 棉球、生理盐水、75%酒精等。
小鼠皮下注射
小鼠尾静脉注射
• （4）腹腔注射给药法：小鼠的注射量为 0.1-0.2毫升/10克 。
• （5）肌肉注射给药法： • （6）脑内注射给药法：
小鼠腹腔注射
• （四）麻醉法 • 1、吸入麻醉法：常用麻醉剂为乙醚。 • 2、腹腔麻醉法：常用麻醉剂是戊巴比妥钠，
用生理盐水配成浓度为2%的溶液，用量为 0.023毫升/10克体重。
• （五）采血法 • 1、剪尾尖法： • 2、切割尾静脉采血法：
小鼠剪尾采血
• 3、眼部采血： • （1）眼眶后静脉窦采血 • （2）摘除眼球采血法：
小鼠内眦采血
• 4、心脏采血法 • （1）穿刺法：每次采血量为0.5-0.6ml。 • （2）开胸法 ： • 5、断头采血法 ：可采血0.8-1ml。
• 三、实验材料及标本 18-22克小鼠（每人一只）。
• 四、实验内容及方法 • （一）小鼠抓取固定方法
பைடு நூலகம்
小鼠保定技术
• （二）标记法 • 1、永久标记法： • 2、短期标记法：也称染色标记法 。
• （三）给药法 • （1）口服法： • （2）强制灌胃法：
小鼠灌胃
• 2、注射给药法 • （1）皮下注射给药法： • （2）皮内注射给药法： • （3）静脉注射给药法：剂量为0.05-0.1mg/10g体
• 一、实验目的 • （一）掌握小鼠抓、取、固定的基本方法。 • （二）熟悉鼠类的染色、标记的基本方法。 • （三）掌握鼠类的给药、麻醉的基本操作技术和
方法。 • （四）熟练掌握小鼠基本采血技术和方法。
• 二、实验用品 • 1ml注射器、5毫升注射器、针头、500毫升
烧杯、手术剪、镊子、止血钳、灌胃针头、 棉球、生理盐水、75%酒精等。
动物实验技术常用实验动物大小鼠豚鼠(共136张PPT)
发达，共有五对乳头，胸部3对，腹部2对；
雄鼠为双睾丸，幼年时藏于腹腔内，性成 熟后下降到阴囊；前列腺分背、腹两叶。
雄性小鼠内生殖器
雌性小鼠内生殖器
3、小鼠皮肤无汗腺，它的唾液分泌能力很 有限，只能改变体温以部分地代偿环境的 改变。适宜温度21～25 ℃。低温繁殖率 下降，持续高温（32℃ ）引起死亡或产
封闭群 1、昆明小鼠（KM）：白色，1926年 从瑞士引 入白化小鼠先培育成瑞士小鼠，1946年我国从 印度将瑞士小鼠引入昆明，1952年从昆明引入 北京生物制品研究所，1954年推广到全国。 是我国特有的封闭群小鼠。
主要特性：繁殖率和成活率高，抗病力和适应 性很强，雌鼠乳瘤发生率为25%。
广泛用于药理、毒理、病毒和细菌学的研究， 以及生物制品和药品的检定。
生后效应。
4、由于小鼠的蒸发表面与整个身体相比所占 的比例大，减少饮水较大多数哺乳动物更为 敏感。呼出的气体在鼻腔内冷却以及尿液
的高效浓缩，都有助于水分保持。这是其 有别于其他动物的特性。
阴道栓，是小鼠交配典型特征，被视为交配
成功的标志。
性周期，雌鼠性成熟后，卵巢产生卵细胞并 分泌雌性激素，出现明显的动情周期。根据 阴道涂片所观察到的阴道上皮细胞变化，可 进一步推测卵巢、子宫、激素变化和所处的 发情阶段。
NZB小鼠，具有自发性的自身免疫贫血症，用 于研究自身免疫疾病的机制。
（六）、老年病学研究 1、小鼠是研究胶原老化的模型动物： 2、老龄鼠大脑物质代谢： 3、生长激素与老化的关系：
（七）、内分泌疾病的研究 小鼠内分泌腺结构的缺陷常引起类 似人类的内分泌疾病： 肾上腺皮质肥大造成肾上腺功能亢进，发生 类似人类柯兴氏综合症； 垂体性侏儒症以及生长激素缺乏造成的 snell侏儒症；
雄鼠为双睾丸，幼年时藏于腹腔内，性成 熟后下降到阴囊；前列腺分背、腹两叶。
雄性小鼠内生殖器
雌性小鼠内生殖器
3、小鼠皮肤无汗腺，它的唾液分泌能力很 有限，只能改变体温以部分地代偿环境的 改变。适宜温度21～25 ℃。低温繁殖率 下降，持续高温（32℃ ）引起死亡或产
