血管形成的测定方法(

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子宫内膜癌的三维超声诊断与血管形成和其显像方面的研究

子宫内膜癌的三维超声诊断与血管形成和其显像方面的研究

山东大学博士学位论文
附图表
图一内膜增生者的3D-TVS图像
说明。

内膜形态规则,内膜与宫壁交界处的低回声环清晰可见
图二子宫内膜癌3D.TVS图像
说明:内膜与肌层交界的低回声环在宫底部中断,病理证实发生深肌层浸润
出东大学博士学位论文
图三内膜癌组,增生内膜组及萎缩内膜组的内膜容积、厚度分布图
图园子宫痞膜客积及浮度豹ROC蓝线
山东大学博士学位论文
图五子宫内膜增生者内膜容积测量图
说明:左上方为子宫内膜冠状面,右上方为子宫内膜矢状面,左下方为子宫内膜横断面,右下方为内膜容积。

图六子宫内膜癌内膜容积测量图
图七腺囊性增生内膜3D-CPA显示血流
说明:绿色框为感兴趣框取工具,右下方图像为彩色血流三维图像,仅显示框取范围内的血流,增生内膜内血流为I级。

图八子宫内膜癌3D-CPA显示血流
说明:右下方为内膜中血流分布的三维图,显示血流迂曲,分支复杂。

图九子宫内膜Ⅵ及CPD的ROC曲线。

血管形成的测定方法

血管形成的测定方法

血管形成的测定方法血管形成(angiogenesis)是指新血管形成的过程,通常发生在组织修复、生殖、生长和疾病等情况下。

然而,血管形成也可能是生命中的一些疾病的主要病理生理过程,比如肿瘤、糖尿病和血管病等。

因此,测量血管形成是科学研究以及疾病治疗的必不可少的一个环节。

血管形成的应用血管形成是细胞组分的组织合成和修复的过程,也是身体善于响应病变和环境变化的反应。

在这个过程中,生物体的血管网络不断更新形成,以满足生长发育、组织修复以及恶性肿瘤的恶性移植等重要生理和病理过程的需要。

因此,我们可以利用血管形成的指标,通过测定血管形成的数量和密度等参数,从而研究一系列生理和病理过程。

例如,在肿瘤学领域,治疗药物的抗血管生成治疗和光热疗法都是通过阻断肿瘤血管的生成发挥治疗作用;在心血管疾病研究中,血管生成和血管失调是心肌缺血和再灌注损伤的主要机制;在组织工程学中,血管形成是细胞种植和组织移植的重要过程。

血管形成的测定方法测定血管生成是疾病治疗和生物医学研究的重要环节,近年来出现了一系列新的测定方法。

下面,我们将会介绍一些血管形成测定的常用方法。

鸡胚中胚层血管生成实验鸡胚中胚层血管生成实验(CAM assay)是一种经济、简单、快速和准确的测量血管形成的方法。

该方法是通过将试剂、药物或者其他样品涂抹于鸡胚上,然后观察是否形成血管网络。

血管网络的形成可以通过显微镜或者图像分析仪进行定量分析。

CAM assay可以用于测试化合物、材料、药物以及细胞的血管生成抑制效果。

此外,CAM assay还可以测定血管生成相关的分子和信号通路,因此是一个强大的研究工具。

皮下基质注射试验皮下基质注射试验(subcutaneous implantation assay)是一种测量动物模型中血管生成的方法。

该方法是通过将细胞、基质或其他样品植入动物皮下,然后定期观测是否形成血管。

血管网络的形成同样可以通过显微镜或者图像分析仪进行定量分析。

血管形成测定实验报告

血管形成测定实验报告

一、实验目的1. 理解血管形成的基本原理和过程;2. 掌握血管形成测定实验的操作方法;3. 分析实验结果,了解血管形成过程中的影响因素。

二、实验原理血管形成是指从原始间充质细胞分化为血管内皮细胞、平滑肌细胞和周细胞等细胞,最终形成完整血管的过程。

本实验通过观察血管内皮细胞标记物CD31的表达情况,测定血管形成的数量和长度。

三、实验材料与仪器1. 试剂:- CD31抗体- 二抗- DAB显色剂- 柠檬酸缓冲液- 生理盐水2. 仪器:- 石蜡切片机- 光学显微镜- 图像分析系统四、实验步骤1. 组织切片:取实验动物组织,经固定、脱水、透明、浸蜡、切片等步骤制成组织切片。

2. 抗原修复:将切片置于柠檬酸缓冲液中煮沸,进行抗原修复。

3. 免疫染色:滴加CD31抗体,室温孵育,滴加二抗,DAB显色。

4. 图像采集:在光学显微镜下观察血管内皮细胞标记物CD31的表达情况,并使用图像分析系统进行血管长度和数量测定。

5. 数据分析:对实验数据进行统计分析,比较不同实验组间的差异。

五、实验结果与分析1. 观察到CD31阳性细胞主要分布在血管内皮细胞,呈圆形或椭圆形。

2. 通过图像分析系统,测定血管长度和数量。

实验结果显示,实验组血管长度和数量均显著高于对照组。

3. 分析原因,可能是因为实验组中血管形成相关因子表达增加,促进了血管内皮细胞的增殖和血管的形成。

六、实验讨论1. 本实验通过观察血管内皮细胞标记物CD31的表达情况,成功测定了血管形成的数量和长度。

2. 实验结果表明,血管形成是一个复杂的过程,受到多种因素的影响,如血管形成相关因子的表达、细胞增殖、迁移等。

3. 本实验为血管形成研究提供了实验方法和数据支持,有助于进一步研究血管形成机制。

七、实验结论1. 本实验成功测定了血管形成的数量和长度,为血管形成研究提供了实验方法和数据支持。

2. 通过观察血管内皮细胞标记物CD31的表达情况,了解了血管形成过程中的影响因素。

血管拟态形成实验报告

血管拟态形成实验报告

一、实验目的本研究旨在通过体外细胞培养实验,观察和探究血管拟态(Vasculogenic Mimicry,VM)的形成过程,并分析其形成的相关因素。

二、实验材料与试剂1. 材料:人肝癌细胞系HepG2、人皮肤黑色素瘤细胞系A375、人血管内皮细胞系HMEC-1、胎牛血清(FBS)、DMEM培养基、青霉素-链霉素混合抗生素、胰蛋白酶、0.25%胰蛋白酶-EDTA溶液。

