多聚赖氨酸包被方法
多聚赖氨酸处理
配制0.01%的多聚赖氨酸: 首先买来sigma 公司的多聚赖氨酸，如是25mg，就需要250ml三蒸水，用移液管将少量三蒸水加到多聚赖氨酸的小塑料瓶中，然后将溶解的多聚赖氨酸加到200ml左右三蒸水中，(已置烧杯中)。
最后加三蒸水达250ml，过滤除菌分装与小瓶中即可。
保存于-20度，近期用的话可放于4度冰箱内保存。
注意每一小瓶的量不要太满，若20ml的瓶子，只装15ml可，若太满，放于-2度有可能会将瓶子弄碎，因冻后体积增加。
(我就有这个教训) 另外烧杯，小瓶、移液管都要灭菌处理的，泡酸高压什么的。
我们用的是一种用注射器过滤的过滤器，一次性的。
一个能最多有效过滤200ml。
铺板的操作:首先要在消毒实验室，包括超净台，紫外消度20-30分钟。
消毒后30分钟进入实验室。
事先准备100ml三蒸水，经高压灭菌处理。
具体细节就不多说了。
首先打开板子，用消毒好的试管将0.01%的多聚赖氨酸加入每一孔中，大概每孔3-4滴吧。
将板子盖好放到培养箱中(37度 5%CO2)30分钟。
取出板子，用吸管将多聚赖氨酸吸出。
换吸管，加入三蒸水，冲洗三次，即将每孔内加入三蒸水，没过底，多点也行。
再将水吸出来。
反复三次。
注意换吸管，要无菌操作的。
最后将铺好的板子放于培养箱待用。
如果你做免疫组化，需要放小的玻片到孔内，就在加多聚赖氨酸之前用无菌的镊子将无菌的玻片夹到孔内即可。
我曾用过多聚赖氨酸包被培养瓶,但浓度是0.1mg/ml,我都是放一夜,第二天吸掉晾干就用,当然要紫外消一下.我觉得时间长点没什么大碍。
我们这里的老师说，多聚赖氨酸不能用紫外线照射。
1.用赖氨酸包被培养板和培养瓶时，应该选用多聚左旋赖氨酸(分子量为15-30万) ；2.感觉你“浓度为50ng/1ml”有些低，我一般最后多聚赖氨酸使用浓度达到20－30ug/ml；3.包被时间一般为6－7h，或者过夜也可；4.使用时应该先用灭菌水洗三次＋PBS（起平衡盐作用）洗一次，洗液的量应该大于包被液的量；5.“多聚赖氨酸可以在培养瓶中放多长时间，太长了会有影响吗？”，我包被时间最长的经历有过48h,最后只是多聚赖氨酸随着时间延长蒸发一些而量变少了，但是对细胞生长并无大碍，这是我曾经有过的经历，所以我会负责地告诉你；6.“多聚赖氨酸能在4度冰箱里放多久？”，最好置于－20度保存，放置数月乃至半年都可以。
gibco多聚-d-赖氨酸 用法
gibco多聚-d-赖氨酸用法
Gibco多聚D赖氨酸是一种生物化学试剂，用于生命科学研究中的细胞培养和实验。
具体用法如下：1. 培养基中的添加物：可以将Gibco多聚D赖氨酸添加到细胞培养基中，作为细胞的营养物来源之一。
通常的用量是每升培养基添加10-50 mg的多聚D赖氨酸。
2. 包被培养皿表面：可以在培养皿表面预先涂覆Gibco多聚D赖氨酸，从而提供细胞附着的基质。
在培养皿中加入适量的多聚D赖氨酸水溶液，让其在表面均匀涂敷，并在室温下干燥。
3. 组织工程和支架材料：Gibco多聚D赖氨酸也可以用于组织工程和支架材料的制备。
可以将多聚D赖氨酸加入到生物降解材料中，用于细胞生长和组织修复。
需要注意的是，具体的用法可能因研究目的、细胞类型和实验条件而有所不同。
在使用Gibco 多聚D赖氨酸前，最好参考相关的文献或咨询厂家提供的技术手册，以获取更详细的用法指导。
多聚赖氨酸包被方法
多聚赖氨酸包被方法物理包被利用多聚赖氨酸的聚电解质特性，通过静电作用将其包裹在目标物表面。
这种包被方法具有简单、无毒、环境友好等优势。
常用的物理包被方法包括静电吸附、沉淀共沉淀和纳米胶团包被。
静电吸附法是一种简单有效的物理包被方法，多聚赖氨酸与目标物质通过静电相互作用结合。
多聚赖氨酸具有正电荷，可以与带负电位的目标物质静电吸附。
例如，将多聚赖氨酸与负电荷的纳米颗粒混合搅拌，多聚赖氨酸通过静电吸附形成包被层，使纳米颗粒表面带正电荷。
沉淀共沉淀法是一种多聚赖氨酸包被的物理方法，基于多聚赖氨酸的凝胶形成能力。
多聚赖氨酸在适当条件下可以与其他蛋白质形成复合凝胶，从而包被目标物质。
该方法主要通过改变多聚赖氨酸的溶液条件来实现，如调节pH值、离子强度和温度等。
纳米胶团包被法是利用多聚赖氨酸形成纳米胶团，从而实现目标物质的包被。
当多聚赖氨酸在适当条件下形成胶团时，目标物质会被包裹在胶团内部。
这种包被方法可以使目标物质在多聚赖氨酸胶团内部得到保护，并增强其稳定性。
化学包被是一种通过化学反应将多聚赖氨酸与目标物质共价结合的方法。
这种包被方法具有较高的稳定性和持久性。
常用的化学包被方法包括胺基化和交联反应。
胺基化是一种将多聚赖氨酸表面的羧基转化为胺基的化学反应。
通过胺基化反应，多聚赖氨酸表面的胺基可以与目标物质表面的羧基或酸酐结合。
这种包被方法可以增加多聚赖氨酸与目标物质的接触面积，从而提高包被效果。
交联反应是一种将多聚赖氨酸与目标物质共价交联的化学反应。
通过交联反应，可以将多聚赖氨酸与目标物质牢固结合，从而实现包被效果。
常用的交联反应包括胺基化交联反应、醛胺交联反应等。
总的来说，多聚赖氨酸包被方法在药物和食品工业中具有广泛的应用前景。
无论是物理包被还是化学包被，都可以通过适当的方法来实现多聚赖氨酸与目标物质的结合。
这种包被方法不仅可以提高目标物质的稳定性和生物活性，还可以改善其溶解性和缓释性，从而提高其应用性能。
多聚赖氨酸溶液(10×PLL,1mgml)
4、 干燥过程中注意避免尘埃污染。 5、 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
组成:
名称
编号 IH0091 IH0091
Storage
Poly-L-lysine Solution(1mg/ml) 使用说明书
