标本采集、保存与送检 PPT
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检验标本的采集幻灯片ppt课件
粪便标本采集方法及注意事项
.1 、留取黄豆大小新鲜标本，放入干燥、清洁、无 吸水性的有盖容器内送检。 2、 不应该采取尿壶或便盆中的粪便标本，也不可 混入植物、泥土、污水等。因腐蚀性原虫、真菌 孢子、பைடு நூலகம்物种子、花粉易混淆实验结果。 3、 粪便标本应选择其中脓血粘液等病理成分，若 无病理成分，可多部位取材。采取标本后应在一 小时内送检。 4、 隐血试验应嘱咐患者收集标本前3日禁食动物 性食物。采集标本后应立即送检，以免因长时间 放置是敏感度降低。
血培养的采集方法和注意事项
1、培养瓶消毒程序：消毒培养瓶橡皮塞， 待干燥后使用。 2、皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外 画圈消毒，至消毒区域直径达5cm以上，待 消毒液挥发干燥后采血。
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
溶血的常见原因
• 1.有注射器和容器不干燥、不清洁； • 2.穿刺不顺利，组织损伤过多,淤血时间过
长； • 3.抽血速度太快； • 4.血液注入容器时未取下针头或注入速度
11. 血标本抽取后，应贴好标签或条形码，注 明抽血时间，及时送检。
12. 如要送较远实验室检测（需1小时以上送 到）最好 先分离好血浆或血清后送检。
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
.1 、留取黄豆大小新鲜标本，放入干燥、清洁、无 吸水性的有盖容器内送检。 2、 不应该采取尿壶或便盆中的粪便标本，也不可 混入植物、泥土、污水等。因腐蚀性原虫、真菌 孢子、பைடு நூலகம்物种子、花粉易混淆实验结果。 3、 粪便标本应选择其中脓血粘液等病理成分，若 无病理成分，可多部位取材。采取标本后应在一 小时内送检。 4、 隐血试验应嘱咐患者收集标本前3日禁食动物 性食物。采集标本后应立即送检，以免因长时间 放置是敏感度降低。
血培养的采集方法和注意事项
1、培养瓶消毒程序：消毒培养瓶橡皮塞， 待干燥后使用。 2、皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外 画圈消毒，至消毒区域直径达5cm以上，待 消毒液挥发干燥后采血。
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
溶血的常见原因
• 1.有注射器和容器不干燥、不清洁； • 2.穿刺不顺利，组织损伤过多,淤血时间过
长； • 3.抽血速度太快； • 4.血液注入容器时未取下针头或注入速度
11. 血标本抽取后，应贴好标签或条形码，注 明抽血时间，及时送检。
12. 如要送较远实验室检测（需1小时以上送 到）最好 先分离好血浆或血清后送检。
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
微生物标本的正确采集运送及注意事项PPT课件
4
采集原则与要求
01
02
03
04
无菌操作
采集过程中应严格遵守无菌操 作原则，避免污染标本。
正确选择采集部位
根据不同感染类型选择相应的 采集部位，如呼吸道、泌尿道
、伤口等。
采集足量标本
确保采集到足够数量的微生物 ，以满足后续实验需求。
及时送检
标本采集后应尽快送至实验室 进行检测，避免延误诊断和治
疗。
确保采集顺利进行。
PART 02
微生物标本采集方法
REPORTING
2024/1/28
7
空气微生物采集
采样时间选择
通常在清洁后和消毒前进 行空气采样，避免人为因 素干扰。
2024/1/28
采样高度
距离地面1.5米左右的高度 进行采样，以反映室内空 气污染情况。
采样方法
使用空气微生物采样器， 设置合适的采样流量和时 间，进行空气微生物的收 集。
2024/1/28
5
采集前准备工作
了解患者病情
熟悉患者病史、症状、 体征等，以便选择合适
的采集部位和方法。
2024/1/28
准备采集用品
根据采集部位和需要准 备相应的采集用品，如 无菌棉签、试管、培养
基等。
消毒处理
与患者沟通
对患者采集部位及周围 皮肤进行消毒处理，减
少污染可能性。
6
向患者解释采集目的和 过程，取得患者配合，
标本处理
标本保存
根据标本类型选择合适的处理方法，如涂 片、培养、药敏试验等。
按照相关规定妥善保存标本，确保标本在有 效期内可用于复检或质量控制。
2024/1/28
17
常用检测方法介绍
采集原则与要求
01
02
03
04
无菌操作
采集过程中应严格遵守无菌操 作原则，避免污染标本。
正确选择采集部位
根据不同感染类型选择相应的 采集部位，如呼吸道、泌尿道
、伤口等。
采集足量标本
确保采集到足够数量的微生物 ，以满足后续实验需求。
及时送检
标本采集后应尽快送至实验室 进行检测，避免延误诊断和治
疗。
确保采集顺利进行。
PART 02
微生物标本采集方法
REPORTING
2024/1/28
7
空气微生物采集
采样时间选择
通常在清洁后和消毒前进 行空气采样，避免人为因 素干扰。
2024/1/28
采样高度