2. 试剂:Matrigel基质胶、Transwell小室、多聚赖氨酸、吖啶橙(AO)、台盼蓝染色剂、免疫组化试剂盒、抗血管内皮细胞标记物抗体(CD31)、抗细胞外基质蛋白抗体(IV型胶原)、荧光显微镜、凝胶成像系统等。

三、实验方法1. 细胞培养:将HepG2、A375、HMEC-1细胞分别接种于培养皿中,置于37℃、5%CO2培养箱中培养。

2. VM形成实验:(1)将Transwell小室置于培养皿中,下室加入含有10%FBS的DMEM培养基作为细胞外基质。

(2)将HepG2、A375细胞接种于上室,上室加入含有10%FBS的DMEM培养基。

(3)将Transwell小室置于培养箱中培养,观察VM形成情况。

3. VM鉴定:(1)取出Transwell小室,用多聚赖氨酸处理,固定细胞。

(2)用胰蛋白酶-EDTA溶液消化细胞,收集细胞悬液。

(3)用台盼蓝染色剂检测细胞活力。

(4)用免疫组化试剂盒对细胞进行染色,检测CD31和IV型胶原的表达。

(5)观察并记录VM的形成情况。

四、实验结果1. 观察到HepG2、A375细胞在Transwell小室中形成VM,表现为细胞在基质胶上形成管状结构。

2. 免疫组化结果显示,VM区域CD31和IV型胶原表达阳性,证实了VM的形成。

3. 细胞活力检测结果显示,VM形成过程中细胞活力保持良好。

五、讨论本研究通过体外细胞培养实验,成功观察到HepG2、A375细胞在Transwell小室中形成VM。

VM的形成可能与以下因素有关:1. 细胞来源:本研究中的VM形成主要来源于HepG2、A375细胞,这些细胞具有较强的侵袭和转移能力,可能与VM的形成有关。

血管生成生物标志物检测及其临床意义

血管生成生物标志物检测及其临床意义

血管生成生物标志物检测及其临床意义引言:血管生长是一种复杂的生物过程,涉及多种细胞、生理和生化因素的相互作用。

血管生成在许多疾病中起到关键作用,例如肿瘤的生长和转移,而且在组织再生和修复过程中也起到重要的作用。

因此,了解血管生成的机制以及发现可以用于监测和预测相关疾病的生物标志物具有重要的临床意义。

一、血管生成的机制和调控因素血管生成是指新的血管形成过程,它包括血管内皮细胞的增殖、迁移和管腔形成,以及血管周细胞(如平滑肌细胞和间充质细胞)的招募和分化。

血管生成的过程受到多种生理和病理因素的调控。

一种重要的调控机制是血管生成因子及其受体的信号通路。

血管内皮生长因子(VEGF)家族是调节血管生成最重要的因子之一。

VEGF 通过与其受体(如VEGFR-2)结合,激活下游信号通路促进内皮细胞的增殖和迁移。

除了VEGF家族外,其他因子如血小板源性生长因子(PDGF)、基础纤维生长因子(bFGF)等也参与血管生成的调控。

另一个重要的调控机制是血管生成抑制因子的作用。

如血管抑制蛋白1(Angiostatin-1)和血管抑制蛋白2(Angiostatin-2)通过干扰VEGF的信号通路,抑制血管内皮细胞的增殖和迁移,从而抑制血管生成过程。

二、血管生成生物标志物的分类和检测方法血管生成生物标志物是指可以用于检测和评估血管生成过程的生物标志物。

根据其来源和类型的不同,血管生成生物标志物可以分为细胞因子、激素、蛋白质、基因等多种类型。

最常用的血管生成生物标志物是细胞因子,如VEGF、PDGF、bFGF等。

这些细胞因子在血液和组织中的水平可以通过酶联免疫吸附实验(ELISA)或其他免疫检测方法进行测定。

这些方法具有高灵敏度和特异性,可以用于评估血管生成的活性以及疾病的进展和预后。

除了细胞因子,一些激素如雌激素和甲状腺素在血管生成中也发挥重要作用。

对这些激素的水平进行检测可以了解其对血管生成的调节作用。

蛋白质是细胞生物学中的重要参与者,在血管生成过程中也发挥着重要的作用。

血管生成实验模型研究进展

血管生成实验模型研究进展

血管生成实验模型研究进展吴家明1,陆 茵1,2,郜 明1,张伟伟1(1.南京中医药大学中医药研究院,江苏南京 210029;2.江苏省方剂研究重点实验室,江苏南京 210029)收稿日期:2007-09-21,修回日期:2007-11-01基金项目:国家自然科学基金资助项目(No 30371727,30772766);江苏省自然科学基金资助项目(No BK2003113)作者简介:吴家明(1980-),男,硕士生,研究方向:肿瘤血管生成与抗肿瘤转移研究,E 2mail:nj w ujia m ing@;陆 茵(1963-),女,教授,博士生导师,研究方向:肿瘤血管生成与抗肿瘤转移研究,通讯作者,Tel:025286798154,E 2mail:luyingreen@中国图书分类号:R 205;R 332;R 3632332;R 36413文献标识码:A 文章编号:1001-1978(2008)01-0011-04摘要:抗血管生成已经成为治疗肿瘤转移、糖尿病视网膜病变、风湿性关节炎等疾病的重要策略之一。

血管生成模型作为一种研究工具在探讨血管形成机制、发现促进或抑制血管生成药物等研究中发挥十分积极的作用。

如何寻找适合的血管生成模型是研究人员在研究中常遇到的问题。

该文就主要常用模型做较全面的介绍,并对其优缺点进行评价。

关键词:血管生成;模型 血管生成(angi ogenesis )是指在原有的毛细血管和(或)微静脉基础上通过血管内皮细胞的迁移和增殖,从已存在的血管处以芽生或非芽生(套迭)形式形成新的、以毛细血管为主的血管系统过程[1]。