10ml
50ml -20℃ 避光
操作步骤(仅供参考)：
1、 用亍细胞培养 ① 根据实验需要 Poly-L-lysine Solution 稀释至适当浓度溶液后即可使用。 ②Poly-L-lysine Solution 用亍细胞培养时，有些实验需要包被 1～2h，有些情况则需 要包被过夜。 ③包被完成后，吸 Poly-L-lysine Solution，干燥培养器皿，至肉眼观察完全干燥。通 风橱内吹风数分钟即可完成干燥。 ④进行细胞培养，也可以用水、PBS 或培养液等适当溶液润洗后再进行细胞培养。
2、 用亍核酸杂交 ① 方法一：取事先准备好的载玻片或盖玻片经 160℃冷却至室温，在 Poly-L-lysine Solution 上下浸蘸几下。 ② 方法二：Poly-L-lysine Solution 涂亍玻片上，自然干燥后即可使用，可用亍细胞 涂片和切片。 ③ 方法三：滴加 Poly-L-lysine Solution 至玻片上，用另一盖玻片以血涂片方法推片 或用另一玻片紧贴亍其上，相互摩擦以使两玻片相对的一面涂布上明胶包被溶液。
注意事项：
1、 Poly-L-lysine 可以被某些细胞所消化并吸收，摄入过多的 Poly-L-lysine 会产生一定的 细胞毒性。
2、 避免反复冻融，如果大量使用，可以取适量溶液置亍 4℃保存，6 个月有效。 3、 浸蘸 Poly-L-lysine Solution 时，务必使玻片完全浸入液体中，否则易使包被丌完全产
多聚赖氨酸包被方法
多聚赖氨酸包被方法多聚赖氨酸（polylysine）是一种具有多种应用潜力的天然生物高分子材料。
其在医学、食品及其他领域中有着广泛的应用前景。
然而，多聚赖氨酸的应用受到其在水溶液中聚集和沉淀的限制。
为了克服这一问题，研究人员开发了多种多聚赖氨酸包被方法，用以稳定多聚赖氨酸的分散态，提高其应用效果。
一、电化学沉积法电化学沉积法是一种常用的多聚赖氨酸包被方法，在这种方法中，通过在多聚赖氨酸溶液中施加电压，利用电化学反应将多聚赖氨酸沉积到基体表面。
这种方法具有简单、可控性高的优点，可以调控包被层的厚度和组成，从而实现不同应用需求。
二、化学交联法化学交联法是另一种常见的多聚赖氨酸包被方法。
在这种方法中，利用化学反应将多聚赖氨酸交联到基体表面，形成稳定的包被层。
常用的交联剂包括戊二醛、硫酸氯化钠等。
化学交联法可以使多聚赖氨酸形成致密的包被层，提高其稳定性和抗溶解性，适用于一些需要长时间稳定性的应用。
三、共沉淀法共沉淀法是一种将多聚赖氨酸与其他物质一起沉淀到基体表面的方法。
通过调节多聚赖氨酸和其他物质的配比和沉淀条件，可以实现多聚赖氨酸的包被。
这种方法适用于多聚赖氨酸与其他物质共同发挥应用功能的场景，如药物缓释系统、生物传感器等。
四、物理吸附法物理吸附法是一种简单而有效的多聚赖氨酸包被方法。
将多聚赖氨酸溶液滴在基体表面，使其通过物理相互作用（如静电相互作用）与基体表面相互吸附，形成包被层。
这种方法不需要特殊实验条件，成本低廉，适用于一些对包被层要求不高的应用。
综上所述，多聚赖氨酸包被方法的选择应根据实际应用需求和条件来确定。
不同的包被方法具有各自的特点和适用范围，在多聚赖氨酸的应用中起着重要的作用。
未来随着科技的不断进步和对多聚赖氨酸功能的深入研究，相信会有更多创新的包被方法出现，进一步拓宽多聚赖氨酸的应用领域。
多聚赖氨酸包被培养皿步骤
多聚赖氨酸包被培养皿步骤在我们进行细胞培养时，培养皿就像是细胞的小家，提供了一个温暖的环境，让它们能安安心心地生长。
今天我们要聊的是怎么用多聚赖氨酸（PLL）来包被培养皿，这可是一项神奇的操作，能给细胞提供更好的附着环境。
接下来，就让我来带你走一趟这个步骤吧！1. 准备工作1.1 材料准备首先，我们得准备好所有的材料。
这可是个细致活，万一少了什么可就尴尬了。
你需要的主要材料有：多聚赖氨酸溶液、培养皿（当然要干净的咯）、无菌水和一些吸管，最好还有手套，别让细胞觉得你不讲卫生哦。
再说，搞科研可不能马虎，细节决定成败，像做菜时少了一味调料，味道就大打折扣嘛！1.2 清洁工作在开始之前，别忘了把你的工作台擦得干干净净。
想象一下，如果你的培养皿是在一个满是灰尘的地方包被，细胞一定会不高兴的，对吧？所以，使用酒精消毒一下工作台，让它焕然一新，再把所有材料都摆上来，准备就绪，感觉就像开饭前的备菜一样。
2. 包被步骤2.1 包被准备好啦，接下来进入包被的环节！首先，把多聚赖氨酸溶液取出，根据需要稀释一下，浓度一般在0.1%到0.5%之间。
稀释就像做饮料，太浓太稠的饮料喝了容易腻，细胞也一样，得有个适中的环境才能舒舒服服地长大。
之后，使用吸管将准备好的PLL溶液均匀地加到培养皿的底部，轻轻摇晃一下，让它铺满整个底面，感觉就像给培养皿做了个SPA，真是太贴心了！2.2 静置和冲洗把包好的培养皿放到37℃的温箱里静置30分钟到1小时，让多聚赖氨酸好好地附着在皿底。
这段时间你可以去喝杯咖啡，或者聊聊天，别让自己闲得发慌。
时间一到，把培养皿拿出来，轻轻倾斜，倒掉多余的溶液，接着用无菌水轻轻冲洗一下，去掉没附着好的部分。
冲洗完后，再次轻轻倾斜，倒掉水分，确保底部没有多余的水，想想就像洗完澡后的干爽感觉，真是舒服！3. 使用与储存3.1 培养细胞现在，包被好的培养皿可以用来培养细胞啦！把细胞悬液轻轻加入培养皿里，注意不要让细胞“摔跤”哦。
包被细胞培养板的相关问题---精品资料
培养板的包被及相关问题：为了适应不同的实验需要，可对培养板用不同的物质进行包被后使用，这其中有促进细胞黏附的，也有用于一些特殊检测需要的。
不同的实验目的可能具体的方案亦不同，根据需要灵活掌握。
