过氧化物酶同工酶的提取分离

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实验五 聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分析(实验报告)

实验五  聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分析(实验报告)

实验五聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分析小麦幼苗过氧化物酶同工酶生物111班杨明轩1102040128一、研究背景及目的过氧化物酶是以过氧化氢为电子受体催化底物氧化的酶,具有消除过氧化氢和酚类、胺类毒性的双重作用。

它与呼吸作用、光合作用及生长素的氧化等都有关系,在种子萌动以前,它们的过氧化物酶同工酶很少,待幼芽长到0.5 -1 厘米以后,它们的过氧化物酶才得到充分的表达。

这说明植物过氧化物酶同工酶的多寡和有无,与植物不同发育时期,与植物的不同组织、器官的分化形成及特定的生理状态等均有密切关系。

而同工酶是指能催化同一种化学反应,但其酶蛋白本身的分子结构组成却有所不同的一组酶。

大多数基因性同工酶由于对底物亲和力不同和受不同因素的调节,常表现不同的生理功能。

它们存在于生物的同一种属或同一个体的不同发育阶段,或同一发育阶段的不同组织,在细胞发育和代谢调解中起重要作用。

在动、植物中,一种酶的同工酶在各组织、器官中的分布和含量不同,形成各组织特异的同工酶谱,体现各组织的特异功能,这一特点可用于研究物种进化、遗传变异、杂交育种和个体发育、组织分化等。

品种资源工作者借助同工酶分析品种的地理分布与亲缘关系来指导品种资源的收集与鉴定工作。

育种工作者常用同工酶来作为鉴定植物的种间杂交, 特别是远缘杂交的生化指标。

在医学方面,同工酶是研究癌瘤发生的重要手段。

要对同工酶展开研究,首先要实现对它的分离,因此要选择合适的分离技术。

基于“差异转化”的思路,层析和电泳是两种最为常见的大分子分离方法。

但由于二者技术细节上的差异,层析更常用于大分子的分离纯化,而电泳则主要用于大分子的分离检测。

因此在本次实验中,我们采用不连续的聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分析小麦幼苗中的过氧化物酶同工酶。

同时本实验利用电泳现象对过氧化物同工酶进行分离纯化和分析鉴定,通过电泳技术的实际操作体会电泳技术的原理和特点,比较分析电泳技术和其它分离技术如层析技术的不同,进一步学习应用更为广泛和纯化水平更高的分离技术。

过氧化物酶(POD)同工酶聚丙烯酰胺凝胶电泳

过氧化物酶(POD)同工酶聚丙烯酰胺凝胶电泳

过氧化物酶(POD)同工酶聚丙烯酰胺凝胶电泳一、目的1、了解聚丙烯酰胺凝胶电泳原理。

2、了解聚丙烯酰胺凝胶的制作过程。

3、了解过氧化物酶同工酶电泳过程。

二、实验原理:1、聚丙烯酰胺凝胶电泳原理及影响电泳的主要因素带电粒子在电场中向与其自身带相反电荷的电极移动,这种现象称为电泳。

用电泳技术分离、分析蛋白质、酶、核酸等生物大分子,有较高的分辨率,目前已成为生物科学研究中必不可少的手段之一。

带电离子在电场中的泳动速度(1)和迁移率(泳动度)(2)由(2)式可以看出,凡能影响溶液粘度η的因素如温度,影响分子带电量q及解离度a的因素如pH的改变,都会对迁移率产生影响。

因此,电泳应尽可能在恒温条件下进行。

并选用一定pH的缓冲液。

同时,所选用的pH以能扩大各种被分离物质所带电荷量的差异为好,以利于分离各种成分。

迁移率与粒子的大小(r)有关,非球形粒子(如DNA)在电泳过程中会受到更大的阻力,即粒子的移动速度还与粒子形状有关。

另外,迁移率还受电渗现象的影响。

所谓电渗是指在电场中,液体对于固体支持物的相对移动。

例如在纸电泳中,由于滤纸(纤维素)上带有负电荷,因感应相吸而使与滤纸相接触的水溶液带正电荷,从而使液体向负极移动,带动着本来是向负极泳动的物质以更快的速度移动。

因此,电泳时应避免用高电渗物质作支持介质。

聚丙烯酰胺凝胶结构中不带电荷,在电场中电渗现象极为微小。

这些特点,使得聚丙烯酰胺凝胶适合作区带电泳的支持介质。

最后,要考虑选用离子强度适宜的溶液。

一般低离子强度比较合适,因为此时导电性低,产生的热量较少。

同时可使被分离的带电离子对电流贡献最大从而加快电泳速度。

但也不能过低,它必须可以缓冲被分离样品中带电离子对凝胶pH的影响,且过低的离子强度易导致蛋白质凝聚。

一般最适的离子强度在0.01~0.1mol/L之间。

最常见的为0.05。

在稀溶液中,离子强度Ⅰ可用下式计算:Ⅰ=1/2ΣmiZi2 (3)(3)式中,mi为离子的摩尔浓度,Zi为离子的价数。

几种植物中的过氧化物酶同工酶分析1)

几种植物中的过氧化物酶同工酶分析1)
?m1 3
将胶浸入染 色液 中 5 0 神,取 出置 一1 分
于 永 中^ 沈 , 止染 色。 ` ' 停
将胶 置于醋酸 缓冲液中沁 2 分钟, 。 再浸 入染色液中,2℃ 保佩染色 2 6 0 5 0分钟 - 后, 取出 , 水漂洗。
1 酷酸联苯 ) 胺炸液:2 克联茉胺溶于 1 毫升醋酸中, 7 毫升水。 8 加 2
电泳在冰箱或低于 1 ℃ 的 室 温 下 进 行。 5
力水至 10 i 」 0n1 1 . 斗 % F 过硫酸 按( . 用前配划 、F Tr- . i 泞檬酸缓冲 液忿 s
1. 呢 , 4 Irs 5. 8 + 柠 檬 酸 i 1 5
10 ; .g
加水至 1 0 1P R9 0 m, . 0 H
'rs .q r 3 0 ; i 0
Trs 2 ; i6 g .
甘氨l 1・ ; , 斗斗 n : 9
甘氨酸 20; . k
至凝胶下端 0 -1厘米处停止电泳。 电泳 时 . 5
间约 9- 10分钟。 0 0 过氧化物R 同工醉 的染色鉴定方 法 很 多,
染 色 方 法 染 色
加水至 10r ,爪 }3 加水至 10ml H .; 0 0 l 1 . : n 00 , h7 p 使用时杯释 1 信- 0 随用时稀释 5倍
个过氧化物酶同工酶相对活性的维生素 C 一联 苯胺染色法阁。 近些年来又较多地采用了丁子
香酚 (ue l Eg o n )一类夭然物作底物的新染
色法[ 9 1 c 近年来, 由于同工酶测定、 分析技术在遗传
1 )本工 作曾得到龚葵 同志的指导, 特致谢意 , 2 黄寿松:西北植物研究所进修人员。 )
离心(50.. 1 分钟, 30 :pm)5 . 取上清液, 混人等