封闭群 1、昆明小鼠（KM）：白色，1926年 从瑞士引 入白化小鼠先培育成瑞士小鼠，1946年我国从 印度将瑞士小鼠引入昆明，1952年从昆明引入 北京生物制品研究所，1954年推广到全国。 是我国特有的封闭群小鼠。
主要特性：繁殖率和成活率高，抗病力和适应 性很强，雌鼠乳瘤发生率为25%。
广泛用于药理、毒理、病毒和细菌学的研究， 以及生物制品和药品的检定。
生后效应。
4、由于小鼠的蒸发表面与整个身体相比所占 的比例大，减少饮水较大多数哺乳动物更为 敏感。呼出的气体在鼻腔内冷却以及尿液
的高效浓缩，都有助于水分保持。这是其 有别于其他动物的特性。
阴道栓，是小鼠交配典型特征，被视为交配
成功的标志。
性周期，雌鼠性成熟后，卵巢产生卵细胞并 分泌雌性激素，出现明显的动情周期。根据 阴道涂片所观察到的阴道上皮细胞变化，可 进一步推测卵巢、子宫、激素变化和所处的 发情阶段。
NZB小鼠，具有自发性的自身免疫贫血症，用 于研究自身免疫疾病的机制。
（六）、老年病学研究 1、小鼠是研究胶原老化的模型动物： 2、老龄鼠大脑物质代谢： 3、生长激素与老化的关系：
（七）、内分泌疾病的研究 小鼠内分泌腺结构的缺陷常引起类 似人类的内分泌疾病： 肾上腺皮质肥大造成肾上腺功能亢进，发生 类似人类柯兴氏综合症； 垂体性侏儒症以及生长激素缺乏造成的 snell侏儒症；
动物实验基本技术ppt课件
动物实验基本技术
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动物实验基本技术 1 实验动物的分组和编号 2 实验动物的抓取、保定 3 实验动物被毛去除 4 实验动物的给药与取血 55 实验动物的麻醉 6 实验动物的粪便采集 7 实验动物的处死
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一、实验动物编号与分组
（一）编号： 1、被毛涂染法：
实验动物：大鼠、小鼠。 常用染色剂：3-5％苦味酸溶液，可染成黄色。
右手持针，把 灌胃针头的前 端放进动物的 口腔，顺着上 腭部插入咽部， 顺咽后壁轻轻 往下推。
用右手食指将 针栓慢慢往下 压，将注射器 中的药液灌入 动物的胃中。
大鼠的灌胃 video.tudou/v/XMjAyMTgyMTI0.html?from= s1.8-1-1.2
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frpsala11wwwnordridesigncom28皮内注射wwwnordridesigncom将大小鼠放在金属笼或将大小鼠放在金属笼或小鼠固定器小鼠固定器中通过中通过金属笼或金属笼或大小鼠固定器大小鼠固定器的孔拉出鼠尾巴的孔拉出鼠尾巴用左手捏住鼠尾巴用左手捏住鼠尾巴中下部用中下部用7575酒精棉球反复擦拭尾精棉球反复擦拭尾注射时以左手拇指注射时以左手拇指和中指捏住鼠尾两侧和中指捏住鼠尾两侧用食指从下面托起尾用食指从下面托起尾右手持右手持44号针头的号针头的注射器使针头与注射器使针头与静脉平行小于静脉平行小于3030度角度角大鼠亦可用舌下静脉注射小鼠尾静脉注射http
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2
眼眶静脉丛采血
方法：用左手捉鼠，拇指及中指抓住头颈部皮肤，食指按 于眼后，使眼球轻度突出，眼底球后静脉丛淤血。右手持
取内径为1.0-1.5mm的玻璃毛细管（临用前折断成1-1.5cm长的毛细管
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动物实验基本技术 1 实验动物的分组和编号 2 实验动物的抓取、保定 3 实验动物被毛去除 4 实验动物的给药与取血 55 实验动物的麻醉 6 实验动物的粪便采集 7 实验动物的处死