(一)多聚赖氨酸包被：问：我要培养原代神经细胞培养，要用多聚赖氨酸铺细胞培养板，请问赖氨酸液怎么配，怎样铺扳子答：配制0.01%的多聚赖氨酸: 首先买来sigma 公司的多聚赖氨酸，如是25mg，就需要250ml三蒸水，用移液管将少量三蒸水加到多聚赖氨酸的小塑料瓶中，然后将溶解的多聚赖氨酸加到200ml左右三蒸水中，(已置烧杯中)。
最后加三蒸水达250ml，过滤除菌分装与小瓶中即可。
保存于-20度，近期用的话可放于4度冰箱内保存。
注意每一小瓶的量不要太满，若20ml的瓶子，只装15ml可，若太满，放于-2度有可能会将瓶子弄碎，因冻后体积增加。
(我就有这个教训) 另外烧杯，小瓶、移液管都要灭菌处理的，泡酸高压什么的。
我们用的是一种用注射器过滤的过滤器，一次性的。
一个能最多有效过滤200ml。
铺板的操作:首先要在消毒实验室，包括超净台，紫外消度20-30分钟。
消毒后30分钟进入实验室。
事先准备100ml三蒸水，经高压灭菌处理。
具体细节就不多说了。
首先打开板子，用消毒好的试管将0.01%的多聚赖氨酸加入每一孔中，大概每孔3-4滴吧。
将板子盖好放到培养箱中(37度 5%CO2)30分钟。
取出板子，用吸管将多聚赖氨酸吸出。
换吸管，加入三蒸水，冲洗三次，即将每孔内加入三蒸水，没过底，多点也行。
再将水吸出来。
反复三次。
注意换吸管，要无菌操作的。
最后将铺好的板子放于培养箱待用。
如果你做免疫组化，需要放小的玻片到孔内，就在加多聚赖氨酸之前用无菌的镊子将无菌的玻片夹到孔内即可。
问：PLL的分子量有3-5万，7-15万，15-30万几种，应怎样选择？？谢谢：）答：我们养神经细胞，用的是分子量3万到7万的pll 。
以PBS配成1mg/ml的母液，－20度保存。
包被
聚赖氨酸包被载玻片改良法时间:2011-09-01 17:34来源:生物吧作者:刘浩点击:324 次原位杂交和免疫组织化学是当前生物化学和分子技术进行基因及产物研究的常用方法,可确定各个细胞中mRNA和蛋白质在何时何处表达。
这两项细胞技术的成功与否,关键在于载玻片的正确原位杂交和免疫组织化学是当前生物化学和分子技术进行基因及产物研究的常用方法,可确定各个细胞中mRNA和蛋白质在何时何处表达。
这两项细胞技术的成功与否,关键在于载玻片的正确处理。
经典的载玻片处理技术用加有洗涤剂的水清洗载玻片数分钟后,再于水中浸泡30 min。
配制足量的500μg/ ml 多聚-L-赖氨酸水溶液,逐一浸载玻片。
经空气干燥后,贮于4℃, 1 周内使用。
在实践中我们发现,该方法操作不当,易导致试验脱片现象。
为确保各项重大试验质量,我们对经典方法进行改良,并取得很好的效果。
1. 清洗载玻片:(1) 用加有玻璃清洁剂的水,浸泡新的载玻片24 h。
(2) 清水冲洗载玻片后,用清水浸泡载玻片24 h。
(3) 用蒸馏水浸洗5 次,再用蒸馏水浸泡载玻片过夜。
(4) 次日用蒸馏水冲洗载玻片,晾干,装盒备用。
2. 包被载玻片:(1) 根据切片组织大小,决定包被载玻片的位置及面积大小。
(2) 用移液器吸取0. 1 % 多聚-L-赖氨酸作者单位:200092 上海第二医科大学新华医院上海儿科研究所10μl 置于载玻片预定位置,用枪头涂匀预定面积。
对多张载玻片逐一进行涂片。
(3) 肉眼观察载玻片预定面积内多聚-L-赖氨酸分布是否均匀,有皱缩的玻片予以剔除。
(4) 将载玻片平放,自然干燥,逐一做好标记。
(5) 将包被载玻片置标本盒内,贮于4 ℃备用。
(6) 根据切片数量多少,当天制备包被载玻片,当天使用。
改良后的载玻片处理技术,不仅可在包被前提供清洁好的载玻片,有利于一次包被成功,而且载玻片在包被前经过预定位置逐一精细涂片,并用肉眼观察和剔除皱缩玻片,从而确保了载玻片包被的质量。
多聚赖氨酸包被步骤
多聚赖氨酸包被步骤
多聚赖氨酸（PLA）是一种生物可降解材料，可用于包被（coating）应用。
下面是多聚赖氨酸包被的步骤：
1. 准备多聚赖氨酸（PLA）材料：将多聚赖氨酸溶解在适当的溶剂中，使其成为可涂覆的液体。
2. 准备基质表面：将需要包被的基质表面进行预处理，如清洁、去除表面污物和优化表面性质。
3. 涂覆多聚赖氨酸：使用适当的涂覆技术（如喷涂、旋涂、刷涂或浸涂等），将多聚赖氨酸溶液均匀涂覆在基质表面上，形成一层薄膜。
4. 干燥和固化：将涂覆的基质表面在适当的条件下进行干燥和固化，使多聚赖氨酸薄膜固化成为稳定的包被层。
5. 优化和表征：对包被层进行优化处理，如调节其厚度、表面形貌和性质等，并对包被层进行相应的表征和测试，以确保其性能和稳定性。
需要注意的是，多聚赖氨酸包被的具体步骤可能因应用需求和使用的材料而略有不同，上述步骤仅为一般参考。
在实际操作中，还需要根据具体情况进行调整和优化，以达到最佳的包被效果。
多聚赖氨酸包被方法
多聚赖氨酸包被方法内部编号：（YUUT-TBBY-MMUT-URRUY-UOOY-DBUYI-0128）Poly-lysine-coated tissue culture surfaces1.To coat coverslips:Prepare a stock solution by dissolving 25 mg/ml polylysine in 4.73 ml water (both poly-L-lysine and poly-D-lysine are used to coat tissue culture surfaces; check specific protocol for choice of isomer) and filter sterilize through a 0.22-μm filter.Store in 100-μl aliquots at -20°C.When