2017春 植物生物技术实验指导 (自编) -1要点

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植物生物学实验教学备课教案植物实验的操作与观察

植物生物学实验教学备课教案植物实验的操作与观察

植物生物学实验教学备课教案植物实验的操作与观察植物生物学实验教学备课教案实验目的:本实验旨在通过操作和观察植物生物学实验,提高学生对植物结构和功能的理解,并培养学生的实验操作和观察能力。

实验材料:1. 绿豆种子2. 培养皿3. 滤纸4. 显微镜5. 台式显微镜6. 切片玻璃刀7. 片基8. 盐溶液9. 水镜10. 古铜钥匙11. 透明胶带实验步骤:1. 取出一些绿豆种子,将种子放在台式显微镜下观察。

通过显微镜观察到种子的外部形态和结构。

2. 将观察到的绿豆种子放在一块湿滤纸上,放入培养皿中,用透明胶带覆盖保持湿度,然后放置于室温下培养一段时间。

3. 定期观察绿豆种子的发芽和生长情况,并记录观察结果。

观察到绿豆幼苗的不同部位,如根、茎、叶的结构。

4. 取出一些植物茎、根和叶片,根据实验要求进行制片。

先用切片玻璃刀切取植物茎、根和叶片的薄片,然后将薄片放到片基上。

5. 在显微镜下观察制作好的植物组织切片,观察细胞结构和组织特征。

使用盐溶液进行染色,以便更好地观察细胞的结构和形态。

6. 通过显微镜观察植物细胞的细胞壁、质壁、细胞核等细胞器的特点,并记录观察结果。

实验结果与分析:通过以上的实验步骤,我们可以观察到绿豆种子在适宜的条件下发芽和生长。

观察到的绿豆幼苗的不同部位,如根、茎、叶的结构,可以进一步了解植物的器官之间的联系与功能。

通过制作植物组织切片,我们可以更加详细地观察植物细胞的结构和形态,如细胞壁、质壁、细胞核等细胞器的特点。

实验教学要点:1. 提前准备好实验材料,确保实验的顺利进行。

2. 在实验过程中,学生要仔细观察和记录实验结果,提高实验的准确性。

3. 鼓励学生主动思考和提问,促进他们对植物生物学的理解和兴趣。

4. 强调实验安全,保证学生在实验中的安全。

实验延伸:1. 探究不同环境因素对植物生长的影响。

可以设置不同的环境条件,在不同条件下观察植物的生长情况,从而研究环境因素对植物生长的影响。

植物生物学实验指导-生命科学学院本科基础实验教学中心

植物生物学实验指导-生命科学学院本科基础实验教学中心

植物生物学实验指导##大学生命科学学院生物系植物教研室绪论一、实验课教学的目的与意义“植物生物学实验〞是高等院校生物科学专业、生物技术专业和生态学专业开设的一门重要的理论联系实际的课程。

通过本门课程的学习,要求学生掌握植物生物学实验的根本理论和根本知识,以与研究植物的一些根本方法和根本技能,并运用这些方法和技能去研究植物个体发育中植物器官的形态建成与结构;学习植物系统发育过程中植物界各大类群植物主要的形态特征、代表植物的生活史,以与它们在植物界的系统位置与演化规律,侧重学习被子植物分类学的根本原理和方法,与人类关系密切的重点科、属、种的主要特征,认识一些常见植物;巩固和加深“植物生物学〞课程所学理论,从而达到提高学生科学素质,培养学生动手能力、严肃认真的科学态度与实事求是的工作作风,为今后进一步应用植物生物学知识和技能,解决生产和科学研究中有关问题打下扎实的根底。

二、实验室规那么实验室规那么是维护正常教学秩序和培养学生严谨学风的重要保证,师生都必须严格遵守。

1.学生应提前5—10min进入实验室,做好实验前的准备工作。

2.按号使用显微镜和解剖镜,使用前要检查,如果发现损坏或发生故障,要与时报告指导教师,不可自行修理或拆卸显微镜的任何部件。

使用后要擦拭整理,放回原处。

3.爱护仪器、标本与其他公共设施,节约药品和水电。

损坏物品时应主动向教师报告并与时登记。

4.保持实验室安静、整洁。

实验时不得随意走动和谈笑。

室内禁止吸烟,不准随地吐痰和乱扔纸屑、杂物。

严格按规定使用酸、碱等药品每次实验后。

各实验小组轮流打扫实验室卫生。

5.最后离开实验室的学生要负责检查水、电、门、窗等是否关严。

三、实验课进展方式与对学生要求1.实验前必须预习每次实验课内容,写出简单的实验提纲(要进展检查),并把个人准备好的实验必备物品带到实验室。

2,必须仔细听取教师对实验课要求、操作中的重点、难点和应注意问题的讲解。

3.实验时,学生应根据实验教材独立操作,仔细观察,随时作好记录。

植物生物技术实验教学大纲

植物生物技术实验教学大纲

植物生物技术实验教学大纲植物生物技术实验教学大纲(草业科学专业四年制本科)一、目的和任务植物生物技术是草业科学牧草方向重要的专业基础课程。

通过学习,使学生掌握现代生物技术五大工程的基本概念和基本原理、基本操作技术;了解现代生物技术的前沿知识;系统掌握现代生物技术领域的主要方法;了解并熟悉现代生物技术在农业能源、环境等各领域的实际应用;培养学生创新思维、综合识分析和解决问题的能力,具备将理论技术与应用技术结合的能力,具备继续学习与持续发展的能力。

为学生将来从事该领域科研、创业和实践工作奠定基础。

二、教学基本要求1.学习掌握植物组织培养的实验方法和技能。

2.学习掌握基因工程的基本操作程序3.引导学生进行实践活动,使学生对现代生物技术概论有全面直观认识。

三、实验的类别、类型及学时四、实验内容与教学要求实验一、植物组织培养及基因工程实验室参观主要内容了解植物组织培养实验室的建造原则、基本仪器设备的配置以及使用方法;了解基因工程和细胞工程实验室的基本配置、常用仪器的使用方法及进入实验室的注意事项。

教学要求掌握一些常用仪器的使用方法。

实验二、观看马铃薯脱毒与工厂化生产的录象带主要内容了解植物脱毒的方法以及实验操作程序;了解植物离体快繁苗木工厂化生产的程序。

教学要求掌握植物离体脱毒的方法和操作程序。

实验三、母液配制及培养基制作主要内容MS培养基的基本成份,母液配制的基本原理和MS培养基制作的基本方法。

教学要求掌握母液配制的基本原理和MS培养基制作的基本方法。

实验四、植物DNA的提取以及琼脂糖凝胶电泳检测主要内容植物基因组DNA提取的基本方法和操作程序以及琼脂糖凝胶电泳技术。

教学要求学生通过实验掌握植物基因组DNA提取操作程序以及琼脂糖凝胶电泳技术。

实验五、植物外植体的消毒、接种和培养(综合性实验)实验目的在系统讲授植物组织培养的理论及操作方法的基础上,通过观看教学录像,使学生明确植物组织培养的程序,掌握基本的操作方法。