(整理)生化实验分析

(整理)生化实验分析

果蔬成分生化分析果蔬成分的分析主要分为四个方面:维生素C含量的测定、总糖和还原糖含量的测定、蛋白质含量的测定、过氧化物酶的分析。

总体从实验目的、实验原理、实验试剂、实验结果和分析的角度进行分析一.实验目的:1、掌握微量测定维生素C的方法和技术。

2、了解果蔬中维生素C含量。

3、掌握总糖和还原糖含量的测定方法。

4、掌握蛋白质测定的方法和技术。

5、了解果蔬中蛋白质的含量。

6、了解聚丙烯酰胺凝胶的制作过程及结构特点。

二.实验原理:1.还原型维生素C可被氧化型2,6-二氯酚靛酚(下面简称染料)所氧化,成为氧化型维生素C。

氧化型染料在中性或碱性溶液中呈蓝色,在酸性溶液中呈红色。

成为还原型后为无色。

用氧化型染料来滴定还原型维生素C,当滴至全部还原型维生素C被氧化后,在稍滴一点呈微红色为终点。

滴定用去染料量与样品中还原型维生素C量成正比。

(此法虽简单迅速,但氧化型染料亦能使其他还原型物质氧化,所以有一定缺点。

)2.蒽酮比色法是一个快速而简便的定糖方法。

其原理:糖类在较高温度下可被硫酸脱水成糠醛或糠醛衍生物,再与蒽酮缩合成蓝色化合物,在620nm处有最大吸收。

多糖为非还原糖,可用酸将没有还原性的多糖和寡糖彻底水解成具有还原性的单糖,再利用还原糖的性质进行测定,这样就可分别求出总糖和还原糖的含量。

3. 考马斯亮蓝法测定蛋白质浓度,是利用蛋白质-染料结合的原理,定量的测定微量蛋白浓度的快速、灵敏的方法。

考马斯亮蓝G-250存在着两种不同的颜色形式,红色和蓝色。

考马斯亮蓝G-250在酸性游离状态下呈棕红色,最大光吸收在465nm,当它与蛋白质结合后变为蓝色,最大光吸收在595nm。

在一定的蛋白质浓度范围内,蛋白质-染料复合物在波长为595nm处的光吸收与蛋白质含量成正比,通过测定595nm处光吸收的增加量可知与其结合蛋白质的量。

蛋白质和考马斯亮蓝G-250结合,在2min左右的时间内达到平衡,完成反应十分迅速,其结合物在室温下1小时内保持稳定。

过氧化物酶同工酶电泳分析(经典有用)

过氧化物酶同工酶电泳分析(经典有用)

过氧化物酶同工酶电泳分析实验原理(1)凝胶板由上、下两层胶组成,两层凝胶的孔径不同。

上层为大孔径的浓缩胶,下层为小孔径的分离胶。

(2)缓冲液离子组成及各层凝胶的pH不同。

本实验采用碱性系统。

电极缓冲液为pH8.3的Tris-甘氨酸缓冲液,浓缩胶为pH6.7的Tris-HCl缓冲液。

而分离胶为pH8.9的Tris-HCl缓冲液。

(3)在电场中形成不连续的电位梯度。

在这样一个不连续的系统里,存在三种物理效应,即电荷效应、分子筛效应和浓缩效应。

在这三种效应的共同作用下,待测物质被很好地分离开来。

下面以本实验要分离的小麦苗过氧化物酶同工酶为例,分别说明三种效应的作用:(1)电荷效应:各种酶蛋白按其所带电荷的种类及数量,在电场作用下向一定电极,以一定速度泳动。