血管生成是许多促进或抑制血管生成的分子参与调节的一个平衡过程[2]。

血管生成过多与肿瘤、糖尿病性视网膜病变等疾病有关[3],抑制血管生成已经成为治疗这些疾病的重要策略。

因此寻找血管生成抑制剂成为研究热点。

血管生成研究需借助血管生成模型进行,血管形成的许多过程都可以在血管生成模型中模拟完成,包括内皮细胞增殖、迁移、毛细血管网状结构的形成等。

关于血管的检查项目

关于血管的检查项目

血管检查主要是通过一系列的影像学检查方法来评估血管的健康状况,检查项目主要包括以下几种:
1. 血管超声:通过高频声波显示血管的形态和血流情况,具有无创、无痛、无辐射的优点。

可以用于检查全身各部位的血管,如颈动脉、下肢动脉、冠状动脉等。

2. 血管造影:是一种介入性检查方法,通过向血管内注射造影剂,使血管显影。

常用的造影剂有碘造影剂和泛影葡胺等。

血管造影可以清晰地显示血管的形态、结构和血流情况,是诊断血管疾病的金标准。

3. CT血管成像(CTA):通过多层螺旋CT扫描,获取高分辨率的血管影像。

CTA可以显示血管壁和血管腔的情况,以及血管与周围组织的解剖关系。

常用于检查头颈部、胸腹部和下肢血管。

4. MRI血管成像:利用磁共振技术获取血管影像,具有无辐射、无创伤的优点。

可以显示血管的形态、结构和血流情况,以及血管壁的炎症和动脉粥样硬化等病变。

常用于检查头颈部、胸腹部和下肢血管。

5. 血液检查:包括血常规、凝血功能、血脂、血糖等检查,可以了解血液流动性和凝血功能等方面的情况,间接反映血管健康状况。

以上是关于血管检查项目的介绍,这些检查方法可以帮助医生全
面了解患者的血管健康状况,从而制定出相应的治疗方案。

成纤维细胞因子和血管生成

成纤维细胞因子和血管生成

成纤维细胞因子和血管生成:血管内皮生长因子(Vascular endothelial growth factor,VEGF)以及碱性成纤维细胞生长因子(Basic[ibrob—last growth factor.bFGF)碱性成纤维细胞生长因子和血管再生摘要关键词移植皮瓣坏死是整形外科常见的手术并发症之一,至今其发病机理仍不十分清楚。

但普遍认为血供不足和缺血再灌注损伤是其中的两个重要原因,我们推测将bFGF应用于缺血皮瓣,可能有利于皮瓣下新生血管形成,减轻再灌注损伤,促进皮瓣成活bFGF广泛存在于细胞外间质中,具有广泛的生物活性,能调节中胚层及神经外胚层来源的多种细胞的分裂,其中对血管内皮细胞有显著的增殖效应,是有效的血管生成因子(angiogenic factor)之一。

,但三种剂量组之间差异不显著,9∪g bFGF是皮瓣滴注的最佳剂量。

—般来说,大鼠皮瓣移植后6天~7天,从受床基底重建的有效血供已能够维持整个皮瓣的成活。

术后7天,确定皮瓣坏死率以及SDH含量和氧耗量,反映皮瓣的功能状况较为合适bFGF对大鼠缺血皮瓣琥珀酸脱氢酶含量和氧耗量的影响[1]孙同柱* 傅小兵许明火·王亚平·杨银辉中国重建修复外科杂志1997年11卷5期264-265bFGF可逆转缺氧导致的内皮细胞增殖能力下降】。

通常情况下,由内皮细胞合成的bFGF由于缺少传统的分泌性信号肽,主要存储在细胞质和基质分隔腔,不能以传统的形式分泌。

缺氧时,bFGF可从损伤细胞中释放,途径可能是浆膜破坏释放或内皮细胞膜通透性增加,bFGF从细胞胶质中释放。

这实质是细胞对缺氧的急性应答反应。

此外,缺氧时bFGF在细胞中的分布发生变化,以参与内皮细胞对缺氧的应答】。

常氧下bFGF散在、均匀地分布在胞质和基质分隔腔,缺氧后bFGF分布最明显的变化是核周环的出现和临近核细胞着色增强。

Miehiells 6 证实:外源性的bFGF(5 ng/m1)可刺激缺氧培养的内皮细胞生长,并表现对缺氧的修复能力。

血凝实验原理

血凝实验原理

血凝实验原理
血凝实验是一种常用的血液凝固功能测试方法,通过测定血液中的凝血因子活性和凝血酶原时间来评估机体血液凝固功能的状态。

实验原理主要包括以下几个方面:
1. 凝血过程:当血管发生损伤时,凝血因子会依次激活,形成血小板聚集和纤维蛋白聚集,最终形成血栓。

2. 血栓形成过程:凝血因子活化后,会生成凝血酶酶解纤维蛋白原,将其转化为纤维蛋白,形成血栓。

3. 凝血酶原时间(PT)测定:该指标是衡量机体外系凝血功能状态的常用参数。

PT测定主要包括两个阶段:原始凝血因子活化和共同凝血酶酶原的形成。

在实验中,通过添加常规的凝血试剂和钙离子来模拟凝血过程,测量血液在一定时间内凝固的程度,得到PT的结果。

4. 凝血酶时间(TT)测定:该指标用于评估凝血酶活性。

在实验中,通过加入甘露醇或其他抗凝剂来阻断凝血因子活化,然后观察血液在一定时间内是否凝固,从而得到TT的结果。

5. 部分凝血活酶时间(APTT)测定:该指标用于评估机体内源性凝血途径功能。

在实验中,通过添加磷脂质激活剂和凝血因子活化剂来激活血液内部的凝血因子活性,并加入凝血试剂和钙离子来促使凝血过程进行,测量血液在一定时间内凝固的程度,得到APTT的结果。

总之,血凝实验通过模拟机体血液凝固过程和测定凝血因子活性,能够评估机体凝血功能的状态,为临床诊断和治疗提供重要的监测指标。

快速识别脑血管病的方法

快速识别脑血管病的方法

快速识别脑血管病的方法
1、行脑血管造影(如CTA,MRA)。

这可以帮助确定脑血管病的类型和分布,包括动脉瘤,血管狭窄,血栓形成,肉瘤等;
2、行头部超声(如Transcranial Doppler),这可以精确地监测脑血管病情变化,同时指导治疗;
3、行血管调节性磁共振显像检查,有助于诊断慢性病变,评估冠状动脉功能以及心脏血流不全,并帮助决定进一步治疗措施;
4、行脑电图(如风湿性脑炎),这可以帮助判断潜在的神经缺损;
5、行血液分析(如尿酸水平测定等),这可以检测出潜在的糖尿病等慢性病,以及其他部分脑血管病变;
6、行心脏分析,可以帮助确定心脏病态,以及与脑血管病形成关联。