距离地面1.5米左右的高度 进行采样，以反映室内空 气污染情况。
采样方法
使用空气微生物采样器， 设置合适的采样流量和时 间，进行空气微生物的收 集。
2024/1/28
5
采集前准备工作
了解患者病情
熟悉患者病史、症状、 体征等，以便选择合适
的采集部位和方法。
2024/1/28
准备采集用品
根据采集部位和需要准 备相应的采集用品，如 无菌棉签、试管、培养
基等。
消毒处理
与患者沟通
对患者采集部位及周围 皮肤进行消毒处理，减
少污染可能性。
6
向患者解释采集目的和 过程，取得患者配合，
标本处理
标本保存
根据标本类型选择合适的处理方法，如涂 片、培养、药敏试验等。
按照相关规定妥善保存标本，确保标本在有 效期内可用于复检或质量控制。
2024/1/28
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常用检测方法介绍
《标本采集和送检》课件
05 案例分析
案例一：血液标本采集不当引发的误诊
总结词
血液标本采集是临床诊断中常见的检验项目，采集过程中需注意避免交叉感染 、防止溶血等。
详细描述
某患者因发热就诊，医生采集血液标本进行血常规检查，结果提示贫血、白细 胞升高。但重新审视采血过程，发现采血器消毒不彻底，导致交叉感染。最终 诊断为败血症，与初步诊断大相径庭。
粪便标本
粪便标本应保存在适当的 容器中，并避免污染和交 叉污染。在送检前应将粪 便中的水份适当干燥。
04
注意事项与问题处理
采集过程中的注意事项
采集时间
01
需在规定时间内完成采集，确保样本的有效性 。
采集方法
02
按照规定的操作流程进行采集，避免样本被污 染或破坏。
样本标识
03
确保每个样本都有唯一的标识，便于后续识别 和管理。
异常结果的处理与报告异常结果，需进行核 实，确认是否为操作误差或
真实异常。
01
02
根据复检结果撰写报告，详 细说明异常情况及处理建议
。
03
04
复检与确认
如为真实异常，需进行复检 和确认，以保障结果的准确
性。
反馈与改进
将异常结果反馈给相关人员 ，并针对问题进行分析和改
进，提高检测质量。
02
常见标本采集方法
血液标本采集
静脉血液标本采集
从肘静脉或手背静脉采集，常用真空 采血管。
末梢血液标本采集
严格消毒，防止交叉感染；确保采血 量足够；避免溶血和凝血。
动脉血液标本采集
用于血气分析，常用股动脉、肱动脉 或桡动脉。
注意事项
用于快速血糖检测，从手指或耳垂采 集。
尿液标本采集
病理标本采集及送检 PPT【24页】
7.归还切片需持押金收据及外院会诊报告复印件。
大家好
8
目的：
规范标本的采集和送检，保证送检标本的质量，从而确保病理诊断 的准确性，为病人的诊断及治疗提供正确指导。
适用范围：
组织学、细胞学标本的采集、固定、包装运输，申请单填写。
标本的类型：
1.组织病理标本包括：外科手术切除标本、内窥镜标本（胃黏膜，肠黏膜， 支气管黏膜和子宫颈钳取的组织等）、穿刺标本（肝穿标本和肾标本等）。 2.细胞学病理标本包括：细针穿刺涂片、胸腹水等体液标本、痰、宫颈刮片 等。 3.尸体标本。
大家好
18
二、细胞学取样：
（2）液基细胞： 1.检查前48小时禁止性生活，避免阴道冲洗及上药；
2.避开月经期；
3.充分暴露宫颈，将扫帚庄采样器的毛刷中央部分轻轻插入宫颈口，按同一 方向旋转5-10周（切忌来回转动）；
4.阴道不规则流血者，用无菌棉棒轻轻拭净出血，再取材；
大家好
19
5.白带过多者，用无菌棉棒轻轻拭净粘液，再取材； 6.将毛刷置于装有保存液的专用瓶内，漂洗扫帚状采样器。上下反复地 将扫帚状采样器推入瓶底，迫使刷毛全部分散开来，共10次；最后，在 溶液中快速地转动扫帚状采样器以进一步的将细胞样本保存下来，拧紧 瓶盖。 7.在标本瓶的标签上清楚填写受检者的姓名、年龄，并和申请单核对无 误。
大家好
9
采集、送检及固定要求：
1.病人知情同意：所有为了疾病的诊断而采取的有创组织活检，在 活检前均应向患者 和或其家属说明活检病理诊断的必要性。必要时（根据各自医院的 相关规定）和患者签署知情同意书。
2.凡手术切除或抽取、钳取、刮取自人体的组织、细胞等均应按病理 送检项目的要求， 及时、完整送病理科检查，不得随意丢弃、切开、私自留取或仅部分 送检标本；如有 特殊需要必须征得病理科的同意，在病理医师的指导下切开或留取组 织。
大家好
8
目的：
规范标本的采集和送检，保证送检标本的质量，从而确保病理诊断 的准确性，为病人的诊断及治疗提供正确指导。
适用范围：
组织学、细胞学标本的采集、固定、包装运输，申请单填写。
标本的类型：
1.组织病理标本包括：外科手术切除标本、内窥镜标本（胃黏膜，肠黏膜， 支气管黏膜和子宫颈钳取的组织等）、穿刺标本（肝穿标本和肾标本等）。 2.细胞学病理标本包括：细针穿刺涂片、胸腹水等体液标本、痰、宫颈刮片 等。 3.尸体标本。
大家好
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二、细胞学取样：
（2）液基细胞： 1.检查前48小时禁止性生活，避免阴道冲洗及上药；
2.避开月经期；
3.充分暴露宫颈，将扫帚庄采样器的毛刷中央部分轻轻插入宫颈口，按同一 方向旋转5-10周（切忌来回转动）；
4.阴道不规则流血者，用无菌棉棒轻轻拭净出血，再取材；
大家好
19
