大肠菌群得计数实验
大肠菌群计数实验报告
大肠菌群计数实验报告
大肠菌群计数实验报告是一种检测方法，用于分析和诊断含有大肠菌群的样本。
大肠菌群通常包括具有相似生物学特性的细菌，例如大肠杆菌（E. coli）、变形杆菌（P. aeruginosa）、溶血性大肠杆菌（S. dysenteriae）、肠球菌（C. perfringens）和致病性大肠杆菌（S. typhimurium）等。
大肠菌群计数实验报告包括使用大肠菌群计数法对样本中大肠菌群进行测定，以及相关报告内容：
1. 报告内容：样本来源，检测时间，报告人员，检测手段，结果判断等。
2. 细菌种类：具体种类及数量。
3. 风险评估：根据测得的细菌数量给出风险评估，具体包括有害细菌的数量、比例及其潜在危害。
4. 临床指导：根据测得的细菌数量和风险评估，给出临床指导，提供疾病预防及治疗的建议。
食品中大肠菌群的测定实验报告
以下是一个示例的食品中大肠菌群测定实验报告的结构，你可以根据实际实验结果和要求进行相应的填写和修改：实验报告标题: 食品中大肠菌群测定实验报告实验目的：在本实验中，我们旨在测定食品样品中的大肠菌群的数量，以评估食品的卫生质量和食品安全性。
实验原理：大肠菌群是一类存在于肠道中的细菌，其存在于食品中可能是由于不良的卫生条件或食品受到污染导致的。
本实验将使用培养基和平板计数法来估算食品样品中大肠菌群的数量。
实验材料：食品样品：[填写食品样品的名称和来源]生理盐水或缓冲液大肠菌群选择性培养基（例如，MAC琼脂培养基）灭菌的培养皿移液器、微量环针或滤纸片烧杯、试管、无菌培养皿微量移液器或移液枪实验步骤：准备样品：称取适量的食品样品，并在无菌条件下将其加入到烧杯或试管中。
样品预处理：向样品中加入一定体积的生理盐水或缓冲液，并使用搅拌或振荡等方法将样品与溶液充分混合均匀。
稀释：从样品中取出适量的稀释液，依次进行稀释，制备一系列浓度逐渐减少的稀释液。
培养基接种：将每种稀释液分别接种于含有大肠菌群选择性培养基的无菌培养皿上。
培养：将接种的培养皿倒置，置于恒温培养箱中，在适当的温度下培养一定时间（通常为24-48小时）。
计数：在培养箱中观察培养皿，记录上面出现的典型大肠菌群菌落的数量。
数据处理：根据所使用的稀释倍数和接种量，计算出每克或每毫升食品样品中的大肠菌群菌落形成单位（CFU）。
实验结果：在本次实验中，我们测定了食品样品中大肠菌群的数量。
结果如下：样品1：大肠菌群数量为X CFU/g (或CFU/mL)。
样品2：大肠菌群数量为X CFU/g (或CFU/mL)。
...结论：根据我们的测定结果，食品样品中的大肠菌群数量符合/不符合相关卫生标准。
结合食品的使用和处理建议，可以评估食品样品的卫生质量和食品安全性。
结果讨论：讨论实验结果，包括与卫生标准的比较、潜在污染原因、可能的改进措施等。
实验总结：总结实验的目的、方法、结果和结论，并提出对未来工作的建议。
大肠杆菌实验结果与分析
2、实验结果与分析2.1、细菌总数检测结果2.1.2、细菌总数的计算与报告根据菌落总数的计算方法：1、若只有一个稀释度平板上的菌落术在适宜计数范围内，计算两个平板菌落数的平均值，再将平均值乘以相应稀释倍数，作为每克（或毫升）中菌落总数结果。
2、若有两个连续稀释度的平均菌落数载适宜计数范围内时，按下式计算：N=∑c/[(n1+0.1n2)d]式中：N—样品中菌落数；∑C—平板（含适宜范围菌落数的平板）菌落数之和；n1—第一个适宜稀释度平板上的菌落数；n2—第二个适宜稀释度平板上的菌落数；d—稀释因子（第一稀释度）为1.75x107；在浓度10—6(g/ml)的时候，大肠杆菌的细菌总数约为1.60x107；在浓度10—7(g/ml)的时候，大肠杆菌的细菌总数约为2.01x107。
分析数据可知，在浓度10—7(g/ml)的时候，细菌总数远大于其他两个梯度，这与常理不符。
那么有可能是实验过程中的错误导致，可能是稀释不够、密封不紧、没有进行无菌操作等因素有关。
2.2、大肠菌群检测结果2.1.1、初发酵各浓度梯度阳性管数统计附：检验原始记录检验原始记录检测记录与结果培养基配制：样品配制：1、 固体样品，无菌称取25g 样品加225ml 生理盐水，均质。
2、 液体样品，需稀释的，吸取25ml 于225生理盐水，混匀。
菌落总数：检验依据：GB/T4789.2-2008大肠杆菌：检验一句GB/T4789.3-2003大肠杆菌：检验一句GB/T4789.3-2003注：“P ”表示阳性结果，“N ”表示阴性结果检验起止时间：2011年09月25日至2011年09月27日检测人:复核人：。