植物生物技术实验指导

植物生物技术实验指导

目录实验一培养基母液的配制 (1)实验二培养基的配制 (4)实验三愈伤组织诱导及培养 (6)实验四愈伤组织继代培养 (7)实验五植物生长调节剂对愈伤组织形态发生的作用 (8)实验六植物人工种子的制备 (9)实验七茎尖培养 (11)实验八细胞液体悬浮培养 (12)实验九低温和饥饿处理诱导悬浮培养细胞同步化 (14)实验十花药培养 (16)实验十一成熟胚的培养 (17)实验十二叶肉原生质体的分离与培养 (18)实验十三悬浮培养细胞原生质体的分离与培养 (20)实验十四PEG诱导原生质体融合 (22)实验十五三亲本杂交法转化农杆菌 (24)实验十六冻融法转化农杆菌 (26)实验十七基因枪法转化愈伤组织 (27)实验十八农杆菌介导法转化水稻愈伤组织 (30)实验十九转化愈伤的除菌、筛选及再生 (32)实验二十植物总DNA的提取 (35)实验二十一植物总RNA的提取 (37)实验二十二转化植株的PCR检测 (38)实验二十三组织化学染色法检测Gus活性 (41)实验二十四转化植株的Southern检测 (43)实验二十五转化植株的Northern检测 (47)实验一培养基母液的配制一、实验特点实验类型:验证实验类别:专业计划学时:3 每组人数:2二、实验目的要求掌握配制培养基母液的原理;学习培养基母液的配制方法和母液的使用方法。

三、实验原理在植物组织培养所用的培养基中,一般都含有无机盐、有机物和植物生长调节剂等十几种成分。

如果每次配制培养基时都按着成分表逐个地称量,不但费时,而且有些成分的用量极小,配制时容易产生误差。

因此,为了提高工作效率和减少误差,一般将常用的基本培养基中的各种成分配成一定倍数的贮存液,这种溶液叫培养基母液。

用时,根据培养基配方、母液浓度和要配制的培养基的体积计算出所需溶液的体积,用量筒、移液管或微量移液器量取即可。

母液的配制有2种方法:单配法和混配法。

前者便于配制不同种类的培养基,后者便于大量配制同种培养基。

2017春 植物生物技术实验指导 (自编) -1

2017春 植物生物技术实验指导 (自编) -1

生物工程综合实验—植物生物技术模块生物工程教研组编2017年春学期目录实验一植物组培实验室设计和实验设备、实验用品认知 (3)实验二MS培养基母液的配制 (6)实验三MS培养基配制与灭菌 (9)实验四无菌接种操作 (12)实验五外植体分化生长的诱导培养 (12)实验六外植体脱分化生长的诱导培养 (17)实验七组培苗的炼苗 (20)实验一植物组培实验室设计和实验设备、实验用品认知一、目的与要求1、结合对植物细胞工程安徽省工程技术研究中心植物组织培养生产车间和研究实验室的现场认知,了解掌握植物组织培养实验室的组成和所需的基本仪器设备,学会植物组织培养实验室的设计;2、为后续植物组培实验课程学习与实训准备所需的相关用品。

二、教学场所1、植物细胞工程技术研究中心;2、生物工程综合实验分室(A514)。

三、内容与方法(一)关于植物组培实验室的认知与设计1、组培实验室设计原则要求环境干燥清洁;符合无菌操作规程要求;满足生产技术流程需要。

2、组培实验室的一般组成与设备包括化学实验室、洗涤准备室、培养基制备室、无菌操作室、培养室、细胞学观察研究室,等。

(1)化学实验室各种相关药品的贮存、溶液配制等。

主要设备:药品柜,防尘橱,冰箱,天平,蒸馏水发生器,加热器(电磁炉等),玻璃器皿,等。

(2)洗涤准备室用于完成相关器具的洗涤、干燥、堆放存储等。

主要设备:洗涤池,洗瓶机,操作台,烘箱,储物架(柜)等。

(3)培养基制备室用于进行培养基的生产。

主要设备:冰箱,天平,蒸馏水发生器,酸度计,加热器(电磁炉等),玻璃器皿,分装机,灭菌设备,操作台,等。

(4)无菌操作室主要用于植物材料的消毒、接种、培养物的继代等。

无菌室的房间不宜太大,数量根据需要设置。

要求干爽清洁,相对密闭,墙地光滑防潮,配置平移门。

每一无菌室设内外二间,外间为缓冲室,内间较大,为接种室。

主要设备:紫外灯,超净工作台,臭氧发生器,酒精灯,接种器械(镊子、剪刀、解剖刀、接种针),手推车,等。

植物生物学实验提纲

植物生物学实验提纲

植物生物学实验提纲实验一观察校园种子植物目的和要求:观察校园中的裸子植物和被子植物,掌握植物的基本形态特征,了解各种植物类型的生长发育变化和鉴别植物的基本方法。

实验内容:一、新校校园植物观察实地观察新校校园(温室)栽培的苏铁、银杏、油松、黑松、白皮松、雪松、云杉、圆柏、罗汉松等裸子植物,木兰属、槭属、杨属、女贞属等被子植物。

记录其分类属性(科和中文学名)、分类特征、生活环境等。

二、木本植物形态特征观察详细观察并记录木本植物地上部分器官的种类和形态特征。

采集5-10种木本植物枝条,带回实验室仔细观察其形态和附属器官(叶、芽、花、果实、孢子叶球等)的性状,并试着用植物学的规范语言来描述这些性状。

三、草本植物形态特征观察详细观察并记录草本植物各部分器官的形态特征。

采集5-10种带回实验室仔细观察,并试着用植物学的规范语言来描述根、茎、叶、芽、花、果实等的形态特征。

课后作业:1.列表说明本实验观察到的植物的特征。

校园植物观察调查表观察者:观察时间:观察地点:山大东校区新校校园中文学名所属科生长习性采集标本包含的器官形态特征2.思考题(选作一题)(1)根、茎、叶的主要形态特征是什么?植物都具有根、茎、叶吗?(2)木本植物、草本植物、藤本植物在解剖结构上有哪些不同?3.列出你最感兴趣的植物学问题,说明今后你打算怎样进一步展开相关研究。

.实验二植物细胞结构和细胞分裂(附:显微镜使用和显微绘图)目的和要求:1.掌握显微镜的使用方法及注意事项,了解维护保养常识。

2.掌握植物细胞的基本组成、结构和形态特点,以及活细胞的动态。

3.了解植物细胞特征性结构(质体、液胞、细胞壁)的结构与功能。

4.掌握植物细胞有丝分裂的基本过程和通过染色体组的形态特征判断有丝分裂各个时期的基本方法。

5.掌握绘制植物结构图的基本要求。

实验内容:一. 显微镜的使用:1.基本结构,2.使用方法,3.注意事项观察“上”字压片:熟悉显微镜成像的特点和操纵技术。

《植物生物技术导论》实验指导

《植物生物技术导论》实验指导

《植物生物技术导论》实验指导《植物生物技术导论》实验(周立刚,翟红,郭仰东等)实验一植物培养基的制备与灭菌一、实验目的1、在配制培养基前,为了使用方便和用量准确,常常将大量元素、微量元素、铁盐、有机物类、激素类分别配制成比培养基配方需要量大若干倍的母液。

