DNS法测定纤维素酶活实验方法总结及优化方案

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纤维素酶酶活测定

纤维素酶酶活测定

纤维素酶活测定方法一、原理纤维素酶能将纤维素降解成纤维二糖和葡萄糖,具有还原性末端的纤维二糖糖和有还原基团的单糖在沸水浴条件下可与DNS试剂发生显色反应。

反应颜色强度与酶解产生的还原糖量成正比,而还原糖量又与反应液中的纤维素酶的活力成正比。

酶活定义纤维素酶活力单位是指55℃、pH5.0的条件下,以每分钟催化羧甲基纤维素钠水解生成1μmol还原糖所需的酶量定义为一个酶活力单位U。

二、实验试剂羧甲基纤维素钠(聚合度1700-2000),内切纤维素酶(苏柯汉)50mmol NaAC-HAC、DNS试剂三、实验仪器容量瓶(1000ml ×2、500 ml×3、100 ml ×4、50ml×4 ml)、移液器、烧杯(500ml×3、50ml×3)、具塞试管、电热套、水浴锅、分光光度计、pH计、电子天平四、标准曲线的绘制五、酶活测定由于苏柯汉给定的pH范围为4.8-5.2,故选用pH 5.0的50mmol NaAC-HAC缓冲液测定纤维素酶酶活。

1、样品的制备CMC-Na溶液的制备:用pH 5.0的50mmol NaAC-HAC缓冲液配置0.5%的CMC-Na (羧甲基纤维素钠)溶液,准确称量CMC-Na 0.05g,精确至0.001g,溶于蒸馏水中,45℃水浴锅中搅拌溶解,冷却后定容至100ml。

纤维素酶液的制备:准确称取纤维素酶,精确到0.001g。

用50mmol NaAC-HAC pH5.0的缓冲液配置成适当的浓度10000倍,保证吸光度在0.2-0.6之间。

2、DNS法测酶活:取1.8ml 0.5% CMC-Na的溶液于25ml 具塞刻度试管中,55℃预热10min左右,加入0.2ml 适当稀释的酶液,于55℃水浴锅中保温30min后,然后加2ml DNS,混匀,沸水浴5min,冷却至室温,定容到25ml。

混匀测OD540nm。

空白对照用酶活的酶液作对照。

实训三、纤维素酶活力的测定与稀释浓度的测定(完)

实训三、纤维素酶活力的测定与稀释浓度的测定(完)

实训三、纤维素酶活力与最佳稀释浓度的测定一、实训目的1、了解纤维素酶活力的测定原理2、掌握纤维素酶活力的测定方法3、优化纤维素酶的稀释浓度,为后续实训创造条件二、实训原理纤维素酶在一定的温度和PH条件下,能够将纤维素底物(羧甲基纤维素钠)水解,释放出还原糖。

在碱性、煮沸条件下,具有还原性末端的寡糖和有还原基团的单糖可以与DNS试剂发生显色反应,反应液颜色的强度(吸光度OD值)与酶解产生的还原糖量成正比关系,而还原糖的生成量又与反应液中纤维素酶的活力成正比。

因此,可以通过分光比色测定反应液颜色的强度,可以计算反应液中纤维素酶的活力。

三、实训方法1、纤维素酶酶活的定义(根据中华人民共和国轻工行业标准QB2583-2003和中华人民共和国农业行业标准NY/T912-2004):1g固体酶(或者1ml液体酶),在50℃(预设),PH4.8(预设)的条件下,1h水解羧甲基纤维素钠底物,产生相当于1mg葡萄糖的还原糖量,为1个酶活力单位,以U/g(或者U/ml)表示。

简写成CMCA-DNS(羧甲基纤维素酶活力)。

2、还原糖法测定纤维素酶活力2.1 试剂的配制(1)0.05mol/L PH4.8的柠檬酸钠缓冲液:称取一水柠檬酸钠 4.83g,溶于约750mL水中,在搅拌的情况下,加入柠檬酸三钠7.94g,用水定容到1000mL,调节PH 到(4.8+0.05)备用。

(2) CMC-Na溶液:称取2gCMC-Na,精确至1mg,缓缓加入相应的柠檬酸钠缓冲液约200mL,并加热到80~90℃,边加热边磁力搅拌,直到全部溶解(不要沸腾!),冷却后用相应的缓冲液稀释到300mL,用2mol/L盐酸或氢氧化钠调节溶液PH到(4.8+0.05),最后定容倒300 mL,搅拌均匀,贮存到冰箱中备用。

(3)DNS溶液:具体配制见实训一。

2.2 样品的测定2.2.1待测酶液的制备称取固体酶样1g,精确到0.1mg(或吸取1.0mL 酶液,精确到0.01mL),用水溶解,准确稀释定容成100×,500×,1000×,2000×,从中选取一个合适的稀释度,最终使试样液与空白液的吸光度之差恰好落在0.33~0.35范围内),混匀放置10min,待测。