微生物实验10水中大肠菌群数的测定
实验九水中大肠菌群数的测定一、目的要求学习大肠菌群数的检测原理和方法。
二、实验材料1.样品：水样2. 培养基：乳糖胆盐发酵管(单料及双料)，伊红美兰琼脂(EMB)平板，乳糖发酵管。
3. 其他：显微镜，酒精灯，无菌吸管(10m1、1m1)，接种环，载玻片等三、基本原理水中的病原菌多数来源于病人和病畜的粪便。
由于病原菌的数量少，检测过程复杂，因此，直接测它们的存在是非常困难的专业化工作。
由于大肠菌群在粪便中数量大，在体外存活时间与肠道致病菌相近，且检验方法比较简便，因此一般采用测定大肠菌群或大肠杆菌的数量来作为水被粪便污染的标志。
如果水中大肠菌群的菌数超过一定的数量，则说明此水已被粪便污染，并有可能含有病原菌。
大肠菌群的定义是指一群好氧和兼性厌氧、革染氏阴性、无芽孢的杆状细菌，并能在乳糖培养基中，经37℃24~48h培养能产酸产气。
我国规定每升自来水中大肠菌群不得超过3个。
检测大肠菌群的方法有稀释培养法和膜滤法两种，其中稀释培养法是标准分析法，为我国大多数卫生单位和水厂所使用。
它包括初发酵试验、平板分离和复发酵试验三个部分。
四、方法与步骤1.采样：取100ml磨口带塞玻璃瓶，包扎后，干热灭菌备用。
取自来水样时，至少应先放水5min，以冲去龙头口所带的微生物，获得主流管中有代表性的水样。
取样时，用右手握瓶，左手启开瓶塞，用覆盖瓶口的纸托住瓶塞，收集样品后，连同覆盖纸一起将瓶口塞好，并用线绳在原处扎好。
注意手指不得触及瓶口内部。
在静水中取样时，先用右手揭去塞子，瓶口朝下浸入水下约30cm处，然后将瓶子反转过来，待水注满后，取出塞好瓶口。
如果水在流动，瓶口必须迎着水流，以免手上的细菌被水冲进瓶子。
2.水样放置过程中，内含的细菌数目和类型会发生变化，所以要求水样品应于6~10℃贮存，并不超过6h。
3.初发酵试验：吸取待检样品接种于乳糖胆盐发酵管内，10ml接种量采用双料发酵管，而lml及lml以下接种量采用单料管。
大肠菌群平板计数法实验报告
大肠菌群平板计数法实验报告
一、实验目的
本实验旨在通过大肠菌群平板计数法，检测两种不同类型的样品，分
别研究其大肠菌群的数量。
二、实验原理
大肠菌群平板计数法是一种测定复合微生物群落中不同细菌种群数量
的方法，通过在培养基上培养细菌分离特定细菌和其他微生物，然后在培
养基表面形成菌落，把形成的菌落数目统计出来就可以测定某一种细菌的
数量。
三、实验材料
1.无菌培养环：用于现场取样，主要成分是聚丙烯，尺寸为20
cm×40 cm；
2.筛选液：用于本实验的筛选液是根据微生物学原理，采用等量的乳
酸盐，氯化钠和磷酸盐等有机物质制备而成的液体，用于筛选出大肠菌群；
3.抗生素优势培养基：用于本实验，培养基由甘露醇、尿素、抗生素
等制备而成，用于培养出大肠菌群；
4.保存液：用于本实验的液体是根据微生物学原理，采用等量的乳酸盐、氯化钠和磷酸盐等有机物质制备而成，用于保存细菌；
5.透明细菌示踪液：用于本实验，示踪液由甘露醇、尿素、抗生素等
有机物质制备而成，用于追踪细菌的繁殖情况。
四、实验步骤
1.采样：用无菌环把样品和筛选液放在瓶中，搅拌均匀，然后加入适量。
食品中大肠菌群的测定实验报告
食品中大肠菌群的测定实验报告一、实验目的。
本实验旨在测定食品中的大肠菌群数量，以评估食品的卫生安全水平。
二、实验原理。
食品中的大肠菌群是指能在37℃条件下在Lauryl Tryptose Broth培养基中生长产气的革兰氏阴性杆菌的总数。
大肠杆菌是大肠菌群的代表性菌种，因此其数量可以作为食品卫生安全的指标之一。
三、实验步骤。
1. 取样，从不同来源的食品中取样，如肉类、蔬菜、水果、奶制品等。
2. 样品处理，将取样的食品样品进行处理，如洗涤、研磨等，以获得可检测的样品。
3. 菌落计数，将处理后的样品接种在Lauryl Tryptose Broth培养基中，培养一定时间后，进行菌落计数。
4. 数据分析，根据菌落计数结果，计算出食品中的大肠菌群数量。
四、实验结果。
经过实验测定，不同食品样品中的大肠菌群数量有所不同。
其中，肉类制品中的大肠菌群数量较高，蔬菜水果中次之，奶制品中较低。
这表明食品的卫生安全水平存在一定差异。
五、实验结论。
食品中的大肠菌群数量是评估食品卫生安全水平的重要指标之一。
通过本实验的测定，可以初步评估食品的卫生安全状况，为食品生产和消费提供参考依据。
未来可以结合其他指标和方法，进一步完善食品卫生安全评估体系。
六、实验注意事项。
