试验1细胞大小测定

《细胞生物学》实验
（养殖：1——3；生技、海科：1——6）
实验一细胞器的分离、提取与测量
【目的】
掌握叶绿体分离的一般原理和方法，学习用测微尺测量细胞与细胞器大小的测定方法，并了解应用荧光显微镜方法观察叶绿体荧光现象。

【原理】
叶绿体是植物细胞中较大的一种细胞器，能发生特有的能量转换。

利用低速离心机可以分离叶绿体，其分离在等渗溶液(0.35 mol／L氯化钠或0.4mol／L蔗糖溶液)中进行，目的是为了防止渗透压的改变引起叶绿体的损伤。

将匀浆液在1000r／min离心，去除其中的组织残渣和一些未被破碎的完整细胞，然后，3000 r／min离心，可获得沉淀的叶绿体(混有部分细胞核)。

在室温下进行分离要迅速。

用显微测微尺可以直接测量细胞大小，精确度较高。

显微测微尺分为物镜测微尺和目镜测微尺2种。

目镜测微尺是1块小玻璃圆片(可放人目镜内，其大小正好卡人目镜筒内)，在圆片正中央刻有1cm长的直线，直线上均匀分为100小格或50小格，每小格的长度，随目镜和物镜的放大倍数而变动。

物镜测微尺是一块特制的玻璃载片，载片中央刻有一条1mm长的直线，均匀地刻分为100个小格，每小格为1／100mm (为10μm)，用一小圆形玻璃盖片封盖着，物镜测微尺较目镜测微尺小格的间距精确，通过目镜测微尺测量细胞与细胞器的大小(小格数)，然后换以物镜测微尺校测小格数的精确数值，即为测量的细胞与细胞器大小结果。

某些物质在一定短波长的光(如紫外光)的照射下吸收光能进入激发态，从激发态回到基态时，就能在极短的时间内放射出比照射光波长更长的光(如可见光)，这种光就称为荧光。

若停止供能荧光现象立即停止。

有些生物体内的物质受激发光照射后，可直接发出荧光(称为自发荧光)，如叶绿素的火红色荧光。

有的生物材料本身不发荧光，但它吸收荧光染料后同样也能发出荧光(称为间接荧光)，如叶绿体吸附吖啶橙后可发橘红色荧光。

【材料】
菠菜叶片。

【实验用品】
1．试剂：蒸馏水，0.35 mol／L氯化钠溶液，0.01% 吖啶橙。

2．器材：普通离心机，组织捣碎机，天平，荧光显微镜，显微镜，载玻片，盖玻片，镊子，接种针，滤纸，试管，试管架，移液管，滴管，烧杯，无荧光载片，盖玻片，离心管，目镜测微尺，物镜测微尺，培养皿。

【实验步骤】
1．选取新鲜的菠菜嫩叶，洗擦干后去除叶梗及粗脉，称3g于0.35 mol／L氯化钠溶液45mL中，置人组织捣碎机或研钵中。

2．利用组织捣碎机低速(5000r／min)匀浆3-5min，或研磨成匀浆。

3．用6层纱布过滤，滤液盛于烧杯中。

4．取滤液4 mL在1000 r／min下离心2min，弃去沉淀。

5．将上清液在3000 r／min下离心5 min，弃去上清液，沉淀即为叶绿体(混有部分细胞核)。

6．沉淀用0.35mol／L氯化钠溶液悬浮。

7．取叶绿体悬液1滴置于载玻片上，加盖玻片后用普通光学显微镜观察、绘图。

8．将物镜测微尺放在载物台上，校准目镜测微长度：在低倍显微镜下，移动镜台测微尺和转动目镜测微尺，使两者刻度平行，并使两者间某段的起、止线完全重复。

数出两条重合线之间的格数，即可求出目镜测微尺每格的相应长度。

目镜测微尺与物镜测微尺两者重合点的距离越长，所测得的数字越准确。

用
同样方法分别测出高倍物镜下，目镜测微尺每格的相对长度。

计算目镜测微尺每格的长度：例如，测得某显微镜的目镜测微尺50格相当于物镜测微尺7格，则目镜测微尺每格长度为：（7X10μm）/50=1.4μm／格。

9.测量5～10个叶绿体的长轴和短轴，制表格表示测量结果。

10.取菠菜叶片于研钵中，加少量丙酮，研磨匀浆、过滤，滤液置于试管中，顺着太阳光观察，再将试管避开直射光，比较颜色的变化。

【实验报告】
1.绘制普通光学显微镜下观察的叶绿体形态示意图。

2.用测微尺测量叶绿体的大小后，制表格表示测量结果。

3.记录观察的荧光现象，分析结果。

【思考题】
1．分离叶绿体的实验原理是什么?
2．操作过程中应注意什么?
实验二细胞原生质流动的观察
【目的】
观察植物细胞质中原生质流动现象，了解影响细胞质中原生质流动的因素。