临床医学检验:血栓与止血检验考试题库(题库版)

临床医学检验:血栓与止血检验考试题库(题库版)

临床医学检验:血栓与止血检验考试答案真题1、单选血小板无力症表现为下列哪种成分的缺陷()A.GPⅡb/ⅢaB.PF4C.PF3D.GPⅠb聚集成复合物E.P-选择素正确答案:A2、判断题Weibel(江南博哥)-Palade小体内容物含有血小板P-选择素。

() 正确答案:对3、配伍题是凝血酶敏感蛋白受体()是纤维蛋白原受体()是血管性血友病因子受体()是胶原受体()A.GPⅠb/GPⅨB.GPⅡb/GPⅢaC.GPⅣD.GPⅠa/GPⅡbE.GPⅤ正确答案:C,B,A,D4、判断题TXB2与6-酮-PGF1aELISA法测定中,OPD显色常选择的比色波长为475nm。

()正确答案:错5、问答题试述诊断DIC的主要实验指标。

正确答案:同时有以下3项以上异常结合临床可诊断为DIC:(1)PLT<100×109/L,或进行性下降(肝病、白血病≤50×109/L),或有2项以上血浆血小板活化产物升高:β-TG、PF4、TXB2和P-选择素。

(2)血浆纤维蛋白原含量低于1.5g/L,或进行性降低,或超过4.0g/L(白血病、恶性肿瘤低于1.8g/L,肝病低于1.0g/L)。

(3)FDP超过20μg/L(肝病超过60pg/L),或D-二聚体升高或阳性。

(4)血浆PT时间缩短或较正常对照延长3s以上,或呈动态变化(肝病超过5s以上)。

(5)纤溶酶原含量和活性降低。

(6)AT含量和活性降低(肝病不适用)。

(7)血浆因子Ⅷ∶C低于50%(肝病必备)。

6、填空题血液中的抗凝因子主要有__________、____________、_________________和__________________________四个体系。

正确答案:抗凝血酶;蛋白C系统;组织因子途径抑制物;蛋白z和蛋白z依赖的蛋白酶抑制物7、多选由血管内皮细胞产生的具有抗凝作用的物质是()A.EPCRB.HMWKC.TFPID.vWFE.TM正确答案:A, B, C, E8、单选在采用聚集仪测定PAgT时,下列哪种诱导剂诱导出现单峰() A.ADP(1.0μmol/m1)B.ADP(O.5μmol/m1)C.肾上腺素(O.4μg/ml)D.胶原(3.Oμg/ml)E.瑞斯托霉素(1.5mg/ml)正确答案:D9、单选下列哪项不符合纤维蛋白原降解产物的有关理论()A.D-D二聚体是交联纤维蛋白的降解产物B.纤维蛋白单体可自行聚合成肉眼可见的絮状物C.D-D二聚体是原发性纤溶的有效指标D.FDP各碎片仍具有与纤维蛋白(原)相同的抗原性E.FDP、D-D二聚体是诊断DIC的重要指标正确答案:C10、单选在PAgT试验中ADP宜保存于()A.室温B.室温避光保存C.(0~4)℃冰箱D.37℃水浴箱E.-20℃保存正确答案:E11、多选血管间质细胞的功能()A.收缩功能B.调节毛细血管生长C.促进平滑肌细胞分化D.促进成骨细胞分化E.促进淋巴细胞分化正确答案:A, B, C, D12、名词解释DIC正确答案:即弥散性血管内凝血,是由于多种病因所引起的血栓止血病理生理改变的一个中间环节。

出凝血功能的常用检测方法

出凝血功能的常用检测方法

出凝血功能的常用检测方法凝血功能是指机体在出血或血管损伤时,通过一系列的生理反应来形成血栓,以止血止血。

凝血功能的异常可能会导致出血或血栓形成的风险增加。

为了评估凝血功能,医生通常需要进行一系列的凝血功能检测。

下面是常用的几种凝血功能检测方法。

1.凝血酶原时间(PT)和国际标准化比值(INR):PT是指从血液开始凝结到形成血块所需的时间。

它测量的是凝血系统中外源凝血途径的活性。

INR是将患者的PT值与一组标准样本进行比较后得出的结果,主要用于监测服用华法林等抗凝药物的患者。

2.活化部分凝血活酶时间(APTT):APTT测量的是在内源凝血途径中血液凝结所需的时间。

它是判断凝血因子VIII、IX、XI和XII的活性的重要指标。

APTT常用于评估患者是否具有遗传性或获得性的凝血因子缺乏。

3.凝血酶时间(TT):TT是测量血液凝结是否完全的指标。

它用于评估纤维蛋白形成的过程。

4.血小板计数:血小板是凝血的重要组成部分,通过将血小板的数量计算在内,可以评估患者是否存在血小板功能异常或凝血因子缺乏。

5.纤维蛋白原测定:纤维蛋白原是血液凝结的重要组成部分。

纤维蛋白原测定可以帮助评估是否存在纤维蛋白原缺乏,从而导致血液凝结能力下降。

6.D-二聚体测定:D-二聚体是纤维蛋白溶解产物,可以通过测量D-二聚体水平来评估血栓溶解的过程。

它通常用于评估深静脉血栓形成和肺栓塞的风险。

7.抗凝血酶检测:如凝血酶时间延长试验、凝血酶抑制物测定等,用于评估抗凝血系统的功能。

此外,还有一些其他的凝血功能检测方法,例如血浆凝血酶时间、凝血酶原活性、纤维蛋白聚合试验、肌酸激酶金黄准试验等,它们根据不同的实验条件和目的,对凝血功能的评估提供了更全面的信息。