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一、实验动物编号与分组
（一）编号： 1、被毛涂染法：
实验动物：大鼠、小鼠。 常用染色剂：3-5％苦味酸溶液，可染成黄色。
右手持针，把 灌胃针头的前 端放进动物的 口腔，顺着上 腭部插入咽部， 顺咽后壁轻轻 往下推。
用右手食指将 针栓慢慢往下 压，将注射器 中的药液灌入 动物的胃中。
大鼠的灌胃 video.tudou/v/XMjAyMTgyMTI0.html?from= s1.8-1-1.2
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frpsala11wwwnordridesigncom28皮内注射wwwnordridesigncom将大小鼠放在金属笼或将大小鼠放在金属笼或小鼠固定器小鼠固定器中通过中通过金属笼或金属笼或大小鼠固定器大小鼠固定器的孔拉出鼠尾巴的孔拉出鼠尾巴用左手捏住鼠尾巴用左手捏住鼠尾巴中下部用中下部用7575酒精棉球反复擦拭尾精棉球反复擦拭尾注射时以左手拇指注射时以左手拇指和中指捏住鼠尾两侧和中指捏住鼠尾两侧用食指从下面托起尾用食指从下面托起尾右手持右手持44号针头的号针头的注射器使针头与注射器使针头与静脉平行小于静脉平行小于3030度角度角大鼠亦可用舌下静脉注射小鼠尾静脉注射http
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2
眼眶静脉丛采血
方法：用左手捉鼠，拇指及中指抓住头颈部皮肤，食指按 于眼后，使眼球轻度突出，眼底球后静脉丛淤血。右手持
取内径为1.0-1.5mm的玻璃毛细管（临用前折断成1-1.5cm长的毛细管
动物实验的基本技术操作方法幻灯片PPT
一、动物实验的常用方法
6．移植法
一般是将动物的器官、组织或细胞进展相 互移植的一种方法。如骨髓移植时，将小 鼠A〔供体〕的骨髓注入到小鼠B的血液中 〔受体〕，很快可见脾结节化〔脾造血〕。 脾结节的数量反响了造血干细胞的多少， 由此可以观察干细胞的变化。动物各种组 织、器官的移植也是实验研究中常用的方 法。
动
物 编
1
234源自5678
9
10 11 12 13 14
号
随
机 数
16
22
77
94
39
49
54
43
54
82
17
37
93
23
目
归 组
B
B
A
B
A
A
B
A
B
B
A
A
A
A
四、实验动物的随机分组方法
结果列入A组的动物有8只，列入B组的动物 有6只。如要使两组相等，须将A组减少一只， 划入B组。应把哪一只小鼠划入B组，仍可用 随机数字表，在上述抄录的14个数后面再抄 录一个数字为78，此数以8除之，因为归入A 组的小鼠有8只，故以8除，得余数6。于是把 第6个A〔即编写为第12号的小鼠〕划给B组。
一、动物实验的常用方法
动物实验方法是多种多样的，在医学的各 个领域内都有其不同的应用，其中一些根 本方法都是共同性的，如动物的选择、抓 取、固定、麻醉、脱毛、给药、采血、采 尿、急救、处死、尸检等，不管是从事何 种课题的医学研究都要用这套根本方法， 因此，动物实验根本方法，已成为医学科 技工作者必须掌握的一项根本功。
经过这样调整，两组小鼠的分配如下：
A组 3 5 6 8 11 13 14 B组 1 2 4 12 7 9 10
动物实验的基本技术和方法ppt课件
编辑版pppt
32
六、实验动物的给药方法
• 经口给药法 • 注射法 • 其它途径给药方法 1. 呼吸道给药 2. 皮肤给药 3. 脊髓腔内给药 4. 脑内给药 5. 直肠内给药 6. 关节腔内给药
编辑版pppt
33
• 经口给药 1. 拌入饲料、饮水中自由摄取