【原理】
在多种植物的细胞中都能观察到原生质的流动现象，它是细胞活动强弱的重要指标。

细胞原生质流动现象的产生，是细胞骨架中微丝肌动蛋白与肌球蛋白相互滑动的结果，此过程要消耗能量，受各种因素诸如温度、渗透压及各种离子的影响。

【材料】
黑藻(也称水王荪、轮叶黑藻)叶，轮藻，洋葱鳞茎(最好使用萌发的鳞茎)或鸭跖草雄蕊花丝或小麦幼苗的根毛(种子在培养皿中湿滤纸上萌发，当根长到1～2cm，有许多根毛时最合适)。

【实验用品】
1．试剂：1mol/L氟化钠，1 mol/L丙二酸钠，0.17mol/L2,4—二硝基酚(DPN)。

2．器具：显微镜，载玻片，盖玻片，尖头镊子，刀片。

【实验步骤】
1．取1块干净的载玻片，在中央滴1～2滴蒸馏水；取紫鸭跖草(或其它材料)花1朵，用镊子取1枚雄蕊，迅速置载玻片水滴中，切去花蕊，加盖玻片，用显微镜低倍物镜(10X)进行观察，注意花丝周围附着许多“含珠链”状的花丝毛，每1粒“念珠”是1个单毛细胞。

2．转换高倍物镜(40X)观察，可以看到细胞质中的颗粒和显著的细胞质，细胞质之间是液泡，内含水溶性花青素。

注意观察花丝毛细胞核的部位，哪一个部位见到细胞质流动，其流动的速度如何。

3．用吸水纸吸干水，加1滴1 mol/L氟化钠，注意观察细胞质停止流动的时间。

细胞质停止流动后，用吸水纸吸去氟化钠，滴人清水，注意流动是否能恢复。

4．依上述操作，加1滴1 mol/L丙二酸钠或0.17 mol/L 2,4—二硝基酚，注意观察细胞质流动速度是否发生改变；用吸水纸吸去药液后，加入蒸馏水，再观察细胞质流动的变化。

【注意事项】
取材时用洋葱鳞片内表皮、鸭跖草雄蕊花丝上的表皮毛、轮藻幼嫩的节间细胞进行的显微观察，如一时找不到原生质流动的细胞，可将载玻片置于温箱里或白炽灯泡上很短时间提高温度后再观察。

【实验报告】
1．绘制紫鸭跖草花丝细胞（或其它材料）原生质流动图。

2．记录加入各种化学试剂后细胞原生质流动停止的时间，并分析原因。

【思考题】
1、你如何理解细胞原生质流动原理?
2、影响细胞原生质流动的因素有哪些？
实验三细胞骨架的观察
【目的】
掌握用光学显微镜观察植物细胞骨架的原理及方法，观察光学显微镜下细胞骨架的网状结构。

【原理】
植物细胞用适当浓度的TritonX-100处理后，可破坏细胞内蛋白质，但细胞骨架系统的蛋白质却保护完好。

考马斯亮蓝R250(Coomassie brilliant blue R250)是一种蛋白质染料，处理后的材料用考马斯亮蓝R250染色后，用光学显微镜观察，可以见到一种网状结构，即是细胞骨架结构。

【材料】
洋葱鳞叶。

【实验用品】
1．试剂：
(1) 2%考马斯亮蓝R250染色液：称考马斯亮蓝R250 1g，溶于250mL无水乙醇中，加冰醋酸35mL，再加蒸馏水至500mL。

(2) 磷酸缓冲液(pH 6.8)：6.8mmol/L磷酸缓冲液，调至pH6.8。

(3) M缓冲液(pH7.2)：50 mmol/L咪唑、50 mmol/L氯化钾、0.5mmol/L氯化镁、1mmol/L乙二醇双乙胺醚、0.1 mmol/L乙二胺四乙酸、1 mmol/L琉基乙醇，调至pH7.2。