当配制培养基时,只需要按预先计算好的量吸取一定体积的母液即可。

通过本实验,学习和了解培养基母液的配制方法。

2、掌握培养基的配制方法。

3、学习和了解培养基、器皿和相关设备的灭菌方法。

二、主要实验用具和仪器设备烧杯(1000ml 、500ml 、100ml 、50ml )、量筒(2000ml 、1000ml 、500ml 、250ml 、100ml 、50ml 、25ml 、10ml )、容量瓶(1000ml 、500ml 、250ml 、100ml 、50ml 、25ml )、试剂瓶(1000ml 、500ml 、200ml 、100ml 、50ml )、玻璃棒、油性标记笔、移液枪(5ml 、1ml 、200μl 、100μl )、对应的枪头、培养基瓶(1000ml 、500ml 、200ml )等。

电子天平(感量为0.1mg 、10mg )、pH 计、灭菌锅、微波炉、磁力搅拌器、电磁炉、超净工作台等。

三、实验药品按培养基配方准备。

1N NaOH 、1N HCl 。

四、实验内容(一)MS 培养基母液的配制1、大量元素母液的配制(配1L )无机盐中大量元素母液,按照培养基配方的用量,把各种化合物扩大10倍,分别用50ml 烧杯称量,用蒸馏水溶解,必要时加热。

溶解后,倒入1000ml 容量瓶中,最后用蒸馏水定容。

在混合定容时,必须最后加入氯化钙,因为氯化钙与磷酸二氢钾能形成难溶于水的沉淀。

将配好的混合液倒入细口试剂瓶中,贴好标签。

配制培养基时,每配1000ml 培养基,取大量元素母液100ml 。

化合物名称每升培养基用量(mg/L )扩大10倍称量(g/L )备注NH 4NO 3 1650 16.5 每升培养基取母液100mlKNO 3 1900 19.0 KH 2PO 4170 1.7 MgSO 4●7H 2O 370 3.7 CaCl 2●2H 2O 4404.42、微量元素母液的配制(配0.5 L )无机盐中微量元素母液,按照培养基配方的用量,把各种化合物扩大100倍,分别用50ml 烧杯称量,用蒸馏水溶解,必要时加热。

植物生物学实验技术掌握研究植物的实验方法和技术

植物生物学实验技术掌握研究植物的实验方法和技术

植物生物学实验技术掌握研究植物的实验方法和技术植物生物学是研究植物的生理、生态和遗传等方面的科学。

要深入了解植物的生命活动,就需要掌握一定的实验方法和技术。

本文将介绍几种常用的植物生物学实验技术,帮助读者更好地开展植物科研工作。

一、组织培养技术组织培养是植物生物学研究中常用的实验技术之一,其主要目的是通过体外培养植物组织、细胞或器官,以探究植物的生长发育规律以及植物的分子与细胞机制等。

组织培养技术主要包括无菌技术、组织切分和培养基的制备等。

二、基因转化技术基因转化是将外源基因导入植物体内,使其在植物体内表达的技术。

通过基因转化技术,可以引入外源基因,改善植物的品质、抗逆性等性状,同时也有利于研究植物的基因功能。

常用的基因转化技术包括农杆菌介导的遗传转化和基因枪法等。

三、蛋白质组学技术蛋白质组学是研究植物蛋白质组成、结构和功能等方面的科学。

通过蛋白质组学技术,可以全面了解植物中各种蛋白质的表达情况、相互作用以及功能等信息。

常用的蛋白质组学技术包括二维凝胶电泳、质谱分析和蛋白质互作网络分析等。

四、分子标记技术分子标记技术是利用植物基因组中的特定序列进行物种鉴定、遗传连锁图谱构建和基因定位等的技术。

通过分子标记技术,可以对植物的遗传背景进行研究,推进植物育种和种质资源保护等工作。

常用的分子标记技术包括PCR、RAPD和SSR等。

五、光合作用测定技术光合作用是植物进行能量和有机物质合成的重要过程。

通过测定光合作用速率和光合色素的含量等指标,可以评估植物的光合能力和生长发育状态。

光合作用测定技术主要包括光合速率测定、气体交换测量和光合色素提取等。

六、荧光探针技术荧光探针技术是利用荧光信号来研究植物生理和生化过程的技术。

通过荧光探针技术,可以实时监测植物的氧化还原状态、酸碱平衡、离子浓度等生理生化过程。

常用的荧光探针技术包括叶绿素荧光测定、荧光染料标记和荧光显微镜观察等。

在进行植物生物学实验时,务必注意实验操作的准确性和可重复性。

植物生理实验指导

植物生理实验指导

目录实验一植物细胞的观测 (4)实验二植物液泡的观察 (6)实验三用染色法测定原生质的等电点 (6)实验四原生质运动的观察 (8)实验五细胞质壁分离法测定植物组织渗透势 (9)实验六叶绿体色素及其理化性质 (10)实验七叶绿体色素的分离──纸层析法 (12)实验八叶绿素的定量测定 (12)实验九植物光合强度的测定──改良半叶法 (13)实验十植物呼吸强度的测定 (14)实验十一离体线粒体的氧化作用和磷酸化作用 (15)实验十二植物呼吸酶的简易鉴定法 (17)实验十三植物组织水势的测定──小液流法 (19)实验十四植物伤流液的成份分析 (20)实验十五植物根系对矿质元素的选择吸收 (22)实验十六单盐毒害与混合盐的拮抗作用 (23)实验十七植物的溶液培养与矿质元素缺乏症 (23)实验十八硝酸还原酶活性的测定 (25)实验十九根系活力的测定(TTC法) (26)实验二十种子生活力的快速测定 (27)实验二十一植物生长区域的测定 (29)-1-实验二十二生长素类物质对根芽生长的影响 (31)实验二十三生长素的生理效应及生物鉴定法 (32)实验二十四用水稻幼苗法测定赤霉素类物质的浓度 (33)实验二十五赤霉素对α-淀粉酶的诱导形成 (35)实验二十六细胞分裂素的保绿与阻止衰老的作用 (36)实验二十七细胞分裂素对菜豆叶片生长和衰老的效应 (37)实验二十八用棉花幼苗外植体测定脱落酸的活性 (38)实验二十九用萝卜子叶增重法测定细胞分裂素类物质的浓度或效价 (39)实验三十乙烯的生物测定──黄化豌豆幼苗的“三重反应” (40)实验三十一乙烯的催熟作用和对性别分化的影响 (41)实验三十二生长素和乙烯对叶片脱落的效应 (43)实验三十三开花刺激物在短日植物中通过嫁接的传递 (44)实验三十四花粉管的生长及其向化性 (46)实验三十五不良环境对植物的伤害 (47)实验三十六植物体内游离脯氨酸的测定 (48)实验三十七根际pH的显色测定 (49)实验三十八钾离子对气孔开度的影响49实验三十九希尔反应的观察50 实验四十植物离体叶片失水表型观察及其失水率测定 (51)-2-植物生理学实验规则植物生理学实验的目的在于配合课堂教学,验证理论内容,并在实验过程中学习有关作物的植物生理学方面的实验室技术操作及一些田间应用方法,从而能够初步熟悉科学研究方法,分析实验结果并作出正确结论。

