大小鼠实验动物的一般操作技术ppt课件
动物实验技术常用实验动物大小鼠豚鼠(共136张PPT)

雄鼠为双睾丸,幼年时藏于腹腔内,性成 熟后下降到阴囊;前列腺分背、腹两叶。
雄性小鼠内生殖器
雌性小鼠内生殖器
3、小鼠皮肤无汗腺,它的唾液分泌能力很 有限,只能改变体温以部分地代偿环境的 改变。适宜温度21~25 ℃。低温繁殖率 下降,持续高温(32℃ )引起死亡或产
封闭群 1、昆明小鼠(KM):白色,1926年 从瑞士引 入白化小鼠先培育成瑞士小鼠,1946年我国从 印度将瑞士小鼠引入昆明,1952年从昆明引入 北京生物制品研究所,1954年推广到全国。 是我国特有的封闭群小鼠。
主要特性:繁殖率和成活率高,抗病力和适应 性很强,雌鼠乳瘤发生率为25%。
广泛用于药理、毒理、病毒和细菌学的研究, 以及生物制品和药品的检定。
生后效应。
4、由于小鼠的蒸发表面与整个身体相比所占 的比例大,减少饮水较大多数哺乳动物更为 敏感。呼出的气体在鼻腔内冷却以及尿液
的高效浓缩,都有助于水分保持。这是其 有别于其他动物的特性。
阴道栓,是小鼠交配典型特征,被视为交配
成功的标志。
性周期,雌鼠性成熟后,卵巢产生卵细胞并 分泌雌性激素,出现明显的动情周期。根据 阴道涂片所观察到的阴道上皮细胞变化,可 进一步推测卵巢、子宫、激素变化和所处的 发情阶段。
NZB小鼠,具有自发性的自身免疫贫血症,用 于研究自身免疫疾病的机制。
(六)、老年病学研究 1、小鼠是研究胶原老化的模型动物: 2、老龄鼠大脑物质代谢: 3、生长激素与老化的关系:
(七)、内分泌疾病的研究 小鼠内分泌腺结构的缺陷常引起类 似人类的内分泌疾病: 肾上腺皮质肥大造成肾上腺功能亢进,发生 类似人类柯兴氏综合症; 垂体性侏儒症以及生长激素缺乏造成的 snell侏儒症;
小鼠的基本实验操作 ppt课件

近交系小鼠皮肤移植试验
• 2、自体尾-尾植皮法
• (1)麻醉 固定 • (2)上一供体小鼠尾背部创面的下方取皮片
(0.5cm×0.5cm) • (3)旋转180〫,覆盖在创面上 • (4)1~3周后观察
小鼠的基本实验),右侧卧位,以左腹外侧区 (左肋弓下缘)为手术区,剪毛,酒精消毒,沿腹中线平 行切开1cm
胸腔:肺、心脏。 颈部:甲状腺。 头部:开颅取脑。
• 要求:辨识各个器官,观察正常大小、形状、色泽、 表面形态。
小鼠的基本实验操作
小鼠皮肤移植试验、卵巢摘除术
小鼠的基本实验操作
近交系小鼠皮肤移植试验
• 一、动物
•
KM小鼠2只(1雌1雄)
• 二、方法:
•
尾-背植皮法
•
尾-尾植皮法
小鼠的基本实验操作
小鼠的基本实验操作
小鼠的基本实验操作
• 3、编号
•
苦味酸,背部,
• 逆毛发生长方向
• 4、去毛
•
脱毛剂:8%Na2S,自毛发根部涂抹
小鼠的基本实验操作
小鼠的基本实验操作
• 5、给药
• (1)灌胃法
•
固定小鼠,保持头颈部竖直
•
口角进针,紧贴咽后壁进入消化道
•
进针2/3后灌生理盐水0.5ml
• (2)腹腔注射
胸腔:肺、心脏。
颈部:甲状腺。
头部:开颅取脑。
小鼠的基本实验操作
兔的一般实验操作
• 1、抓取和固定
• 2、性别鉴定
小鼠的基本实验操作
兔的一般实验操作
• 3、给药
• (1)灌胃 • (2)耳缘静脉注射
• 4、采血
• (1)耳缘静脉采血
动物实验基本技术ppt课件
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动物实验基本技术 1 实验动物的分组和编号 2 实验动物的抓取、保定 3 实验动物被毛去除 4 实验动物的给药与取血 55 实验动物的麻醉 6 实验动物的粪便采集 7 实验动物的处死