ready to use, dilute one aliquot in 40 ml water to prepare 13μg/ml working solution.Sterilize coverslips by autoclaving prior to coating.Dip coverslips in the working solution, then incubate 15 min to several hours i n a humidified 37°C, 5% CO2 incubator.Allow surface to dry.2.To coat culture dishes: 多聚赖氨酸包被培养皿/板Prepare a stock solution by dissolving 100 mg poly-lysine in 100 ml water (both poly-L-lysine and poly-D-lysine are used to coat tissue culture surfaces; check specific protocol for choice of isomer) and filter sterilize through a 0.22-μm fil ter.配制1mg/ml储存液Store in 5-ml aliquots at -20°C.分装保存在-20度When ready to use, dilute 1 part stock solution with 9 parts water to prepare 100 μg/ml working solution.使用前按1：10稀释成100μg/ml工作浓度。
多聚赖氨酸溶液(10×PLL,1mgml,无菌)
编号名称IH0095Storage Poly-L-lysine Solution(1mg/ml,无菌)10ml -20℃ 避光使用说明书1份多聚赖氨酸溶液(10×PLL,1mg/ml,无菌) 简介：多聚赖氨酸溶液英文名为Poly-L-lysine Solution简称PLL。
Leagene Poly-L-lysine为Poly-L-lysine hydrobromide，分子式为L-Lys-(L-Lys)n-L-Lys•xHBr，分子量为150,000～300,000，CAS Number 25988-63-0。
PLL是一种粘附剂，常用于载玻片的包被,可以直接稀释后用于细胞或组织培养方面的实验。
分子量大于70,000的多聚赖氨酸可以促进细胞贴壁生长，本产品可以用于促进细胞的贴壁生长和核酸杂交，制备好的载玻片可4℃保存半年。
组成:操作步骤(仅供参考)：1、 用于细胞培养根据实验需要Poly-L-lysine Solution稀释至适当浓度溶液后即可使用。
不同的细胞，Poly-L-lysine Solution包被(Coating)的时间和浓度，甚至稀释液的选择有所不同，请自行参考相关文献进行适当的包被。
②Poly-L-lysine Solution用于细胞培养时，包被至少5min，有些实验需要包被1～2h，有些情况则需要包被过夜。
④进行细胞培养，也可以用水、PBS或培养液等适当溶液润洗后再进行细胞培养。
2、 用于核酸杂交方法一：取事先准备好的载玻片或盖玻片经160℃冷却至室温，在Poly-L-lysine Solution上下浸蘸几下，自然干燥，4℃备用，亦可室编号名称CC0005磷酸缓冲盐溶液(1×PBS,无钙镁) DF0135多聚甲醛溶液(4% PFA)IH0305柠檬酸钠抗原修复液(50×)IH0340免疫染色一抗稀释液NR0003Lezol(总RNA提取试剂)PE0103Acr-Bis(30%,29:1)PW0082丽春红S染色液(1×Ponceau S)TC1243甘油三脂(TG)检测试剂盒(GPO-PAP 单试剂比色法)温保存1个月。
包被细胞培养板的相关问题
培养板的包被及相关问题：为了适应不同的实验需要，可对培养板用不同的物质进行包被后使用，这其中有促进细胞黏附的，也有用于一些特殊检测需要的。
不同的实验目的可能具体的方案亦不同，根据需要灵活掌握。
(一)多聚赖氨酸包被：问：我要培养原代神经细胞培养，要用多聚赖氨酸铺细胞培养板，请问赖氨酸液怎么配，怎样铺扳子答：配制0.01%的多聚赖氨酸: 首先买来sigma 公司的多聚赖氨酸，如是25mg，就需要250ml三蒸水，用移液管将少量三蒸水加到多聚赖氨酸的小塑料瓶中，然后将溶解的多聚赖氨酸加到200ml左右三蒸水中，(已置烧杯中)。
最后加三蒸水达250ml，过滤除菌分装与小瓶中即可。
保存于-20度，近期用的话可放于4度冰箱内保存。
注意每一小瓶的量不要太满，若20ml的瓶子，只装15ml可，若太满，放于-2度有可能会将瓶子弄碎，因冻后体积增加。
(我就有这个教训) 另外烧杯，小瓶、移液管都要灭菌处理的，泡酸高压什么的。
我们用的是一种用注射器过滤的过滤器，一次性的。
一个能最多有效过滤200ml。
铺板的操作:首先要在消毒实验室，包括超净台，紫外消度20-30分钟。
消毒后30分钟进入实验室。
事先准备100ml三蒸水，经高压灭菌处理。
具体细节就不多说了。
首先打开板子，用消毒好的试管将0.01%的多聚赖氨酸加入每一孔中，大概每孔3-4滴吧。
将板子盖好放到培养箱中(37度 5%CO2)30分钟。
取出板子，用吸管将多聚赖氨酸吸出。
换吸管，加入三蒸水，冲洗三次，即将每孔内加入三蒸水，没过底，多点也行。
再将水吸出来。
反复三次。
注意换吸管，要无菌操作的。
最后将铺好的板子放于培养箱待用。
如果你做免疫组化，需要放小的玻片到孔内，就在加多聚赖氨酸之前用无菌的镊子将无菌的玻片夹到孔内即可。