5.白带过多者，用无菌棉棒轻轻拭净粘液，再取材； 6.将毛刷置于装有保存液的专用瓶内，漂洗扫帚状采样器。上下反复地 将扫帚状采样器推入瓶底，迫使刷毛全部分散开来，共10次；最后，在 溶液中快速地转动扫帚状采样器以进一步的将细胞样本保存下来，拧紧 瓶盖。 7.在标本瓶的标签上清楚填写受检者的姓名、年龄，并和申请单核对无 误。
大家好
9
采集、送检及固定要求：
1.病人知情同意：所有为了疾病的诊断而采取的有创组织活检，在 活检前均应向患者 和或其家属说明活检病理诊断的必要性。必要时（根据各自医院的 相关规定）和患者签署知情同意书。
2.凡手术切除或抽取、钳取、刮取自人体的组织、细胞等均应按病理 送检项目的要求， 及时、完整送病理科检查，不得随意丢弃、切开、私自留取或仅部分 送检标本；如有 特殊需要必须征得病理科的同意，在病理医师的指导下切开或留取组 织。
2024全新临床检验标本采集规范ppt课件(2024)
25
05
标本采集过程中的质量控制与安全管
理2024/1/2726质量控制措施标准化操作流程
制定并执行统一的标本采集、处理、 运输和保存流程，确保每一步操作都 符合规范。
人员培训与考核
对标本采集人员进行专业培训，并定 期考核其操作技能和服务态度，确保 人员能力达标。
2024/1/27
设备维护与校准
定期对采集设备、保存设备和运输设 备进行维护和校准，确保设备处于良 好状态。
质量监控与反馈
建立质量监控机制，对标本采集、处 理、运输和保存过程进行定期检查和 评估，及时发现问题并改进。
27
安全防护措施
个人防护
环境安全
标本采集人员需穿戴适当的防护用品，如 口罩、手套、隔离衣等，避免直接接触标 本。
保持采集环境的清洁和消毒，确保环境安 全无污染。
2024/1/27
11
规范制定的背景与目的
2024/1/27
背景
随着医学技术的不断发展，临床检验在疾病诊断和治疗中的 作用日益凸显。为确保检验结果的准确性和可靠性，标本采 集作为检验流程的首要环节，其规范性至关重要。
目的
制定全新的临床检验标本采集规范，旨在提高标本质量，减 少误差，确保检验结果准确可靠，为临床医生提供有力的诊 断依据。
针对可能出现的突发事件，制定相应的应急预案，如设备故障 、标本污染、人员受伤等。
定期组织应急演练和培训，提高人员的应急处理能力和协作能 力。
根据问题处理和应急演练的经验教训，持续改进和优化标本采 集过程中的质量控制和安全防护措施。
29
06
临床检验标本采集规范实施的评价指
标与持续改进
2024/1/27
12
规范的主要内容与特点
05
标本采集过程中的质量控制与安全管
理2024/1/2726质量控制措施标准化操作流程
制定并执行统一的标本采集、处理、 运输和保存流程，确保每一步操作都 符合规范。
人员培训与考核
对标本采集人员进行专业培训，并定 期考核其操作技能和服务态度，确保 人员能力达标。
2024/1/27
设备维护与校准
定期对采集设备、保存设备和运输设 备进行维护和校准，确保设备处于良 好状态。
质量监控与反馈
建立质量监控机制，对标本采集、处 理、运输和保存过程进行定期检查和 评估，及时发现问题并改进。
27
安全防护措施
个人防护
环境安全
标本采集人员需穿戴适当的防护用品，如 口罩、手套、隔离衣等，避免直接接触标 本。
保持采集环境的清洁和消毒，确保环境安 全无污染。
2024/1/27
11
规范制定的背景与目的
2024/1/27
背景
随着医学技术的不断发展，临床检验在疾病诊断和治疗中的 作用日益凸显。为确保检验结果的准确性和可靠性，标本采 集作为检验流程的首要环节，其规范性至关重要。
目的
制定全新的临床检验标本采集规范，旨在提高标本质量，减 少误差，确保检验结果准确可靠，为临床医生提供有力的诊 断依据。
针对可能出现的突发事件，制定相应的应急预案，如设备故障 、标本污染、人员受伤等。
定期组织应急演练和培训，提高人员的应急处理能力和协作能 力。
根据问题处理和应急演练的经验教训，持续改进和优化标本采 集过程中的质量控制和安全防护措施。
29
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临床检验标本采集规范实施的评价指
标与持续改进
2024/1/27
12
规范的主要内容与特点
检验标本的采集及运送ppt课件
4、检验人员：必须等收到临床医生书面或电子打印的检验申请单
时，才可接收标本进行检验。
5、检验申请单及检验结果记录：保存2年。
5/22/2024
4
四、标本采集方法：
收取检验申请单——审核合格后，检查真空管标识和检验 申请单一致——做好患者准备工作——找好采血静脉并消毒—— 采集致标本容器——送至检验科。
2：血液标本的运送应由患者（除血交叉标本外） 或临床卫生员运送。运送过程中必须保证安全， 防止容器破裂、遗漏等现象。
5/22/2024
3
三、检验的申请：
1、临床医生：应完整填写申请单各项内容，字迹必须清楚，包
括患者姓名、性别、年龄、科别、床号、病案号、住院号、申请序
号、标本类型、临床诊断、采集标本日期和时间、申请检查的实验
3.5 溶血标本拒收 3.6 血糖标本 3.6.1 要注意：患者的饮食，高糖饮食、剧烈运动、情
绪激动等，都会引起血糖生理性增高。 血清管抽血后，尽快送检验科检测，因为葡萄糖