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一、实验动物编号与分组
(一)编号: 1、被毛涂染法:
实验动物:大鼠、小鼠。 常用染色剂:3-5%苦味酸溶液,可染成黄色。
右手持针,把 灌胃针头的前 端放进动物的 口腔,顺着上 腭部插入咽部, 顺咽后壁轻轻 往下推。
用右手食指将 针栓慢慢往下 压,将注射器 中的药液灌入 动物的胃中。
大鼠的灌胃 video.tudou/v/XMjAyMTgyMTI0.html?from= s1.8-1-1.2
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frpsala11wwwnordridesigncom28皮内注射wwwnordridesigncom将大小鼠放在金属笼或将大小鼠放在金属笼或小鼠固定器小鼠固定器中通过中通过金属笼或金属笼或大小鼠固定器大小鼠固定器的孔拉出鼠尾巴的孔拉出鼠尾巴用左手捏住鼠尾巴用左手捏住鼠尾巴中下部用中下部用7575酒精棉球反复擦拭尾精棉球反复擦拭尾注射时以左手拇指注射时以左手拇指和中指捏住鼠尾两侧和中指捏住鼠尾两侧用食指从下面托起尾用食指从下面托起尾右手持右手持44号针头的号针头的注射器使针头与注射器使针头与静脉平行小于静脉平行小于3030度角度角大鼠亦可用舌下静脉注射小鼠尾静脉注射http
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2
眼眶静脉丛采血
方法:用左手捉鼠,拇指及中指抓住头颈部皮肤,食指按 于眼后,使眼球轻度突出,眼底球后静脉丛淤血。右手持
取内径为1.0-1.5mm的玻璃毛细管(临用前折断成1-1.5cm长的毛细管
动物实验基本操作技术优秀课件

第二节 性别鉴定
一、大、小鼠的性别鉴定
二、兔的性别鉴定
Female
Male
第三节 年龄的大致判断
一、大、小鼠 1. 根据形态鉴定日龄(大、小情况基本一样)
日龄/d 1 3 4 5 8
外观形态特征 仔鼠裸体鲜红 耳壳露出表皮 脐带瘢痕脱落
能翻身 能爬行
日龄/d 10
9~11 13~15 18以后
年龄 2个月以下 2~4个月 4~6个月 6~10个月 1岁 2岁 3岁 4~5岁 6~8岁 9~10岁 10岁以上
犬齿更换和磨损情况 仅有乳齿(白、细、尖) 更换门齿 更换犬齿(白,牙尖圆钝) 更换臼齿 牙长齐,洁白光亮。门齿有尖突 下门齿尖突部分磨乎 上、下门齿尖突大部分磨平 上、下门齿开始磨损呈微斜面,并发黄 门齿磨成齿根,犬齿发黄、磨损 唇部、胡须发白 门齿磨损,犬齿不齐全,牙根黄,唇边胡须全白
妊娠检查方法有
① 外部检查法 ② 摸胎法 ③ 阴道检查法 ④ 直肠检查法 ⑤ 超声波检查法 ⑥ 孕酮含量测定法 ⑦ 青蛙试验
第五节 分组与编号
动物实验之前,必须对实验动物进行随机分组 和编号标记,这是做好实验和实验记录的前提。
一、随机分组 (一) 当分为二组时 例:设有雄性Wistar大鼠12只,按体重大小依 次编为1,2,3,…,12号,试用完全随机的方法, 分为甲、乙两组。 分组方法:假设所产生的点是随机数字表上第 21行第31列的78,则从78开始,由上向下抄12个 随机数字,如下:
组 别: B C A B C B C C A A C A
动物编号: 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
随机数字:78 38 69 57 91 0 37 45 66 82 65 41
动物实验基本操作技术课件