问：PLL的分子量有3-5万，7-15万，15-30万几种，应怎样选择？？谢谢：）答：我们养神经细胞，用的是分子量3万到7万的pll 。
以PBS配成1mg/ml的母液，－20度保存。
多聚赖氨酸的配置
多聚赖氨酸的配置、保存、使用一、常用的多聚赖氨酸包被可以用三蒸水，或者PBS，浓度一般为用0.1 mg/ml进行包被。
二、其他常用包被方法比较(以各种免疫分析为例)：49456826.snap三、我配成1mg/ml的储存液，用Mini-Q(超纯水)配制，放在－20℃储存，使用时稀释10倍（也用超纯水），即终浓度100ug/ml，过滤后使用。
工作液过滤使用，如一次用不完，放在4℃储存。
多聚赖氨酸在水溶液中易分解，所以一次不要配太多工作液。
四、我现在要配多聚赖氨酸,书上写的用PBS配,但没写PH,浓度，向各位请教。
答：PH应该在7.0~7.4，PBS：取氯化钠7.650 g，无水磷酸氢二钠0.724 g，磷酸二氢钾0.210g 溶于蒸馏水1000 mL 中，以1N 氢氧化钠溶液调pH值为7.0~7.4，经121℃灭菌15 分钟五、我准备用多聚赖氨酸涂片培养细胞,不知道多聚赖氨酸涂过的玻片如何灭菌？能否干烤灭菌？答：Sigma的产品说明书上写的很明白的。
另外，有本书上是这么写的，供参考：Poly-lysine-coated tissue cultur e surfac esTo coat covers lips: Prepar e a stocksoluti on by dissol ving25 mg/ml polyly sinein 4.73 ml wa ter(both poly-L-lysine and poly-D-lysine are used to coat tissue cultur e surfac es; checkspecif ic pr otoc ol for choice of isomer) and filter steril ize throug h a 0.22-μm filter. Storein 100-μl aliquo ts at 20°C. When readyto use, dilute one aliquo t in 40 ml waterto prepar e 13 μg/ml workin g soluti on. Steril ize covers lipsby autocl aving priorto coatin g. Dip covers lipsin the workin g soluti on, then i ncuba te 15 min to severa l hoursin a humidi fied37°C, 5% CO2 incuba tor. Allowsurfac e to dry.To coat cultur e dishes or 8-well chambe r slides: Prepar e a stocksoluti on by dissol ving100 m g poly-lysine in 100 ml water(both poly-L-lysine and poly-D-lysine are used to coat tissue cultur e surfac es; checkspecif ic protoc ol for choice of isomer) and filter steril ize throug h a 0.22-μm filter. Storein 5-ml aliquo ts at ?20°C. When readyto use, dilute 1 part stocksoluti on with 9 partswaterto prepar e 100 μg/ml workin g soluti on. Fill tissue cultur e dishes or slidewellswith the workin g so luti on and incuba te 1 hr in a humidi fied37°C, 5% CO2 incuba tor, then remove soluti on by vacuum aspira tionand allowsurfac e to dry.Storecoated tissue cultur e ware up to 3 months at 4°C. Use dilute d soluti ons only once, but unused dilute d aliquo ts can be stored up to 3 months at 4°C.你可以配置好PLL后单独将其过滤除菌，分装，待用。
多聚赖氨酸(Poly-L-Lysine)的配制、保存、使用总结
因为自己做PC12细胞培养，想在接种前将培育皿用多聚赖氨酸包被，到园子里搜索了下，关于多聚赖氨酸的帖子不少，看了一些帖子，将大部分收集在此。
个人觉得关于多聚赖氨酸的配置、保存、使用各方面问题，这些帖子里面都解释了。
注：我只是摘了一个帖子里某段或某句话。
一般一段话来自某一位战友。
一、常用的多聚赖氨酸包被可以用三蒸水，或者PBS，浓度一般为用0.1 mg/ml进行包被。
二、其他常用包被方法比较(以各种免疫分析为例)：49456826.snap三、我配成1mg/ml的储存液，用Mini-Q(超纯水)配制，放在－20℃储存，使用时稀释10倍（也用超纯水），即终浓度100ug/ ml，过滤后使用。
工作液过滤使用，如一次用不完，放在4℃储存。
多聚赖氨酸在水溶液中易分解，所以一次不要配太多工作液。