在空气中，在血细胞的作用下，很容易孝解。 全血标本室温放置1小时，血糖值下降。3-6% 全血标本室温放置4小时，血糖值下降。10-30%
↓
阻断葡萄糖的分解
5/22/2024
2
二、采集血液标本的职责：
1：住院病人血液由临床医护人员采集。临床医 护人员必须明确告知病人标本采集前的准备条 件，要求及注意事项（如禁食、禁水、特殊标 本采集前的准备等）；医护人员有义雾向患者 解释标本采集中的各种问题，标本采集的类型、 血量、保存条件、注意事项、生物参考区间、 临床意义等，指导患者进行正确的准备。
介绍
检验标本的采集及运送是保证检验结果 准确与否首要的、重要环节。包括适当的患 者准备、检验申请，适当的标本收集、标记、 保存、运送和处理。
临床常见检验标本的采集方法及注意事项PPT课件
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18
盖子颜色 红色 紫色 蓝色
金黄色 绿色
黑色 灰色
添加抗凝剂 无
EDTA-K2/ EDTANa2
枸橼酸钠
注意事项
原理
凝块形成约需30分钟，不需 颠倒混匀，避免溶血 。
颠倒混匀6—8次
与Ca+2结合成螯 合物，阻止血液 凝固
颠倒混匀6—8次 作凝血 与Ca+2结合成螯
功能时血液与抗凝剂比例 合物，阻止血液
果，输液时应在另一侧手臂采血。
❖ 静脉采血：是最常用的采血方法，可选择的表浅静脉多，要求 必须严格无菌操作，避免感染，可选择较大的静脉穿刺，争取 一针见血。
❖ 动脉采血：常用采血部位股动脉，桡动脉，足背动脉等。由于 动脉压力高，危险性较大，故采血后按压穿刺点5-10分钟。
❖ 毛细血管采血：只需很小量标本，多在手指，足趾或足跟等部 位采血，如全血细胞计数，快速血糖，血脂等检验，或婴幼儿。
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23
尿标本采集方法及注意事项
尿标本采集注意事项
1.尿常规，妊娠实验等最好留取清晨第一次尿液为宜，因为较 浓缩，条件恒定，便于对比，故应向病人详细说明。急诊 病人应随时留取标本。
2.尿液不能及时送检应适当防腐，防腐剂的选择取决于要分析 的物质所采用的方法。收集期间，标本应放入冰箱或阴凉 处，以免细菌繁殖，细胞溶解等。收集完毕，要立即送到 实验室（一般夏季1小时以内，冬季2小时内完成检验）。
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25
三 大便标本的采集方法及注意事项
❖ 采集方法： ❖ 自然排便采集法：挑取有脓血，黏液部分的大便，
液状大便取絮状物，盛于大便采样器中，或者置 于保存液，增菌液中送检（针对微生物）。 ❖ 直肠拭子方法：将拭子前端用无菌甘油盐水湿润， 插入肛门4-5厘米（幼儿2-3厘米）处，轻轻旋转， 取直肠表面黏液后取出，放入无菌试管或保存液 中送检。
2024版标本采集PPT课件
定期对质量管理体系进行内部审 核和外部评审，确保其有效性。
加强人员培训与考核
对标本采集人员进行专业培训， 包括理论知识、操作技能、安全
防护等方面。
定期对标本采集人员进行考核， 评估其操作技能水平和理论知识
掌握程度。
建立奖惩机制，对表现优秀的标 本采集人员给予表彰和奖励，对 操作不规范或造成质量问题的进
穿刺与采血
穿刺静脉，使血液自然流入采 血管。
止血与后处理
用无菌棉球按压穿刺点止血， 嘱患者保持穿刺部位干燥、清
洁。
尿液标本采集
01
02
03
采集前准备
核对患者信息，指导患者 正确留取尿液。
采集方法
留取清晨第一次尿或随机 尿，避免污染。
标本保存与运输
及时送检，避免光照和高 温。
粪便标本采集
采集前准备
保持低温环境
01
对于需要低温保存的标本，要确保在运输过程中维持适当的低
温环境，防止标本变质。
避免剧烈震动
02
在运输过程中要避免剧烈震动和碰撞，以免对标本造成损坏。
防止污染和泄漏
03
要确保容器密封性良好，防止标本在运输过程中发生泄漏或污
染。
到达后接收与登记流程
接收核对
在接收标本时，要仔细核对标本信息、容器完整性以及运输文件 等，确保无误。
生殖道分泌物标本采集
根据不同部位选择合适的采集方法，注意无 菌操作。
04
标本处理与保存
标本处理流程
接收标本
核对患者信息、标本类型及数量， 确保准确无误。
标本前处理
根据检测项目要求，对标本进行 离心、分离血清或血浆等处理。
标本检测
按照实验室标准操作程序进行标 本检测，确保结果准确可靠。
标本的采集和运送PPT课件
标本的采集和运送
正确规范的采集和运送标本， 通过实验室检查，结合病史、 症状或体疾病的病程确 定标本采集的时间、部位和种类。 所有采集的标本均应置于无菌或清洁容器 中，不能接触消毒剂和抗菌药物。 标本采集后应按要求处理，立即送往实验 室；对于烈性传染病标本的运送还需专人 送检。
创伤、组织和脓肿标本
损伤范围较大的创伤：应从不同部位采集多份标本。 采集部位应首先清除污物，以碘酒、酒精消毒皮肤， 防止杂菌混入标本。 开放性脓肿：用无菌棉拭采取脓液及病灶深部分泌 物。 封闭性脓肿：以无菌干燥注射器穿刺抽取；疑为厌 氧菌感染者，取脓液后立即排净注射器内空气，针 头塞入无菌橡皮塞并送检。
脑脊液与其它无菌体液
引起脑膜炎的病原体因其抵抗力弱，不耐 冷，容易死亡，故采集的脑脊液应立即保 温送检或床边接种。 浆膜腔积液因含菌量少，宜采集较大量标 本以保证检出率。