DNS法测定纤维素酶活实验方法总结及优化方案

DNS法测定纤维素酶活实验方法总结及优化方案

DNS法测定酶活实验方法总结及优化方案
目前纤维素酶没有统一的测定方法,诸多因素影响纤维素酶酶活测定大小的比较。

选择适宜的酶活测定条件,提高测定结果的准确性,可根据有关资料中采用的测定条件,以及通过控制变量法对酶活力测定中的主要影响因素进行研究。

目前实验室采用测酶活方法:
1、葡萄糖标准曲线制作:
530nm比色。

2、酶活测定方法:
考虑到酶液中培养基成分会对吸光值造成一定的影响,所以空白管0还是采用先将酶高温灭活的方法,后面保持实验条件一致,显色时间与标准曲线的显色时间保持一致.
单位酶活的计算:
n:稀释倍数;
K:曲线斜率;
T:反应时间,min;
1000:mg换算成ug.
以下是近期所做的实验结果:
葡萄糖标准曲线
两种产纤维素酶细菌不同测试结果
测定结果
实验结论:从以上几种对酶液的处理方法来看,183的酶活要比R2高,两种菌都是以胞外酶为主。

目前尚没找到有关于加缓冲溶液并且超声破碎的文献,所得测量结果与前面三种方法均不符,这一步需另外探索。

根据《纤维素酶活力测定条件研究》(夏服宝等,《饲料工业》2005年第26卷第16期)和《影响纤维素酶活力测定的几个因素》(刘妙莲等,中国食品发酵
工业研究所)这两篇文献,实验室可先从底物浓度、温度、DNS用量、显色时间以及对菌体的超声破碎时间这几方面进行探索,进而优化实验方法.。

纤维素酶活力的测定

纤维素酶活力的测定

实验二十纤维素酶活力的测定一、目的学习和掌握3,5-二硝基水杨酸(DNS)法测定纤维素酶活力的原理和方法,了解纤维素酶的作用特性。

二、原理纤维素酶是一种多组分酶,包括C 酶、C 酶和 |?-葡萄糖苷酶三种主要组分。

其中C1 X 1酶的作用是将天然纤维素水解成无定形纤维素,C 酶的作用是将无定形纤维素继续水解成X纤维寡糖,|?-葡萄糖苷酶的作用是将纤维寡糖水解成葡萄糖。

纤维素酶水解纤维素产生的纤维二糖、葡萄糖等还原糖能将碱性条件下的3,5-二硝基水杨酸(DNS)还原,生成棕红色的氨基化合物,在540nm波长处有最大光吸收,在一定范围内还原糖的量与反应液的颜色强度呈比例关系,利用比色法测定其还原糖生成的量就可测定纤维素酶的活力。

三、实验材料、主要仪器和试剂1.实验材料(1)纤维素酶制剂 500mg(2)新华定量滤纸 50mg / 份 4(3)脱脂棉花 50mg / 份 4(4)羧甲基纤维素钠(CMC) 510mg(5)水杨酸苷 500mg2.主要仪器(1)722 型或其他型号的可见分光光度计(2)恒温水浴 2 台(3)沸水浴锅(4)电炉子(5)剪刀(6)万分之一分析天平(7)恒温干燥箱(8)冰箱(9)试管架(10)胶头滴管(11)具塞刻度试管 20mL24(12)移液管或加液器 0.5 mL3;2mL7(13)容量瓶 100 mL6;1000 mL3(14)量筒 50 mL2;100 mL1;500 mL1(15)烧杯 100 mL6;500mL3;1 000 mL13.试剂(均为分析纯)(1)浓度为 1mg/mL的葡萄糖标准液将葡萄糖在恒温干燥箱中105℃下干燥至恒重,准确称取100mg 于100mL小烧杯中,用少量蒸馏水溶解后,移入100mL容量瓶中用蒸馏水定容至 100mL,充分混匀。

4℃冰箱中保存(可用 12~15 天)。

(2)3,5-二硝基水杨酸(DNS)溶液准确称取DNS 6.3g于500mL大烧杯中,用少量蒸馏水溶解后,加入2mol/L NaOH 溶液 262mL,再加到 500mL含有 185g酒石酸钾钠(C H O KNa ! 4H O,MW=282.22)的热4 4 6 2水溶液中,再加5g结晶酚(C H OH,MW=94.11)和5g无水亚硫酸钠(Na SO ,MW=126.04),6 5 2 3搅拌溶解,冷却后移入1 000mL容量瓶中用蒸馏水定容至1 000mL,充分混匀。

DNS法测定纤维素酶活实验方法总结及优化方案

DNS法测定纤维素酶活实验方法总结及优化方案

DNS法测定酶活实验方法总结及优化方案
目前纤维素酶没有统一的测定方法,诸多因素影响纤维素酶酶活测定大小的比较。

选择适宜的酶活测定条件,提高测定结果的准确性,可根据有关资料中采用的测定条件,以及通过控制变量法对酶活力测定中的主要影响因素进行研究。

目前实验室采用测酶活方法:
1、葡萄糖标准曲线制作:
530nm比色。

2、酶活测定方法:
考虑到酶液中培养基成分会对吸光值造成一定的影响,所以空白管0还是采用先将酶高温灭活的方法,后面保持实验条件一致,显色时间与标准曲线的显色时间保持一致。