1. 在取样和处理过程中，要注意避免外源污染，以保证实验结果的准确性。
2. 在菌落计数过程中，要严格按照操作规程进行，避免误差的产生。
3. 实验结束后，要及时清洗和消毒实验器材，以确保实验室的卫生安全。
七、参考文献。
1. 《食品微生物学实验指导》，XXX，XXX出版社，200X年。
2. 《食品卫生与安全》，XXX，XXX出版社，200X年。
以上为食品中大肠菌群的测定实验报告内容，谢谢阅读。
大肠菌群检测中平板计数法主要操作要领
大肠菌裙检测是一项非常重要的微生物检测工作，它可以帮助我们了解环境和食品中是否存在大肠菌裙，从而保证人们的健康安全。
在大肠菌裙检测中，平板计数法是一种常用的检测方法。
下面将介绍大肠菌裙检测中平板计数法的主要操作要领。
1.准备工作在进行大肠菌裙检测之前，需要准备相应的实验器材和培养基。
实验器材包括平板计数仪、移液器、无菌培养皿等。
培养基一般选择大肠埃希氏菌（EC）培养基。
2.样品处理将待测样品取适量放入无菌容器中，进行适当的稀释。
这一步要确保样品的稀释倍数适中，以保证后续的计数结果准确。
3.接种和培养取一定量的处理过的样品，在无菌工作台上均匀涂抹于含有适量培养基的培养皿上，然后进行培养。
培养条件一般为37摄氏度，培养时间为24小时。
培养后会形成菌落，这些菌落代表了原始样品中的细菌数量。
4.计数和记录在培养后，利用平板计数仪对菌落进行计数。
计数的时候需要注意避免重复计数同一菌落，保证计数准确。
需要记录计数结果，包括菌落数量和相应的单位。
5.结果分析根据计数结果，可以对原始样品中的大肠菌裙数量进行估算。
可以通过对对照组和样品组的比较来判断样品中大肠菌裙的数量是否合格。
大肠菌裙检测中平板计数法的主要操作要领就是以上几点。
通过严格按照这些要领进行操作，可以确保检测结果的准确性和可靠性。
在进行操作过程中，还需要遵守无菌操作规范，确保实验过程中不受外界污染。
希望大家在进行大肠菌裙检测时能够严格按照操作要领进行，保证测试结果的准确性，从而更好地保障人们的健康安全。
大肠菌裙检测中的平板计数法是一种经典的微生物计数方法，它主要用于测定食品、饮用水、环境等样品中大肠菌裙的数量。
在这个过程中，我们需要注意几个关键的环节，来保证实验的准确性和结果的可靠性。
在准备工作环节，我们需要保证实验器材和培养基的质量。
实验器材一定要经过严格的消毒和清洁，以免外来细菌的污染影响实验结果。
培养基的选用也尤为重要，要选择与待测细菌的生长要求相适应的培养基，以保证细菌在培养基上的正常生长。
大肠菌群计数实验报告
大肠菌群计数实验报告一、实验目的大肠菌群是一群在一定培养条件下能发酵乳糖、产酸产气的需氧和兼性厌氧革兰氏阴性无芽孢杆菌。
本实验旨在通过特定的检测方法对样品中的大肠菌群进行计数，以评估样品的卫生质量和安全性。
二、实验原理大肠菌群在特定的培养基和培养条件下会生长并表现出特定的生化特征。
通常使用乳糖胆盐发酵管进行初发酵，若产酸产气，则表明可能存在大肠菌群。
随后将初发酵阳性的样品转接至伊红美蓝琼脂平板进行分离培养，典型的大肠菌群菌落具有特定的形态特征。
最后通过革兰氏染色和证实试验，确认大肠菌群的存在，并根据阳性管数采用相应的计数方法得出样品中的大肠菌群数量。
三、实验材料与设备1、样品：＿____2、培养基和试剂乳糖胆盐发酵管伊红美蓝琼脂平板革兰氏染色液（结晶紫染液、碘液、95%乙醇、沙黄染液）生理盐水3、仪器设备恒温培养箱无菌移液管（1ml、10ml）无菌培养皿显微镜四、实验步骤1、样品处理称取或吸取一定量的样品，加入适量的生理盐水，制成 1:10 的均匀稀释液。
根据样品的污染程度，进行适当的梯度稀释。
2、初发酵试验用无菌移液管吸取 1ml 稀释液，分别注入到 3 支乳糖胆盐发酵管中。
置于 36℃±1℃恒温培养箱中培养 24h±2h，观察产酸产气情况。
3、分离培养对初发酵阳性的发酵管，用接种环挑取培养物，在伊红美蓝琼脂平板上进行划线分离。
置于 36℃±1℃恒温培养箱中培养 18h～24h。
4、复发酵试验挑取伊红美蓝琼脂平板上可疑的大肠菌群菌落，进行革兰氏染色和证实试验。
革兰氏染色：将菌落涂片、固定，经过结晶紫染色、碘液媒染、乙醇脱色、沙黄复染后，在显微镜下观察细菌的形态和革兰氏染色反应。
证实试验：将可疑菌落接种到乳糖发酵管中，置于 36℃±1℃恒温培养箱中培养 24h±2h，观察产酸产气情况。
5、结果计算根据初发酵阳性管数和复发酵证实的阳性管数，查阅相应的大肠菌群最可能数（MPN）检索表，得出样品中大肠菌群的 MPN 值。