泌尿生殖道标本
根据不同疾病的特征及检验目的采集不同 标本：性传播疾病－尿道口分泌物、外阴 糜烂面分泌物、阴道宫颈口分泌物、前列 腺液；生殖道疱疹－穿刺疱疹液；盆腔脓 肿－于直肠子宫陷凹处穿刺脓液。 除淋球菌保温送检外，所有标本收集后4℃ 保存。
血清
用于检测患者特异性抗体效价以辅助诊 断感染性疾病。 采集血液置于无菌试管中，自然凝固、 血块收缩后吸取血清，56℃加热30分钟 以灭活补体成分。 灭活血清保存于－20℃。
粪便
取含脓、血或粘液粪便置于清洁容器中送 检，排便困难者可用直肠拭子采集。 根据细菌种类不同选用合适运送培养液以 提高阳性检出率（如霍乱）。 一次粪便培养阴性不能完全排除胃肠道病 原菌的存在，对于传染性腹泻患者需三次 送检粪便进行细菌培养。
正确规范的采集和运送标本， 通过实验室检查，结合病史、 症状或体疾病的病程确 定标本采集的时间、部位和种类。 所有采集的标本均应置于无菌或清洁容器 中，不能接触消毒剂和抗菌药物。 标本采集后应按要求处理，立即送往实验 室；对于烈性传染病标本的运送还需专人 送检。
创伤、组织和脓肿标本
损伤范围较大的创伤：应从不同部位采集多份标本。 采集部位应首先清除污物，以碘酒、酒精消毒皮肤， 防止杂菌混入标本。 开放性脓肿：用无菌棉拭采取脓液及病灶深部分泌 物。 封闭性脓肿：以无菌干燥注射器穿刺抽取；疑为厌 氧菌感染者，取脓液后立即排净注射器内空气，针 头塞入无菌橡皮塞并送检。
脑脊液与其它无菌体液
引起脑膜炎的病原体因其抵抗力弱，不耐 冷，容易死亡，故采集的脑脊液应立即保 温送检或床边接种。 浆膜腔积液因含菌量少，宜采集较大量标 本以保证检出率。
泌尿生殖道标本
根据不同疾病的特征及检验目的采集不同 标本：性传播疾病－尿道口分泌物、外阴 糜烂面分泌物、阴道宫颈口分泌物、前列 腺液；生殖道疱疹－穿刺疱疹液；盆腔脓 肿－于直肠子宫陷凹处穿刺脓液。 除淋球菌保温送检外，所有标本收集后4℃ 保存。
血清
用于检测患者特异性抗体效价以辅助诊 断感染性疾病。 采集血液置于无菌试管中，自然凝固、 血块收缩后吸取血清，56℃加热30分钟 以灭活补体成分。 灭活血清保存于－20℃。
粪便
取含脓、血或粘液粪便置于清洁容器中送 检，排便困难者可用直肠拭子采集。 根据细菌种类不同选用合适运送培养液以 提高阳性检出率（如霍乱）。 一次粪便培养阴性不能完全排除胃肠道病 原菌的存在，对于传染性腹泻患者需三次 送检粪便进行细菌培养。
2024年度-血培养标本采集ppt课件
血培养标本采集ppt课件
1
目 录
• 引言 • 血培养标本采集前准备 • 血培养标本采集方法 • 血培养标本的运送和保存 • 血培养标本的接收和处理 • 血培养结果解读与临床应用
2 contents
01
引言
3
目的和背景
了解血培养标本采集 的意义和重要性
提高血培养标本采集 的质量和效率，减少 误差和污染
运送容器 使用无菌、密封良好的容器装载标本，确保容器无破损、 无泄漏。容器外应标明患者姓名、采集时间、采集部位等 信息。
运送方式 根据实验室要求和实际情况，选择合适的运送方式，如专 人递送、快递等。确保运送过程中标本的安全和及时性。
15
标本保存
保存条件
血培养标本在送达实验室前，应 在2-8℃的冰箱中保存。避免冷冻 和反复冻融，以免影响检测结果。
控制采血量
根据检测项目的要求，控制采血量，避免浪 费和不必要的痛苦。
选择合适的穿刺部位
选择相对较大、较直、弹性好的血管进行穿 刺，避免在关节、静脉窦等部位穿刺。
标本及时送检
采集后的标本应及时送检，避免放置时间过 长导致细菌繁殖和标本变质。
13
04
血培养标本的运送和保存
14
标本运送
运送条件 血培养标本应在采集后尽快送至实验室，一般要求在2小 时内送达。运送过程中需保持标本的温度和湿度稳定，避 免剧烈震动和光照。
选择合适的真空采血管，检查其 完整性和有效期。
皮肤消毒
同常规采血法。
穿刺采血
选择合适的穿刺部位，使用真空 采血针进行穿刺采血，血液自动 流入真空采血管内。
标本处理
将采集的血液注入无菌培养瓶中， 轻轻摇匀，避免产生气泡。
12
1
目 录
• 引言 • 血培养标本采集前准备 • 血培养标本采集方法 • 血培养标本的运送和保存 • 血培养标本的接收和处理 • 血培养结果解读与临床应用
2 contents
01
引言
3
目的和背景
了解血培养标本采集 的意义和重要性
提高血培养标本采集 的质量和效率，减少 误差和污染
运送容器 使用无菌、密封良好的容器装载标本，确保容器无破损、 无泄漏。容器外应标明患者姓名、采集时间、采集部位等 信息。
运送方式 根据实验室要求和实际情况，选择合适的运送方式，如专 人递送、快递等。确保运送过程中标本的安全和及时性。
15
标本保存
保存条件
血培养标本在送达实验室前，应 在2-8℃的冰箱中保存。避免冷冻 和反复冻融，以免影响检测结果。
控制采血量
根据检测项目的要求，控制采血量，避免浪 费和不必要的痛苦。
选择合适的穿刺部位
选择相对较大、较直、弹性好的血管进行穿 刺，避免在关节、静脉窦等部位穿刺。
标本及时送检
采集后的标本应及时送检，避免放置时间过 长导致细菌繁殖和标本变质。
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04
血培养标本的运送和保存
14
标本运送