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二、豚鼠 一般老年豚鼠牙齿和趾爪长,被毛稀疏无光泽,眼神呆滞,行动迟缓。而年轻豚鼠牙齿短白,爪短软,眼睛圆亮,行动敏捷,被毛有光泽,且紧贴身体。同样,也可根据体重来推断大致年龄。同日龄豚鼠,雌性体重略高于雄性。与大鼠一样,其体重受多种因素的制约。实验对年龄要求比较严格时,必须由卡片记录提供准确年龄。
*
*
采血时要注意
采血场所有充足的光线;室温夏季最好保持在25~28℃,冬季,15~20℃为宜; 采血用具有采用部位一般需要进行消毒; 采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥; 若需抗凝全血,在注射器或试管内需预先加入抗凝剂。
*
*
部 位
动物种类
a.尾静脉
大鼠、小鼠
*
*
外部检查法 摸胎法 阴道检查法 直肠检查法 超声波检查法 孕酮含量测定法
妊娠检查方法有
*
*
第五节 分组与编号
动物实验之前,必须对实验动物进行随机分组和编号标记,这是做好实验和实验记录的前提。 随机分组 当分为二组时 例:设有雄性Wistar大鼠12只,按体重大小依次编为1,2,3,…,12号,试用完全随机的方法,分为甲、乙两组。 分组方法:假设所产生的点是随机数字表上第21行第31列的78,则从78开始,由上向下抄12个随机数字,如下:
b.耳静脉
兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊
c.眼底静脉丛
兔、大鼠、小鼠
d.舌下静脉
兔
e.腹壁静脉
青蛙、蟾蜍
f.冠、脚蹼皮下静脉
鸡、鸭、鹅
1.取少量血
*
*
部 位
动物种类
a.后肢外侧皮下小隐静脉
狗、猴、猫
b.前肢内侧皮下头静脉
狗、猴、猫
c.耳中央动脉
兔
动物实验PPT课件

9
注意点: 抓取小鼠时动作要 迅速,要轻 防止被小鼠转过头 咬,抓其颈后皮肤要 多 如果被பைடு நூலகம்,应立即 挤出血液,清水冲洗
10
2、性别的判定
未成熟鼠:生殖器发 育不明显,肛门与生 殖器之间的距离来区 分。远——♂、近— —♀。
成年鼠:雄性卧位可 见睾丸,雌性可见腹 部有5对乳头。
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1
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3、小鼠的给药操作
5
1、抓取和固定: 抓取:习惯用右手者,
首先用右手从笼盒内将 小鼠尾中部或基部抓住 (不可抓尾尖),并提起或 放在左手上。
6
固定
先用右手抓取鼠尾提起,置于鼠笼或实验台向后拉。 7
在鼠向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳 和颈部皮肤。
8
将小鼠置于左手掌心,无名指和小指夹其背部皮
肤和尾部,即可将小鼠完全固定。
(1)灌胃
左手固定小鼠使其头部向上,右 手持灌胃器。头后仰使口腔与食 道成一直线,将灌胃针沿一侧口 角进针,紧贴咽后壁慢慢插入食 道滑入动物的胃内,进针2/3后灌 生理盐水0.5ml。
注意事项:
抓取老鼠时应是鼠成竖直线
灌胃成功时,所遇阻力较小。若感到阻 力或动物挣扎时,应立即停止进针或将 针拔出,以免损伤或穿破食道以及误入 气管。
24
穿刺前,碘伏消毒眼周皮毛,左手固定小鼠,右手穿刺。固 定小鼠的方式如照片所示:应让眼球凸出,这样才能保证在 穿刺时不会使小鼠致盲,同时达到压迫阻止静脉回流的目的。