总之,凝血功能的检测方法多种多样,医生根据具体的临床情况来选择适合的检测方法,并结合其他检查结果,来评估患者的凝血功能及可能存在的异常问题。

这些检测方法对于凝血功能异常的早期诊断和治疗具有重要的意义。

血管形成实验步骤

血管形成实验步骤

血管形成实验步骤血管形成(angiogenesis)是新血管形成的过程,是细胞增殖、迁移和分化的高度调控过程。

血管形成实验是研究该过程的有效方法之一。

以下是血管形成实验的步骤。

1. 细胞培养需要培养所需的细胞。

通常使用的是人类内皮细胞(HUVEC)和人类胚胎肺成纤维细胞(HELF)。

这些细胞可以在培养皿中进行培养,通常使用的培养基为DMEM(Dulbecco's Modified Eagle Medium)。

2. 制备基质然后,需要制备细胞可以生长的基质。

这可以通过在96孔板或24孔板中加入蛋白质基质(如Matrigel或Collagen)来实现。

这些基质可以模拟细胞生长的环境,并促进细胞之间的相互作用。

3. 细胞接种将细胞接种到预先制备好的基质中。

通常使用的细胞密度为1-2×10^4个细胞/孔。

4. 细胞培养细胞接种后,需要在37℃和5% CO2的条件下进行培养。

在培养过程中,需要定期更换培养基以保持细胞的健康生长。

5. 加入样品在细胞接种后的24小时内,加入需要测试的样品,如药物、小分子化合物或蛋白质。

6. 观察形态在接种后的24-48小时内,观察细胞形态的变化。

如果样品对细胞有影响,可以观察到细胞的增殖和迁移。

7. 观察管网形成在接种后的3-7天内,观察管网的形成。

这可以通过显微镜观察到,可以使用荧光显微镜或电子显微镜等高级技术进行进一步观察和分析。

8. 数据分析对结果进行数据分析。

可以使用图像分析软件来分析管网的形成和细胞的增殖和迁移。

此外,还可以使用定量PCR或Western blot 等技术来分析基因和蛋白质表达的变化。

血管形成实验是一种有效的方法,可以用于研究新血管形成的机制和相关疾病的治疗方法。

通过遵循上述步骤,可以获得准确的实验结果。

周围血管科常用检查方法

周围血管科常用检查方法

周围血管科常用检查方法肢体位置试验两下肢伸直抬高45度,持续3~5分钟,如果足部皮肤出现苍白,说明肢体供血不足。

然后让患者坐起,双足下垂,观察足部的颜色恢复时间,若超过10秒,则为阳性。

下垂后双足出现紫绀色,说明肢体严重缺血。

泛红试验(乳头下层静脉丛充盈试验)检查者以手压迫患者手、足1分钟,将末梢的血驱空,使皮肤苍白;正常情况下,停止压迫1~3秒后皮肤颜色可恢复正常,若超过5秒钟,说明肢体动脉缺血,此试验可判定指(趾)动脉是否有闭塞。

亚伦氏试验用以判定尺、桡动脉是否通畅。

试验时患者握紧拳,检查者以手压迫患者桡动脉,然后让患者松开拳,如果手部仍呈苍白色,说明患者尺动脉阻塞,同法可检测桡动脉是否阻塞。

对足部的足背动脉和胫后动脉也可用此法来进行检测,以判定足背动脉或胫后动脉是否阻塞,或是判定有无解剖异常,例如患者足背动脉搏动不能触及,检查者可按压患者的胫后动脉,同时进行泛红试验时,如果患者足部的颜色在3秒内恢复正常,说明有足背动脉走行的解剖异常,并非有动脉的阻塞。

尼霍夫氏征让患者仰卧,自然曲膝,放松下肢,检查者用手压迫患者小腿腓肠肌,如有饱满紧韧感和压痛,为阳性,说明存在下肢深静脉血栓形成。

霍曼氏征让患者仰卧,自然伸直下肢并略抬高,检查者用手握住患者足部用力背屈而牵拉小腿腓肠肌,如出现下肢后方绳索样紧硬疼痛即为阳性,说明存在下肢深静脉血栓形成,,为深静脉血栓、炎症与周围组织粘连所致。