大肠菌群平板计数法方法学验证报告
大肠菌群平板计数法方法学验证报告实验步骤如下：1.准备培养基：将大肠杆菌选择培养基加入培养基瓶中，并用自来水洗净外面的杂质，随后用蒸馏水冲洗内表面。
将瓶口用无菌布覆盖，用锡箔纸包好，然后高温高压灭菌，储存在无菌环境中备用。
2.取少量待检样品：将待检食品样品（例如牛奶、蔬菜、饮用水等）取一适量，在无菌的条件下进行操作。
先将样品摇匀使其均匀分布，然后用无菌吸管取1毫升待检样品。
3.稀释样品：用无菌吸管将1毫升待检样品转移至无菌试管中，再向试管分别加入9毫升无菌生理盐水，摇匀使其均匀混合。
此时的样品为10倍稀释样品，将试管中的液体倒入下一个试管中，再加入9毫升无菌生理盐水，以此类推，制备出一系列浓度递减的稀释样品。
4.接种培养基：将每个稀释样品分别倒入标记好的平板培养基上，倒入后轻轻晃动，使其均匀分布在培养基上，然后在无菌工作台上用无菌铂丝铲取纱球大小的韧带状菌液涂抹在固体培养基表面，使细菌均匀生长。
5.培养和计数：将培养基板反面朝上，放入37°C恒温培养箱中进行培养，培养的时间一般为24小时。
待培养结束后，观察培养基表面是否出现典型的大肠菌群菌落。
使用菌落计数器对每个平板上的菌落进行计数。
根据以上实验步骤进行大肠菌群平板计数法的实验后，得出以下结论：1.适用性验证：通过本实验，我们可以验证大肠菌群平板计数法的适用性。
在我们的实验中，使用该方法对不同类型的食品样品进行了检测，并得出了相应的菌落计数。
这表明该方法适用于不同类型的样品，可以准确地测定大肠菌群数量。
2.优点：大肠菌群平板计数法具有以下优点：简单易行，操作方便；可定量测定大肠菌群数量，结果可靠；适用于不同类型的食品样品。
3.缺点：大肠菌群平板计数法也存在一些局限性：菌落计数需要较长时间，一般需要24小时才能观察到菌落；该方法只能测定培养基中能够生长的细菌，无法对其他微生物进行定量测定。
综上所述，大肠菌群平板计数法是一种能够准确测定大肠菌群数量的方法。
实验--食品中大肠菌群的测定-课件 (一)
实验--食品中大肠菌群的测定-课件 (一)随着人们对食品安全的重视，食品中大肠菌群的测定越来越受到关注和重视。
在食品安全监测和生产中，常常需要进行大肠菌群的检验，以保证食品的卫生安全。
此次实验旨在学习并掌握食品中大肠菌群的测定方法。
实验一、菌落计数法1.准备样品：取适量的食品样品，如牛奶、肉制品等，加入适量的蒸馏水，充分摇匀后待用。
2.制备平板：准备好平板培养基，常用的有菌落总数计数培养基和大肠杆菌计数培养基等。
用已灭菌的棉签挖取少量培养基涂抹在培养皿上，使其均匀分布。
3.采样：用无菌的移液管取一定量的稀释后的样品，滴于培养皿表面。
4.培养：将培养皿倒置放入恒温箱中，在37℃温度下培养24-48小时。
5.计数：观察培养皿上的菌落数量，使用菌落计数器进行计数，按一定倍数（如1/10、1/100）还原为真实菌落数量。
实验二、MPN法1.制备移液器：准备好10个稀释液和10个带有3个具孔的板，每个孔中加入相应的稀释液。
2.取样：从食品样品中取一定量，用蒸馏水稀释后，分别分装到板中。
3.培养：将板放到37℃恒温培养箱中进行培养，观察是否有生长。
4.判断仪器读数：根据板中生长、未生长的情况计算菌落数，并用最可能数法计算出MPN结果。
总结通过两种方法的比较，可以看出，两种方法都有各自的优点和缺点，需要根据实际需求进行选择。
对于无法进行菌落计数的样品，可以选择MPN法，它具有精度高、结果稳定等特点。
而对于数量较少的样品，可以更为准确地使用菌落计数法。
本次实验学习了食品中大肠菌群的测定方法，虽然实验中用了人工计数，但实际工作中，常常会结合现代化设备进行自动化检测，从而提高检测效率和准确度。
对于保障食品卫生安全，这一方面的控制是很有必要的。
大肠菌群的测定
一、实验目的
1. 了解大肠菌群在食品卫生检验中的意义
2. 学习并掌握国标法检测大肠菌群的方法
二、实验原理
大肠菌群指一群能发酵乳糖，产酸产气，需氧和 兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌。大肠菌群作为一 类卫生指标菌，主要以其检出情况来判断样品是否受 到了粪便污染。 大肠菌群数是指每升水中含有的大肠 菌群的近似值。通常可根据水中大肠菌群的数目来判 断水源是否被粪便所污染，并可间接推测水源受肠道 病原菌污染的可能性。
二、实验原理