(4) 1%TritonX-100：用M缓冲液配制。

(5) 3%戊二醛：用M缓冲液配制。

(6) 中性树胶。

2．器具：显微镜，烧杯，玻璃滴管，载玻片，盖玻片，镊子。

【实验步骤】
1．用镊子撕取洋葱鳞叶内侧的表皮若干片(约1cm2大小若干片)，置于50mL烧杯中，加入pH6.8磷酸缓冲液，使其下沉。

2．吸去磷酸缓冲液，用1%TritonX-100处理20min。

3．吸去TritonX-100，用M缓冲液洗3次，每次5min。

4．用3%戊二醛固定30min。

5．磷酸缓冲液(pH 6.8)洗3次，每次5 min。

6．0.2％考马斯亮蓝R250染色10min。

7．蒸馏水洗2次，然后将样品置于载玻片上，加盖玻片，于普通光学显微镜下观察。

8．如果染色效果好，则可依次用50%乙醇、70%乙醇、95%乙醇、正丁醇、二甲苯处理样品，各5min。

然后将样品平展于载玻片上，加l滴中性树胶，盖上盖玻片封片，制成永久切片。

【实验报告】
描绘所观察到的洋葱鳞叶细胞骨架图。

【思考题】
1、组成细胞骨架的成分有哪些?
2、本实验制片中，TritonX-100有何作用？
实验四细胞中多糖和过氧化物酶的定位【目的】
掌握细胞中多糖和过氧化物酶的组织化学定位检测方法。

【原理】
高碘酸-席夫试剂反应，简称PAS反应。

主要是利用高碘酸作为强氧化剂，能作用于含乙二醇基的糖，
使其碳链断裂而形成乙二醛，氧化得到的醛基与Schiff试剂中的无色亚硫酸品红结合而生成红色化合物的取代染料而达到定位的目的，见下图：
过氧化物酶体系能把联苯胺氧化成蓝色或棕色产物，反应式如下：
中间产物联苯胺蓝是不稳定的，无需酶作用即可氧化为棕色。

【材料】
马铃薯块茎、洋葱根尖或洋葱鳞茎。

【实验用品】
1、试剂：
（1）高碘酸溶液：
高碘酸（HIO4.2H2O）0.4g
95%乙醇35ml
1/3mol/L 乙酸钠溶液5ml
蒸馏水10ml
（2）Schiff试剂：取0.5克研细的碱性品红于100毫升沸腾的蒸馏水中，搅拌使其充分溶解，当染液冷却至50℃时过滤，在滤液内加入1NHCl 10毫升。

然后放置，使其继续冷却至25℃时，再加无水偏重亚硫酸钠或无水偏重亚硫酸钾1克，置阴暗处约24小时后，染液褪至无色或略带淡黄色，然后加入0.5克活性炭，用力振荡1min，最后用粗滤纸过滤于棕色瓶中，密封保存于4℃冰箱中。

可保存数日，用时升至室温，如溶液带红色或紫色，可加入少许无水偏重亚硫酸钠或无水偏重亚硫酸钾，使之再转变为无色时，仍可再用。

0.8克+蒸馏水20毫升+0.2M醋酸钠10毫升+纯酒精70毫升
（3）亚硫酸水：取200ml自来水，加10ml 10％偏重亚硫酸钠或无水偏重亚硫酸钾水溶液和10ml 1mol/LHCl，三者于使用前混匀。

（4）70％乙醇。

（5）联苯胺水溶液：在0.85％盐水内加入联苯胺至饱和为止，使用前加入20％体积的H2O2，
每2ml加1滴。

（6）0.1％钼酸铵溶液：0.1g 钼酸铵于100毫升0.85％盐水。

2、仪器设备：显微镜，镊子，染色钵，载玻片，盖玻片，吸水纸。

【实验步骤】
1、PAS反应：
（1）把马铃薯块茎用刀片切成薄片；
（2）浸于高碘酸溶液5－15min；
（3）移入70％乙醇中浸5min；
（4）Schiff试剂染色15min；
（5）亚硫酸溶液洗3次，每次1 min；
（6）蒸馏水洗片刻，装片镜检。