优点：省人力 缺点：因个体差异，摄入量不等 2. 灌胃 优点：能准确定量 缺点：给动物造成一定的痛苦，需 熟练掌握技术
编辑版pppt
34
大小鼠灌胃注意点
1. 用灌胃针。
2. 从嘴角处插入，到达咽部后 改变灌胃针的方向，使其与 食管的走向一致，然后顺利 插入。
3. 成年大鼠由于体型较大，不 易保定。办法：
1）一人保定，一人灌胃
2）操作者抓取后，将大鼠尾部按 在自己的胸部，达到固定尾 部的目的，然后灌胃。
灌胃量：小鼠0.2-0.4ml/10克，
编辑版pppt
18
按体重分层随机区组分组
编辑版pppt
19
三、动物编号常用的标记方法
适用需要个体识别的实验 1. 染料标记法：适合白色被毛的动物，如小鼠
、大鼠、豚鼠、兔等。 黄色：常用3~5%苦味酸溶液 红色：常用0.5%中性红溶液 咖啡色: 2%硝酸银溶液 黑色：煤焦油酒精溶液
优点：简单、易识别 缺点：长期易退色；不能编大号码。
停止吸入后很快苏醒
• 缺点：
需要一定的仪器设备，
注意自身防护。
编辑版pppt
27
大小鼠麻醉法
编辑版pppt
28
（2）注射麻醉法 注射麻醉法是使用非挥发性麻醉药进行全麻
的方法。在动物实验中比较常用。 常用麻醉药： 戊巴比妥钠 硫喷妥钠 氯氨酮 乌拉坦 大动物：静脉注射或肌肉注射 啮齿类动物：腹腔注射
动物实验技术PPT课件
不同种系的实验动物对相同因素的刺激反 应既有共同性的一面，也存在一些特殊反应， 同样的刺激对一些动物敏感，但对另外一些动 物可能不敏感。因此在实验研究中选用那些有 特殊反应、对实验研究敏感的动物作为实验对 象，也是保证实验成功的重要因素。
38
（三）标准化原则
标准化原则是指动物实验中选择与课题 研究的目的、内容、水平相匹配的标准化 的实验动物。只有选用经微生物、寄生虫 学、遗传学、环境及营养控制的标准化实 验动物，才能排除生物因素、遗传因素、 环境及营养因素对实验结果的干扰。
50
2、购入动物时，应向供应单位及时索取 动物的遗传背景、微生物背景、质量合格 证、动物的年龄、体重等资料。
51
3、购入动物时，无论运输距离的远近，都 应考虑运输环境的温度、湿度、饮食以及 途中污染和窒息死亡等问题。
52
4、购入清洁级以上的动物，应采用带有空 气过滤膜的无菌运输罐或带过滤帽的笼盒 运输，严格检查其密封状况。
7
动物实验技术：
研究动物实验所需的各种条件、方法、 技术，以保证取得科学的、完整的、先进的实 验结果。
8
动物实验的要求..
1、科学性 2、经济性 3、伦理性
9
科学性要求
标准化的动物 标准化的实验条件 标准化的操作规程
10
经济性要求
动物的选择 实验方法的选择
11
伦理性要求
动物福利 3R原则
12
22
(二) 常用动物外科手术器械
（三）手术器械的消毒 1、煮沸灭菌法、 2、 高压蒸气灭菌法 3、化学药品灭菌法。
23
（四）敷料、手术巾、手术衣、帽、口 罩的消毒
24
五. 手术人员的准备 为了保证无菌手术的进行,手术人
38
（三）标准化原则
标准化原则是指动物实验中选择与课题 研究的目的、内容、水平相匹配的标准化 的实验动物。只有选用经微生物、寄生虫 学、遗传学、环境及营养控制的标准化实 验动物，才能排除生物因素、遗传因素、 环境及营养因素对实验结果的干扰。
50
2、购入动物时，应向供应单位及时索取 动物的遗传背景、微生物背景、质量合格 证、动物的年龄、体重等资料。
51
3、购入动物时，无论运输距离的远近，都 应考虑运输环境的温度、湿度、饮食以及 途中污染和窒息死亡等问题。
52
4、购入清洁级以上的动物，应采用带有空 气过滤膜的无菌运输罐或带过滤帽的笼盒 运输，严格检查其密封状况。
7
动物实验技术：
研究动物实验所需的各种条件、方法、 技术，以保证取得科学的、完整的、先进的实 验结果。
8
动物实验的要求..