四、我现在要配多聚赖氨酸,书上写的用PBS配,但没写PH,浓度，向各位请教。
答：PH应该在7.0~7.4，PBS：取氯化钠7.650 g，无水磷酸氢二钠0.724 g，磷酸二氢钾0.210g 溶于蒸馏水1000 mL 中，以1N 氢氧化钠溶液调pH 值为7.0~7.4，经121℃灭菌15 分钟五、我准备用多聚赖氨酸涂片培养细胞,不知道多聚赖氨酸涂过的玻片如何灭菌？能否干烤灭菌？答：Sigma的产品说明书上写的很明白的。
另外，有本书上是这么写的，供参考：Poly-lysine-coated tissue culture surfacesTo coat coverslips: Prepare a stock solution by dissolving 25 mg/ml polylysine in 4.73 ml water (both poly-L-lysine an d poly-D-lysine are used to coat tissue culture surfaces; check specific protocol for choice of isomer) and filter sterilize throu gh a 0.22-μm filter. Store in 100-μl aliquots at ?20°C. When ready to use, dilute one aliquot in 40 ml water to prepare 13 μg/ml working solution. Sterilize coverslips by autoclaving prior to coating. Dip coverslips in the working solution, then incubate 15 min to several hours in a humidified 37°C, 5% CO2 incubator. Allow surface to dry.To coat culture dishes or 8-well chamber slides: Prepare a stock solution by dissolving 100 mg poly-lysine in 100 ml water (both poly-L-lysine and poly-D-lysine are used to coat tissue culture surfaces; check specific protocol for choice of isom er) and filter sterilize through a 0.22-μm filter. Store in 5-ml aliquots at ?20°C. When ready to use, dilute 1 part stock solutio n with 9 parts water to prepare 100 μg/ml workin g solution. Fill tissue culture dishes or slide wells with the working solution and incubate 1 hr in a humidified 37°C, 5% CO2 incubator, then remove solution by vacuum aspiration and allow surface to dry.Store coated tissue culture ware up to 3 months at 4°C. Use diluted solutions only once, but unused diluted aliquots can be stored up to 3 months at 4°C.你可以配置好PLL后单独将其过滤除菌，分装，待用。
包被细胞培养板的相关问题
培养板的包被及相关问题：为了适应不同的实验需要，可对培养板用不同的物质进行包被后使用，这其中有促进细胞黏附的，也有用于一些特殊检测需要的。
不同的实验目的可能具体的方案亦不同，根据需要灵活掌握。
(一)多聚赖氨酸包被：问：我要培养原代神经细胞培养，要用多聚赖氨酸铺细胞培养板，请问赖氨酸液怎么配，怎样铺扳子答：配制0.01%的多聚赖氨酸: 首先买来si gma 公司的多聚赖氨酸，如是25mg，就需要250ml三蒸水，用移液管将少量三蒸水加到多聚赖氨酸的小塑料瓶中，然后将溶解的多聚赖氨酸加到200ml左右三蒸水中，(已置烧杯中)。
最后加三蒸水达250m l，过滤除菌分装与小瓶中即可。
保存于-20度，近期用的话可放于4度冰箱内保存。
注意每一小瓶的量不要太满，若20ml的瓶子，只装15ml可，若太满，放于-2度有可能会将瓶子弄碎，因冻后体积增加。
(我就有这个教训) 另外烧杯，小瓶、移液管都要灭菌处理的，泡酸高压什么的。
我们用的是一种用注射器过滤的过滤器，一次性的。
一个能最多有效过滤200ml。
铺板的操作:首先要在消毒实验室，包括超净台，紫外消度20-30分钟。
消毒后30分钟进入实验室。
事先准备100ml三蒸水，经高压灭菌处理。
具体细节就不多说了。
首先打开板子，用消毒好的试管将0.01%的多聚赖氨酸加入每一孔中，大概每孔3-4滴吧。
将板子盖好放到培养箱中(37度 5%CO2)30分钟。
取出板子，用吸管将多聚赖氨酸吸出。
换吸管，加入三蒸水，冲洗三次，即将每孔内加入三蒸水，没过底，多点也行。
再将水吸出来。
反复三次。
注意换吸管，要无菌操作的。
最后将铺好的板子放于培养箱待用。
如果你做免疫组化，需要放小的玻片到孔内，就在加多聚赖氨酸之前用无菌的镊子将无菌的玻片夹到孔内即可。