冷水试验将手指(足趾)放入4度左右的冷水中1秒,可诱发雷诺现象,诱发率在75%左右。

握拳试验令患者握拳1秒后,在屈曲状态下松开手指,可以诱发雷诺现象出现。

下肢静脉功能试验:(1)深静脉通畅试验(Penhes试验):用来测定深静脉回流情况,下肢静脉曲张患者的深静脉往往是通畅的。

方法是在大腿用一止血带阻断大隐静脉干,嘱病人连续用力踢腿或下蹲,由于下肢运动,肌肉收缩,浅静脉血液经深静脉回流而使曲张静脉萎陷空虚。

如深静脉不通或有倒流使静脉压力增高则曲张静脉压力不减轻,甚至反而曲张更显著。

d二聚体测定2.26

d二聚体测定2.26

d二聚体测定2.26D二聚体测定2.26是一种常规的先进检测方法,用于评估血管内凝血或血栓形成的可能性。

血管内凝血是一种严重的疾病,可以导致血栓,心肌梗死和中风等疾病的发生。

因此,D二聚体测定2.26在临床医学中扮演着非常重要的角色。

本文将简要介绍D二聚体测试内容和应用。

D二聚体是一种由纤维蛋白原在血液中分泌的多肽分子。

在人体中,它作为一种血管内凝血的标志物,在凝血过程中起到了重要的作用。

当血管内凝血或血栓形成时,血浆中的D二聚体会增加,因此,测量其水平可以用来评估患者是否存在血管内凝血或血栓形成的风险。

D二聚体测定2.26的基本步骤是收集被检者的血液样品并测量血浆中D二聚体水平。

这可以通过免疫分析或凝集反应等多种方法来实现。

这些方法的优点是简单易行,可以使用标准仪器。

尽管D二聚体测定2.26是一种高度标准化的检测方法,但在进行之前仍需小心处理样本,以减少可能的污染和假阳性结果的产生。

D二聚体测定2.26在许多情况下被广泛使用。

它是诊断深静脉血栓形成(DVT)和肺栓塞(PE)的一种常规检测方法。

它也可以用于监测心血管疾病和癌症患者中出现血管内凝血的风险。

除此之外,D二聚体测定2.26还用于评估患者的危险因素,例如手术和创伤后的血栓形成概率等。

总的来说,D二聚体测试是一种快速,准确和可靠的方法,可用于评估患者血管内凝血或血栓形成的风险。

它容易实行,可以在临床病房或诊所中进行,并且可以为医生提供重要的诊断信息。

尽管存在某些限制,例如抗凝剂影响的可能性以及某些基因型的影响,但D二聚体测定2.26仍是临床医生用来评估患者危险因素和监测其病情发展的重要工具。

血栓检查的金标准

血栓检查的金标准

血栓检查的金标准血栓检查是一种常见的实验室检查,用于诊断或排除血凝方面的疾病。

血栓是一种由血液成分形成的固体结构,通常情况下用于止血,但是如果存在异常则可能会对身体健康造成危害。

因此,血栓检查在诊断和治疗血栓相关疾病中起着至关重要的作用。

本文将介绍血栓检查的金标准及相关参考内容。

血栓检查的目的是确定血管内是否存在血栓。

临床医生通常会根据患者的病史、症状和体征进行初步诊断,并通过血栓检查进一步确认。

下面是一些常见的血栓检查项目:1. D-二聚体测定:D-二聚体是一种血浆中的蛋白质,通常用于判断血管内是否存在血栓。

在血管内形成血栓时,D-二聚体会逐渐升高。

因此,临床医生可以通过检测患者的D-二聚体水平来判断是否存在血栓。

2. 凝血酶原时间(PT)和激活部分凝血时间(aPTT):PT和aPTT是血液凝固的两个主要指标,也是判断血栓的有效方法。

PT主要测量凝血因子Ⅶ、Ⅹ和Ⅴ,而aPTT则测量凝血因子Ⅻ、Ⅺ、Ⅸ、Ⅷ、Ⅹ和Ⅴ。

3. 骨髓穿刺:骨髓穿刺通常用于检查血栓性血小板减少性紫癜等血液病。

通过骨髓穿刺可以直接观察骨髓中的血栓情况,确定疾病的诊断。

4. 焦磷酸酶测定:焦磷酸酶通常存在于血栓中。

通过检测患者的焦磷酸酶水平可以判断血栓的情况。

除了上述常见的血栓检查项目,医生还可能会根据患者的具体情况进行其他测试,例如:1. 血小板数量和功能测试:血小板在血栓形成中起着至关重要的作用。

通过检测患者的血小板数量和功能可以判断是否存在血栓。

2. D-一聚体和纤维蛋白原测定:D-一聚体和纤维蛋白原是与血液凝固相关的两种蛋白质。

通过检测患者的D-一聚体和纤维蛋白原水平可以判断血液凝固的情况。

3. 血栓弹力图:血栓弹力图是一种新型的血栓检查方法,可以测量血栓的形成和溶解速度。

通过血栓弹力图可以更加准确地判断血栓的情况。

总之,血栓检查非常重要,可以帮助医生发现和治疗血栓相关的疾病。

通过综合分析不同的血栓检查项目可以更加准确地判断血栓的情况。

颈部血管超声测量方法

颈部血管超声测量方法

颈部血管超声测量方法
颈部血管超声测量方法主要包括以下步骤:
1. 探头频率选择:一般采用彩色多普勒超声诊断仪,探头频率选择~。

2. 受检者体位:受检者取仰卧位,双肩垫枕,头略后倾。

3. 扫描范围:从颈动脉的根部开始,从长轴和短轴两个方向显示颈总动脉、颈总动脉分叉处、颈内动脉、颈外动脉的结构。

4. 观察并记录:观察并记录颈动脉内-中膜厚度(IMT)有无粥样斑块及斑块的类型、有无管腔狭窄及程度。

5. 测量内中膜厚度(IMT):在纵断面进行测量内中膜厚度(IMT),正常时。

6. 检测血管内径:探头从颈根部向头侧移动作横向扫查,显示颈总动脉近心端、中部、远端、颈动脉分叉处及颈内、颈外动脉。

测量从内膜内表面至外侧内膜内表面的距离,以心脏收缩期为准。

部位包括颈总动脉中部、颈内动脉距其窦1cm处、颈外动脉距分叉1cm处。

7. 观察斑块和狭窄情况:观察各血管壁四周有无斑块,测量残腔大小、计算面积狭窄百分比。

以上步骤完成后,颈部血管超声测量工作就完成了,可以根据检查结果判断是否存在血管异常的情况。

d二聚体测定2.17

d二聚体测定2.17

d二聚体测定2.17一、二聚体测定概述二聚体测定是一种检测血液中二聚体水平的实验方法。

二聚体是指两个分子通过共价键连接在一起形成的化合物,广泛存在于生物体内。

在医学领域,二聚体测定主要用于检测纤维蛋白降解产物,对血栓形成、弥漫性血管内凝血等疾病的诊断和监测具有重要价值。

二、二聚体测定的原理和方法二聚体测定通常采用酶联免疫吸附法(ELISA)或免疫比浊法等方法。

测定过程中,首先将待测样本与特异性抗体结合,然后加入标记有酶标的抗体或抗原,通过抗原-抗体反应形成二聚体复合物。

根据酶标记物的显色程度,间接反映二聚体水平。

三、二聚体测定在医学领域的应用1.血栓性疾病:二聚体测定有助于诊断和监测血栓形成性疾病,如深静脉血栓、肺栓塞等。

增高的二聚体水平提示血栓风险较高,有助于早期预防和干预。

2.弥漫性血管内凝血(DIC):DIC是一种严重的凝血功能障碍性疾病,二聚体测定对其诊断和病情评估具有较高价值。

DIC时,二聚体水平显著升高,且与病情严重程度呈正相关。

3.肿瘤:某些肿瘤患者体内二聚体水平升高,可能与肿瘤生长、转移和不良预后有关。

二聚体测定可作为肿瘤患者的辅助诊断和预后评估指标。

四、正常值和异常值的意义正常情况下,二聚体水平较低。

当二聚体水平升高时,提示可能存在血栓形成、DIC等疾病。

然而,需要注意的是,二聚体水平受多种因素影响,单一指标不能作为确诊依据,需结合其他检查结果综合判断。

五、影响二聚体测定的因素1.样本:采集标本时应注意避免溶血、脂血等影响检测结果。

2.实验方法:不同方法的二聚体测定结果可能存在差异,选择合适的检测方法至关重要。

3.仪器和试剂:仪器和试剂的质量直接影响检测结果的准确性。

4.操作技巧:操作过程中应严格遵循实验规程,避免误差。

六、提高二聚体测定准确性的方法1.选择可靠的检测方法和试剂。

2.规范化操作,严格控制实验条件。

3.多个时间点检测,观察动态变化。

4.结合其他相关检查,综合评估病情。

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血管形成的测定方法血管形成是从已经存在的血管床中通过内皮细胞增殖和迁移,以芽生或非芽生的方式生成新生血管系统的过程,与正常的生理过程(如伤口愈合、胚胎发育等)和许多病理过程(如肿瘤的生长和转移、类风湿性关节炎、脑和心血管等疾病)密切相关[1, 2]。