实验一 植物生物学实验基本方法、植物的细胞与组织

实验一 植物生物学实验基本方法、植物的细胞与组织
同化组织:光合作用——含叶绿体; 贮藏组织:贮藏营养物——如毛茛根部 细胞含淀粉粒; 通气组织:交换空气——如狐尾藻茎中的薄壁
细胞;
女贞叶——同化组织
狐尾藻茎横切面示通气组织
毛茛根中的贮藏组织
(四)机械组织
功能:支持植物体。
特征:细胞壁增厚。 分类: 厚角组织 厚壁组织
1、厚角组织:
3、居间分生组织
分布:成熟组织之间,如玉米节下方, 韭菜叶基部。 功能:一定时间内仍有分裂能力。 特征:不分化,未成熟,初生性质。
(二)保护组织
分布:植物体表。
功能:减少水分流失、防止病原微生物侵害、 控制气体交换。
1、初生保护组织——表皮
特征:排列紧密,不含叶绿体的生活细胞;
外覆角质层;
常有气孔。
女贞叶表皮
禾本科植物叶片的表皮蚕豆叶片下表皮2、次生保护组织——周皮
特征:分三个层次,径向排列整齐; 分层: 木栓:数层细胞,矩形,细胞壁强烈木 栓化。 木栓形成层:单层细胞,扁长方形,细 胞核明显。 栓内层:1-3层。
椴树茎周皮
(三)基本组织(薄壁组织)
分布:各器官内。 特征:细胞壁薄,排列疏松,具明显的细胞间 隙。 • 功能:
5、分泌结构
(一)分生组织
细胞小、细胞壁 薄; 细胞核大、居中; 液泡小而分散、 细胞质浓厚。
1.顶端分生组织
2、侧生分生组织
分布:根、茎的外周部分。
2.1 形成层(维管形成层) 分布:木质部与韧皮部之间。 特征:扁砖形细胞,环状排列。 功能:分裂,使根茎增粗。 2.2 木栓形成层 分布:周皮内。 特征:扁砖形细胞,环状排列。 功能:形成次生保护组织。
注意事项:
• 开机与关机前,保证光源调至最暗;

植物生物学实验课程教案(1)

植物生物学实验课程教案(1)

植物生物学实验课程教案(1)
植物生物学实验课程教案(2)
植物生物学实验课程教案(3)
植物生物学实验课程教案(4)
植物生物学实验课程教案(5)
植物生物学实验课程教案(6)
植物生物学实验课程教案(7)
植物生物学实验课程教案(8)
植物生物学实验课程教案(9)
植物生物学实验课程教案(10)
植物生物学实验课程教案(11)
植物生物学实验课程教案(12)
植物生物学实验课程教案(13)
植物生物学实验课程教案(14)
植物生物学实验课程教案(15)
植物生物学实验课程教案(16)
植物生物学实验课程教案(17)
植物生物学实验课程教案(18)
植物生物学实验课程教案(19)
植物生物学实验课程教案(20)。

植物生物技术实验设计

植物生物技术实验设计

植物生物技术实验设计植物生物技术实验设计是一个引人注目和不断发展的领域,通过应用生物技术方法,我们可以改良和优化植物的性状,提高作物的抗病能力和产量。

在这篇文章中,我们将探讨一个植物生物技术实验设计的例子,以展示如何应用现代生物技术来改良植物。

实验设计:在这个实验中,我们将使用基因编辑技术来改变植物的性状。

具体而言,我们将通过CRISPR-Cas9系统来靶向编辑植物基因组中的关键基因,以增强植物对干旱的抵抗力。

材料和方法:1. 选择目标植物:在这个实验中,我们选择了大麦(Hordeum vulgare L.)作为研究对象。

大麦是一种重要的粮食作物,在很多地区广泛种植。

2. 选择靶向基因:通过文献调研和生物信息学分析,我们确定了大麦中参与干旱抗性的关键基因。

我们选择了其中一个基因作为我们的靶向基因。

3. 设计寡核苷酸:根据选择的靶向基因序列,我们设计了两个寡核苷酸(gRNA),这些gRNA将和Cas9蛋白结合,并指导Cas9蛋白靶向编辑大麦基因组。

4. 转化大麦胚胎体细胞:我们采用侵染法将CRISPR-Cas9组件导入大麦胚胎体细胞。

通过这种方法,CRISPR-Cas9系统可以靶向编辑大麦细胞的基因组。

5. 筛选转基因植株:将侵染后的大麦胚胎体细胞培养在选择性培养基上,只有经过基因编辑的细胞能够生存和继续生长。

通过筛选,我们可以获得转基因植株。

6. 验证编辑效果:通过PCR、Southern blot等技术,我们可以对转基因植株进行确认,确定它们的基因组中的目标基因是否被成功编辑。

结果和讨论:通过这个实验设计,我们成功编辑了大麦基因组中的目标基因,使其对干旱具有更强的抵抗力。

我们获得了多个编辑目标基因的转基因植株,并通过验证实验证明了编辑的有效性。

这项植物生物技术实验设计为我们提供了一种改良植物性状的新方法。

通过编辑植物基因组,我们可以针对作物的特定性状进行优化,提高其适应环境的能力。

这项实验的成功为植物育种和农业生产提供了新的思路和方法。

植物生物学实验

植物生物学实验

(四)机械组织(支持组织)
A)厚角组织
厚角组织:细胞壁 在角隅处加厚,生 活细胞(南瓜茎、向 日葵茎横切面)
B)厚壁组织
厚壁组织:细胞壁 全面加厚,多为死 细胞,包括纤维和 石细胞(梨果肉石细 胞)
梨果肉临时装片
(五) 输导组织
导 管 、 管 胞
输导组织(南瓜茎纵切面)
导管:运输水分,长管状死细胞 筛管:运输有机物,长形活细胞
成气腔(美人蕉叶横切面)
(三)保护组织
表皮:分布在植物体表面,一般 由一层细胞组成,防止水分损失、 微生物入侵,气体交换。细胞质 少、液泡大、核被挤在一侧。 ——叶表皮气孔器(两个保卫细 胞和气孔)
气孔(保卫细胞)
番薯叶下表皮临时装片(表皮的表面观)
表皮
周皮
周皮:次生保护组织, 逐渐替代表皮,行使 保护功能。细胞扁平, 无细胞间隙,高度栓 化,不易透水和透气。
洋葱根尖纵切面
侧生分生组织: 包括形成层、 木栓形成层, 多为长纺锤形 壁组织(基本组织)
吸收组织:根尖后方,吸收养分和水分(胡萝卜
根横切面)
同化组织:叶中,有光合作用能力 贮藏组织:果实、种子中贮藏营养(淀粉粒,脂滴) 通气组织:水湿生植物中,细胞间隙发达,形
滴管等 3、实验试剂:I2-KI染液
实验材料:
永久制片:洋葱根尖纵切制片(示分生组织)、南瓜 茎纵切制片(示分生组织)、菊叶下表皮装片(示保 护组织,气孔)、苹果叶下表皮装片(示表皮毛)、 甘薯根切片(示贮藏组织)、睡莲叶横切(示通气组 织)、南瓜茎横切(示导管管胞)、南瓜茎离析装片 (示导管类型)、芹菜叶柄横切(示厚角组织)、梨 果实切片(示石细胞)、橘果皮切片(示分泌腔)、 生姜切片(示分泌细胞及乳汁管)、松木离析装片 (示管胞)、松茎横切(示树脂道)、杉木茎向切 (示具缘纹孔)