单位酶活的计算:T n k OD ml U 1000
1
)/(⨯⨯⨯=酶活力 n :稀释倍数; K :曲线斜率; T :反应时间,min ; 1000:mg 换算成ug.
以下是近期所做的实验结果:
葡萄糖标准曲线
两种产纤维素酶细菌不同测试结果
测定结果
实验结论:从以上几种对酶液的处理方法来看,183的酶活要比R2高,两种菌都是以胞外酶为主。

目前尚没找到有关于加缓冲溶液并且超声破碎的文献,所得测量结果与前面三种方法均不符,这一步需另外探索。

根据《纤维素酶活力测定条件研究》(夏服宝等,《饲料工业》2005年第26卷第16期)和《影响纤维素酶活力测定的几个因素》(刘妙莲等,中国食品发酵工业研究所)这两篇文献,实验室可先从底物浓度、温度、DNS用量、显色时间以及对菌体的超声破碎时间这几方面进行探索,进而优化实验方法。

纤维素酶活力的测定

纤维素酶活力的测定

β-糖苷酶活力的测定(CMC)一目的:掌握CMC酶活力测定纤维素酶的原理及测定方法。

原理:纤维素酶能从底物羧甲基纤维素钠(CMC-Na)中分解出还原糖,还原糖又同3,5-而硝基水杨酸发生反应,产生一种黄橙混合色,用分光光度计可测定其色度,计算酶活力。

二试剂:1.3,5-而硝基水杨酸显色剂(又称DNS试剂):称取10g3,5-而硝基水杨酸,溶于蒸馏水中,加入20g分析纯NaOH,200g酒石酸钾钠,加税500ml,升温溶解后,加入重蒸酚2g,无水亚硫酸钠0.5g,加热搅拌,待全部溶解后,定容至1000ml。

贮存于棕色瓶中,室温保存,放置一周后使用。

2.0.1mol/L pH4.5醋酸-醋酸钠缓冲液:称取结晶醋酸钠(CH3COONa.3 H2O)13.61g,醋酸(CH3COOH)6.00g,用蒸馏水溶解,并定容至1000 ml,配好后用pH计矫正。

3.1mg/ml葡萄糖标准溶液:准确称取100mg分析纯葡萄糖(预先在70℃、600nm汞柱下干燥5h至恒重),用少量蒸馏水溶解并定容至100ml,冰箱中保存备用。

4.代测酶液:称取酶粉1.0g(或吸取酶液1.00ml),先用少量的0.05mol/L pH4.5醋酸-醋酸钠缓冲液溶解,并用玻璃棒捣研,然后将上清液小心倾入适当的容量瓶中,沉渣部分再加上述缓冲液溶解,如此反复捣研3-4次,最后全部移入容量瓶中,用缓冲液定容至刻度,40℃水浴锅中浸提1h,用四层纱布或脱脂棉过滤,滤液供测定用。

5.底物:0.5%羧甲基纤维素钠(CMC-Na)溶液,配制方法为城区0.5000g羧甲基纤维素钠(Sigma公司生产),准确至0.001g,用上述缓冲液溶解定容至100ml,冰箱中保存,有效期3d。

三仪器:分析天平、变温电炉、恒温水浴锅、分光光度计、秒表等。

四方法步骤:1.标准曲线的绘制分别吸取0.2, 0.4, 0.6, 0.8, 1.0, 1.2, 1.4ml的1mg/ml葡萄糖液于7支20ml的比色管中,分别用蒸馏水补充体积至2.oml,各加3,5-而硝基水杨酸1.5ml,在沸水浴中煮沸5min,冷却后分别用蒸馏水定容至20ml,摇匀。

纤维素酶活力的测定实验报告

纤维素酶活力的测定实验报告

生物化学实验报告题目:纤维素酶活力的测定-----3、5—二硝基水杨酸法姓名:余振洋学号:200900140156 系年级:09级生科3班同组者:张刚刚时间:2011/4/22一、【实验目的】学习和掌握3、5—二硝基水杨酸(DNS)法测定纤维素酶活力的原理和方法,了解纤维素酶的作用特性。

二、【试验原理】纤维素酶水解纤维素,产生纤维二糖、葡萄糖等还原糖,能将3、5-二销基水杨酸中销基还原成橙黄色的氨基化合物,在550nm波长处有最大光吸收,在一定范围内还原糖的量与反应液的颜色强度呈比例关系,利用比色法测定其还原糖生成的量就可测定纤维素酶的活力。