食品大肠菌群数系以每g（mL）检样内大 肠菌群最近似数（the most probable numer，简称MPN） 表示。 本实验中采用的是GB4789.3-2010中第 一法《大肠菌群MPN法》 正确使用MPN法关键是选择适当的稀释 度和接种量。
三、实验材料
1.培养基 ： 月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤 煌绿乳糖胆盐（BGLB）肉汤 生理盐水
2. 检测样品：湖水 3.设备与材料：无菌培养皿，乳糖发酵管，试 管等
四、实验步骤
样品处理和稀释 初发酵试验
复发酵试验
（一）取样、稀释和培养
根据食品卫生要求或对检验水样污染情 况估计，选择三个稀释度，每个稀释度接种3 管。也可直接用样品接种。 用1mL无菌吸管吸取样品均液0.5mL，沿 管壁缓缓注入4.5mL生理盐水的无菌试管中， 振摇试管或换用1支1mL无菌吸管反复吹打， 使其混合均匀，制成1:10的样品匀液。 按上述操作，依次制成10 -1、 10 -2十倍递 增系列稀释样品匀液。每递增稀释1次，换用 1支1mL无菌吸管或吸头。
（二）初发酵试验
即通常所说的假定试验。其目的在于检查样品中 有无发酵乳糖产生气体的细菌。
大肠菌群的测定实验报告
大肠菌群的测定实验报告
《大肠菌群的测定实验报告》
实验目的：通过实验测定大肠菌群的数量，了解其在肠道中的分布情况，并探讨其与健康的关系。
实验方法：我们采集了一组健康人群的粪便样本，并使用培养基和平板计数法对大肠菌群进行测定。
首先，我们将粪便样本均匀涂抹在培养基上，然后将培养皿放入恒温箱中进行培养。
培养后，我们对培养皿上的菌落进行计数，并根据计数结果得出大肠菌群的数量。
实验结果：经过实验测定，我们发现健康人群的大肠菌群数量在正常范围内，平均值约为10^8 CFU/g。
同时，我们还发现不同个体之间的大肠菌群数量存在一定的差异，但总体上呈现出稳定的分布情况。
实验分析：大肠菌群在肠道中起着重要的作用，它能够帮助人体消化食物、产生维生素等。
同时，大肠菌群的数量与肠道健康密切相关，过多或过少都可能导致肠道问题。
因此，通过测定大肠菌群的数量，可以帮助我们了解肠道健康状况，及时采取相应的调节措施。
结论：通过本次实验测定，我们得出了健康人群大肠菌群数量的正常范围，并认识到了大肠菌群在肠道健康中的重要作用。
希望通过这一实验结果，能够为人们提供更多关于肠道健康的参考信息，促进人们更加关注和重视肠道健康。
大肠菌群计数实验报告
一、实验目的1. 了解大肠菌群在食品卫生检验中的意义。
2. 学习并掌握大肠菌群的检验原理和方法。
3. 通过实验，提高对食品卫生质量的判别能力。
二、实验原理大肠菌群是指一群能在37℃经24小时发酵乳糖、产酸产气、需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌。
该菌主要来源于人畜粪便，因此常被用作粪便污染指标，用于评价食品的卫生质量。
食品中大肠菌群数以每100g检样内大肠菌群最近似数表示。
本实验采用MPN（Most Probable Number）计数法，通过多次稀释样品，将稀释液接种于培养基中，观察菌落生长情况，结合MPN检索表，估算原样品中微生物的数量。
三、实验材料1. 样品：乳、肉、禽蛋制品、饮料、糕点、发酵调味品或其他食品。
2. 菌种：大肠埃希氏菌、产气肠杆菌。
3. 培养基及试剂：单料乳糖胆盐发酵管、双料乳糖胆盐发酵管、乳糖胆盐发酵管、伊红美蓝琼脂、革兰氏染色液、蛋白陈水、靛基质试剂、麦康凯(MA)。
4. 其他设备和材料：恒温培养箱、冰箱、恒温水浴箱、天平、无菌操作台、移液器、试管、吸管、镊子、酒精灯等。
四、实验步骤1. 样品处理：取适量样品，加入适量无菌生理盐水，进行10倍系列稀释。
2. 接种：取不同稀释度的样品稀释液，分别接种于单料乳糖胆盐发酵管中。
3. 培养：将接种后的发酵管置于37℃恒温培养箱中培养24小时。
4. 观察结果：观察发酵管中是否出现产酸产气现象，并记录结果。
5. 计算MPN值：根据发酵管中产酸产气的情况，结合MPN检索表，估算原样品中大肠菌群的MPN值。
五、实验结果与分析1. 实验过程中，各稀释度发酵管均出现产酸产气现象，说明样品中存在大肠菌群。
2. 根据MPN检索表，计算得到样品中大肠菌群的MPN值为10^2 CFU/g。
六、实验结论1. 本实验成功检测到样品中存在大肠菌群，说明样品可能存在粪便污染。
2. 根据大肠菌群的数量，可以初步判断样品的卫生质量。
3. 通过本实验，掌握了大肠菌群的检验原理和方法，提高了对食品卫生质量的判别能力。
大肠菌群计数检验步骤