(2)分子筛效应:分子量小,形状为球形的分子在电泳过程中受到阻力较小,移动较快;反之,分子量大、形状不规则的分子,电泳过程中受到的阻力较大,移动较慢。

这种效应与凝胶过滤过程中的情况不同。

(3)浓缩效应:待分离样品中的各组分在浓缩胶中会被压缩成层,而使原来很稀的样品得到高度浓缩。

其原因如下:①由于两层凝胶孔径不同,酶蛋白向下移动到两层凝胶界面时,阻力突然加大,速度变慢。

使得在该界面处的待分离酶蛋白区带变窄,浓度升高。

②在聚丙烯酰胺凝胶中,虽然浓缩胶和分离胶用的都是Tris-HCl缓冲液,但上层浓缩胶为pH 6.7,下层分离胶为pH 8.9。

HCl是强电解质,不管在哪层胶中,HCl几乎都全部电离,Cl-布满整个胶板。

待分离的酶蛋白样品加在样品槽中,浸在pH8.3和Tris-甘氨酸缓冲液中。

电泳一开始,有效泳动率最大的Cl-迅速跑到最前边,成为快离子(前导离子)。

在pH6.7条件下解离度仅有0.1~1%的甘氨酸(pI = 6.0 )有效泳动率最低,跑在最后边,成为慢离子(尾随离子)。

这样,快离子和慢离子之间就形成了一个不断移动的界面。

在pH6.7条件下带有负电荷的酶蛋白,其有效泳动率介于快慢离子之间,被夹持分布于界面附近,逐渐形成一个区带。

生化实验四--果蔬中过氧化物酶分析

生化实验四--果蔬中过氧化物酶分析

五,操作
1,贮液配制(已完成) ,贮液配制(已完成) 2,安装电泳槽(安装,封底) ,安装电泳槽(安装,封底)
3,制胶(分离胶,光聚合,浓缩胶) ,制胶(分离胶,光聚合,浓缩胶) 拔出梳子,倒入电极缓冲液,备用. 拔出梳子,倒入电极缓冲液,备用. 4,过氧化物酶的提取 , 按下列比例称取果蔬: 按下列比例称取果蔬: 冬 枣 , 柚 子 , 梨 : 1:2 ; 萝 卜 , 盘 菜 : 1:10 ( W:V) , 剪碎 , 放入研钵中 , 加适量石英砂及 ) 剪碎, 放入研钵中, 样品提取液于冰浴上研磨成匀浆, 置于离心管中, 样品提取液于冰浴上研磨成匀浆 , 置于离心管中 , 研钵用少量提取液清洗,洗液并入离心管,以 14000r/min的转速离心 / 的转速离心15min,取上清液贮存于低 的转速离心 , 温冰箱备用. 温冰箱备用.
三,实验步骤
1,取上述样品提取液 , 取上述样品提取液2.5mL,定容至 刻度, , 定容至50mL刻度, 备 刻度 用(仅指萝卜与盘菜,冬枣,柚子与梨不稀释). 仅指萝卜与盘菜,冬枣,柚子与梨不稀释) 2, 取光径 , 取光径1cm比色皿 只 , 于 1只中加入反应混合液 比色皿2只 比色皿 只中加入反应混合液 3mL和磷酸缓冲液 和磷酸缓冲液1mL, 作为对照 , 另 1只中加入反 和磷酸缓冲液 , 作为对照, 只中加入反 应混合液3mL和上述酶液 和上述酶液1mL(如酶活性过高可稀释 应混合液 和上述酶液 ( 立即开启秒表记录时间, 之),立即开启秒表记录时间,于分光光度计上测量 波长470nm下吸光度值 , 每隔 下吸光度值, 每隔1min读数一次 ( 连读 读数一次( 波长 下吸光度值 读数一次 5min,取平均值). ,取平均值)
四,试剂与材料
A(分离胶缓冲液) 1mol/L HCL (分离胶缓冲液) / /100mL Tris TEMED B(浓缩胶缓冲液) 1mol/L HCL (浓缩胶缓冲液) / /100mL C(分离胶贮液) (分离胶贮液) 贮液 /100mL D(浓缩胶贮液) (浓缩胶贮液) 贮液 /100mL Tris TEMED 丙烯酰胺 丙烯酰胺 48mL 36g 24L 48mL 5.9g 48L 30g pH 8.9 pH 6.7 pH 8.9

烯酰胺凝胶电泳分离过氧化物同工酶

烯酰胺凝胶电泳分离过氧化物同工酶

实验八 聚丙烯酰胺凝胶电泳分离过氧化物同工酶一、实验目的1 学习聚丙烯酰胺凝胶电泳原理。

2 掌握聚丙烯酰胺凝胶垂直板(及同盘)电泳的操作技术。

3 掌握同工酶定义、理化性质的差异,了解过氧化物酶的染色原理。

4 掌握过氧化物酶的活性的测定。

二 实验原理聚丙烯酰胺凝胶是由单体丙烯酰胺(Acr )和交联剂(即共聚体的N,N -甲叉双丙烯酰胺 Bis )在加速剂(N,N,N ’,N ’-四甲基乙二胺 TEMED )和催化剂(过硫酸胺 (NH 4)4S 2O 8 简称AP )的作用下聚合交联成三维网状结构的凝胶。

(一)聚丙烯酰胺凝胶聚合原理及相关特性1 聚合反应聚丙烯酰胺是由Acr 和Bis 在催化剂(AP )或核黄素(C 17H 20O 6N 4)和加速剂(TEMDA )的作用下聚合而成的三维网状结构。

催化剂和加速剂的种类很多,目前常用的有2种催化体系:① AP-TEMED 属化学聚合作用② 核黄素-TEMED 属光聚合作用2 凝胶孔径的可调性及其相关性质① 凝胶性能与总浓度及交联度的关系凝胶的孔径、机械性能、弹性、透明度、粘度和聚合程度取决于凝胶总浓度和Acr 与Bis 之比: 00100a bT m +=⨯ a:b<10 脆硬乳白交联度: 00100bc a b =⨯+ a:b>100糊状易断② 凝胶浓度与孔径的关系T (Acr 和Bis 总浓度)增加 孔径减小 移动颗粒穿过网孔阻力增加③ 凝胶浓度与被分离物分子量的关系分子量增加 阻力增加 移动速度减慢。

同时还与分子形状及分子电荷有关系。

在操作时,可以选用007.5凝胶。

因为生物体内大多数蛋白质在此范围内电泳均可取得满意的结果。

3 试剂对凝胶聚合的影响水中金属离子或其他成分对凝胶电泳的电泳速度、分离效果等有影响。

(二)聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE )原理根据有无浓缩效应可分为:连续系统:电泳体系中由于缓冲液PH 值及凝胶浓度相同,带电颗粒在电场中主要靠电荷及分子筛效应。