植物发育生物学实验指导

植物发育生物学实验指导

实验一低拷贝质粒的大量提取——碱法【实验原理】质粒是细胞内的一种环状的小分子DNA,是进行DNA重组的常用载体。

作为一个具有自身复制起点的复制单位独立于细胞的主染色体之外,质粒DNA上携带了部分的基因信息,经过基因表达后使其宿主细胞表现相应的性状。

在DNA重组中,质粒或经过改造后的质粒载体可通过连接外源基因构成重组体。

从宿主细胞中提取质粒DNA,是DNA重组技术中最基础的实验技能。

分离质粒DNA有三个步骤:培养细菌使质粒扩增,收集和裂解细菌,分离和纯化质粒DNA。

在质粒提取过程中,由于机械力、酸碱度、试剂等的原因,可能使质粒DNA链发生断裂。

所以,多数质粒粗提取物中含有三种构型的质粒:共价闭合环状DNA(cccDNA):质粒的两条链没有断裂;超螺旋开环DNA(ocDNA):质粒的一条链断裂;松弛的环状分子线形DNA(lDNA):质粒的两条链均断裂;线性分子质粒DNA的分子构型。

质粒DNA琼脂塘凝胶电泳模式图可分为:松弛线性的DNA;松弛开环的OC构型;超螺旋的SC构型。

由于琼脂糖中加有嵌入型染料溴化乙锭,因此,在紫外线照射下DNA电泳带成橘黄色。

道中的SC DNA走在最前沿,OC DNA则位于凝胶的最后边;道中的L DNA 是经核酸内切限制酶切割质粒之后产生的,它在凝胶中的位置介于OC DNA 和SC DNA 之间。

碱法提取质粒是R.Treisman尚未发表的方法,同时也是Brinboim和Doly(1979)及Ish-Horowicz和Burke(1981)所用方法的改进。

该方法对于目前使用的所有大肠菌菌株都卓有成效,并可与随后的纯化步骤,如聚乙二醇沉淀或氯化铯-溴化乙锭梯度平衡离心等,一并联合使用。

【药品试剂】1、溶液I:50 mmol/L葡萄糖、 25 mmol/L Tris.Cl(pH8.0)、10mmol/L EDTA(pH8.0)。

溶液I可成批配制,在10 lbf/in2(6.895x104Pa或者是115 ℃)高压下蒸气灭菌15min,贮存于4 ℃。

植物生物学实验实验报告(3篇)

植物生物学实验实验报告(3篇)

第1篇实验名称:植物细胞的有丝分裂观察实验目的:1. 观察植物细胞有丝分裂的过程,识别有丝分裂的不同时期。

2. 初步掌握制作洋葱根尖有丝分裂装片的技能。

3. 初步掌握绘制生物图的方法。

实验原理:在植物体中,有丝分裂常见于根尖、茎尖等分生区细胞。

高等植物细胞有丝分裂的过程,分为分裂间期和分裂期的前期、中期、后期、末期。

通过高倍显微镜观察植物细胞的分裂过程,根据各个时期细胞内染色体(或染色质)的变化情况,可以识别细胞处于有丝分裂的哪个时期。

细胞核内的染色体容易被碱性染料着色,便于观察。

实验材料:洋葱根尖、显微镜、载玻片、盖玻片、滴管、镊子、培养皿、铅笔、质量分数为15%的盐酸、体积分数为95%的酒精、质量分数为0.01g/ml的龙胆紫(或紫药水)实验步骤:1. 洋葱根尖的培养:提前3-4天,将洋葱根尖置于适宜的培养液中培养,使其生长良好。

2. 解离:将洋葱根尖置于盛有15%盐酸和95%酒精的混合液中,在室温下解离5分钟。

3. 漂洗:用蒸馏水漂洗根尖,去除解离液。

4. 染色:将根尖置于盛有质量分数为0.01g/ml的龙胆紫溶液的培养皿中,染色5分钟。

5. 制片:将染色后的根尖取出,用镊子夹取根尖,放在载玻片上,滴加适量的蒸馏水,盖上盖玻片。

6. 镜检:用显微镜观察制片,调整焦距,观察有丝分裂的不同时期。

实验结果:通过观察,可以观察到洋葱根尖细胞的有丝分裂过程,包括分裂间期、前期、中期、后期和末期。

在分裂间期,细胞核呈圆形,染色体呈细丝状;在前期,染色体开始缩短变粗,细胞核膜逐渐消失;在中期,染色体排列在细胞中央,呈赤道板状;在后期,染色体分离,向细胞两极移动;在末期,染色体到达细胞两极,细胞质分裂,形成两个子细胞。

结果分析:1. 观察到的有丝分裂过程符合植物细胞有丝分裂的基本规律。

2. 通过实验,掌握了制作洋葱根尖有丝分裂装片的技能。

3. 通过绘制生物图,加深了对有丝分裂过程的理解。

讨论:1. 制作洋葱根尖有丝分裂装片的关键是什么?- 关键在于解离充分,使组织分散,细胞不会重叠;漂洗时间要足够,使细胞染色;染色时,染液的浓度和染色时间要掌握好。

药用植物学实验指导-2017

药用植物学实验指导-2017

药用植物学实验指导-2017药用植物学实验指导中南民族大学药学院实验室守则1.实验课是培养学生独立思考和理论联系实际、灵活应用能为的重要手段,也是进行科研工作的基础,必须严肃认真。

2.准时上实验课,不得无故缺席,不得迟到早退,按指定座位就坐,使用相应的显微镜。

3.实验前必须通过预习本次实验,明确实验的目的要求、内容、方法和步骤。

实验时要认真观察,独立思考,做好记录,实验完毕后要按时交实验报告。

4.当老师讲解实验时,要专心听讲,并作必要的记录.在实验中如有疑问请举手,不准大声喧哗。

5.爱护实验室一切仪器设备,按操作规程使用显微镜,尽量节约水、电及擦镜纸、试剂等一切消耗物质.损坏仪器须登记,按规定赔偿。

6.每次实验必须带备教科书,绘图用具(HB、2H铅笔各一支,橡皮、尺子等)和实验记录本。

7.保持实验室清洁整齐,一切实验用具用完后要擦洗干净,放回原处.每次实验完毕,要搞好室内清洁卫生.离开实验室时要关好水、电、门、窗。

实验一显微镜的构造与使用植物细胞的基本结构及后含物一、目的要求(1) 熟悉光学显微镜的构造、使用(2) 掌握植物细胞的基本结构(3) 识别植物细胞的各种后含物(4) 掌握水合氯醛制片法、表面片制法(5) 掌握草酸钙晶体的类型和形态(6) 学习绘制植物显微图二、仪器用品及实验材料(一)仪器用品显微镜、载玻片、盖玻片、镊子、刀片、吸水纸、擦镜纸、稀碘液、酒精灯、培养皿、解剖针、水合氯醛液,蒸馏水等(二)实验材料:新鲜洋葱鳞茎,马铃薯,浙贝,半夏,黄柏粉末,大黄,甘草,地骨皮,射干,胡萝卜,辣椒等。