多聚赖氨酸处理细胞爬片步骤
多聚赖氨酸处理细胞爬片步骤嘿，朋友们！今天咱就来讲讲多聚赖氨酸处理细胞爬片的那些事儿。
你知道吗，这就好比给细胞准备一个舒服的小窝。
首先呢，得把细
胞爬片洗得干干净净的，就像给小窝打扫卫生一样。
然后，把多聚赖
氨酸溶液小心翼翼地倒在爬片上，让它均匀地覆盖住每一个角落，这
就好像给小窝铺上了一层柔软的垫子。
接下来可不能马虎，得让爬片在多聚赖氨酸溶液里好好泡一会儿，
让它们充分亲密接触，就像人和床要好好磨合一下一样。
泡够了时间，再把多余的溶液轻轻地倒掉，可别太粗鲁了，不然会把好不容易弄好
的“垫子”给弄乱了。
这时候，把爬片放在一边晾干，就等着细胞们来入住啦！你想想，
细胞们来到这个已经被精心处理过的小窝里，是不是会觉得特别舒服，特别愿意在这里安家落户呀！
不过啊，这过程中可得注意一些小细节。
比如说倒多聚赖氨酸溶液
的时候，可别手抖倒多了或者倒少了，那就不好啦！还有啊，泡的时
间也得把握好，太短了效果不好，太长了也不行呢。
这就好像做饭，
火候掌握不好，做出来的菜味道就不对啦！
而且啊，不同的细胞可能对多聚赖氨酸的反应还不太一样呢，就像
不同的人对同一种床的感受也不一样。
所以啊，咱得多试试，找到最
适合的处理方法，让细胞们都能开开心心地在爬片上生活、成长。
处理细胞爬片虽然听起来有点复杂，但只要咱一步一步认真做，肯定能做好呀！大家说是不是？等把这些都搞定了，就能更好地观察细胞啦，想想都觉得很有成就感呢！所以啊，别害怕，大胆去尝试，让我们和细胞来一场美妙的邂逅吧！。
如何使用多聚赖氨酸包被激光共聚焦小皿（conforcol）
如何使用多聚赖氨酸包被激光共聚焦小皿（conforcol）Prepare polylysine-coated coverslidsMaterials:Poly-l-lysine hydrobromide(P-1524), 100mg dissolved in 10ml h2o, ?Incubate cover glasses in 100% ethanol for overnight.Wash cover glasses for 30 min in running tap water.Rinse with dH20.Incubate cover gl asses in 40 μg/ml poly-L-lysine (MW ~70-90kD，made by 0.1M PB,Ph7.2) for 1 hour at room temperature.Wash cover glasses for 1 hour in running tap water.Rinse cover glasses 3 times 5 min each in dH2O.Dry cover glasses on filter paper in a dust-free area.Sterilize cover glasses inside the laminar flow chamber under UV light for at least 4 hours.处理好玻片之后，将玻片放入培养皿中，接种细胞，密度为10000个/ml，培养三天。
rocedure:1.After treatment, cells were fixed for 10min in 4% Para formaldehyde；2.After fixation, cells were washed three times in TBST (TBS plus 0.05%Tween-20)(10min/each);3.then blocked in 5% nonfat dried milk (NFDM in TBST) for 60 min;4.To detect the interest proteins, the cells were incubated with themonoclonal antibody(1:100) or polyclone antibody(1:500) in TBST plus 5% NFDM for 90 min;5.After three washes in TBST(10min/each at 60RPM), the cellswereincubated with dye-conjugated secondary antibody (Molecular Probes, Inc) diluted 1:400 in 5% NFDM for 60min6.After three washes in D-PBST the cells were pretreated with RNAseA for20min, followed by PI staining for 15min,then three washes in PBS.7.Cells then were mounted in glycerol PBS buffer(50% glycerol plus50%D-PBS)8.Cells were examined on microscope (Carl Zeiss,Inc., Thornwood, NY)equipped with fluorescence using an oil immersion63× objective lens.Images were captured using a Sony color video camera (Park Ridge, NJ)。
包被细胞培养板的相关问题
培养板的包被及相关问题：为了适应不同的实验需要，可对培养板用不同的物质进行包被后使用，这其中有促进细胞黏附的，也有用于一些特殊检测需要的。