不同光照条件下龙眼体胚发生过程中过氧化物酶同工酶酶谱分析

不同光照条件下龙眼体胚发生过程中过氧化物酶同工酶酶谱分析

1 : 比例加入 提取缓 冲液以及 少许石英 砂 ( 4的 见表 1, 浴充 分研磨 , )冰 然后将提 取液转移 到 1m 0 L离心
管 中 ,℃,20 g 离 心 2ri。取上清液 , 4 10 0 , 0 n a 分装后 , 于一 0 2 ℃冰柜 保存 ( 凝胶贮 藏液见表 2 。 )
了很 大的变化 。酶 带数 量总的 变化趋 势是胚性愈 伤组织谱 带条 数较 少, 形胚发 生过 程 中增 多。 球 到
了子叶形胚后谱 带条数 又减 少; 同光照条件 下 , 不 蓝光 的谱 带条数 最 多, 明不 同光 照条件对龙 眼 说 体 细胞胚胎 发生有不 同效应, 意味 着蓝 光条件 下体 细胞胚胎 内物质代谢是 最活跃 的 , 蓝光对体 细胞
时结束 。电泳须在 4C 箱 中进行 5 7 。 q冰 — h 分离胶 : C: : = : 1 4 T 77 A: H G I 2: : , = . %
林小苹 一赖钟雄 t ,
(. 建农 林 大 学 园艺植 物 生 物 工程 研 究 所 I福 福 建福 州 3 00 : 5 0 2
2 漳州城市职业学院 福建漳州 3 30 ) . 60 0
摘要 : 验 以龙 眼胚性愈伤组 织为材料 , 究不 同光 照条件对龙 眼体 细胞胚胎发生各 阶段 过氧 试 研 化物酶 ( O 同工酶 的影 响。结果表 明: P D) 龙眼体 细胞 胚胎发 生各 阶段 过氧化物酶 ( O 同工酶 出现 P D)
熟 而发生 规律性 的变化 。 这种变化在一定 程度上反 映 了植物在发 育过程 中基 因表达 的时空顺 序性 。 因 而 同工酶 的酶谱特 征可 以作 为植 物组 织培养 的一
绿光 、 自光 四个不 同光照条 件处理 。将不 同发育阶

过氧化物酶

过氧化物酶
综合性实验
植物体内过氧化物酶活性测定及同工酶电泳
过氧化物酶活性测定
一、原理
1. 过氧化物酶[perox idase, POD] : 广泛存在于各种动物、植物和微生物 体内。催化由过氧化氢参与的各种还原剂的氧化反应: RH2+ H2O2→2H2O + R 2. POD 分子结构特点:POD 是一种由单一肽链与卟啉构成的血红素蛋白, 脱 辅基蛋白分子须与血红素结合才构成全酶。
3. POD的主要生理功能: ◆ 参与活性氧代谢过程; ◆ 参与木质素和木栓质的合成; ◆ 参与生长素的降解。
二、实验材料与试剂 1.材料:玉米幼苗
2.试剂: 0.1mol/L 磷酸缓冲液(pH6.0);0.1mol/L 磷酸缓冲液(pH7.0) 愈创木酚; H2O2
三、实验步骤
1. 提取酶液:取样品1.0g,加入2ml的0.05mol/L pH5.5的磷酸缓冲液,冰浴研 磨,10000rpm,4℃离心后取上清,即为粗酶液。 2. 酶活性测定:采用愈创木酚比色法测定,对照为煮沸5分钟的粗酶液,反应 体系包括:0.05mol/L pH5.5的磷酸缓冲液2.9ml;0.05 mol/L愈创木酚1ml; 2%H202 1ml;粗酶液0.1 ml,反应1分钟后,立刻在470nm下,测定OD值。 以每分钟在470nm处吸光度的变化0.01为一个酶活单位。 3. 计算酶活性:选取OD值变化较均匀的一段数据,代入公式计算; 以每分钟OD值变化0.01作为1个过氧化物酶活力单位(U)。
二、材料、仪器设备及试剂
1.材料:玉米幼苗
2.仪器设备:稳流稳压电泳仪;冷冻离心机及离心管; pH试纸; 3.试剂: (1)分离胶缓冲液(pH8.9):1mol/L HCl 48ml,Tris36.6g, TEMED0.23ml,加水定容 至100ml。 (2)分离胶贮液:30g丙烯酰胺,0.8g甲叉双丙烯酰胺,加水溶解并定容至100ml,过滤 后使用。 (3)过硫酸铵溶液:过硫酸铵0.2g,加水定容至100ml制胶时现配现用)。 (4)浓缩胶缓冲液:1mol/L HCl48ml+Tris5.98g+TEMED0.46ml,调pH6.7,并定容至 100ml。 (5)浓缩胶贮备液:丙烯酰胺10g,甲叉双丙烯酰胺2.5g,加水定容到100ml,使用前过滤。 (6)电极缓冲液:Tris 6.0g,Gly 28.8g, 用水定容至1000ml(pH8.3),用前稀释10倍。 (7)四甲基乙二胺(TEMED)。 (8)0.1%的溴酚蓝水溶液。 (9)联苯胺染色母液:联苯胺1g+冰醋酸18ml+H2O2ml溶解贮于棕色瓶中。

植物过氧化物酶的提取、

植物过氧化物酶的提取、
蓝(Coomassie Brilliant Blue) 法测定蛋白质浓度的原理和方法。
试剂
考马斯亮蓝试剂; 标准和待测蛋白质溶液
器材

试管及试管架, 移液管(0.1ml及5ml),UV- 2000型分光光度计。
操作方法:取6支试管,按下表制定标准曲线。
试管编号 0.1mg/ml 标准蛋白溶液/ml 0.15mol/L NaCl/ml 每管中蛋白质浓度μ g/ml 考马斯亮蓝 G250 溶液 A595nm 0 0 1.0 0 1 0.2 0.8 20 2 0.4 0.6 40 5ml 3 0.6 0.4 60 4 0.8 0.2 80 5 1.0 0 100
四、植物过氧化物同工酶电泳技术
实验原理 同工酶(isozymes)是指作用于底物相似或完全相同的 酶的不同分子形式,即催化同一种反应而结构不同的一 族酶。它们是受遗传体系决定的酶的不同分子形式。利 用凝胶电泳技术(PAGE)可以将它们分开,用专一的 作用底物和特殊染料,把需要分析的酶染色,在胶柱上 呈现同工酶谱。 实验目的 通过实验掌握植物同工酶实验技术,了解植物同工酶分 析在遗传学研究中的意义。 着重掌握过氧化物酶的提取,电泳与染色技术和分析方 法。
2010年9月
一、植物过氧化物酶的提取
目的要求 学习制备植物过氧化物酶粗酶液的原理和方法 为后续实验提供酶液。 器材与仪器 电子天平; 冰冻高速离心机; 可见光分光光度计; 电动玻璃匀浆机等。 试剂 20mM KH2PO4, 100mM PBS:取0.2M 的Na2HPO4 12.3ml与0.2M的 NaH2PO4 87.7ml混合。加入100ml水稀释即成。
三、植物过氧化物酶活性的测定(比色法)
原理