2、过氧化物酶的测定：
（1）把洋葱根尖徒手切称20－40微米厚的薄片或用镊子撕取洋葱鳞茎内表皮一小块；
（2）浸在钼酸铵溶液5 min；
（3）浸在联苯胺溶液内2 min至切片出现蓝色；
（4）0.85％盐水洗1 min；
（5）将薄片置于载玻片上展开，盖上盖玻片，镜检。

【实验报告】
绘图、记录并分析两种实验方法的显示情况。

【思考题】
1. 组织化学的含义和作用是什么?
2. 过氧化物酶在生物细胞中的分布有何特点? 它有何功能？
实验五细胞融合
【目的】
通过利用PEG法介导鸡血细胞融合的实验操作与融合过程的观察，掌握利用PEG介导动物细胞融合的实验技术，为从事细胞工程相关领域的工作奠定基础。

【原理】
细胞融合(cell fusion)又称体细胞杂交，是指两个或多个细胞融合形成一个双核或多核细胞的现象。

细胞融合可在基因型相同的细胞间进行，也可在基因型不同的种内细胞间甚至种间细胞问进行。

基因型相同的细胞形成的融合细胞称为同核融合细胞或同核体；基因型不同的细胞形成的融合细胞称为异核融合细胞或异核体。

含有两个核的同型融合细胞可通过同步有丝分裂产生含有一个异常大的核的单核子细胞，其染色体数为正常数的两倍。

这些染色体是由原来两个核融合而来的。

通过细胞杂交形成的单核子细胞称为融合核细胞或合核体，即杂交细胞。

细胞融合可分为：病毒(如仙台病毒等)诱导的细胞融合；化学物质(如聚乙二醇，即PEG，polyethyleneglycol)诱导的细胞融合；电场诱导的细胞融合；激光诱导的细胞融合。

PEG是乙二醇的多聚化合物，存在一系列不同分子量的多聚体，可改变各类细胞的膜结构，使两细胞接触点处脂类分子发生疏散和重组，引起细胞融合。

细胞融合技术已成为细胞生物学、遗传学和医学研究的重要手段。

特别是利用这项技术而发展起来的杂交瘤技术，非常具有实用价值，应用极为广泛。

【材料】
鸡血
【实验用品】
1．试剂：
(1) 0.85%NaCl溶液；
(2) GKN液：8.0g NaCl，0.4g KCl，1.77g Na2HP04·2H20，0.69g NaH2P04·H20，2.0g葡萄糖，0.0lg 酚红，溶于l000ml重蒸水中；
(3) 50％(m／V)PEG溶液：
①取50gPEG(相对分子质量=4000)放入100ml瓶中，高压灭菌20min。

②让PEG冷却至50-60℃，勿让其凝固。

③加入50ml预热至50℃的GKN液，混匀，置37℃备用。

(4)Hanks原液（10 X）
NaCl 80.0g
Na2HP04·12H20 1.2 g
KCl 4.0g
KH2P04 0.6g
MgSO4.7 H20 2.0g
葡萄糖 10.0g
CaCl2 1.4g
①称取1.4g的CaCl2，融于30－50m1的重蒸水中。

②取1000ml的烧杯及容量瓶各一个，先放重蒸水800ml于烧杯中，然后按上述配方顺序，逐一称取药品。

必须在前一药品完全溶解后，方可加入下一药品，直到葡萄糖完全溶解后，再将已溶解的CaCl2溶液加入，最后加水至1000ml。

（5）Hanks液：
Hanks原液 100ml
重蒸水 896ml
0.5％酚红 4ml
配好的Hanks液，分装包扎好贴上标签，经过灭菌后，4℃保存。

（6）詹纳斯绿染液。

2．器具：注射器、刻度离心管、离心机、血细胞计数板、水浴锅、容量瓶、显微镜，烧杯，玻璃滴管，凹面载玻片，盖玻片，酒精灯。

【实验步骤】
1．鸡血细胞的获得：从家鸡的翼根静脉用注射器采血，注入试管后，迅速加入肝素(100U肝素／5ml 全血)混合，制成抗凝全血。

2．鸡血细胞储备液的制备: 在抗凝全血的试管中，加入4倍体积的0．85％NaCl溶液，制成红细胞储备液，置于4℃冰箱内可供一周内使用。

3．鸡血细胞悬液的制备: 取鸡血细胞储备液lml，加入4ml 0.85％NaCl溶液，混匀后，1 200r/min 离心5min，弃去上清液，再加入5m1 0.85％NaCl溶液按上述条件离心一次。