大肠菌群计数检验步骤第一法大肠菌群MPN 计数操作步骤6.1、样品的稀释6.1.1、固体和半固体样品：称取25g 样品，放人盛有225ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内，8 00or/min-10 000r/min 均质1 min-2 min ，或放人盛有225ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打1 min-2 min ，制成1:10 的样品匀液。
6.1.2、液体样品：以无菌吸管吸取25ml样品，置盛有225ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中，充分棍匀，制成1:10 的样品匀液。
6.1.3、样品匀液的pH 值应在6.5-7.5 之间，必要时分别用1mol/L 氢氧化钠（NaOH ）或1 mol/L 盐酸（HCI ）调节。
6.1.4、用1ml无菌吸管或微量移液器吸取1:10 样品匀液1ml，沿管壁缓缓注人9ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用1 支1ml无菌吸管反复吹打，使其混合均匀，制成1:100 的样品匀液。
6.1.5、根据对样品污染状况的估计，按上述操作，依次制成10 倍递增系列稀释样品匀液。
每递增稀释1 次，换用1 支1ml无菌吸管或吸头。
从制备样品匀液至样品接种完毕，全过程不得超过15 min 。
6.2、初发酵试验每个样品，选择3 个适宜的连续稀释度的样品匀液（液体样品可以选择原液），每个稀释度接种3 管月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤，每管接种1ml（如接种量超过1ml，则用双料LST肉汤）, 36℃±1℃培养24h±Zh ，观察倒管内是否有气泡产生，如未产气则继续培养至48h±2h 。
记录在24h 和48h 内产气的LST 肉汤管数。
未产气者为大肠菌群阴性，产气者则进行复发酵试验。
6.3、复发酵试验用接种环从所有48h±2h 内发酵产气的LST 肉汤管中分别取培养物l环，移种于煌绿乳糖胆盐( BGLB）肉汤管中，36℃±1℃培养48h±2h ，观察产气情况。
大肠菌群检测的实验报告
大肠菌群检测的实验报告大肠菌群检测实验报告一、实验目的本实验旨在通过检测样品中的大肠菌群数量，评估其卫生质量，为食品安全和人类健康提供重要依据。
二、实验原理大肠菌群是指一群革兰氏阴性、无芽孢、兼性厌氧的细菌，主要包括埃希氏菌属、柠檬酸杆菌属、肠球菌属等。
这些细菌可在25-37℃的环境下生长，且在伊红美蓝培养基上形成典型的大肠菌群菌落。
本实验采用MPN（最大可能数）方法进行大肠菌群的检测。
通过在不同浓度的样品中接种不同体积的培养基，并按照MPN表进行统计分析，以获得样品中大肠菌群的数量。
三、实验步骤1.样品处理：将样品按照10倍递增的方式进行稀释，以适应不同浓度的大肠菌群检测。
2.接种培养：分别取0.1mL、0.01mL、0.001mL的样品稀释液，接种于伊红美蓝培养基中，每个稀释度接种三管。
轻轻摇匀，倒置培养。
3.培养观察：将培养基放入37℃的培养箱中，培养24小时。
观察每个稀释度的培养管中是否有典型的大肠菌群菌落形成。
4.结果统计：根据MPN表，统计每个稀释度下形成菌落的管数，并计算大肠菌群的数量。
5.结果报告：根据实验数据，得出样品中大肠菌群的数量，并评估其卫生质量。
四、实验结果与分析经过24小时的培养观察，我们发现样品稀释度为10倍和100倍的培养管中形成了典型的大肠菌群菌落。
根据MPN表进行统计分析，得出样品中大肠菌群的数量为9.0×10²CFU/mL。
根据国家相关标准，该样品的大肠菌群数量超过了安全阈值（<10³CFU/mL），因此该样品的卫生质量不达标。
五、结论与建议通过本实验的检测和分析，我们得出样品中大肠菌群的数量超出了安全阈值，说明该样品的卫生质量不符合要求。
这可能是由于生产过程中的污染、储存条件不当或运输环节不卫生等原因导致的。
为了确保食品安全和人类健康，建议相关部门加强对食品生产和流通环节的监管力度，提高食品产业的卫生质量标准，并采取有效的措施确保食品的安全性。
食品中大肠菌群计数测定的标准操作规程
食品中大肠菌群计数测定的标准操作规程1.目的本标准操作规程的目的是为了能够准确、快速地测定食品中大肠菌群的数量，以便于对食品的卫生状况进行评估。
2.应用范围该操作规程适用于各种食品样品，如肉、鱼、蔬菜、水果等。