植物过氧化物酶同工酶测

植物过氧化物酶同工酶测
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
植物过氧化物酶同工酶测定
(园盘式凝胶电泳法)
一、原理
聚丙烯酰胺凝胶由丙烯酰胺(Acr)和交联 剂甲叉双丙烯酰胺(Bis)在催化剂作用下聚合而 成,具有三维网状结构,其网孔大小可由凝胶 浓度和交联度加以调节。凝胶电泳兼有电荷效 应和分子筛效应。被分离物质由于所载电荷数 量、分子大小和形状的差异,在电泳时会产生 Desig不ned b同y XK的Wan泳g 动速率而相互分离。
(四)点样 Designed(by X五K W)an电g 泳
5
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
(六)剥胶 电泳完毕,将电泳槽取出,倒去缓冲液,取下凝胶
管,放入培养皿中。用一个带有长针头的注射器,吸满 水,将针头沿管壁插入,同时慢慢地将注射器中的水推 出,并不断转动凝胶管,将凝胶管挤脱出来。 (七)染色
1
资料仅供参考,不当之处,请联系改正。
过氧化物酶是植物体内常见的氧化酶, 植物体内许多生理代谢过程受其同工酶的种 类及活性的调节。同工酶具有不同的迁移速 度。
将电泳后的凝胶置于含有H2O2及联苯胺 的溶液中染色,利用过氧化物酶催化H2O2分 解并把联苯胺氧化成蓝色或棕褐色产物的原 理,出现的蓝色或棕褐色条带即为过氧化物 酶同工酶在凝胶中存在的位置,多条有色带 Designe即d by构XK W成ang过氧化物酶同工酶酶谱。
4.四甲基乙二胺(TEMED)。 5.电极缓冲液:Tris6.0g,Gly(甘氨酸) 28.8g,用水定容至1000mL(pH8.3),用前稀释 10倍。 6. 3% H2O2。 7. 联苯胺染色母液:联苯胺1g + 冰醋酸 18mL+ H2O 2mL溶解后贮于棕色瓶中。 8.同工酶染色液:配后立即使用。取0.5mL 联苯胺母液 Designed by XK Wang + 9.3mL H2O +0.2mL 3% H2O2。

聚丙烯酰胺凝胶电泳分析过氧化物酶同工酶

聚丙烯酰胺凝胶电泳分析过氧化物酶同工酶

实验五 聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分析过氧化物酶同工酶一、目的同工酶是指能催化同一种化学反应, 但其酶蛋白本身的分子结构组成却有所不同的一组 酶。

它们是 DNA 编码的遗传信息表达的结果。

最近的研究表明,同工酶与生物的遗传、生 长发、代谢调节及抗性等都有一定的关系。

因此,测定同工酶在理论上和实践上都有重要的 意义。

用聚丙烯酰胺凝胶电泳测定同工酶,方法简便、灵敏度高,重现性强,测定结果便于 观察、记录和保存。

过氧化物酶是植物体内普遍存在的、活性较高的一种酶。

它与呼吸作用、光合作用及生 长素的氧化等都有关系。

在植物生长发育过程中它的活性不断发生变化。

因此,测定这种酶 的活性或其同工酶的变化情况,可以反映某一时期植物体内代谢的变化。

本实验采用聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳技术,分离小麦幼苗过氧化物酶同工酶,根据酶 的生物化学反映,通过染色方法显示出酶的不同区带,以鉴定小麦幼苗过氧化物酶同工酶。

通过本实验,主要要掌握电泳技术的原理、方法、设计、装置、凝胶配制等问题,熟悉所有 的操作过程,另外,对同工酶有一个感性的认识。

二、原理1.电泳现象带电粒子在电场中向与其自身带相反电荷的电极移动,这种现象称为电泳。

由于带电胶粒或分子中各种成份,所具有的电荷和分子量不同,在电场中将以不同的速 度移动,因而在电泳进行过程中,不同的成份将按照各自的迁移速度得到有效的分离。

2.影响电泳的主要因素若将带净电荷 q 的粒子放入电场,则该粒子所受到的引力 F 引可用数学式表示如下:F 引 =E × q (1)式中 E 为电场强度,单位为“伏特/厘米” ,表示电场中单位距离上的电位差。

如果这种情况发生在真空中,则带电粒子会朝着电极加速前进并且最后与电极相撞。

但 在溶液中,由于电场的牵引力 F 引与加速运动的粒子和溶液之间产生的阻力(即摩擦力)F 阻 相对抗,故上述现象不会发生。

根本 Stokes 公式,阻力的大小取决于粒子的大小和形状以 及所在介质的粘度:F 阻 = 6pghn(2) 式中 F 阻是球形粒子所受的阻力,g 是球形粒子的半径,h 是溶液的粘度,n 是粒子移动的速度。

实验五聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分析小麦幼苗过氧化物酶同工酶(实验报告)

实验五聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分析小麦幼苗过氧化物酶同工酶(实验报告)

实验五聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分析⼩麦幼苗过氧化物酶同⼯酶(实验报告)⽣物化学实验报告实验五聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分析⼩麦幼苗过氧化物酶同⼯酶⼀、研究背景及⽬的电泳现象就是带电粒⼦在电场中向与其⾃⾝带相反电荷的电极泳动。

电泳技术最初是由瑞典的著名科学家Tisellius所奠基,⾃此⽣物⼤分⼦的分离纯化便进⼊了电泳技术的新纪元。

电泳技术的发明是⼈们在分离纯化技术中的“差异转换”思路上⼜⼀次伟⼤的飞跃。

⼈们清楚地意识到,要想使⽬标物得到分离,⽬标物与杂质之间的性质差异必须⾜够⼤,这⼜与某些性质差异⼩的物质的分离相⽭盾,⽽⼈为放⼤这些差异⼩的性质必然会破坏⽬标物的原有结构,因此需要借助第三者进⾏差异转化,即以其⾃⾝的性质为基础,转化为其他⽅⾯差异⼤的性质。