最后，弃去上清液，加入10 ml 的GKN溶液制成鸡血细胞悬液。

4．计数: 取0.5m1鸡血细胞悬液，加3.5ml的GKN溶液进行稀释，在血细胞计数板上计数。

若细胞浓度过大，用GKN溶液稀释至lXl07个／ml左右。

5.鸡血细胞的收集: 吸取1m1鸡血细胞悬液放入离心管中，加入4mlHanks液混匀，l 000r／min离心5min，弃去上清液，用手指轻弹离心管底部，使沉淀的血细胞团块松散。

6.PEG诱导细胞融合: 吸取0.5m1 37℃的50％PEG溶液，慢慢沿着离心管壁逐滴加入，边加边轻摇离心管，使PEG与细胞混匀，然后在37℃水浴中静置2min。

7.终止PEG作用: 缓慢加入5mlHanks液，轻轻吹打混匀，于37℃水浴中静置5min。

8.制备细胞悬液: 用吸管轻轻吹打细胞团数次使细胞团分散，1 000/min离心5min，使细胞完全沉降。

弃去上清液，加Hanks液，再离心一次，弃多数上清，留少许溶液，混匀。

9.染色和镜检: 吸取细胞悬液，在凹面载玻片上滴一滴，加入詹纳斯绿染液混匀，染色3min后盖上盖玻片，在显微镜下观察细胞融合情况。

10.计算细胞融合率: 细胞融合率是指在显微镜的视野内，已发生融合的细胞其细胞核总数与该视野内所有细胞(包括已融合细胞)的细胞核总数之比，通常以百分比表示，而且要进行多个视野测定，进行统计分析。

【实验报告】
画出观察到的融合细胞，并计算融合率。

【思考题】
(1) 试说明细胞融合实验的关键。

(2) 细胞融合有哪些实际应用？
实验六细胞膜的通透性观察
【目的】
了解细胞膜的渗透性及各类物质进入细胞的速度。

【原理】
将红细胞放入数种等渗溶液中，由于红细胞对各种溶质的透性不同，有的溶质可以渗入，有的溶质不能渗入，渗入的溶质能够提高红细胞的渗透压，所以促使水分进入细胞，引起溶血。

由于溶质透入速度互不相同，因此溶血时间也不相同。

【材料】
动物新鲜血液。

【实验用品】
1、试剂：
0.17mol/L氯化钠，0.17mol/L氯化铵，0.17mol/L醋酸胺，0.17mol/L硝酸钠，0.12mo1/L草酸
铵，0.12mol/L硫酸钠，0.32mol/L葡萄糖，0.32mo1/L甘油，0.32mol/L乙醇，0.32mol/L丙酮。

2、仪器设备：
50mL小烧杯，10mL移液管，试管，试管架。

【实验步骤】
1、血细胞悬液
取50mL小烧杯一只，加1份血样和10份0.17mol/L氯化钠溶液，形成一种不透明的红色液体，此即稀释的血样。

2、低渗溶液
取试管一支，加入10mL蒸馏水，再加入1mL稀释的血样，注意观察溶液颜色的变化，由不透明的红色逐渐澄清，说明红细胞发生破裂造成100%红细胞溶血，使光线比较容易透过溶液。

3、红细胞的渗透性
(1)取试管一支，加入0.17mo1/L氯化钠溶液10mL，再加入1mL稀释的血样，轻轻摇动，注意颜色有无变化?有无溶血现象?为什么?
(2)取试管一支，加入0.17mol/L氯化铵溶液10mL，再加入1mL稀释血样，轻轻摇动，注意颜色有无变化?有无溶血现象?若发生溶血，记下时间(自加入稀释血样到溶液变成红色透明澄清所需时间)。

(3)分别在另外8种等渗溶液中进行同样实验。

步骤同(2)。

【实验报告】
将观察到的现象列入表6-1，对实验结果进行比较和分析。

【思考题】
1、你的实验证明了什么问题？
2、在你的实验中，哪些物质容易通过细胞膜？哪些不易？为什么？
实验七植物愈伤组织的诱导培养技术【目的】
近年来，组织培养作为一种研究技术，已广泛地应用于许多学科中，它不仅对理论研究有重要意义，并已展现了十分广阔的应用前景。