3.实验器材和试剂3.1器材：(1)无纤维纸滤纸或滤膜或滤布等过滤介质。
(2)LED 灯或紫外灯。
(3)培养皿、移液器、无毒胶带和显微镜。
(4)电子天平。
(5)水槽和蒸馏水。
3.2试剂：(1)胆盐琼脂培养基。
(2)大肠埃希菌ANTISERUM(可以根据需要添加，如：O157等)。
(3)含有氯化钠、肉汤和酚红的PB(NaCl、pH值7.2±0.2、菜心草浸提液)培养基。
4.操作流程4.1样品的准备样品应当是新鲜的、无病变的，如为肉类样品则需要去除肉骨、制成均匀的细碎物；如为水果蔬菜，则需将其冲洗干净削皮去籽核、制成较小的碎片。
如果是液体样品，需要摇匀，取少量样品进行分析。
(1)将胆盐琼脂培养基先膜切成适当的大小，放置在无菌的培养皿中，静置至凝固(温度约35℃)后，置于4℃左右冷藏备用。
(2)PB培养基的制备：每升PB(NaCl、pH值7.2±0.2、菜心草浸提液)培养基中加入10克肉汤粉和0.01克酚红，用蒸馏水充分搅拌均匀，灭菌后置于4℃左右。
4.3分析程序(1)取样品约10g，加入90mLPB(NaCl、pH值7.2±0.2、菜心草浸提液)中，用搅拌器搅拌1分钟，摇匀后放置2分钟(2分钟后即是样品液体)。
(2)取上述处理好的样品液1mL，加入9mL的PBS(NaCl、pH7.2±0.2)中均匀悬浮。
去除上清后再次悬浮，充分均匀。
(3)取上述悬浮液，利用无菌的吸管分别在胆盐琼脂培养基上均匀涂布(充分在滤纸上滤过)，然后进行相应的实验测定：a.在培养皿边缘涂上大肠埃希菌ANTISERUM(注意稀释)。
b.在光照充足的环境下，在37℃下培养16-18小时。
大肠菌群计数检验
检样稀释：同上。 检样稀释：同上。 平板计数： 平板计数： 1、每个稀释度接种 个无菌平皿，每皿 个无菌平皿， 、每个稀释度接种2个无菌平皿 每皿1mL稀 稀 释样品，另外一个平皿加1mL生理盐水作空 释样品，另外一个平皿加 生理盐水作空 白对照。 白对照。 2、及时将 、及时将15—20mLVRBA（结晶紫中性红胆 （ 盐琼脂）倾注每个平皿中。 盐琼脂）倾注每个平皿中。 3、待琼脂凝固后，再加 、待琼脂凝固后，再加3—4mLVRBA覆盖表 覆盖表 翻转平板培养。 层。翻转平板培养。
旧国家标准
大肠菌群MPN 计数法 第一法 大肠菌群
第二法 大肠菌群平板计数法
第一天
小组： 使用第一法（附带做第二法中， 第1、3、5、7小组： 使用第一法（附带做第二法中， 、 、 、 小组 两个平板接种），以自来水为样品。 两个平板接种），以自来水为样品。 ），以自来水为样品
小组： 第2、4、6小组： 、 、 小组
大肠菌群计数检验
大肠菌群是指一群在37°C培养 小时能分解乳糖 大肠菌群是指一群在 ° 培养24小时能分解乳糖 培养 产酸产气、 产酸产气、需氧及兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆 菌。 作为粪便污染指标， 作为粪便污染指标，有广泛的卫生学意义 食品中大肠菌群数系以每100g（或mL）检样内大 （ 食品中大肠菌群数系以每 ） 肠菌群最可能数（ 肠菌群最可能数（the most probablenumber-简 简 称MPN）表示。 ）表示。
一般样品25ML（克）+225ML生理盐水 ：10，从 一般样品 （ 生理盐水=1： ， 生理盐水 10-1取样 取样1ML，接种到 管LST（月桂基硫酸盐胰蛋白 ，接种到3管 （ 胨肉汤） 胨肉汤）中。 取样1ML+9 ML生理盐水 ：100，从10-2取样 生理盐水=1： 从10-1取样 生理盐水 ， 1ML，接种到3管LST中。 ，接种到 管 中 取样1ML+9 ML生理盐水 ：1000，从10-3取 生理盐水=1： 从10-2取样 生理盐水 ， 样1ML，接种到 管LST中。 ，接种到3管 中
实验六 食品中大肠菌群的计数
）； 在梯度稀释和接种前后对试管震荡混 合； 注意试管梯度的标记； 接种后放在试管架上37℃静止培养；
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食品中大肠菌群的测定与分离
时间安排
2010-10-22 食品中大肠菌群的测定与分离
此实验为综合性实验，要求对食品中存在的大肠菌群计
数并分离。实验安排三天： 第一天： 两人一组配制乳糖胆盐发酵培养基。制备食品悬液。 并进行梯度稀释，接种。培养。 第二天： 观察记录初发酵结果（产酸、产气、混浊度、沉 淀情况）。配制EMB平板。对阳性试管进行划线接种。 第三天： 记录EMB平板培养结果，对可疑菌落进行革兰氏 染色。查MPN检索表，计数分析。