电泳技术就是利⽤⼀些⽣物⼤分⼦的电性特点,在⼀定的条件下使被分离物之间很⼩的差异转化为⾃⾝所带电荷性质与数量的差异,在外加电场的作⽤下便会体现出迁移⽅向及速度上的差异,通过时间上的积累进⽽体现为迁移距离的差异。

最初的电泳技术是在溶液中进⾏的⾃由电泳,后来⼈们想到,由于待分离物的⼤⼩、形状也存在差异,那么它们在电场中泳动的过程中必然会受到不同的阻⼒,这种阻⼒的差异⼜转化为了电场中迁移速度的差异,所以⼈们便发明了各种⽤于电泳的载体(⽀持介质),使分⼦的⼤⼩及形状差异得以转化和体现,⼤⼤提⾼了分辨率。

⾄此,电泳技术的基本理论就建⽴了。

此后,在实际操作中,⼈们不断进⾏探索、改进与完善,发明了诸多的电泳新技术,使电泳成为⼀项⽣物⼤分⼦分离纯化中令⼈瞩⽬的研究技术。

本实验基于电泳的基本原理对⼩麦过氧化物酶同⼯酶进⾏分离,旨在学习并掌握电泳技术的发明历程以及操作过程中的相关细节,同时更为深刻地理解⼀项新技术在实际应⽤中不断修正与完善的过程,体会电泳和层析两⼤技术各⾃的特点和优势。

⼆、原理[1]1.过氧化物酶同⼯酶同⼯酶是催化同⼀种化学反应,但其酶蛋⽩本⾝的分⼦结构组成却有所不同的⼀组酶。

植物过氧化物同工酶的聚丙烯酰胺凝胶电泳实验指导

植物过氧化物同工酶的聚丙烯酰胺凝胶电泳实验指导

植物过氧化物同工酶的聚丙烯酰胺凝胶电泳【目的】1.掌握聚丙烯酰胺凝胶电泳的原理及操作过程。

2.了解聚丙烯酰胺圆盘电泳的实际应用,利用此法分离植物过氧化物同工酶。

【概述】1.聚丙烯酰胺凝胶电泳聚丙烯酰胺凝胶电泳是以聚丙烯酰胺凝胶作为支承物的一种电泳技术。

其凝胶是由丙烯酰胺单体和交联剂甲叉双丙烯酰胺在催化剂的作用下聚合交联而成的三维网状结构。

凝胶网孔的大小可通过改变单体浓度和交联剂浓度的比例加以调节,常用的所谓标准凝胶是指含丙烯酰胺7%~7.5%的凝胶,大多数生物体内的蛋白质在此凝胶中电泳能达到满意的结果。

聚丙烯酰凝胶电泳过程中除了一种电泳所具有的电荷效应外,还具有“分子筛”效应;不连续的凝胶电泳过程中具有电荷效应、分子筛效应和浓缩效应。

不连续凝胶电泳体系的不连续性体现在:(1)凝胶由上、下两层组成,两层胶孔孔径不同。

上层为大孔径的浓缩胶,下层为小孔径的分离胶。

(2)缓冲液离子组成及各层凝胶的pH 值不同。

如常用的碱性系统中,电极缓冲液为pH8.3的Tris-甘氨酸缓冲液,浓缩胶为pH6.7的Tris-HCl 缓冲液,分离胶为pH8.9的Tris-HCl 缓冲液。

(3)在电场中形成不连续的电位梯度。

在这种不连续的系统中有三种物理效应起作用,使样品分离效果好、分辨率高。

这三种效应是电荷效应、分子筛效应和浓缩效应。

① 电荷效应 由于各种蛋白质分子所载有效电荷不同,因而在一定电场作用下迁移率不同。

承载有并效电荷多的,泳动的快,反之则慢。

CH 2CH C=O NH 3CH 2=CH C=O NH CH 2NH C=O CH 2+CH 2CH C=O NH 3CH 2CH C=O NH 3C=O NH CH 2NH C=O CH 2CH 2CH [[]]nn 催化剂② 分子筛效应 因为聚丙烯酰胺具有网孔结构,所以直径大,形状不规则的分子,电泳时通过凝胶受到的阻力大,移动较慢;分子量小,形状为球形的分子在电泳过程中受到的阻力小移动较快。

植物过氧化物酶提取及电泳

植物过氧化物酶提取及电泳

菜心的花和叶的过氧化物酶的提取、活性测定及同工酶的凝胶电泳分析广州大学生命科学学院洪韬文生物工程1121114200044摘要:本实验分两部分,1:过氧化物酶的提取,:用考马斯亮蓝试剂进行酶液蛋白质浓度的测定,根据标准曲线的方程式,计算出样品的蛋白质含量;2::通过过氧化物酶活性的测定(愈创木酚氧化比色法),测出的OD值计算出酶活性数值,接着对同工酶的凝胶电泳分析,使它在胶柱上呈现同工酶谱,得出最终实验结果,通过数据记录和拍照记录最终结果。

关键字:过氧化物酶蛋白质OD值同工酶凝胶电泳前言:本实验是在完成基础生物化学实验以后,学生综合运用已经学过的生物化学实验理论和已经掌握的生物化学实验技术进行的一项综合性设计性实验,也是对学生实验动手能力的一次较全面的检验。

POD是一种由单一肽链与卟啉构成的血红素蛋白,脱辅基蛋白分子需与血红素结合才构成全酶。

参与植物POD血红素的合成部位可能象动物一样是在线粒体上。

POD 是一种氧化还原酶,它是由微生物或植物所产生的一类氧化还原酶,POD广泛存在于植物体内,是一种活性较高的一种酶,它与植物的呼吸,光合作用以及生长起着很大的作用。

材料和方法:材料:菜叶,菜花方法:1.植物POD的提取分别称取菜心的花和叶各1~2克,然后剪碎,分别放入研钵,向研钵中加入少许石英砂和3ml KH2PO4,快速研磨,后分别加入离心管中进行离心,离心条件为8500rpm,时间为15分钟。

