免疫实验免疫学和免疫检测技术试验培训课件

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免疫实验免疫学和免疫检 测技术试验
2、加于淋巴细胞分离液上层,离心:500g 20min
(小于1000rpm)
!沿管壁滴加
!淋巴细胞分离液取法
离心
单个核细胞 (斜面!)
3、吸出细胞,悬于营养缓冲液(1~2倍量含5IU/ml 肝素、2%灭活小牛血清的PBS液 ),离心:200g 10min,除去血小板。
37℃,1hr,洗涤液洗涤三次
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3、加酶标抗体、荧光标记抗体:
•所有ELISA各孔均加100ul(已稀释好,稀释倍数:2000
•各荧光孔不加酶标抗体,加荧光标记抗体100ul,(已稀释 好,稀释倍数:50)
•!!!注意!!! 荧光怕见光,注意避光,加液、保温时都要避光
4、洗涤:同样营免养疫实液验免洗疫涤学和2免次疫检,测洗技术去试 淋巴细胞分离
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液,离心: 500g 10min 验
5、检查细胞存活率: (1)将1滴细胞悬液和1滴台盼兰混匀,静置5-10分钟。 (2)上述混合液滴入细胞计数板,在显微镜下观察细 胞,计数活细胞数和死细胞数。
三、注意事项:
1。血液制品
5、酶标仪上测各孔492nm的光吸收。
打印直线附在实验报告上!
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实验三、纳米金免疫检测技术
一、实验原理:
以双抗体夹心法为例。
在硝酸纤维素膜的膜片上滴加纯化的抗体,为膜所吸 附。当滴加在膜上的标本液体渗滤过膜时,标本中含 抗原被膜上抗体捕获,其余无关蛋白等滤出膜片。其 后加入的胶体金标记的抗体也在渗滤中与已结合在膜 上的抗原相结合。因胶体金本身呈红色,阳性反应即 在膜中央显示红色斑点。
二、操作:
1、抗体包被:(同实验二)
2、加样本:同实验二,但在本实验中不做标准曲
线,样品加两个稀释浓度,如1:20,1:40,另外
加一个阳性对照(用人IgG标准),每孔做一个复
孔,加空白对照共计8孔。
3、加荧光抗体:从这里开始与实验二不同之处是
一定要记得避光操作。按照要求加入一定稀释度的
给蛋白质一定吸附时间,否则下步的洗涤有可能将蛋 白洗掉!)。
2. 洗涤、封闭:点加10ul 含1%BSA的PBS洗涤(BSA 作用是封闭),待干(注意别让BSA覆盖前一步抗 原),另点1个点(作为阴性对照)。
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3. 点加金标抗体: 金标记抗体稀释至1:25-1:50,点加10ul,即可在 阳性对照点处观察到红色斑点,而阴性对照则无。
•标准抗原1-5的浓度分别为: 50,100,200,300,500ng/ml (都从500ng/ml加,分别加10,20,40,60,100ul至各 孔,再分别补加90,80,60,40,0ul保温液即可)
•荧光各孔:阴性对照:Ab-Ag-FITC-Ab,阳性对照用 200ng/ml,500ng/ml
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三、注意事项:
1.斑点大小控制。 2.勿用力戳破膜。 3.给第一抗体和封闭蛋白(BSA)一定吸附时间。 4.把你的实验结果粘贴于实验报告上,报告测定结果, 指出阳性点和阴性点。
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实验四、免疫荧光检测技术
一、基本原理:
荧光双抗夹心法定位与定量抗原
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一、原理(续)
测定方法:
酶联免疫测定法应用非常广泛。具体操作方法随测定对 象及测定要求的不同而有很大差异。
液相 固相吸附测定法——酶联免疫吸附测定法(ELISA)简称 酶标法。
酶标法的基本测定方法有三类:
即间接法(抗原-抗体-酶标抗抗体) 双抗体(夹心)法(抗体-抗原-酶标抗体) 抗原竞争法。
18孔的安排:
ELISA
百度文库
荧光免疫
套上包装袋,
4℃过夜,
弃上清,以
洗涤液(200ul) 空 标准:S1-S5 阴 阳
洗涤三次,甩 干。
白 对 照
性性 对对 照照
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关于对照、平行!!! 验
2、加抗原:
!!!稀释抗原用加BSA的保温液稀释!!! 如上页图所示,加抗原,空白和荧光阴性对照加含BSA 的保温液
酶联免疫测定法实质上是将专一性很强的、十分 灵敏的、能够定量进行的抗原抗体结合反应与高催化效 能的酶促反应偶联在一起的一种分析方法。它除了用来 测定抗体外,原则上适用于一切可以诱导动物产生相应 抗体的抗原和半抗原物质的测定。其特点是专一性强, 灵敏度高,操作简便,无须特殊设备,特别适用于测定 成分复杂的体液及组织中的微量生命物质,而且几乎不 受其他物质的干扰。
2。注意将稀释后的血轻轻地沿管壁铺在细胞分离液上,
避免破坏其界面。
3。在收集单个核细胞时,预先将毛细滴管中的气体排
空,再将毛细滴管轻轻插入单个核细胞层,沿管壁轻轻
旋转吸取细胞,千万不能吹打,以免影响细胞的收集效
果。
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实验二、酶联免疫检测技术 (ELISA)
一、实验原理:
37℃,45min,取出后保温平衡10分钟,洗涤液洗涤三次, 荧光各孔可不洗
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4、观察荧光、ELISA各孔加底物:
一组同学观察荧光、一组同学加酶底物。 酶底物溶液要现配,由老师或同学代表配制一份即可。 各孔加100ul,37℃保温15min。
终止酶反应:各孔加4mlol/L硫酸50ul终止。
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本次实验检测血清IgG,应用的是双抗体夹心法。
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二、实验方法:
1、包被抗体: 包被抗体浓度为:用包被液稀释(包被聚苯乙烯要
在偏碱性条件下进行,所以该包被液用pH9.6的碳酸盐 缓冲溶液)抗体至10或20ug/ml,每孔加100ul。加18孔
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一、实验原理
本实验不用夹心法,直接加抗原,再加金标抗体。
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二、实验操作:
1. 点加抗原:(人IgG): 在硝酸纤维素膜下垫吸水材料(卫生纸),用微量移 液器取3ul抗原溶液点于硝酸纤维素膜上,注意点样 时要逐次点于膜上,待前次所点液体渗入后再继续点, 不要使斑点太大,同时注意不要太用力将膜点破,致 使斑点太大。 烤干或吹干,保证抗原能够吸附到膜上,
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