菌污染的指示菌？ EMB培养基含有哪几种主要成分？在检查大 肠菌群时，各起什么作用？
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本次实验的基本要求与进行方式
2010-10-22
两个同学一组 配制乳糖胆盐培养基（150mL）,分装于试管中
食品中大肠菌群的测定与分离
（10个），高压灭菌； 分装生理盐水：90mL（三角瓶1个），9mL （试管5个），高压灭菌； 移液管，培养皿，干热灭菌； 梯度稀释（10倍递增）的同时接种
微生物学实验
2010-10-22 食品中大肠菌群的测定与分离
实验六 食品中大肠菌 群的测定与分离
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实验目的与要求
2010-10-22
实验目的 ① 学习并掌握检测食品中大肠菌群的方法； ② 通过观察、计算分析了解食品中大肠菌群的存在的特 点。 ③ 实验要求 ④ 2位学生一组协作完成； ⑤ 选择10g鲜肉样品，观察大肠菌群的生长特征并测定 大肠菌群的数量（MPN）； ⑥ 分离纯化大肠菌群中的 一种（斜面菌种）
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食品中大肠菌群的测定与分离
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大肠菌群计数实验
MPN计数法
一、设备与材料
250ML锥形瓶3个 100ML烧杯1个
250ML量筒1个 1000ML烧杯1个
15*150mm试管3个 1ML刻度吸管4个
18*180mm试管20个杜氏小管
玻璃棒1个接种环1个
剪刀1把药匙2个
均质器天平(感量0、1g)
电炉洗耳球
二、实验准备
1、配制培养基:
LST培养基得配制:
用天平称取17、8gLST培养基于锥形瓶中
加入500ML蒸馏水
加热煮沸至完全溶解
分装于装有杜氏小管得大试管中,每管10ML,共10管高温灭菌备用
BGLB培养基得配制:
用天平称取20gBGLB培养基于锥形瓶中
加入500ML蒸馏水
加热煮沸至完全溶解
分装于装有杜氏小管得大试管中,每管10ML,高温灭菌备用
2、生理盐水
取4、25g氯化钠于大烧杯中
加入500ML蒸馏水溶解
取225ML生理盐水于锥形瓶中
分别取9ML生理盐水于3只小试管中
将分装好得生理盐水进行高温灭菌
3、灭菌:将均质杯、100ML烧杯、刻度吸管、剪刀、接种环、洗耳球高温灭菌备用
三、取样
在提交得产品中随机抽取三箱,从每箱中随机抽取未打开包装得产品1袋~3袋,抽取不低于250g得样品作为微生物指标检验试样。
四、检验程序
36℃±1℃ 48h±2h
五、操作步骤
初发酵试验
1、称取25g 样品,放人盛有225m生理盐水得无菌均质杯内,8 00or/min-10 000r/min 均质1 min-2 min ,制成1:10 得样品匀液。
2、用1ml无菌吸管吸取1:10 样品匀液1ml,沿管壁缓缓注人9ml生理盐水得无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管,使其混合均匀,制成1:100 得样品匀液。
3、换一只新得1ml无菌吸管吸取1:100样品匀液1ml,沿管壁缓缓注人9ml生理盐水得无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管,使其混合均匀,制成1:1000 得样品匀液。
4、将三个连续稀释梯度得样品原液在进行10倍递增稀释时,吸取1 ml 样品匀液于LST肉汤,每个稀释度接种三管。
5、同时做一组空白,在一支LST肉汤中接种1ml生理盐水。
6、 36℃±1℃培养24h±2h ,观察倒管内就是否有气泡产生,如未产气则继续培养至48h±2h 。
记录在24h 与48h 内产气得LST 肉汤
管数。
未产气者为大肠菌群阴性,产气者则进行复发酵试验。
复发酵试验
用接种环从所有48h±2h 内发酵产气得LST 肉汤管中分别取培养物l环,移种于( BGLB)肉汤管中,36℃±1℃培养48h±2h ,观察产气情况。
产气者,计为大肠菌群阳性管。
大肠菌群最可能数(MPN )得报告
根据大肠菌群阳性管数,检索MPN 表,报告每克(或毫升)样品中大肠菌群得MPN 值。
大肠菌群最可能数(MPN)检索表。