离心完毕后取上清液,并定容至10ml(刻度试管),***此液即为POD提取液,取5ml冷冻保存,作为电泳的POD样品。

2.蛋白浓度的测定—考马斯亮蓝法标准曲线的制定制作标准曲线回归方程:Y(含量)=aX(OD595值) + b,得出相关系数R2。

3.样品蛋白浓度的测定根据标准曲线的方程式,计算出样品的蛋白质含量。

4.过氧化物酶活性的测定(愈创木酚氧化比色法)备好酶液,将分光光度计调到470nm,取光径1厘米的比色杯2只,向对照杯加反应混合液2.0 ml,KH2PO4 0.5ml,校零点。

过氧化物酶同工酶的提取分离

过氧化物酶同工酶的提取分离

(3)凝胶的质量决定因素:
(1)凝胶度:
是指100mg凝胶溶液中含有单体(Acr)和交联剂 (Bis)的总克数,用T%表示。
(2)交联度:
是指凝胶溶液中,交联剂占单体和交联剂总量的 百分数,用C%表示。 一般浓缩胶的浓度为7.5%,分离胶的浓度为10%。
聚丙烯酰胺凝胶的强度、弹性、透明度、粘度和
不连续PAGE电泳胶体系统的组成:
电泳系统
缓冲液 pH 胶体浓度
1 上层 (负极) 缓冲液 Tris-glycine 8.3
-
2 样本溶液
Tris-glycine 8.3
-
3胶
浓缩胶 Tris-HCl
6.7
5%
4体
分离胶 Tris-HCl
8.9
7%
5 下层 (正极)缓冲液 Tris-glycine 8.3
a与b的比例很重要。富有弹性,且完全透明的凝胶,a 与b的重量比应在30左右。常用29 : 1
(4)不连续PAGE的原理:
第一、三个不连续性: ①凝胶孔径的不连续; ②缓冲液离子组成及各层凝胶pH的不连续; ③在电场中形成的电位梯度的不连续。
第二、不连续系统中的三种物理效应: ①电荷效应: ②分子筛效应: ③浓缩效应:
二、实验原理:
2、同工酶概念:
同工酶指催化同一种化学反应,但其酶蛋白本身的分 子结构组成却有所不同的一组酶。
同工酶与生物的遗传,生长发育,代谢调节及抗性等 都有一定的关系,如POD在细胞代谢过程中与呼吸作用,光 合作用,及生长素的氧化等都有关系,测定POD活性或其同 工酶,可以反映某一时期植物体内代谢变化。
一、实验目的:
1、掌握聚丙烯酰胺凝胶电泳的原理和方法; 2、掌握过氧化物酶(POD)活性测定的原理及方法。 3、了解过氧化物酶(POD)的生物学功能。