酶活力也称为酶活性,是指酶催化一定化学反应的能力。

酶活力的大小可用在一定条件下,酶催化某一化学反应的速度来表示,酶催化反应速度愈大,酶活力愈高,反之活力愈低。

测定酶活力实际就是测定酶促反应的速度。

酶促反应速度可用单位时间内、单位体积中底物的减少量或产物的增加量来表示。

在一般的酶促反应体系中,底物往往是过量的,测定初速度时,底物减少量占总量的极少部分,不易准确检测,而产物则是从无到有,只要测定方法灵敏,就可准确测定。

因此一般以测定产物的增量来表示酶促反应速度较为合适。

实验中定义:1mg酶每分钟水解生成1微克葡萄糖的量定义为1个酶活力单位。

N×OD值对应的葡萄糖量纤维素酶活力单位=——————————————30×LN——酶液的稀释倍数30——糖化所用时间L——反应酶液毫升数三、【试验器材】比色管10支,5ml移液管,移液枪,500ml大烧杯,水浴锅,电炉,搅拌振荡器,722 型或其他型号的可见分光光度计。

四、【实验试剂】1.酶液:将0.05g酶溶解定容至50ml,从中取出1ml再定容至100ml,待测(用PH4.5乙酸—乙酸钠缓冲溶液配制)。

2.0.1mol/L PH4.5的乙酸-乙酸钠缓冲溶液。

3.3、5—二硝基水杨酸显色液:称取10克3、5-二硝基水杨酸,溶入蒸馏水中,加入20克分析纯氢氧化钠,200克酒石酸钾钠,加水500毫升,升温溶解后,加入重蒸酚2克,无水亚硫酸钠0.5克。

酶工程实验报告一(纤维素酶活力测定)

酶工程实验报告一(纤维素酶活力测定)
C 3实验流程:
葡萄糖标准曲线制作 滤纸酶活力(FPA)的测定 羧甲基纤维素(还原糖法)酶活力(CMCA-DNS )测定
D 3酶活定义
D 3.1纤维素酶:在各种酶组分的协同作用下,能降解纤维素,使之变成纤维寡糖、纤维二糖和葡萄糖的酶。
D 3.2滤纸酶活力Filterp apera ctivity (FPA)
A 2.2羧甲基纤维素(还原糖法)酶活力(CMCA-DNS )测定中仪器:自动连续多档分配器、漩涡混合器试管、水浴等仪器同A 2.1
B2试剂和溶液(除非另有说明,在分析中仅使用确认为分析纯的试剂和蒸馏水或去离子水或相当纯度的水。)
B 2.1葡萄糖标准曲线制备:
①葡萄糖标准贮备溶液(10mg/mL):称取于( 103士2)℃下烘千至恒重的无水葡萄糖1g,精确至0.1mg,用水溶解并定容至100mL,
lg固体酶(或1mL液体酶),在(50士0.1)℃,指定pH条件下(酸性纤维素酶pH4.8,中性纤维素酶pH 6.0), lh水解滤纸底物,产生出相当于l mg葡萄糖的还原糖量,为1个酶活力单位,以u/g(或u/mL)表示。
D 3.3羧甲基纤维素酶活力( CMCA)
D 3.3.1还原糖法lg固体酶(或1mL液体酶),在(50士0.1)℃、指定pH条件下(酸性纤维素酶pH4 .8,中性纤维素酶pH 6.0), lh水解羧甲基纤维素钠底物,产生出相当于1 mg葡萄糖的还原糖量,为1个酶活力单位,以u/g(或u/mL)表示。简写为CMCA-DNS。
⑥以空白管(对照液)调仪器零点,在分光光度计波长540nm下,用10mm比色杯,分别测量三支样品管中样液的吸光度,取平均值。通过查标准曲线或用线性回归方程求出还原糖的含量。
D 4.3滤纸酶活力(FPA)的测定步操作流程:如表二所示:

dns法测定纤维素酶活力原理

dns法测定纤维素酶活力原理

dns法测定纤维素酶活力原理纤维素酶,这个名字听起来就像高大上的科学词汇,其实它在咱们的日常生活中可是大有来头。

想想看,咱们的衣服、纸张,甚至一些食品里,都和它有着千丝万缕的联系。

说白了,纤维素酶就是一种能把纤维素这个“大块头”分解成小分子的“超级英雄”。

要不然,这些纤维素可真是“难啃的骨头”,光靠我们自己的牙口可没法啃下去。

所以,这种酶的活力就显得尤为重要了。

现在,咱们来聊聊用DNS法测定纤维素酶活力的原理,听起来有点复杂,其实也并不难,咱们慢慢道来。

DNS法其实就是一种颜色变化法。

嘿,你没听错,颜色变化!你想啊,咱们日常生活中,很多东西都是通过颜色来判断的,比如熟不熟、甜不甜,甚至是“这件衣服合不合适”。

所以,这个方法就是借助颜色变化,来观察纤维素酶的活力到底有多强。

这里的“DNS”指的是一种化学试剂,名字比较长,不想说了,简单点,叫它“变色剂”就行。

这个“变色剂”能跟分解后的纤维素反应,形成一种深红色的物质。

就像调色板上的颜色,越深的颜色,说明分解得越彻底,酶的活力就越强。

这个过程是怎么发生的呢?想象一下,纤维素在水中,纤维素酶像一个勤劳的小工人,正在不停地工作。

它一边“啃”着那些纤维素,一边把分解出来的小分子释放到水里。

好比咱们吃饭,吃了一口又一口,最后把盘子清理得干干净净。

然后,DNS法就是通过测量水里的颜色来评估纤维素酶的工作效率。

颜色越深,酶的活力越高,反之,颜色浅,就说明这位小工人可能今天状态不佳,干得不够。

可能有人会问,咱们为什么要关心纤维素酶的活力呢?这可是个好问题。

因为纤维素酶在许多行业里都有广泛的应用,比如说造纸、酿酒,甚至在生物燃料的生产中,都是不可或缺的“好帮手”。

如果咱们知道它的活力,就能调整工艺,优化生产,省时又省力,简直就是为生产效率加了一把火。

说说这个DNS法的操作步骤。

咱们得准备好一堆材料,包括纤维素、酶、还有那个神秘的“变色剂”。

然后,把纤维素和酶混合,放到特定的温度下,让它们好好亲密接触。

dns法测定酶活力原理

dns法测定酶活力原理

dns法测定酶活力原理以DNS法测定酶活力原理为标题的文章一、引言在生物学和生化实验中,测定酶活力是非常重要的。

酶是一种催化剂,在生物体内起到促进化学反应的作用。

因此,测定酶活力可以帮助我们了解生物体内各种生化反应的速率。

本文将介绍一种常用的测定酶活力的方法——DNS法。

二、DNS法的原理DNS法是一种测定还原糖酶活力的常用方法。

该方法基于还原糖酶催化还原糖的过程,通过测定还原糖产生的产物浓度的变化来间接反映酶活力。

具体来说,DNS法是通过测定还原糖产生的醛基与二硫代巴比妥酸(DNS)发生反应生成的有色产物的吸光度变化来测定酶的活力。

醛基与DNS反应生成的有色产物的吸光度与还原糖的浓度成正比,因此可以通过测定吸光度的变化来间接测定还原糖的浓度,从而推测出酶的活力。

三、实验步骤1. 准备工作:首先,准备好所需的试剂和设备,包括还原糖溶液、酶液、DNS试剂、比色皿、吸光度计等。

2. 制备标准曲线:将一系列不同浓度的还原糖溶液分别加入比色皿中,然后加入适量的DNS试剂,混匀后放置一段时间使反应进行,最后测定吸光度。

根据吸光度与还原糖浓度的对应关系可以得到标准曲线。

3. 测定样品:将待测样品中的酶液加入比色皿中,然后加入适量的还原糖溶液,混匀后放置一段时间使反应进行,最后加入DNS试剂,混匀后立即测定吸光度。

4. 计算结果:根据标准曲线,可以将吸光度值转化为还原糖的浓度。

通过比较不同样品的还原糖浓度,可以推测出酶的活力。

四、注意事项1. 实验过程中要注意操作的严密性,避免试剂污染和外界干扰。

2. 实验过程中要注意控制温度,因为温度对酶的活性有很大影响。

3. 实验中还需要注意样品的处理和测定的准确性,避免误差的产生。

五、优点和应用DNS法测定酶活力具有以下优点:1. 方法简单易行,操作方便。

2. 结果可靠,测定结果与酶活力呈正相关。

3. 适用范围广,可以测定多种不同酶的活力。

由于DNS法测定酶活力的优点,它在生物科学研究中得到了广泛应用。

DNS法测定纤维素酶活实验方法总结及优化方案

DNS法测定纤维素酶活实验方法总结及优化方案

DNS法测定酶活实验方法总结及优化方案
目前纤维素酶没有统一的测定方法,诸多因素影响纤维素酶酶活测定大小的比较。

选择适宜的酶活测定条件,提高测定结果的准确性,可根据有关资料中采用的测定条件,以及通过控制变量法对酶活力测定中的主要影响因素进行研究。

目前实验室采用测酶活方法:
1、葡萄糖标准曲线制作:
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530nm比色。

2、酶活测定方法:
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考虑到酶液中培养基成分会对吸光值造成一定的影响,所以空白管0还是采用先将酶高温灭活的方法,后面保持实验条件一致,显色时间与标准曲线的显色时间保持一致。

单位酶活的计算:T n k OD ml U 1000
1
)/(⨯⨯⨯=酶活力 n :稀释倍数; K :曲线斜率; T :反应时间,min ; 1000:mg 换算成ug.
以下是近期所做的实验结果:
葡萄糖标准曲线
两种产纤维素酶细菌不同测试结果
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测定结果
实验结论:从以上几种对酶液的处理方法来看,183的酶活要比R2高,两种菌都是以胞外酶为主。

目前尚没找到有关于加缓冲溶液并且超声破碎的文献,所得测量结果与前面三种方法均不符,这一步需另外探索。

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根据《纤维素酶活力测定条件研究》(夏服宝等,《饲料工业》2005年第26卷第16期)和《影响纤维素酶活力测定的几个因素》(刘妙莲等,中国食品发酵工业研究所)这两篇文献,实验室可先从底物浓度、温度、DNS用量、显色时间以及对菌体的超声破碎时间这几方面进行探索,进而优化实验方法。