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事先准备好毛细玻璃管(用手折断,我个人习惯用4厘米长左右的),玻璃管 平端先沿着鼻侧眼角慢慢滑动至眼球正下方的眼皮内,此时左手微微顺时针旋 转,使小鼠头部相对位置微向右下偏转,即相当于玻璃管刺入时是对着口腔方 向的,这样做可进一步避免小鼠失明。如上操作时,右手及毛细管保持不动。 当小鼠头部位置调整妥当时,毛细玻璃管刺入,这个动作应稳且迅速。一般情 况下,即会有血液流出,此时可快速拧搓毛细管,进一步破坏内眦静脉丛,加 26
课件-医实动学实验(大鼠、小鼠)

实验三大、小鼠的基本操作技术[实验目的]:通过大鼠、小鼠的抓取固定、性别辨认、灌胃、注射、采血、麻醉、标记、安乐死、动物剖检、脏器摘除与检查等实际操作,掌握大、小鼠动物实验的基本操作技术。
[实验动物]:大鼠、小鼠[材料与器材]:大、小鼠饲养盒(带面罩)、大鼠和小鼠手术固定台,常规手术器械、大鼠灌胃针、小鼠灌胃针、lml注射器、5ml注射器、l0ml注射器、烧杯、75%酒精及酒精棉,干棉球。
生理盐水、20%乌拉坦溶液(或3%戊巴比妥钠)、乙醚、新洁尔灭、3—5%苦味酸溶液、0.5%中性红或品红溶液、[实验内容]:一、实验动物标记编号的方法一染色法(一)被毛染色法1、单色涂染法;(3—5%苦味酸溶液,可染成黄色)。
2、双色涂染法:苦味酸(黄色)—为个位数;品红(红色)—为十位数.(二)耳缘打孔法:适于做长期实验用。
、(三)刺数钳烙印法:适用于长期或慢性实验的大动物编号。
(四)号牌法:用于大动物实验。
二、实验动物被毛的去除方法(一)剪毛法;(二)拔毛法;(三)剃毛法;(四)脱毛法;三、大鼠、小鼠性别的鉴定方法步骤:1、将动物抓取后,腹部朝上,观察肛门与生殖器之间的距离,距离近的为雌性,距离远的为雄性,2、成年雌性大小鼠有12个乳头。
3、天热时或性成熟后,雄性动物的睾丸一般会从腹腔降至阴囊内,此时易于区别。
四、大鼠、小鼠的抓取和固定(一)小鼠的抓取固定:[实验器材]:小鼠饲养盒(带面罩)1套,小鼠防护手套若干。
[方法步骤]:1、用右手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部将小鼠提起,放在饲养盒面罩上。
2、用左手拇指和食指迅速、准确地捏住小鼠的两耳后、颈背部的皮肤,将小鼠提起。
3、翻转左手掌,以左手掌心和中指夹小鼠背部的皮肤,使小鼠整个呈一条直线。
4、用左手无名指压住小鼠背部的皮肤,小指压住小鼠的尾巴根部。
5、松开捏住小鼠尾巴的右手拇指和食指。
[注意事项]:1、在抓取动物时,禁止对动物采取突然、粗暴的方法。
2、抓取时注意,过分用力,会使动物窒息或颈椎脱臼,用力过小,动物头部能反转过来咬伤实验者的手,必须熟练掌握。
大小鼠实验动物的一般操作技术(共22张PPT)

• 某公司现研发出一种新型农药要做产品登记,请根据今天所学的内容设 计一个简要的一般毒性试验方案(主要是操作思路和关键手法)。
• 1.实验目的。 2.实验过程:包括(1)动物的选择和分组;(2)选取两种染毒方式;(3)关键的操作 步骤。 3.实验心得体会。
• 小动物要求:
1.了解动物实验的目的和意义 1、大、小鼠的抓取和性别判断;
(3)关键的操作步骤。
不同组间同性别动物体重均值差异小于5%; 了解实验动物选择和染毒途径。 生物标本的采集 (鼠尾取血、眼眶取血) 注射染毒时要注意安全,注射器不用时要盖上盖子,不要被扎伤。
2.了解实验动物选择和染毒途径。 掌握大、小鼠实验的基本操作技术。
12
注意拽鼠尾时不要用力过大,以免损伤鼠尾或使小鼠致死
原则: 大小鼠固定器(两人一套) 棉签 棉球 剪刀 血色素吸管 纱手套 一次性胶手套 染液 头皮针(4号半或5号)小鼠笼(每组2个)、搪瓷托盘
(每组一个)
同组、同性别动物体重差异应小于平均体重的10%;
体形丰满,同被毛一浓密实有光泽验、紧中贴体,表,实眼睛验明亮动,反应物行动的灵活年。 龄尽可能一致,实验动物体重