运送条件 血培养标本应在采集后尽快送至实验室，一般要求在2小 时内送达。运送过程中需保持标本的温度和湿度稳定，避 免剧烈震动和光照。
选择合适的真空采血管，检查其 完整性和有效期。
皮肤消毒
同常规采血法。
穿刺采血
选择合适的穿刺部位，使用真空 采血针进行穿刺采血，血液自动 流入真空采血管内。
标本处理
将采集的血液注入无菌培养瓶中， 轻轻摇匀，避免产生气泡。
12
标本采集及送检课件
案例二：不规范处理导致的实验结果偏差
总结词
不规范处理标本可能导致实验结果出现偏差。
详细描述
在处理标本时，不规范的操作可能导致实验结果偏离真实值。例如，在处理组织标本时，如果组织处 理不当或固定液选择不正确，可能会导致组织坏死或变硬，进而影响病理诊断的准确性。此外，试剂 使用不当或仪器校准不准确也可能导致实验结果偏差。
择适当的保存条件及时间。
标本处理的注意事项
严格遵守操作规程
处理标本时应严格遵守操作规 程，避免污染及交叉感染。
注意个人防护
处理标本时应注意个人防护， 佩戴合适的防护用品。
及时处理标本
标本采集后应尽快进行处理， 以确保检测结果的准确性。
特殊情况处理
如发现标本不符合采集要求或 存在异常情况，应及时进行处 理，如重新采集或进行特殊处
CHAPTER 4
典型案例分析
案例一：不规范采集导致的检测误差
总结词
不规范采集是导致实验误差的常见原因之一。
详细描述
采集标本时，不规范的操作可能导致标本受到污染、交叉感染或信息错误，从而影响实验结果的准确性。例如， 采集血液标本时，如果采血器消毒不彻底或采血部位消毒不正确，可能导致细菌或病毒的交叉感染，使检测结果 出现误差。此外，标本采集的时间、部位和量不正确也可能影响实验结果。
理。
特殊标本的处理方法
01
02
03
04
血液标本
采集静脉血液，使用真空采血 管进行保存，避免溶血及凝血
。
尿液标本
使用清洁容器采集尿液，避免 污染及掺杂其他物质。
生殖道分泌物标本
使用棉拭子采集生殖道分泌物 ，保存在专门的保存液中。
组织标本
采集病变组织，进行病理切片 、染色等处理，供显微镜下观
样品的采集运输保存【共28张PPT】
标本采集
4.血液
2）采样操作：通常采血部位为肘静脉，将止血带 扎在静脉取血部位的上方，采用商品化的一次性注 射器或真空采血管采血；
拿下止血带，用无菌棉压迫止血；
标本采集
三、采集方法
5.鼻咽抽吸物
用商品化的粘液抽吸器从双侧鼻孔中抽吸获得，导管在鼻 尖到外耳道中间的位置连接，不停的转动导管，采用负压
标本编号:无锡识别号+县区识别号+医疗机构识别号+标本序号
采集份数
具有PCR检测资质的县（市）级及以上（含二级、三级）医疗机构作为省级
监测点： ➢ PCR检测：对流感样病例详细询问流行病学史，开展相关医学检查、检验，
在抗病毒治疗前进行进行甲型流感病毒通用引物PCR检测，剩余核酸样本约 45ul于-20℃冻存 ➢ 标本采集：若胶体金检测结果阳性，在抗病毒治疗前再采集1份咽拭子（ 或呼吸道分泌物）3管。同时用5ml促凝管采集静脉血1份（5ml）标记编号 ，并填写阳性标本登记表。 ➢ 监测工作开展第一周同时采集咽拭子和血标本，第二周开始只采集咽拭子，血标本 可以不采。标本编号:无锡识别号+县区识别号+医疗机构识别号+标本序号。
将拭子头插入病毒采样管中。
监测工作开展第一周同时采集咽 和血标本，第二周开始只采集咽拭子，血标 拭子 用商品化的粘液抽吸器从双侧鼻孔中抽吸获得，导管在鼻尖到外耳道中间的位置连接，不停的转动导管，采用负压100mmHg持续15秒的间歇性抽吸后慢慢退出。
本可以不采。 于超声雾化器雾化杯中加入4％的NaCl溶液40ml，吸入高渗盐溶液15～25min，嘱病人漱口，用力咳出深部痰，收集入无菌采集容器中送检。
由临床医生按相应操作规程，采集标本置 入无菌采集容器中，标本量应≥5 ml，立即送检， 但必须注意采集标本时尽可能避免咽喉部正常菌群 的污染。
完整微生物标本的正确采集运送ppt课件
05 微生物标本采集的常见问 题及解决方案
采集方法不当导致的问题
采集量不足
采集的微生物标本量过 少，可能导致检测结果
不准确或无法检测。
采集部位不准确
采集的部位与感染病灶 不符，导致检测结果不
准确。
采集时机不当
在感染病灶未形成或已 消退时采集，可能导致
检测结果为阴性。
采集工具污染
采集工具未经过严格消毒 或污染，可能导致交叉感 染或检测结果不准确。
防止污染
在保存和运输过程中要防 止标本受到污染，确保其 无菌性。
03 微生物标本的运送
运送工具的选择
密封容器
冷藏设备
选择密封性好的容器，以防止微生物 泄漏和交叉污染。
如果需要冷藏，应使用适当的冷藏设 备，以确保微生物活性。
防漏容器
使用防漏容器，以避免在运送过程中 发生泄漏。
运送过程中的温度控制
完整微生物标本的正确采集运送 ppt课件
目录
• 引言 • 微生物标本采集的方法和步骤 • 微生物标本的运送 • 微生物标本的质量保证 • 微生物标本采集的常见问题及解决方案 • 结论
01 引言
Байду номын сангаас 目的和背景
微生物标本采集是诊断和治疗感染性 疾病的关键步骤，正确的采集和运送 方法对于确保实验室检测结果的准确 性和可靠性至关重要。
运送过程中出现的问题
运送时间过长
微生物标本在运送过程中停留时 间过长，可能导致微生物死亡或
繁殖，影响检测结果。
温度控制不当