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纤维素酶活力的测定实验报告

纤维素酶活力的测定实验报告

纤维素酶活力的测定实验报告实验名称:纤维素酶活力的测定实验目的:1.掌握测定纤维素酶活力的方法;2.了解纤维素酶的作用机制;3.探究不同条件对纤维素酶活力的影响。

实验原理:纤维素是植物细胞壁的主要组成部分之一,其主要成分是纤维素聚合物。

纤维素酶是一种能够水解纤维素的酶,通过降解纤维素将其转化为可利用的单糖。

纤维素酶活力可以通过测定其在特定条件下降解纤维素的速度来评估。

实验步骤:1.准备纤维素酶的测定液:将一定浓度的纤维素酶和适量的底物溶液混合。

2.将测定液分装到各个试管中,同时设置对照组。

3.将各个试管放置在恒温水浴中,控制温度为37℃。

4.在一定的时间间隔内,取出各个试管,加入一定量的酶停止液,停止反应。

5.将反应液和纤维素酶残余液通过离心仪离心,分离清除残余纤维素。

6. 取出上清液,加入Fehling试剂,进行加热反应。

7. 记录Fehling试剂发生颜色变化的时间,并用同样的方法测定对照组。

8.根据对照组的结果进行归一化处理,计算每个试管中的纤维素酶活力。

实验数据处理与结果分析:将实验数据整理成表格或图表,根据不同条件下的纤维素酶活力进行比较分析。

探究不同因素对纤维素酶活力的影响,如温度、pH值、底物浓度等。

分析结果可以得出,当温度和pH值处于一定范围内时,纤维素酶的活力最高。

底物浓度对纤维素酶活力也有一定影响,但超过一定浓度时,酶的反应速率将达到饱和状态。

实验结论:通过测定纤维素酶在不同条件下的活力1.温度和pH值对纤维素酶活力有显著影响,适宜的温度和pH值可以提高纤维素酶的活力。

2.底物浓度对纤维素酶活力也有一定影响,但过高浓度会使酶的反应速率达到饱和状态。

3.该实验结果可以对纤维素酶的应用提供参考,有助于优化纤维素酶的工业生产过程。

实验总结:通过本次实验,我们成功测定了纤维素酶的活力,并得出了温度、pH 值和底物浓度对其活力的影响。

实验结果对于纤维素酶的应用具有重要意义,可以为其在生物制造、生物能源等领域的应用提供参考。

纤维素酶活力的测定实验报告

纤维素酶活力的测定实验报告

纤维素酶活力的测定实验报告1.实验目的本实验旨在通过测定纤维素酶的活力,了解其在不同条件下的活性及作用效果,为进一步研究纤维素酶的应用提供实验依据。

2.实验原理纤维素酶是一种能够分解纤维素为可溶性糖的酶,其活性高低直接影响着纤维素分解的效果。

本实验采用DNS法测定纤维素酶活力,该方法具有操作简便、准确性高等优点。

具体原理如下:在一定条件下,纤维素酶与底物反应产生可溶性糖,其含量可用DNS试剂进行显色反应,根据吸光度值计算可溶性糖的含量,进而求得纤维素酶活力。

3.实验步骤(1)实验准备:准备5mmol/LCMC-Na溶液、10mg/mLDNS溶液、100mmol/LNaOH溶液、纤维素酶溶液;取2mLDNS溶液、1mLCMC-Na溶液、1mL 酶液、2mLNaOH溶液,混合后摇匀。

(2)设置对照:取2mLDNS溶液、1mLCMC-Na溶液、2mLNaOH溶液混合后摇匀,作为对照溶液。

(3)反应:将酶液和对照液分别加入两支试管中,于50℃水浴中恒温20分钟。

(4)显色:取出试管,分别加入1mLDNS溶液,摇匀后再次置于50℃水浴中恒温20分钟。

(5)比色:取出试管,冷却至室温,分别以空白试剂为参比,于540nm波长处测定各管吸光度值。

4.实验结果根据实验数据可知,纤维素酶活力为20.33U/mL,对照液吸光度值为0.65。

5.实验分析通过实验结果可知,本实验条件下得到的纤维素酶活力为20.33U/mL,与文献报道值相符。

这说明本实验所选条件较为适宜,能够反映纤维素酶的实际活性水平。

同时,实验过程中采用了DNS法测定可溶性糖含量,该方法具有较高的准确性,因此实验结果可靠。

6.实验结论本实验通过DNS法测定纤维素酶活力,得到了较为准确的实验结果。

这说明本实验所选条件和方法均较为适宜,能够反映纤维素酶的实际活性水平。

同时,本实验也为进一步研究纤维素酶的应用提供了实验依据。

在实际应用中,可根据具体需求调整实验条件和方法,以获得更为准确的实验结果。

实验七 DNS法测定纤维素酶活力

实验七  DNS法测定纤维素酶活力

实验七DNS法测定纤维素酶活力
一、试剂耗材
实验共分为6组,在每组的实验台上需要配置以下试剂和耗材:
25mL比色管(容量瓶或离心管也可)10支;试管架1个;50mL容量瓶;移液枪(移液管)1000μL 1把;5000μL1把,对应枪头若干;DNS 溶液100mL;1mg/mL葡萄糖标准溶液100mL;0.5%羧甲基纤维素钠水溶液50mL,滴管数支,烧杯100mL2个。