1、科学性 2、经济性 3、伦理性
9
科学性要求
标准化的动物 标准化的实验条件 标准化的操作规程
10
经济性要求
动物的选择 实验方法的选择
11
伦理性要求
动物福利 3R原则
12
22
(二) 常用动物外科手术器械
（三）手术器械的消毒 1、煮沸灭菌法、 2、 高压蒸气灭菌法 3、化学药品灭菌法。
23
（四）敷料、手术巾、手术衣、帽、口 罩的消毒
24
五. 手术人员的准备 为了保证无菌手术的进行,手术人
《动物实验基本技术》PPT课件
40
4.腹腔注射
➢准备：注射器吸入待注射药液 ➢过程：
✓一手固定动物，腹部向上，且呈头低位 ✓局部皮肤消毒 ✓一手持注射器刺入下腹部皮下，针头向前推
进3mm后，注射针头与皮肤面呈45°角刺 入腹肌
2021/6/10
41
4.腹腔注射
➢准备：注射器吸入待注射药液 ➢过程：
✓一手固定动物，腹部向上，且呈头低位 ✓局部皮肤消毒 ✓一手持注射器刺入下腹部皮下，针头向前推
2021/6/10
3
1.小鼠的抓取保定
➢抓取：
✓右手抓住鼠尾并提起，把小鼠置于笼盖或其 他粗糙面上，向后方轻拉
✓左手拇指和食指捏住其两耳和颈部皮肤 ✓右手拉紧小鼠尾部，拉直鼠身， ✓左手无名指和小指压紧尾巴和后肢，中指和
手掌心夹住背部皮肤，使小鼠呈一直线
➢保定：四肢及门牙用棉线固定在解剖台上
2021/6/10
4
1.小鼠的抓取保定
➢抓取：
✓右手抓住鼠尾并提起，把小鼠置于笼盖或其 他粗糙面上，向后方轻拉
✓左手拇指和食指捏住其两耳和颈部皮肤 ✓右手拉紧小鼠尾部，拉直鼠身， ✓左手无名指和小指压紧尾巴和后肢，中指和
手掌心夹住背部皮肤，使小鼠呈一直线
➢保定：四肢及门牙用棉线固定在解剖台上
2021/6/10
5
2.大鼠的抓取保定
12
分组原则--随机分组(1)
➢完全随机分组--如小鼠20只，分甲、乙两组
✓小鼠编为1号～20号
✓随机数表中取出20个随机数依次分配给1～20 号动物
✓设单数为甲组，双数为乙组（表1-3-2），结 果甲组9只，乙组11只
✓再查随机数表的第21个数为13，将13÷11＝1
余2。则将乙组中的第二位（6号动物）取出
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引言
实验动物生物安全的条件与保障 国家、地方法律、法规 合格的实验动物与设施 严格、标准化的操作 废弃物的正确处理 实验动物生物安全应急预案
国家或地方实验动物主要法规、标准
1、《实验动物管理条例》（1988） 2、《实验动物质量管理办法》（修订版）（2001）
3、《实验动物许可证管理办法（试行）》（2001）
普通环境 主要用于进行兔、猫、狗、猴等大动物实 验饲养（配备饲养室及操作室）。
实验动物及其设施的等级
屏障环境动物实验设施设备
实验动物及其设施的等级 屏障环境动物实验设施设备
实验动物及其设施的等级
涉及传染性、中毒性、放射性、致癌性、致突致畸及致死 性实验等应在有特殊要求的生物安全实验室中进行，应根据生 物安全防护的要求进行建筑或改造，按照有关规定执行。
引言
实验动物生物安全问题已引起国、内外高度重视。 2001年我国实施新版《实验动物国家标准》，其中
规定：实验用大小鼠的等级提高到SPF级。 2004年《北京市实验动物管理条例》，修改和增加
了实验动物生物安全方面内容， 2006年第二届北京实验动物科学国际论坛上，日本
国立大学生物安全委员会委员长佐藤浩教授提出，生 物安全已成为实验动物研究中不容忽视的重要因素。
开放系统(Open system) 只能进行普通级实验动物的 生产与实验。
实验动物及其设施的等级
不同等级动物：必须由省级 实验动物监测机构监测合格， 发放“实验动物质量监测保 合格证”。
动物实验中所用动物必须为 质量合格动物。
实验动物及其设施的等级
隔离环境
以隔离器(Isolator)为主体及其附属装置组成的饲养系统。 用作饲养无菌动物和已知菌动物。洁净度达到一百级。
常见人兽共患病源及防护 隔离、检疫、免疫、消毒
汉坦病毒 弓形体 沙门氏菌 狂犬病毒 布氏杆菌 钩端螺旋体 志货氏菌 猴B病毒 结核杆菌
引言