内容与步骤:(一)植物细胞的基本构造(1) 洋葱表皮细胞制片(观察细胞结构)用镊子撕取2小片( 3mm X 3mm )洋葱内表皮,置载玻片上,蒸馏水装片。

其中一片在盖玻片一侧加1滴1%的碘-碘化钾溶液,用吸水纸在另一侧吸去多余溶液。

然后在显微镜下观察洋葱表皮的细胞壁、细胞核、液泡。

(2) 有色体的观察用刀片从红辣椒或胡萝卜果肉上刮取少许,均匀涂在载玻片中央,加蒸馏水1滴,再加盖玻片观察。

植物生物学实验技术

植物生物学实验技术

植物生物学实验技术植物生物学是研究植物生命特性的学科,为了深入了解植物的生长、发育、适应能力等方面的问题,进行实验是必不可少的手段。

植物生物学实验技术是指在科学实验中,通过使用一系列的操作步骤和技术手段,来研究植物生物学相关问题的方法。

一、植物生物学实验技术的分类植物生物学实验技术可以根据研究对象和目的的不同,分为多个不同的分类。

以下是几种常见的植物生物学实验技术分类:1. 植物生长实验技术:通过研究不同条件下的植物生长情况,了解植物对环境的适应性和生长规律。

常见的实验技术包括播种试验、穗试验等。

2. 植物发育实验技术:通过观察和研究植物在不同生育阶段的变化,揭示植物发育规律和机制。

例如,植物生长素对植物发育的影响等。

3. 植物遗传实验技术:通过遗传实验手段,研究植物的遗传特性和变异规律,探讨植物遗传背后的机制。

典型的实验技术包括杂交、基因转化等。

4. 植物生理实验技术:通过测量和观察植物的生理指标,研究植物对环境的响应和适应机制。

例如,光合作用速率、水分利用效率等的测定与计算。

5. 植物生态实验技术:通过构建生态系统模型或控制环境条件,研究植物与环境之间的相互作用和相互依赖关系。

例如,植物与土壤微生物的互作实验。

二、常用的1. 组织培养技术:组织培养技术是一种用于植物细胞、组织和器官的无菌培养的方法。

通过控制培养基的成分和环境因素,可以实现植物细胞的分化、增殖和再生等过程,研究植物的发育和生物合成等方面的问题。

2. PCR技术:PCR(聚合酶链反应)是一种用于扩增特定DNA序列的方法。

在植物生物学中,PCR技术广泛应用于基因检测、基因表达研究、基因工程等方面的实验。

3. 荧光探针技术:荧光探针技术是基于荧光信号的检测和定量分析方法。

通过标记荧光探针,可以在植物体内实现对特定物质或特定细胞的检测,应用于植物根系研究、药物代谢途径分析等领域。

4. 基因组学技术:基因组学技术是研究植物基因组的方法。

作物生物技术育种实验指导

作物生物技术育种实验指导

实验一基因组DNA提取一、实验目的和要求学习并掌握植物基因组DNA的提取原理和方法。

二、实验原理冷冻的植物组织,在低温干燥状态下机械磨碎。

通常精提DNA,都要加液氮使材料变脆,易于研磨。

低温降低了DNase的活性,利用CTAB(十六烷基三甲基溴化铵)去污剂溶解细胞膜,使核蛋白等解聚,使DNA游离出来。

CTAB作为一种阳离子去污剂,可溶解细胞膜,与核酸形成复合物,可使核酸沉淀出来。

通过离心将CTAB-核酸复合物语糖类、蛋白质等分离开来。

随后将复合物溶于高盐溶液中,再加乙醇使核酸沉淀,而CTAB溶于乙醇,从而去除CTAB。

三、实验材料与试剂1、实验材料:植物幼嫩叶子2、实验试剂:(1) 100ml CTAB提取缓冲液:1.0M Tris-Cl 8.35ml0.5M EDTA 3.35ml5.0M NaCl 23.40mlCTAB 1.675gO 64.90mlH2注意:使用前加入1mlβ-巯基乙醇(1%~2% w/v)(2) 氯仿-异戊醇(24 :1)(3) 70% 乙醇、异丙醇四、实验步骤1. 取2g新鲜植物材料,于液氮中研成粉。

2. 将冻粉转入预冷的离心管中,立即加入等体积(w/v) 2×CTAB提取缓冲液,65℃保温10-20分钟,其间不时摇动。

3.加入等体积的氯仿/异戊醇,轻缓颠倒离心管混匀,室温下,12000r/min 离心10-20分钟。

4.将上清液转入另一离心管中,加入等体积的氯仿/异戊醇,颠倒离心管混匀,室温、12000r/min 离心10分钟。

5. 将上层水相转入新的经硅烷化处理的离心管中,加入0.6-1倍体积的异丙醇,混匀,室温下放置30分钟。

6. 3500-4000r/min 离心5-10分钟,去上清液, 70%乙醇漂洗,沉淀吹干。

7.风干后加入20ul的ddH2O溶解DNA,-20℃保存备用。

五、结果与分析对实验过程中出现的异常现象进行分析。

实验二琼脂糖凝胶电泳技术一、实验目的(1)学习琼脂糖凝胶电泳的基本原理;(2)掌握使用水平式电泳仪的方法;(3)学习DNA电泳的方法。

植物生物实验报告模板

植物生物实验报告模板

植物生物实验报告模板【实验报告】实验名称:植物生物实验实验目的:通过观察和研究植物生物的一些基本特征,提高对植物结构和功能的了解。

实验材料:1. 植物标本2. 显微镜3. 刀片、剪刀等工具4. 实验器材和药品等(根据需求自行准备)实验步骤:1. 选择适当的植物标本进行观察和分析。

2. 用显微镜放大植物标本的细微结构,观察和记录相关特征。

3. 使用刀片等工具进行植物标本的切割,以观察内部结构。

4. 根据需要,进行一些相应的实验操作,如染色、培养等。

5. 对观察到的特征和实验结果进行分析和总结。

实验结果:通过实验观察,我发现了一些植物生物的基本特征和结构,如根、茎、叶、花、果实等。

通过显微镜放大观察,我发现了细胞的基本结构和组织的排列方式。

切割植物标本后,我进一步观察到了根系和维管束等内部结构。

在染色和培养实验中,一些细菌和真菌的存在也进一步展示了植物的生物多样性。

实验讨论:通过本次实验,我对植物生物的结构和功能有了更深入的了解。

我明白了根在植物中的吸收水分和养分的作用,茎的支持和输送功能,叶的光合作用以及花与果实的繁殖功能。

同时,通过观察植物细胞的结构和组织的排列方式,我也了解到植物的组成方式和生长过程。

不过,在实验过程中,我也遇到了一些困难和问题。

比如,对于一些细微的结构和细胞内部的运作机制,我难以确切地观察和理解。

此外,在一些操作时,可能出现了实验材料的浪费和误操作等情况,这些都是需要进一步改进和加强的地方。

实验总结:通过本次植物生物实验,我对植物的结构和功能有了更加深入的了解,并且学习到了使用显微镜观察和切割植物标本的技巧。

实验中,我发现了一些植物生物的基本特征和内部结构,并通过一些实验操作,进一步认识到了植物的多样性。

通过本次实验,我不仅提高了对植物生物的认识,同时也锻炼了实验操作和科学思维的能力。

在今后的学习和研究中,我将更加深入地探索植物的奥秘,并努力将理论和实践相结合,为促进植物学的发展做出自己的贡献。

生物实验报告关于植物

生物实验报告关于植物

生物实验报告关于植物实验目的本实验旨在观察和探究光照和水分对植物生长的影响。

通过设置不同的实验组和对照组,比较植物在不同光照和水分条件下的生长情况,以探究最适宜的生长环境要求。

材料和方法材料:- 绿豆种子- 培养皿- 蒸馏水- 白纸- 文件袋- 遮光布- 光照灯方法:1. 先将一张纸用剪刀剪成与培养皿大小相符的形状,并将其放入培养皿底部,以避免水分直接接触。