公用仪器设备:电子天平,分光光度计(2台以上),恒温水浴锅
二、需要配置的溶液
1.DNS溶液:称取10g 3,5-二硝基水杨酸溶于蒸馏水中,加入20g氢氧化钠,200g酒石酸钾钠和500mL水,加热溶解后再加入重蒸酚2g、无水亚硫酸钠0.5g,待全部溶解后冷却,定容至1000mL,储存于棕色瓶中,放置一周,用前过滤分装。

2.pH 4.5 0.1mol/L乙酸乙酸钠缓冲液配置:(1000毫升)参考缓冲液配置手册
3.1mg/mL葡萄糖标准溶液:称取1g葡萄糖,用蒸馏水溶解,并定容到1000mL.分装
4.0.5%羧甲基纤维素钠溶液:用00.1mol/LpH 4.5的乙酸乙酸钠缓冲液配置。

纤维素酶酶活测定

纤维素酶酶活测定

纤维素酶活测定方法一、原理纤维素酶能将纤维素降解成纤维二糖和葡萄糖,具有还原性末端的纤维二糖糖和有还原基团的单糖在沸水浴条件下可与DNS试剂发生显色反应。

反应颜色强度与酶解产生的还原糖量成正比,而还原糖量又与反应液中的纤维素酶的活力成正比。

酶活定义纤维素酶活力单位是指55℃、pH5.0的条件下,以每分钟催化羧甲基纤维素钠水解生成1μmol还原糖所需的酶量定义为一个酶活力单位U。

二、实验试剂羧甲基纤维素钠(聚合度1700-2000),内切纤维素酶(苏柯汉)50mmol NaAC-HAC、DNS试剂三、实验仪器容量瓶(1000ml ×2、500 ml×3、100 ml ×4、50ml×4 ml)、移液器、烧杯(500ml×3、50ml×3)、具塞试管、电热套、水浴锅、分光光度计、pH计、电子天平四、标准曲线的绘制五、酶活测定由于苏柯汉给定的pH范围为4.8-5.2,故选用pH 5.0的50mmol NaAC-HAC缓冲液测定纤维素酶酶活。

1、样品的制备CMC-Na溶液的制备:用pH 5.0的50mmol NaAC-HAC缓冲液配置0.5%的CMC-Na (羧甲基纤维素钠)溶液,准确称量CMC-Na 0.05g,精确至0.001g,溶于蒸馏水中,45℃水浴锅中搅拌溶解,冷却后定容至100ml。

纤维素酶液的制备:准确称取纤维素酶,精确到0.001g。

用50mmol NaAC-HAC pH5.0的缓冲液配置成适当的浓度10000倍,保证吸光度在0.2-0.6之间。

2、DNS法测酶活:取1.8ml 0.5% CMC-Na的溶液于25ml 具塞刻度试管中,55℃预热10min左右,加入0.2ml 适当稀释的酶液,于55℃水浴锅中保温30min后,然后加2ml DNS,混匀,沸水浴5min,冷却至室温,定容到25ml。

混匀测OD540nm。

空白对照用酶活的酶液作对照。

纤维素酶活力测试探讨

纤维素酶活力测试探讨

活力,并对酶活力测定中的几个主要影响因素进行了研 究。1 实验方法1.1 试验药品、设备纤维素酶(DH一8405, DM一8637,德美化工),DNS试剂,冰醋酸,醋酸钠,
葡萄糖(分析纯),滤纸(定性),羧甲基纤维素酶CMC(试剂 级),纯棉针织半漂布 SPECT0RPH0T0METERVIS一723型分 光光度计(上海精密科学仪器有限公司
可明显看出织物的减量率与内切酶活力关系密切。说明 织物的酶减量率受内切酶活力影响较大。3 结论(1)以滤 纸为底物.用不同稀释度的酶液对酶活力拟合一元线性 回归方程.可看出两
者之间存在较窄的线性关系,在此线性范围内由任一稀 释酶液得到的结果都可以推算得到酶液活力.但各种酶 其线性关系是不同的,在实际中为测试方便也可规定吸 光度的范围.减少酶活力测
试误差。(2)底物不同,活力的测定值也不同.以羧甲基 纤维素为底物测得的CMC酶活值比以滤纸为底物测得的 FPA酶活值高;说明酶对水溶性底物有较高的活力;另外 根据酶食毛效果
看.CMC酶活更接近实际应用效果。
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℃ 恒温水解反应.然后加入显色剂DNS.沸水浴煮沸, 加入蒸馏水,在540 nm测定吸光度值。1.2.2 纤维素酶 应用工艺和效果评定纤维素酶用量为1.5 g/L,NN55
℃ ,调节pH= 4.5,浴比1:10,处理时间45 min,得出 减量率。将酶处理前后的试样在105℃ 烘箱中烘至恒重。 其中减量率=[处理前织物干重一处理后织物干重)
v=0.5023x+853.65, R2==0982。由以上结果可知.稀 释倍数的改变会明显改变酶活力测定的结果。在一定范 围内稀释度大.酶活力结果偏高.稀释度小.结果偏低
.但是稀释度过大.结果也有所降 低:另外.参考各类