不同的实验目的可能具体的方案亦不同，根据需要灵活掌握。
(一)多聚赖氨酸包被：问：我要培养原代神经细胞培养，要用多聚赖氨酸铺细胞培养板，请问赖氨酸液怎么配，怎样铺扳子答：配制0.01%的多聚赖氨酸: 首先买来sigma 公司的多聚赖氨酸，如是25mg，就需要250ml三蒸水，用移液管将少量三蒸水加到多聚赖氨酸的小塑料瓶中，然后将溶解的多聚赖氨酸加到200ml左右三蒸水中，(已置烧杯中)。
最后加三蒸水达250ml，过滤除菌分装与小瓶中即可。
保存于-20度，近期用的话可放于4度冰箱内保存。
注意每一小瓶的量不要太满，若20ml的瓶子，只装15ml可，若太满，放于-2度有可能会将瓶子弄碎，因冻后体积增加。
(我就有这个教训) 另外烧杯，小瓶、移液管都要灭菌处理的，泡酸高压什么的。
我们用的是一种用注射器过滤的过滤器，一次性的。
一个能最多有效过滤200ml。
铺板的操作:首先要在消毒实验室，包括超净台，紫外消度20-30分钟。
消毒后30分钟进入实验室。
事先准备100ml三蒸水，经高压灭菌处理。
具体细节就不多说了。
首先打开板子，用消毒好的试管将0.01%的多聚赖氨酸加入每一孔中，大概每孔3-4滴吧。
将板子盖好放到培养箱中(37度 5%CO2)30分钟。
取出板子，用吸管将多聚赖氨酸吸出。
换吸管，加入三蒸水，冲洗三次，即将每孔内加入三蒸水，没过底，多点也行。
再将水吸出来。
反复三次。
注意换吸管，要无菌操作的。
最后将铺好的板子放于培养箱待用。
如果你做免疫组化，需要放小的玻片到孔内，就在加多聚赖氨酸之前用无菌的镊子将无菌的玻片夹到孔内即可。
问：PLL的分子量有3-5万，7-15万，15-30万几种，应怎样选择？？谢谢：）答：我们养神经细胞，用的是分子量3万到7万的pll 。
以PBS配成1mg/ml的母液，－20度保存。
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Poly-lysine-coated tissue culture surfaces
1. To coat coverslips:
Prepare a stock solution by dissolving 25 mg/ml polylysine in 4.73 ml water (both poly-L-lysine and poly-D-lysine are used to coat tissue culture surfaces; check specific protocol for choice of isomer) and filter sterilize through a
0.22-μm filter.
Store in 100-μl aliquots at -20°C.
When ready to use, dilute one aliquot in 40 ml water to prepare 13 μg/ml working solution.
Sterilize coverslips by autoclaving prior to coating.
Dip coverslips in the working solution, then incubate 15 min to several hours in a humidified 37°C, 5% CO2 incubator.
Allow surface to dry.
2. To coat culture dishes: 多聚赖氨酸包被培养皿/板
Prepare a stock solution by dissolving 100 mg poly-lysine in 100 ml water (both poly-L-lysine and poly-D-lysine are used to coat tissue culture surfaces; check specific protocol for choice of isomer) and filter sterilize through a 0.22-μm filter.
配制1mg/ml储存液
Store in 5-ml aliquots at -20°C.
分装保存在-20度
When ready to use, dilute 1 part stock solution with 9 parts water to prepare 100 μg/ml working solution.
使用前按1：10稀释成100μg/ml工作浓度。
用5-10ml一次性无菌注射器和0.22μm滤器过滤除菌，备用。
Fill tissue culture dishes or slide wells with the working solution and incubate 1 hr in a humidified 37°C, 5% CO2 incubator, then remove solution by vacuum aspiration and allow surface to dry.
加入培养皿或培养板中，使能完全覆盖皿底即可，37度培养箱放置1小时或置超净台内室温过夜。
然后吸取液体，使表面晾干。
Store coated tissue culture ware up to 3 months at 4°C.
可以立即使用也可保存在4度3个月备用。
Use diluted solutions only once, but unused diluted aliquots can be stored up to 3 months at 4°C.
加入细胞前用1XPBS 洗三遍，然后加入细胞和培养液。