2006年长春市某高校中药系实验室发生学生感染流行性 出血热事件，76名学生中有10名学生受感染。整个事件 起因也是因实验操中被动物抓咬伤而造成的。
引言
实验动物：指经人工饲养、繁育，对其携带的微 生物及寄生虫实行控制，具有明确遗传背景，应 用于科学研究、教学、生产和检验等方面的动物。 实验用动物包括：实验动物，野生动物，经济动 物。如大白鼠、小白鼠、裸鼠、豚鼠、家兔、比 格犬、恒河猴、小型猪、沙鼠等。
引言
实验动物是一切生命科学的支撑条件，广泛 应用于医药研发、教学实验、药品生产、生 物检验等方面。
国家或地方实验动物主要法规、标准
实验动物生产许可证
国家或地方实验动物主要法规、标准 实验动物使用许可证
实验动物的生产和使用许可证必须经监测 机构检测合格后发给单位和个人，严禁转 借、转让和出租或者超许可证范围使用， 如果出现上述情况，科技厅主管部门将暂 扣许可证，责令限期整改；，对无证使用 实验动物的机构与个人将实施行政处罚， 情节严重的将依法追究民事或刑事责任。
实ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ动物及其设施的等级
屏障环境 主要用于进行SPF级、清洁级的大鼠、小鼠 等小动物实验（配备饲养室及操作室）。
洁净走廊
SPF动物实验室
实验动物及其设施的等级
屏障环境动物实验设施设备
实验动物及其设施的等级
屏障环境动物实验设施设备
实验动物及其设施的等级
屏障环境动物实验设施设备
实验动物及其设施的等级
4、《实验动物种子中心管理办法》 5、《省级实验动物质量检测机构技术审查准则》 6.《四川省实验动物管理条例》2013年5月28日
国家或地方实验动物主要法规、标准
1《实验动物微生物等级及监测》 2《实验动物寄生虫等级及监测》 3《实验动物环境及设施》 4《哺乳类实验动物的遗传质量控制》 5《实验动物配合饲料通用质量标准》 6《实验动物配合饲料卫生标准》
实验动物为人类健康和社会进步作出了巨大 贡献。
引言
目前我国实验动物生产量已达2300万只(2013)，使 用量高达2100万只，高于欧盟25国1210万只的总和。我 国实验动物环境设施规模和质量不断提升，实验动物进出 口越来越频繁，新品系不断引进，使得我国实验动物资源 日趋丰富。
实验动物在生产、使用过程中，存在感染、繁殖 病原体的可能以及向环境扩散病原微生物的危险，对 人和环境造成生物安全危害。
实验动物及其设施的等级
实验动物分为四级：一级为普通级（cv）；二级为清 洁级（cl）；三级为无特定病原体（SPF）级；四级为 无菌级（包括悉生动物）。目前比格犬、恒河猴、小 型猪等大动物多为普通级，大、小鼠均为清洁级以上， 豚鼠、家兔等有普通级、清洁级、SPF级。国际上将 实验动物分为三个级别； SPF级以上动物种群来源于 剖腹产动物，微生物、寄生虫按国标严格控制。
广州市2007年一起流行性出血热实验室感染事件
2010年12月19日，东北农业大学应用技术学院畜禽生产 教育0801班30名学生在动物医学学院实验室进行“羊活 体解剖学实验”，2011年1月开始，连续高烧很多天，四 肢乏力，关节疼痛，后确诊为感染布鲁氏菌病，2011年3 月14日至5月25日，东北农业大学共有27名学生和一名 教师被确诊感染布鲁氏菌病。
实验动物设施分为三级：一级为开放系统；二级为屏 障系统；三级为隔离系统。
实验动物及其设施的等级
隔离系统(Insulation system) 是以隔离器(Isolator)为 主体及其附属装置组成的饲养系统。用作饲养无菌动 物和已知菌动物。分正、负压隔离器。
屏障系统(Barrier system) 这是清洁级、SPF级动物 生产或实验的设施。人、实验动物、饲料、饮水、垫 料、空气及其它物品均需进行严格的微生物控制。人 流、物流及动物流要分开。
引言
实验动物生物安全:是对实验动物可能产生的潜 在风险或现实危害的防范和控制。
由实验动物造成的各种风险和危害包括： 生产和使用实验动物中的各个环节，如实验动 物的引种、保种、繁育、运输、进出口，使用 实验动物(包括感染和非感染实验动物)进行动 物实验、从事科研活动等过程中实验动物都有 可能造成各种危害。