过氧化物酶同工酶的分离提取

过氧化物酶同工酶的分离提取
和活性)低温保存; 8.上清液缓慢加入2倍体积-30℃预冷的丙酮。4℃放置2h。13000g离心
20min,沉淀。沉淀用 5ml 0.05 M PBS回溶(测含量和活性)低温保 存.
本实验以菠菜叶片(或苜蓿种子)为材料,低速离心 去除细胞碎片,上清用丙酮或硫酸铵沉淀得过氧化物酶同 工酶粗品。
实验材料与器材
(一)材料:菠菜叶片(或苜蓿种子) (二)器材:研钵、超声波粉碎仪、
高速冷冻离心机、酸Байду номын сангаас计
实验试剂
1. 丙酮
2. 提取缓冲液[pH5.5 0.05M PBS 1L ,需 磷酸氢二钠(含12个水)0.1433g、磷酸 二氢钠(含2个水)0.7178g]。
过氧化物酶同工酶的分离提取
制作人:王瑞刚
内蒙古农业大学 生物化学与分子生物学实验教学中心
实验原理 实验材料与器材 实验试剂 实验步骤
实验原理
过氧化物酶是植物提内普遍存在、活性较高的一种酶, 它与呼吸作用、光合作用及生长素的氧化等都有密切关系, 在植物生长发育过程中,它的活性不断发生变化,因此测 定这种酶的活性,可以反映某一时期植物体内代谢的变化。
实验步骤
1.精确称取10g左右植物样品(若是苜蓿种子,提前用水溶胀好,) +20ml提取缓冲液匀浆;
2.超声裂解5min; 3.13000g离心20min; 4.取清液(量体积),沉淀弃去(清液少许低温保存测定酶活和含量); 5.沿烧杯壁缓慢加入等体积-30℃预冷的丙酮,4℃放置1h; 7.13000g离心20min,沉淀用3 ml 0.05 M PBS回溶(留作实验二测含量
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(3)凝胶的质量决定因素:
(1)凝胶度:
是指100mg凝胶溶液中含有单体(Acr)和交联剂 (Bis)的总克数,用T%表示。
(2)交联度:
是指凝胶溶液中,交联剂占单体和交联剂总量的 百分数,用C%表示。 一般浓缩胶的浓度为7.5%,分离胶的浓度为10%。
聚丙烯酰胺凝胶的强度、弹性、透明度、粘度和
该红棕色的物质可用分光光度计在470nm处测定其消光值, 即可求出该酶的活性。
三、实验材料、主要仪器和试剂
1. 材料:小麦幼苗
2. 仪器:
(1)分光光度计;
(2)移液管
(3)离心机(4 000r/min); (4)研钵
(5)垂直板电泳装置(电泳槽,玻璃板,胶条,电泳梳子,制胶架等);
(6)稳流稳压电泳仪;
3、电泳:
(1)定义:是指带电粒子在电场中向与其自身所带电荷
相反的电极方向移动的现象。
(2)影响电泳效果的因素:
①带电颗粒的大小和形状:
颗粒越大,电泳速度越慢,反之越快;
②颗粒的电荷数:
电荷越少,电泳速度越慢,反之越快;
③溶液的粘度:
粘度越大,电泳速度越慢,反之越快;
续(2)影响电泳效果的因素:
不连续PAGE电泳胶体系统的组成:
电泳系统
缓冲液 pH 胶体浓度
1 上层 (负极) 缓冲液 Tris-glycine 8.3
-
2 样本溶液
Tris-glycine 8.3
-
3胶
浓缩胶 Tris-HCl
6.7
5%
4体
分离胶 Tris-HCl
8.9
7%
5 下层 (正极)缓冲液 Tris-glycine 8.3
(2)聚丙烯酰胺凝胶结构上的特点:
① 聚丙烯酰胺的基本结构为丙烯酰胺单体构成的长 链,链与链之间通过甲叉桥联结在一起;
② 链的纵横交错形成三维网状结构,使凝胶具有分 子筛的性质;
③ 网状结构还能限制蛋白质等样品的扩散运动,使 凝胶具有抗对流的作用;
④ 长链富含酰胺基团,使其成为稳定的亲水凝胶; ⑤ 该结构不带电荷,在电场中电渗现象极为微小。
②光聚合:
催化剂是核黄素(VB2),在痕量氧存在下,核黄素 光解形成无色基,无色基再被氧氧化成自由基,激活单体 发生聚合。光聚合形成的凝胶孔径较大,且不稳定,适于 制备大孔径的浓缩胶。
■ 聚合反应:
聚合反应
架桥物造成分枝
Bis 交错连结 Bis
free radical
端点自由基 可再延续
自由基形成
a与b的比例很重要。富有弹性,且完全透明的凝胶,a 与b的重量比应在30左右。常用29 : 1
(4)不连续PAGE的原理:
第一、三个不连续性: ①凝胶孔径的不连续; ②缓冲液离子组成及各层凝胶pH的不连续; ③在电场中形成的电位梯度的不连续。
第二、不连续系统中的三种物理效应: ①电荷效应: ②分子筛效应: ③浓缩效应:
(7)高速冷冻离心机;
(8)电子天平;
(9)电冰箱;
(10)瓷盘、微量进样器; (11)电热恒温水浴锅;
(12) S-22pC可见分光光度计;(13)电炉等
3、试剂:
(1)1N HCl:用12N的浓盐酸来配制; (2)分离胶缓冲液(pH8.9的Tris-HCl缓冲液): (3)浓缩胶缓冲液(pH6.7 Tris-HCl缓冲液): (4)分离胶丙胶贮液(Acr-Bis贮液Ⅰ): (5)浓缩胶丙胶贮液(Acr-Bis贮液Ⅱ): (6)过硫酸铵溶液(NH4)2S2O8简写Ap:(当天配制); (7)核黄素溶液:8% (8)电极缓冲液:(pH8.3Tris-甘氨酸缓冲液) (9)40%蔗糖: (10)pH4.7乙酸缓冲液:
聚丙烯酰胺凝胶电泳是以聚丙烯胺凝胶作 为载体的一种区带电泳。
(1)聚丙烯胺凝胶的生成:
聚丙烯胺凝胶由丙烯酰胺单体(Acr)和N,N’-甲 叉双丙烯酰胺(Bis)在催化剂作用下聚合而成。在具 有自由基时,Acr和Bis就会聚合。
引发产生自由基的方法有两种:
①化学法 ②光聚合法
①化学聚合:
引发剂是过硫酸铵(AP),催化剂N、N、N’、N’- 四甲基乙二胺(TEMED),它的碱基催化AP产生氧自由基, 激活单体形成自由基,发生聚合。化学聚合形成的凝胶孔 径较小,且重复性好,用来制备分离胶;
实验四
过氧化物酶同工酶的提取、分离
学时:9
一、实验目的:
1、掌握聚丙烯酰胺凝胶电泳的原理和方法; 2、掌握过氧化物酶(POD)活性测定的原理及方法。 3、了解过氧化物酶(POD)的生物学功能。
二、实验原理:
1、过氧化物酶:
过氧化物酶广泛存在于植物体中,是活性较高的一种酶。它与呼吸作用、 光合作用及生长素的氧化等都有关系。在植物生长发育过程中它的活性不断发 生变化。一般老化组织中活性较高,幼嫩组织中活性较弱。这是因为过氧化物 酶能使组织中所含的某些碳水化合物转化成木质素,增加木质化程度,而且发 现早衰减产的水稻根系中过氧化物酶的活性增加,所以过氧化物酶可作为组织 老化的一种生理指标。此外,过氧化物同工酶在遗传育种中的重要作用也正在 受到重视。
④溶液的pH值: 影响被分离物质的解离度,离等电点越近,电泳速度越慢,
反之越快; ⑤电场强度:
电场强度越小,电泳速度越慢,反之越快; ⑥离子强度:
离子强度越大,电泳速度越慢,反之越快; ⑦电渗现象:
电场中,液体相对于固体支持物的相对移动; ⑧支持物筛孔大小:
孔径小,电泳速度慢,反之则快。
4、聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)
-
■ 在浓缩胶中的三个主要作用角色:
甘氨酸: pH=8.9 负电荷 pI=6.7 不带电荷
Cl-1:
蛋白质(酶):
小分子
大分子
■ 浓缩效应:
A
B
C
8.0
样 本


6.7

离子缺乏空间

离 胶
8.9
+
+
5、过氧化物酶活性测定
以邻甲氧基苯酚(即愈创木酚)为过氧化物酶的底物, 在此酶存在下,H2O2可ห้องสมุดไป่ตู้邻甲氧基苯酚氧化成红棕色 的4-邻甲氧基苯酚,其反应为:
二、实验原理:
2、同工酶概念:
同工酶指催化同一种化学反应,但其酶蛋白本身的分 子结构组成却有所不同的一组酶。
同工酶与生物的遗传,生长发育,代谢调节及抗性等 都有一定的关系,如POD在细胞代谢过程中与呼吸作用,光 合作用,及生长素的氧化等都有关系,测定POD活性或其同 工酶,可以反映某一时期植物体内代谢变化。
孔径大小均取决于两个重要参数T(总百分浓度)和 C(交联百分浓度)。
T

ab10(0 %)C m
a+ bb10(0 %)
上式中:a为丙烯酰胺的克数,b为甲叉双丙烯酰胺的克数,m为缓 冲液体积(ml)。
当C保持恒定时,凝胶的有效孔径随着T的增加而减小,当T保 持恒定,C为4%时,有效孔径最小,C大于或小于4%时,有效孔 径均变大,C大于5%时凝胶变脆,不宜使用,实验中最常用的C 是2.6%和3 。
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