2. 在3个培养皿中分别加入等量的蒸馏水,作为对照组。

3. 在另外3个培养皿中,分别加入等量的蒸馏水,再放入白纸上分别放置几颗绿豆种子,作为水分和光照组。

4. 将其中2个培养皿用黑色文件袋完全遮盖,以排除光照的影响,作为水分组。

5. 将所有培养皿放在同一温度下,并设置定时器,每天照射12小时光照,然后关闭光源。

6. 每天测量并记录每个培养皿中的绿豆种子的生长情况,包括根长、茎长、叶片数量等。

7. 持续记录10天后,结束实验,并进行数据分析和结果讨论。

结果和讨论通过上述实验方法和步骤,我们观察到了以下结果:1. 对照组中的绿豆种子在正常水分和正常光照的条件下,生长迅速,根长和茎长都有明显的增加,叶片数量也逐渐增多。

2. 水分和光照组中的绿豆种子在正常水分和光照的条件下,根长和茎长较对照组稍微减少,但仍保持正常增长,叶片数量也有逐渐增多的趋势。

3. 水分组中的绿豆种子在黑暗条件下生长缓慢,根长和茎长都明显减少,叶片数量也难以增加。

根据实验结果可以看出,光照和水分都对植物生长有一定的影响。

在适宜的光照和水分条件下,植物生长迅速,根长、茎长和叶片数量都有明显增加。

光照是植物进行光合作用的重要因素,能够提供植物所需的光能,促进光合作用的进行,使植物能够正常生长。

水分则是植物细胞的重要组成部分,通过水分的吸收和运输,植物细胞能够正常代谢和生长。

在实验过程中,黑暗条件下的水分组明显生长受限,说明植物对光照的需求更为重要。

通过本实验,我们还验证了光照和水分对植物生长的互补作用。

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生物工程综合实验—植物生物技术模块生物工程教研组编2017年春学期目录实验一植物组培实验室设计和实验设备、实验用品认知 (3)实验二MS培养基母液的配制 (6)实验三MS培养基配制与灭菌 (9)实验四无菌接种操作 (12)实验五外植体分化生长的诱导培养 (12)实验六外植体脱分化生长的诱导培养 (17)实验七组培苗的炼苗 (20)实验一植物组培实验室设计和实验设备、实验用品认知一、目的与要求1、结合对植物细胞工程安徽省工程技术研究中心植物组织培养生产车间和研究实验室的现场认知,了解掌握植物组织培养实验室的组成和所需的基本仪器设备,学会植物组织培养实验室的设计;2、为后续植物组培实验课程学习与实训准备所需的相关用品。

二、教学场所1、植物细胞工程技术研究中心;2、生物工程综合实验分室(A514)。

三、内容与方法(一)关于植物组培实验室的认知与设计1、组培实验室设计原则要求环境干燥清洁;符合无菌操作规程要求;满足生产技术流程需要。

2、组培实验室的一般组成与设备包括化学实验室、洗涤准备室、培养基制备室、无菌操作室、培养室、细胞学观察研究室,等。

(1)化学实验室各种相关药品的贮存、溶液配制等。

主要设备:药品柜,防尘橱,冰箱,天平,蒸馏水发生器,加热器(电磁炉等),玻璃器皿,等。

(2)洗涤准备室用于完成相关器具的洗涤、干燥、堆放存储等。

主要设备:洗涤池,洗瓶机,操作台,烘箱,储物架(柜)等。

(3)培养基制备室用于进行培养基的生产。

主要设备:冰箱,天平,蒸馏水发生器,酸度计,加热器(电磁炉等),玻璃器皿,分装机,灭菌设备,操作台,等。

(4)无菌操作室主要用于植物材料的消毒、接种、培养物的继代等。

无菌室的房间不宜太大,数量根据需要设置。

要求干爽清洁,相对密闭,墙地光滑防潮,配置平移门。

每一无菌室设内外二间,外间为缓冲室,内间较大,为接种室。

主要设备:紫外灯,超净工作台,臭氧发生器,酒精灯,接种器械(镊子、剪刀、解剖刀、接种针),手推车,等。

(5)培养室是将接种的材料进行培养生长的场所,大小依规模而定。

培养室的设计以充分利用空间和节省能源为原则。

主要设备:空调机,加热器,增湿器,培养架,光照设备,培养箱,转床,人字梯,等。

(6)细胞学观察室用于进行培养物的取样观察和分析。

主要设备:显微镜,细胞染色、计数、制片设备,天平,离心机,等。

(二)组培实验用品的准备1、玻璃器皿及规格(1)培养瓶:100~500 mL的玻璃或塑料培养瓶等;(2)培养皿:9~15 cm;(3)烧杯:100~5000 mL;(4)量筒:10~1000 mL;(5)移液管:1~10 mL;(6)试剂瓶:100~1000 mL;(7)容量瓶:100~1000 mL。

2、接种器械酒精灯,不锈钢镊子、剪刀、解剖刀等。

3、其它用品培养瓶封口膜(盖),棉线,记号笔,打包纸(牛皮纸、报纸),转运筐,等。

四、预习思考与作业1、试分析植物组培苗工厂化生产的车间设计与设备选型。

2、分组准备(领取、洗涤、保管)植物组培实验主要用品。

实验二MS培养基母液的配制一、目的与要求1、了解植物组织培养培养基的组成,常用配方;2、掌握培养基配制的步骤,母液的概念与配制方法。

二、教学场所生物工程综合实验分室(A514)。

三、内容与方法(一)基本原理植物培养基配方中的成分多样,为减少每次培养基配制的工作量和误差,有必要将配方中的成分分为几类,分别配制成若干浓缩倍数的母液备用。

(二)实验内容完成MS培养基各种母液的配制。

四、材料与用品(一)主要化学试剂和药品详见表1。

(二)仪器用具天平、烧杯、试剂瓶、量筒、容量瓶、蒸馏水器、加热器、电冰箱,等。

五、实验操作(一)MS培养基的基础配方与母液配制1、MS培养基的配方和母液配制用量详见表1。

2、配制1 L培养基所取母液的量配制1 L培养基,所取上述各种母液的数量为:大量元素和钙盐母液各50 mL,铁盐、微量元素和有机物的母液各10 mL。

铁盐配制:将称好的FeSO4·7H2O和Na2-EDTA·2H2O分别放到450 mL蒸馏水中,边加热边不断搅拌使它们溶解,然后将Fe盐溶液倒入EDTA 溶液中混合,并将pH调至5.5,最后定容到1 L,保存在棕色玻璃瓶中。