• 1、大、小鼠的抓取和性别判断;2、实验动物的标记方法;3、实验动物的分组方法;4、实验动物的染
毒途径和方法(灌胃,腹腔注射和尾静脉注射方法);5、动物的处死方法。 (还可包括实验中你觉得那些操作的手法自己不适合,或那些实验步骤需要改进等,还可有其他的关于这堂
课相关的扩展知识都可上)
21
1. 抓取与操作动物时小心不要被咬伤,如果被咬伤
3. 性别鉴定 4. 实验动物编号标记
5. 实验动物染毒途径和方法(灌胃、腹腔注射、尾静脉注射) 6. 生物标本的采集 (鼠尾取血、眼眶取血) 7. 实验动物的处死
动物实验基本操作方法课件

动物实验基本操作方法课件
(五)静脉注射 ⒈大、小鼠静脉注射 常用尾静脉注射。
大、小鼠尾静脉共有3根(左、中、右),一般常选用两侧的静脉。注射前, 先把动物固定在暴露尾部的鼠尾固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等 物代替),拔去尾部静脉走向的毛,置鼠尾于45~50℃的温水中浸泡几分 钟或用75%酒精棉球反复擦拭,以达到消毒、血管扩张及软化表皮角质 的目的。开始注药时宜少量且缓慢,仔细观察,如无阻力,表示针头已 进入静脉,同时可见静脉血液被注射进去的药液向前推进。如出现白色 皮丘说明未刺人血管,应拔出针头重新穿刺。注射完,取一棉球或纱布 用力按住注射部位并轻轻揉动。如需反复注射,应尽量从尾的末端开始, 另外,左右两根血管可交换选择使用。
4.局部浸润麻醉:沿手术切口逐层注射局部麻醉药,阻滞组 织中的神经末梢。常用药为普鲁卡因。
5.椎管内麻醉:在椎管内注射麻醉药,阻滞脊神经的传导, 使其支配的区域无疼痛。常适用于大型动物(如猪、马、牛、羊 等),常用药为普鲁卡因、可卡因等。
动物实验基本操作方法课件
三、动物麻醉的注意事项
1.有些麻醉药物,如乙醚,是挥发性很强的液体,易燃易 爆,使用时应远离火源。平时应装在棕色玻璃瓶中,储存阴 凉处,不宜放在冰箱中,以免遇电火花而引起爆炸。
动物实验基本操作方法课件
动物实验基本操作方法课件
五、犬、猫等的抓取与固定
动物实验基本操作方法课件
六、实验动物的编号与标记方法
在动物实验中,必须对实验动物进行编号、标记以示区别。 标记方法应满足标号清晰、耐久、简便、易认和适用的要 求,现介绍几种常用的标记方法。 1.染色法:染色法是用毛笔或棉签蘸取有色化学染料, 在实验动物体表不同部位涂上斑点,以示不同编号。 编号的一般原则是:“先左后右,先上后下。”
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- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
原则: 同一实验中,实验动物的年龄尽可能一致,实验动物 体重大致相近; 同组、同性别动物体重差异应小于平均体重的10%; 不同组间同性别动物体重均值差异小于5%;♀♂动 物各半,且♀♂实验结果分开统计、分析。
称重 编号 随机分组
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经口染毒
(喂饲、灌胃、吞咽胶囊等)
经呼吸道染毒(静式、动式和气管内注入)
不要用力过大, 以免损伤鼠尾 或使小眶采血、动脉采血等)
尿液采集
胆汁采集
粪便采集
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19
脊椎脱臼法(断髓处死):大、小鼠 断头法;急性大失血法;(摘取眼球法)击打
头部法;麻醉后急性放血法; 开放性气胸法。