微生物标本需要在一定的温度条件 下保存和运送，温度过高或过低都 可能影响检测结果。
保护措施不当
微生物标本在运送过程中未得到适 当的保护，可能导致标本受到污染 或损坏。
临床检验标本采集运送及保存-课件-PPT
标本检查的意义
标本采集检查的意义 协助明确疾病诊断 制定治疗措施 推测病程进展 观察病情
标本采集原则
遵照医嘱 充分准备 严格查对 正确采集 及时送检
标本采集原则
遵照医嘱 根据医嘱采集标本
标本采集原则
采集前做好充分准备 医护人员准备 病人准备 物品准备 明确检查项目、检验目的、选择采集方
由于体位的因素，在确立参考值时，应 考虑门诊和住院病人可能存在的结果差 异，故采集标本时要注意保持正确的体 位和保持体位的一致性。
病人准备
5．时间 时间对人的影响可大致分为线性和周期
性两种 线性时间影响：最主要的是年龄 周期性时间影响：最主要的是季节循环、
月经周期和昼夜变化。
病人准备
病人准备还应考虑病人的生物钟规律， 特别是激素水平分析，如女性生殖激素 与月经周期密切相关；胆固醇则在经前 期最高，排卵时最低；纤维蛋白原在经 前期最高，血浆蛋白则在排卵时减少。 生长激素于入睡后会出现短时高峰。胆 红素、血清铁以清晨最高；血浆蛋白在 夜间降低；血Ca往往在中午出现最低值。 故采血时间应在相同时间进行。
病人准备
喝带咖啡的饮料，可引起淀粉酶(AMY)、 AST谷丙转氨酶(ALT)、碱性磷酸酶 (ALP)、血糖（GLU）、儿茶酚氨等升高。
但空腹时间过长，会使血糖（GLU）和 蛋白质降低，而使胆红素升高。
病人准备
(2) 高脂餐后2～4h采血，多数人ALP含量增高， 主要来自肠源性同工酶，且与血型有密切关系， O型或B型兼为Le+分泌型者增高更为明显。
前言
古人云：“差若毫厘，谬以千里”，高 质量的标本是高质量检验的第一步，没 有高质量的标本，再先进、精密的仪器 也得不出准确的结果，相反，医护人员 往往出于对先进仪器的信赖而忽视标本 质量引起的结果偏差，盲目相信检验结 果，影响诊断、治疗及疗效判断。
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– 24小时内能检测的标本可置于4℃保存 – 24小时内无法检测的标本则应置于-70℃或以下保存
如无－70℃保存条件，则于－20℃冰箱暂存
血清可在4℃存放3天、-20℃以下长期保存。送检，和检验科室办 理交接手续
病原学检测标本
– 二级以上（含二级医院）：由诊断医院自行采样，并携带样 品送检单到市CDC传地所呼吸道实验室。
血 无菌操作采集死者血液5ml，其2.5ml置无菌 玻璃管中，使血球沉淀，吸出血清
分泌物或渗出物： 用灭菌棉棒擦拭局部，采集分泌物后，装入放 有病毒保存液的试管中
胸水 在B超定位下进行胸腔穿刺，抽取胸水5ml， 置于无菌的塑料螺口管中
肺组织活检标本 在超声或X线定位下，经皮穿刺取肺组织活检 标本，置于含3ml采样液的塑料螺口管中
下呼吸道标本：呼吸道抽取物、支气管灌洗液、肺组织活 检标本
尽早采集上述标本，发病一至两周也可采集
血清标本
第一份血清应尽早（最好在发病后7天内）采集 第二份血清应在发病后第3～4周采集 在病愈出院或死亡前采集血标本1份
粪便标本
发病后尽可能早的采集粪便标本
– 病人死亡后应尽早进行解剖，在严格按照生物安全防护的条 件下，进行尸检
– 一级医院：由辖区县CDC到现场采样，并携带专家组“会诊 意见书”到市CDC传地所呼吸道实验室。
采样时间的把握 多种样本，多个时间点采集 医疗机构与疾控机构配合，及时送样
标本采集、保存与送检
采集时间----何时采 采集种类----采什么 采集方法----怎么采
单个不明原因肺炎病例
– 当区县级卫生行政部门组织的专家组会诊后，仍不 能排除SARS或人禽流感时
聚集性不明原因肺炎病例
– 发现后立即采样送检
呼吸道标本
上呼吸道标本：咽拭子、鼻拭子、鼻咽抽取物、咽漱液、 深咳痰液
– 主要采集肺、气管、肝、肾、脾、心脏、脑、胃、肠、淋巴 结等可疑组织标本
– 同时采集血标本、分泌物或渗出物
– 没有条件进行尸体解剖的，可采集呼吸道灌洗液或经皮穿刺 采集肺组织标本
– 胸水 – 肺活检标本 – 枸橼酸盐抗凝血
用2根聚丙烯纤维头的塑 料杆拭子同时擦拭双侧 咽扁桃体及咽后壁，将 拭子头浸入含3ml采样 液的螺口管中，尾部弃 去，旋紧管盖。
用10ml不含抗菌素的采样 液漱口。漱口时让患者头部 微后仰，发“噢”声，让洗 液在咽部转动。然后将咽漱 液收集于50ml无菌的螺口 塑料管中。无条件的可用平 皿或烧杯收集咽漱液并转入 10ml螺口采样管中。
要求病人深咳后，将咳出的痰液收集于50ml 含3ml采样液的螺口塑料管中
将收集器头部从鼻孔或气管插口处插入气管 （约30cm深处），注入5ml生理盐水，接通 负压，旋转收集器头部并缓慢退出。收集抽取 的粘液，并用采样液涮洗收集器1次（亦可用 小孩导尿管接在50ml注射器上来替代收集）
用真空负压采血管采集血液标本5ml，室温静 置30分钟，1500～2000rpm离心10分钟，收 集血清于2ml无菌螺口塑料管中
采集5～10g粪便或采集肛拭子标本置于含3～ 10ml无菌采样液的螺口管中，严格密封
可疑组织标本
每种组织应多部位取材，每一采集部位分别使用不同 消毒器械，以防交叉污染；各部位应取20～50g，淋 巴结取2个。各部位标本，一半用10％福尔马林固定， 通常所取组织块固定于不少于5～10倍以上体积的10 ％福尔马林溶液中；另一半直接放－70℃或液氮罐中 保存