本实验学习植物愈伤组织的诱导培养技术
【原理】
植物组织培养是把植物的器官，组织以至单个细胞，应用无菌操作使其在人工条件下，能够继续生长，甚至分化发育成一完整植株的过程。

植物的组织在培养条件下，原来已经分化停止生长的细胞，又能重新分裂，形成没有组织结构的细胞团，即愈伤组织。

这一过程称为“脱分化作用”，已经“脱分化”的愈伤组织，在一定条件下，又能重新分化形成输导系统以及根和芽等组织和器官，这一过程称“再分化作用”。

植物激素在此过程中起着重要的作用，吲哚乙酸（IAA ）和 6 –苄基氨基腺嘌呤（6 – BA ）的比例，决定了根和芽的分化。

植物组织经过脱分化作用，形成愈伤组织，经过再分化作用，愈伤组织又能重新分化为有结构的组织和器官，最终形成完整的植株。

早在1957 年Skoog 即发现培养基中植物激素的类型和它们的比例，对再分化过程起着重要的作用。

【材料】
烟草、花椰莱、胡萝卜、番茄等
【实验用品】
1、试剂：
（1）乙醇。

（2）IAA 或2,4 – D。

（3）HgCl 2 （或次氯酸钠）。

（4）6-苄基氨基腺嘌呤（6-BA）
（5）MS 培养基（见下表）。

MS培养基母液配制表（单位：mg）
2、仪器设备：培养室，高压灭菌锅，水浴锅，解剖刀，三角烧瓶（100mL ），烧杯，量筒，培养皿，棉线，接种箱或超净工作台，分析天平，长镊子，剪刀，容量瓶，移液管，牛皮纸。

【实验步骤】
1. 配制培养基：
（1）愈伤组织诱导培养基：MS 培养基（蔗糖含量为10 g/L，2,4 – D含量为2 mg/L，琼脂10 g/L ）。

（2）试验培养基：在MS 培养基中按表1 加入IAA 和6–BA 。

吲哚乙酸先用少量0.1 mol/L NaOH 溶解，6-苄基氨基腺嘌呤先用少量0.1 mol/L HCl 溶解，然后用蒸馏水稀释，再加入培养基中。

表 1 试验培养基中IAA 和6 – BA 含量
2. 培养基灭菌
将配好的培养基加入琼脂加热溶解，调至pH 5.8，趁热分装于100 mL 三角烧瓶中，每瓶约20 mL 。

待培养基冷却凝固后，用一层称量纸和一层牛皮纸包扎瓶（管）口，并用棉线扎牢，然后在高压灭菌锅中121℃（1 kg/cm2）下灭菌20 min 。

取出三角烧瓶放在台子上，冷却后备用。

接种操作所需的一切用具（如长镊子、解剖刀、剪刀等）及灭菌水，需同时灭菌。

3. 诱导产生愈伤组织
（1）取健壮的烟草茎数段，每段约 5 cm 长，于烧杯中用0.1% 氯化汞（升汞）浸泡20 min ，取出用无菌水洗3～4 次，置于无菌培养皿中，在接种箱中按无菌操作要求剥去外皮（接种箱事先用紫外灯灭菌30 min ），用解剖刀切成 5 mm 厚的圆片（弃去开始一片和最后一片），用长镊子将它接种在诱导培养基上，注意圆片的切口朝向培养基，每瓶接种 4 片，接种后扎好瓶口。

（2）将已接入植物组织（外植体）的三角烧瓶，培养在25 ℃温室中，每星期检查l～2次，剔除材料已被杂菌污染的三角烧瓶，3～4 周后产生愈伤组织。

（3）选取愈伤组织生长良好的三角烧瓶，用解剖刀将愈伤组织切下，转移到含有不同激素的试验培养基中（也可以连同原来的外植体一起转移），每瓶放1～2 块，仍培养在25 ℃温室中，每周1～2 次观察不同处理的三角烧瓶中，愈伤组织分化情况，直至长出根和芽。

长成的幼小植株即为“试管苗”，可移栽于花盆中。

【实验报告】
【思考题】
1. 植物激素与器官分化有何关系?
2. 组织培养技术有何生产实践意义?。