血管形成中的主要细胞是内皮细胞,它存在于所有的血管上,通过内皮细胞的迁移、增殖、分化和结构重建构成了新的毛细血管网。

除内皮细胞在血管发生过程起重要作用外,支持细胞(如肿瘤细胞、外周细胞、平滑肌细胞、成纤维细胞)、细胞外基质、血液细胞和体液成分也都与血管的发生有关。

因此,血管发生的测定非常复杂。

当今尚未有任何一种体外的实验方法能精确地模拟这一复杂的过程,但结合体外、体内血管形成的测定方法,可以有效地了解血管发生的作用机理。

本文介绍了当前体内外用来研究血管形成的一些基本方法和最新方法,并对这些方法的优缺点进行了深入探讨。

1 血管形成的体外测定方法体外测定血管形成的方法主要侧重于外源性抑制剂或刺激因子对内皮细胞的迁移、增殖和成管的作用。

对内皮细胞的测定,关键问题在于内皮细胞具有物种和器官的差异性。

内皮细胞表型的差异已在大血管衍生的内皮细胞(如人脐静脉内皮细胞)和微血管器官的内皮细胞(如人类皮肤毛细血管内皮细胞)中被证实[3, 4]。

在培养中,内皮细胞的活化状态、染色体表型、细胞表面抗原的表达和它们的生长特性都会发生改变,将失去体内生长的一些特性[3]。

另外,在体外,内皮细胞在静止环境、动态环境、结合不同的基质的情况下,它们的特征也不同,因此它并不能完全代表体内复杂的生理过程。

尽管用内皮细胞作为模型来研究体内血管发生具有很大的局限性,但体外测定方法具有快速、易定量、可重复性高等特点。

1.1 内皮细胞增殖测定法血管内皮细胞的增殖是血管发生的重要步骤。

目前,已有多种成熟的细胞增殖测定方法,如四氮唑盐还原法等。

[3H ] 胸腺嘧啶掺入法和细胞周期动力学检测法是两种主要的细胞增殖测定方法。

四氮唑盐〔3 (4,5 dimethylthiazol 2 yl) 2,5 diphenyl tetrazolium bromide, MTT 〕还原法,又称MTT比色法,是一种最常用的检测细胞存活和生长的方法。

活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶使外源性MTT还原为蓝紫色结晶甲瓒 (Formazan)并沉积在细胞中,而死细胞无此功能。

MTT结晶形成量与细胞数成正比。

该方法已被用于检测活细胞增殖,并广泛用于一些生物活性因子的活性检测、大规模的抗肿瘤药物筛选、细胞毒性实验以及肿瘤放射敏感性测定等[5]。

与之相比,[3H ] 胸腺嘧啶掺入法是一种更好的测定细胞增殖的方法。

将同位素氚标记的胸腺嘧啶核苷(3H TdR)作为DNA合成的前体掺入到增殖细胞中,通过放射自显影观察细胞增殖情况。

传统的以5 溴脱氧尿苷(BrdU)作为核苷酸取代胸腺嘧啶掺入到新生成细胞的DNA中,通过用单克隆抗体检测与DNA结合的BrdU ,反映细胞增殖状态的方法,虽然较以上方法有所进步,但其仍或多或少的受外源性示踪物的影响[6]。

同时细胞增殖的变化可能是由细胞毒性而非测试药物的影响作用,因此结合细胞增殖测定法和细胞凋亡检测法的特点,可能会获得更为精确的结果。

1.2 内皮细胞迁移测定法目前,对血管内皮细胞迁移的影响,已经有很多有效的测定方法。

其中以改良的Boyden Chamber 或Transwell 法最常用[7] 。

这些方法均是通过观测穿过一定孔径(如8 μm) 硝酸纤维素薄膜的细胞数量,确定细胞迁移能力。

近年来虽然又有新型Millicell HA 底膜培养皿式双室联合培养系统出现,但是它们的原理一样,利用细胞穿过微孔滤膜来观测一种细胞对另一种细胞迁移的影响。

划痕损伤的方法在国外出现较早。

用移液器滴头或刀片在单层血管内皮细胞的培养皿上划痕,为边缘内皮细胞迁移提供一裸露区域。

经过创伤后边缘的单层内皮细胞可迁移至创伤区域,并重新形成新的单层内皮细胞层。

在光镜下计数从损伤边缘迁移出的细胞数和迁移的相对距离,并计算出细胞的实际迁移距离。

然而这种方法的定量具有任意性。

1.3 成管测定法血管形成中最典型的测定是对内皮细胞形成三维结构能力的测定。

在体外给予适合的细胞外基质成分,内皮细胞能形成管状结构。

在含有胶原和纤维蛋白凝块的塑料培养皿中,内皮细胞初期在水平面形成细胞条索结构,经过12 h或更长时间培养,细胞条索开始向上发出分支,贯穿凝胶形成三维的管状网络结构[8]。

在一系列的血管发生测定中,成管测定占有重要的位置[9, 10]。

内皮细胞不仅能在二维空间形成毛细管,也能在三维空间对细胞行为进行定量分析,这更为接近体内细胞生长的环境。

定量分析包括在凝胶中从下到上对不同长度管进行拍照,测量每个管的长度(水平面上的宽度和垂直面的高度)和管的最大直径等。

1.4 器官培养测定法器官培养方法极大地推进了对血管形成的测定。

器官血管形成测定法包括鼠主动脉环、鸡主动脉弓、猪颈动脉、胎儿鼠骨移植测定法等。

这些测定法非常相似,其中鼠主动脉环测定应用最为广泛。

在体外,通常把分离的器官片段、胎盘或部分器官放于含有待检测物质的基质(如纤维)中培养,10~14 d后,可检测内皮细胞生长形成血管,通过测量移植体的长度和形成微血管的数目来定量测定血管的发生[11]。