pH 7.0～7.6的Hanks液或MEM/DMEM液 或生理盐水。在采样液中需加入抗菌素，可用 青霉素（终浓度为100U/ml）、庆大霉素 （终浓度为1mg/ml）和抗真菌药物（终浓度 为2µg/ml）
医院内检测的标本可按本院规章对样品进行留样及消 毒处理
用于病毒分离和核酸检测的标本应尽快送样进行检测
大家有疑问的，可以询问和交流
可以互相讨论下，但要小声点
正确
错误
将1根聚丙烯纤维头的塑 料杆拭子轻轻插入鼻道 内鼻腭处，停留片刻后 缓慢转动退出。取另一 根聚丙烯纤维头的塑料 杆拭子以同样的方法采 集另一侧鼻孔。上述两 根拭子浸入同一含3ml 采样液的管中，尾部弃 去，旋紧管盖。
用与负压泵相连的收集器从鼻 咽部抽取粘液或从气管抽取呼 吸道分泌物。将收集器头部插 入鼻腔或气管，接通负压，旋 转收集器头部并缓慢退出，收 集抽取的粘液，并用3ml采样 液冲洗收集器1次（亦可用小 孩导尿管接在50ml注射器上来 替代收集器）。
如无－70℃保存条件，则于－20℃冰箱暂存
血清可在4℃存放3天、-20℃以下长期保存。送检，和检验科室办 理交接手续
病原学检测标本
– 二级以上（含二级医院）：由诊断医院自行采样，并携带样 品送检单到市CDC传地所呼吸道实验室。
血 无菌操作采集死者血液5ml，其2.5ml置无菌 玻璃管中，使血球沉淀，吸出血清
分泌物或渗出物： 用灭菌棉棒擦拭局部，采集分泌物后，装入放 有病毒保存液的试管中
胸水 在B超定位下进行胸腔穿刺，抽取胸水5ml， 置于无菌的塑料螺口管中
肺组织活检标本 在超声或X线定位下，经皮穿刺取肺组织活检 标本，置于含3ml采样液的塑料螺口管中
下呼吸道标本：呼吸道抽取物、支气管灌洗液、肺组织活 检标本
尽早采集上述标本，发病一至两周也可采集
血清标本
第一份血清应尽早（最好在发病后7天内）采集 第二份血清应在发病后第3～4周采集 在病愈出院或死亡前采集血标本1份
粪便标本
发病后尽可能早的采集粪便标本
– 病人死亡后应尽早进行解剖，在严格按照生物安全防护的条 件下，进行尸检
– 一级医院：由辖区县CDC到现场采样，并携带专家组“会诊 意见书”到市CDC传地所呼吸道实验室。
采样时间的把握 多种样本，多个时间点采集 医疗机构与疾控机构配合，及时送样
标本采集、保存与送检
采集时间----何时采 采集种类----采什么 采集方法----怎么采
单个不明原因肺炎病例
– 当区县级卫生行政部门组织的专家组会诊后，仍不 能排除SARS或人禽流感时
聚集性不明原因肺炎病例
– 发现后立即采样送检
呼吸道标本
上呼吸道标本：咽拭子、鼻拭子、鼻咽抽取物、咽漱液、 深咳痰液
– 主要采集肺、气管、肝、肾、脾、心脏、脑、胃、肠、淋巴 结等可疑组织标本
– 同时采集血标本、分泌物或渗出物
– 没有条件进行尸体解剖的，可采集呼吸道灌洗液或经皮穿刺 采集肺组织标本
– 胸水 – 肺活检标本 – 枸橼酸盐抗凝血
用2根聚丙烯纤维头的塑 料杆拭子同时擦拭双侧 咽扁桃体及咽后壁，将 拭子头浸入含3ml采样 液的螺口管中，尾部弃 去，旋紧管盖。
用10ml不含抗菌素的采样 液漱口。漱口时让患者头部 微后仰，发“噢”声，让洗 液在咽部转动。然后将咽漱 液收集于50ml无菌的螺口 塑料管中。无条件的可用平 皿或烧杯收集咽漱液并转入 10ml螺口采样管中。
要求病人深咳后，将咳出的痰液收集于50ml 含3ml采样液的螺口塑料管中
将收集器头部从鼻孔或气管插口处插入气管 （约30cm深处），注入5ml生理盐水，接通 负压，旋转收集器头部并缓慢退出。收集抽取 的粘液，并用采样液涮洗收集器1次（亦可用 小孩导尿管接在50ml注射器上来替代收集）
用真空负压采血管采集血液标本5ml，室温静 置30分钟，1500～2000rpm离心10分钟，收 集血清于2ml无菌螺口塑料管中
采集5～10g粪便或采集肛拭子标本置于含3～ 10ml无菌采样液的螺口管中，严格密封
可疑组织标本
每种组织应多部位取材，每一采集部位分别使用不同 消毒器械，以防交叉污染；各部位应取20～50g，淋 巴结取2个。各部位标本，一半用10％福尔马林固定， 通常所取组织块固定于不少于5～10倍以上体积的10 ％福尔马林溶液中；另一半直接放－70℃或液氮罐中 保存
pH 7.0～7.6的Hanks液或MEM/DMEM液 或生理盐水。在采样液中需加入抗菌素，可用 青霉素（终浓度为100U/ml）、庆大霉素 （终浓度为1mg/ml）和抗真菌药物（终浓度 为2µg/ml）
医院内检测的标本可按本院规章对样品进行留样及消 毒处理
用于病毒分离和核酸检测的标本应尽快送样进行检测
大家有疑问的，可以询问和交流
可以互相讨论下，但要小声点
正确
错误
将1根聚丙烯纤维头的塑 料杆拭子轻轻插入鼻道 内鼻腭处，停留片刻后 缓慢转动退出。取另一 根聚丙烯纤维头的塑料 杆拭子以同样的方法采 集另一侧鼻孔。上述两 根拭子浸入同一含3ml 采样液的管中，尾部弃 去，旋紧管盖。
用与负压泵相连的收集器从鼻 咽部抽取粘液或从气管抽取呼 吸道分泌物。将收集器头部插 入鼻腔或气管，接通负压，旋 转收集器头部并缓慢退出，收 集抽取的粘液，并用3ml采样 液冲洗收集器1次（亦可用小 孩导尿管接在50ml注射器上来 替代收集器）。