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报告要求书写整洁,过程明了 内容包括:
实验目的,主要的实验内容,各项实验内容的主要的操作手法及注意 事项(内容可和后面的讨论一起写,按照每一个小问题来答题) • 实验讨论: • 大动物要求: • 某公司现研发出一种新型农药要做产品登记,请根据今天所学的内容 设计一个简要的一般毒性试验方案(主要是操作思路和关键手法)。
• 1.实验目的。 2.实验过程:包括(1)动物的选择和分组;(2)选取两种染毒方式; (3)关键的操作步骤。 3.实验心得体会。
1
实验动物一般操作技术(一)
―――大鼠、小鼠
2
3R原则 体外替代实验(目前在国际上被承认的体外替
代实验的方法) 皮肤刺激实验 眼刺激实验等
3
1.了解动物实验的目的和意义 2.了解实验动物选择和染毒途径。 3.掌握大、小鼠实验的基本操作技术。
4
5
1. 实验动物的选择 ✓ 2. 实验动物的抓取和固定 ✓ 3. 性别鉴定 4. 实验动物编号标记 ✓ 5. 实验动物染毒途径和方法(灌胃、腹腔注射、尾静脉注射) ✓ 6. 生物标本的采集 (鼠尾取血、眼眶取血) ✓ 7. 实验动物的处死
小鼠3周体重约为10~15g,大鼠3~4周体重约 为50~70g
9
注意抓取动物的 手法
抓取固定时力量 大小适宜
10
未成熟鼠生殖器发 育不明显,肛门与 生殖器之间的距离 来区分。远——♂、 近——♀。
成年鼠:雄性卧位 可见睾丸,雌性可 见腹部有12个乳头。
11
常用标记,两种染 料(苦味酸和中性 红或品红)
要求: 四人一组 动物:
小鼠 30g左右 (每人1只)每组♂、♀各半 大鼠 150g左右(两人1只)每组♂、♀各半 材料: 一次性1ml、5 ml注射器、大小灌胃针头(两人一套) 大小鼠固定器(两人一套) 棉签 棉球 剪刀 血色素吸管 纱手套 一次性胶手套 染液 头皮针(4号半或5号)小鼠笼 (每组2个)、搪瓷托盘(每组一个) 试剂: 75%酒精 生理盐水
6
大小鼠的观察、抓取与固定
性别的判定、称重、标记编号及分组
大小鼠灌胃操作(重点)
大小鼠腹腔注射、小鼠尾静脉注射 小鼠眼眶后静脉丛取血与大小鼠的断尾取血,以 及大小鼠的处死
7
动物物种选择基本原则:
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健康动物首先看外观: 体形丰满,被毛浓密有光泽、紧贴体表,眼睛 明亮,反应行动灵活。
有无明显疾病症状 体重、年龄
死后的动物不要与其他垃圾混合丢弃。
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21
1. 抓取与操作动物时小心不要被咬伤,如果被 咬伤需立即用清水冲洗并用碘酒消毒。
2. 抓取动物时用力要恰当,防止动物窒息死亡。 3. 抓取动物时要小心其身上可能存在的虱子。 4. 注射染毒时要注意安全,注射器不用时要盖
上盖子,不要被扎伤。 5. 实验动物在做完所有操作后才进行处死,处
• 小动物要求:
• 1、大、小鼠的抓取和性别判断;2、实验动物的标记方法;3、实验动物的分组方法;4、 实验动物的染毒途径和方法(灌胃,腹腔注射和尾静脉注射方法);5、动物的处死方法。
(还可包括实验中你觉得那些操作的手法自己不适合,或那些实验步骤需要改进等,还 可有其他的关于这堂课相关的扩展知识都可上)
经皮肤染毒
注射染毒
(皮下、皮内、肌内、腹腔和鼠尾静脉注射等)
其它
(直肠内、鼻腔等)
14
抓取老鼠时应是鼠 成竖直线
灌胃成功时,所遇阻 力较小
灌胃时注意胃容量
15
腹下1/3外侧,避 免损伤实质器官
扎入时有“落空 感”,回抽无尿 液或血液
16
从远端进针 注意拽鼠尾时