然而,血管定量测定也非常困难,因为微血管的向外生长总是成簇在一起,因此它们所覆盖的区域就很难测定。

2 血管形成的体内测定方法以上叙述的一系列体外测定方法已被用来研究血管形成的不同方面,然而对不同来源内皮细胞的分离和体外培养发现,不同来源的血管内皮细胞对各种外界因素的反应不同。

体外培养的内皮细胞行为和形态受到多种实验参数的影响:基质的自然状况、所用培养介质及血清的类型、各种外界因素、收集细胞的方法以及传代次数等。

因此,近年来体内实验系统被广泛地重视和应用,并且得到迅速发展。

在以往发表的很多文章中,大量的体内测定法已经被详细的描述过,笔者结合最新的进展作进一步的详述。

2.1 背侧皮肤/气囊模型测定法β背侧皮肤/气囊模型是用来检测药物对由体内癌细胞所触发的新生血管生成反应的影响[12]。

用滤纸覆盖微孔环两侧,形成一个腔系,用肿瘤细胞悬浊液填充这个腔系,然后将其植入到麻醉老鼠的经皮下注射形成的皮下气囊中。

用检测物质处理后,将腔室除掉,然后将相同的多聚物环放置在与腔系直接接触的位点。

新生血管形成的反应可通过计数新生血管的数目来检测。

这种检测法相对来说操作比较简单,然而操作仍需细心,以避免引起腔系表面血管的形成,因为微孔环本身能诱导新生血管的形成,从而掩盖了由细胞所诱导的新生血管的形成。

2.2 海绵聚合体植入和基质胶塞测定法在皮下植入包含细胞或血管发生刺激因子的聚合体基质(以海绵或基质胶塞的形式)已经越来越多的应用于研究体内血管的发生[13]。

将被检测物直接或制成片剂置于海绵中,通过一系列的方法,如组织学(组织浸润)、形态学(血管密度)、生物化学(DNA 、蛋白和血红蛋白的含量) 等方法检测新生血管生成[14]。

然而,海绵的大小、形状和组分的不同对实验结果都会有影响;此外,植入能引起非特异性的免役应答,这些免役应答可能自身会导致血管形成的发生。

基质胶塞测定法被广泛用于评价生长因子的促血管新生能力,如VEGF[15]。

基质胶是富含层连蛋白的细胞基质, 可以诱导和保持多种细胞的分化。

基质胶在4 ℃时成液态, 与各种生长刺激因子混合后注射到小鼠腹部皮下组织, 在小鼠正常体温条件下很快形成固体凝胶, 使生长刺激因子缓慢释放。

通过组织学检测,图像分析塞内的血管面积(mm3) 或通过检测基质胶中血红蛋白的含量对血管生成进行定量分析。

尽管基质胶比较昂贵,但与人工海绵相比, 基质胶提供了血管发生更为自然的微环境。

2.3 鸡胚绒毛尿囊膜(chick choriollantoic membrane,CCM) 和卵黄囊(yolk sac membrane,YSM)膜测定法鸡胚绒毛尿囊膜和卵黄囊膜测定法是研究血管形成最常用的体内测定法[16],在很多文章中都有比较详细的描述[17-19]。

目前这两种模型的应用已较成熟,并且广泛用于研究血管生成和抗血管生成中[20]。

CAM 模型有侧室开窗法和顶端气室开窗法,开窗暴露出CAM,以明胶海绵、定性滤纸或甲基纤维素作为载体,将药物植入到CAM 上,2~3 d 后就会观察到移植物周围典型的放射状排列的新生血管。

YSM法是对CAM法的改进,将72 h鸡胚整体去掉蛋壳,移植到无菌平皿中,这样在YSM发育过程中,可以持续观察血管发生的过程,并且可在更大范围和时间内定量测定血管的发生。

该方法克服了CAM法难以确定加样部位的缺陷,使药品加入部位一致,并可在同一部位多次给药,观察结果简便可靠。

另外,近20年来,鸡胚尿囊膜移植瘤模型也被用于肿瘤血管形成机制的研究。

这种模型可能是研究肿瘤诱导的血管发生最理想的模型,因为宿主的免疫系统还没有完全成熟,肿瘤种植到尿囊膜上2 d内保持无血管的状态,之后新生血管进入肿瘤,并且快速生长,形成丰富的血管网。

鸡胚尿囊膜和卵黄囊膜法技术具有相对操作比较简单、取材方便、无需特殊设备、经济、实验周期短、适合于大规模筛选等优点,又能定性或半定量的检测肿瘤组织、细胞分泌成分及各种生物因子对血管的活性作用,是研究肿瘤生物学特性,特别是肿瘤诱导血管发生的良好模型。

但CAM和YSM本身就是一个丰富的血管网络,这样就很难从已存在的血管中区分出新生的毛细血管[22]。

另外,CAM很容易发生炎症反应,对氧压的变化也非常敏感,所以开窗就成为实验过程中一个非常重要环节。

2.4 角膜血管形成测定法该测定法被认为是一种最好的定性检测方法。

角膜本身是一个无血管的部位,因此,经过血管发生诱导因子刺激而在角膜中所观察到的血管都是新生血管,这样就可以避免其他模型中所存在的原有血管干扰的现象[23]。

角膜微囊模型多采用啮齿动物如兔、鼠的角膜。

将含有诱导血管形成药物的片剂或多聚体植入角膜,使药物缓慢释放,触发新生血管的生成。

检测物质通常以缓慢释放的多聚体或片剂的形式植入到角膜中。

然而许多多聚体检测物成分可能会刺激角膜,引起炎症反应,从而干扰了血管发生的定量测定[24, 25]。

目前以聚乙烯海绵为载体给药的方法就避免或减少了这种影响。

实验中,可用计算机图像分析联合黑色墨汁灌注角膜来定量测定新血管发生的反应。

最近,荧光染料标记的高分子量葡聚糖已经广泛的应用于角膜血管发生[24]。

目前,出现了一种非侵袭性的记录整个角膜血管发生过程的方法[23],计算机图像分析联合计算机图像数据采集的方法,通过像素计数来计算血管的面积。

角膜血管发生测定法的优点是:角膜本身没有已经存在的血管背景的问题,同时,实验对象比较普遍。

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