纤维素酶测定方法

纤维素酶测定方法

纤维素酶测定方法
1、纤维素酶活的测定采用DNS法,,即首先以葡萄糖的μmoL数为横坐标,OD值为纵坐标,绘制标准曲线。

2、然后取3支带有25 mL刻度的试管,一支管作空白对照,2支管作平行样品管,每支样品管中加1 mL酶溶液,置于50℃水浴锅中预热2 min;再加入4 mL已预热至50℃底物溶液(0.625 g CMC溶于100mL pH4.6的醋酸缓冲液中加热,溶解,混匀)精确反应5 min;
3、然后在3支试管中立即分别加入1 mL 2 mol/ L氢氧化钠溶液和2 mL DNS显色液,摇匀后将支试管放入沸水浴中5 min后立即取出流水冷却,
4、然后在对照管中再加入1 mL酶液,再用蒸馏水定容至25 mL,于490 nm处测OD值。

5、酶活力计算:从标准曲线中查出葡萄糖μmol数,酶活力(U)=葡萄糖量/(5×EW)
其中:5为保温时间(酶与底物作用时间,min); EW为1 mL酶液中含有的样品量(g); U是指在特定条件下,每分钟每克酶粉催化纤维素水解生成的葡萄糖量。

实验七DNS法测定纤维素酶活力

实验七DNS法测定纤维素酶活力

实验七D N S法测定纤
维素酶活力
Document number【SA80SAB-SAA9SYT-SAATC-SA6UT-SA18】
实验七 DNS法测定纤维素酶活力
一、试剂耗材
实验共分为6组,在每组的实验台上需要配置以下试剂和耗材:
25mL比色管(容量瓶或离心管也可)10支;试管架1个;50mL容量瓶;移液枪(移液管)1000μL 1把;5000μL1把,对应枪头若干;DNS 溶液100mL;
1mg/mL葡萄糖标准溶液100mL;%羧甲基纤维素钠水溶液50 mL,滴管数支,烧杯100 mL 2个。

公用仪器设备:电子天平,分光光度计(2台以上),恒温水浴锅
二、需要配置的溶液
溶液:称取10g 3,5-二硝基水杨酸溶于蒸馏水中,加入20g氢氧化钠,200g 酒石酸钾钠和500mL 水,加热溶解后再加入重蒸酚2g、无水亚硫酸钠,待全部溶解后冷却,定容至1000mL,储存于棕色瓶中,放置一周,用前过滤分装。

L乙酸乙酸钠缓冲液配置:(1000毫升)参考缓冲液配置手册
3. 1mg/mL葡萄糖标准溶液:称取1g葡萄糖,用蒸馏水溶解,并定容到1000mL.分装
4. %羧甲基纤维素钠溶液:用L pH 的乙酸乙酸钠缓冲液配置。

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DNS法测定酶活实验方法总结及优化方案
目前纤维素酶没有统一的测定方法,诸多因素影响纤维素酶酶活测定大小的比较。

选择适宜的酶活测定条件,提高测定结果的准确性,可根据有关资料中采用的测定条件,以及通过控制变量法对酶活力测定中的主要影响因素进行研究。

目前实验室采用测酶活方法:
1、葡萄糖标准曲线制作:
530nm比色。

2、酶活测定方法:
考虑到酶液中培养基成分会对吸光值造成一定的影响,所以空白管0还是采用先将酶高温灭活的方法,后面保持实验条件一致,显色时间与标准曲线的显色时间保持一致。

单位酶活的计算:T n k OD ml U 1000
1
)/(⨯⨯⨯=酶活力 n :稀释倍数;
K:曲线斜率;
T:反应时间,min;
1000:mg换算成ug.
以下是近期所做的实验结果:
葡萄糖标准曲线
两种产纤维素酶细菌不同测试结果
测定结果
实验结论:从以上几种对酶液的处理方法来看,183的酶活要比R2高,两种菌都是以胞外酶为主。

目前尚没找到有关于加缓冲溶液并且超声破碎的文献,所得测量结果与前面三种方法均不符,这一步需另外探索。

根据《纤维素酶活力测定条件研究》(夏服宝等,《饲料工业》2005年第26卷第16期)和《影响纤维素酶活力测定的几个因素》(刘妙莲等,中国食品发酵工业研究所)这两篇文献,实验室可先从底物浓度、温度、DNS用量、显色时间以及对菌体的超声破碎时间这几方面进行探索,进而优化实验方法。

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