CuSO4·5H2O 和CoCl2·6H2O 因量较小,应先配成更高浓度250mg/L 的母液(10000×), 再根据母液体积取用。

(二)植物激素的母液配制6-BA、NAA、2,4-D等常用植物激素,可配制成0.1 mg/mL的母液,单独配制和取用。

配制时,6-BA、NAA、2,4-D等,可先用少量1 M NaOH再加入热水定容。

表1 MS培养基的母液配制方法参考表注意事项:(1)钙盐、铁盐单独配制。

铁盐需要用棕色试剂瓶盛装。

(2)烟酸在冷水中溶解度差,称量后可先单独用适量热水溶解后,再加到相应的母液中一起定容。

附:MS培养基是目前使用最普遍的培养基。

其具有较高的无机盐浓度,能够保证组织生长所需的矿质营养还能加速愈伤组织的生长。

由于配方中的离子浓度高,在配制、贮存和消毒等过程中,即使有些成分略有出入,也不会影响离子间的平衡。

MS 固体培养基可用于诱导愈伤组织,也可用于胚、茎段、茎尖及花药的培养,其液体培养基用于细胞悬浮培养时能获得明显的成功。

MS培养基的无机养分的数量和比例比较合适,足以满足植物细胞在营养上和生理上的需要。

因此,一般情况下,不用再添加氨基酸、酪蛋白水解物、酵母提取物及椰子汁等有机附加成分。

和其它培养基的基本成分相比,MS培养基中的硝酸盐、钾和铵的含量高,这是它的显著特点。

六、预习思考与作业1、MS培养基配方中,CuSO4·5H2O和CoCl2·6H2O的用量小,配制母液时直接称量相对较困难,如何操作可减少此困难并降低误差?2、配制浓缩倍数较高的大量元素母液时,为何往往会发生沉淀,如何避免?3、表1中的试剂,有的含有结晶水,假如提供的试剂的结晶水的个数与配方中的不一样,应如何处理?实验三MS培养基配制与灭菌一、目的与要求1、学习掌握植物组培培养基(含分化诱导培养基)的配制方法与流程;2、了解、掌握培养基高温高压灭菌的方法与流程;二、实验内容1、设计和配制用于诱导和增殖的培养基;2、外植体消毒所需用品的准备。

三、教学场所生物工程综合实验分室。

四、材料与用品(一)主要试剂和材料已配制的MS各种母液,蔗糖,琼脂粉,HCl和NaOH自选。

(二)仪器用具天平、烧杯、玻棒、量筒、移液管、培养瓶、电磁炉、平底煮锅、酸度计、培养皿,等。

五、实验操作(一)培养基的配制设计并配制用于诱导和增殖生长的培养基。

1、培养基的基础配方MS + 蔗糖30 g/L + 琼脂4.5 g/L (以下简写为MS)2、诱导培养基中的激素组合分化生长培养基1)MS + 6-BA 2.0 mg/L + NAA 0.2 mg/L2)MS + 6-BA 2.0 mg/L + NAA 0.1 mg/L3)MS + 6-BA 0.1 mg/L + NAA 2.0mg/L4)MS + 6-BA 0.2 mg/L + NAA 2.0 mg/L脱分化培养基1)MS + 6-BA 0.5 mg/L + NAA 0.5 mg/L2)MS + 6-BA 1.0 mg/L + NAA 1.0 mg/L3)MS + 2,4-D 1.0 mg/L + 6-BA 1.0 mg/L4)MS + 2,4-D 0.5 mg/L + 6-BA 0.5 mg/L3、培养基的制备(1)以实验小组为操作单元,每小组20瓶(每瓶分装量约50 mL),计算所需培养基的总体积;然后根据培养基的总体积,计算和称取琼脂粉、蔗糖,量取各种母液存放于烧杯中。

(2)量取约为培养基总体积2/3比例的纯净水,放入煮锅,置于电磁炉上,加入琼脂粉,加热并不断搅拌,直至琼脂粉完全融化、澄清透明。

(3)加入蔗糖并搅拌至融化;倒入已量取好的母液,搅拌混匀;倒入大容器,补加纯水定容至预定的体积数。

(4)取样,用酸度计测pH值;用1 M的HCl或NaOH溶液调节pH值至6.0左右。

(5)各实验小组分别按照选定的一个激素组合,计算并用移液管吸取加入相应的激素母液,混匀。

(6)分装到培养瓶,封好瓶口,作好分组标记。

(7)高压湿热灭菌;冷凝备用。

(二)外植体消毒所需用品的准备1、外植体消毒所需的用品无菌水,灭菌后的500 mL烧杯、15 cm培养皿以及吸水滤纸,等。

2、消毒用品的准备用750 mL兰花培养瓶盛装自来水或纯水(装水体积不得超过培养瓶容积的2/3),封口;玻璃器皿(500 mL烧杯,15 cm培养皿等)、吸水滤纸等,分别用牛皮纸或报纸打包捆扎好。

然后,进行高压灭菌。

灭菌完毕后,取出,烘干表面水分,转移到无菌室储物架上存放备用。

注意事项:(1)培养基分装时,尽量不要沾到瓶口,若有沾染要擦除后再封口;灭菌和转运时,培养基不能过于倾斜,以免瓶口部位沾染培养基,容易造成后期染菌。

(2)使用高压灭菌锅时,一定要先检查锅底水位。

灭菌完毕开盖取物时,要避免被烫伤。

六、预习思考与作业1、了解植物组培常用的植物激素种类,各类激素对植物离体培养物的生理作用和效应。

2、实验室高压灭菌的基本操作步骤如何?哪些因素可能会影响高压灭菌的实际效果?实验四无菌接种操作过程一、目的与要求1、、以草本或藤本植物为材料,学习外植体消毒和无菌接种操作方法;二、实验原理植物组织培养技术是植物生物技术的基础。

植物组织培养的基本原理是植物细胞的全能性(totipotency)。

无菌操作是植物组培的基本要求。

三、教学场所植物细胞工程技术研究中心组培室。

四、材料与用品(一)实验材料草本或藤本植物的茎尖,芽尖或茎段。

(二)培养基已分组配制好的培养基。

(三)主要试剂70%~75%乙醇,0.1%升汞(HgCl2),等。

(四)用品用具超净工作台,酒精灯,酒精棉球,无菌水,已灭菌的500 mL烧杯、15 cm培养皿,接种用工具(医用剪刀、镊子、手术刀具),废液杯,工作帽,口罩,工作服,记号笔,等。

五、实验操作(一)外植体的预处理先将外植体在加入少量洗洁精的自来水中清洗表面,沥水,然后放入烧杯,带进接种室。

(二)无菌室消毒接种操作前半小时,先将培养基、无菌水、烧杯、培养皿、外植体材料等有序放置在超净工作台上,打开紫外灯(不开照明灯)进行空间消毒;20 min后,关闭紫外灯(仍不开照明灯),开启超净工作台;至超净工作台运行10 min后,进入无菌室操作。

(三)外植体的消毒操作者坐在超净工作台前,用酒精棉球擦拭双手和手臂,蘸酒精灼烧托盘、剪刀、镊子等接种工具。

先将外植体材料转入一只无菌烧杯,用75%乙醇浸润8 s左右(时间不宜太长),倒出乙醇,立即加入无菌水洗涤2遍,沥水;将材料转移到另一无菌烧杯中,再用0.1%升汞溶液浸泡消毒10 min,用无菌水清洗4次,沥水;然后转移到无菌的大培养皿中,待剪切接种。

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