植物生理学实验分析
植物生理学实验报告植物光合和呼吸作用气孔导度和蒸腾速率的测定
植物生理学实验报告植物光合和呼吸作用气孔导度和蒸腾速率的测定实验目的1.了解植物光合作用和呼吸作用的基本原理；2.掌握测定植物光合速率和呼吸速率的方法；3.研究气孔导度和蒸腾速率对植物光合和呼吸的影响。
实验器材和试剂1.叶片割断测光变色；2.2%苯酚溶液；3.高锰酸钾溶液；4.高速搅拌器；5.快速气孔导度仪。
实验步骤1.测光变色法测定植物光合速率a.取一片健康的叶片，清洗干净并将其放入植物夹，放置在一定的光照下静置30分钟；b.取出叶片，剪去主脉，用尺寸吗测量剩下的叶片面积；c.在100毫升测试管中加入60毫升的2%苯酚溶液，并把叶片放入其中；d.启动计时器，并立即测定溶液的吸光度，每20秒测量一次，直至溶液的吸光度不再变化；e.计算吸光度的差值ΔA。
f.根据标准曲线得到ΔA对应的氧气释放量。
a.取一片健康的叶片，清洗干净并将其放入植物夹，放置在一定的光照下静置30分钟；b.取出叶片，剪去主脉，用尺寸吗测量剩下的叶片面积；c.用快速气孔导度仪测量叶片的气孔导度；d.用高速搅拌器将叶片搅拌至均质的状态；e.在一定比例下加入高锰酸钾溶液，并盖紧容器；f.监测高锰酸钾溶液颜色的变化，根据变化速率计算呼吸速率。
3.研究气孔导度对光合作用的影响a.分别测量三片不同大小的叶片的气孔导度；b.在充足的光照下测定叶片的光合速率；c.根据实验数据计算气孔导度和光合速率的相关性。
4.研究气孔导度对蒸腾作用的影响a.分别测量三片不同大小的叶片的气孔导度；b.在一定的湿度条件下测定叶片的蒸腾速率；c.根据实验数据计算气孔导度和蒸腾速率的相关性。
实验结果和讨论1.实验结果：根据实验数据计算出的光合速率和呼吸速率；2.实验讨论：分析气孔导度和蒸腾速率对光合和呼吸的影响。
总结通过本实验，我们深入了解了植物生理学中光合作用和呼吸作用的基本原理，并掌握了测定植物光合速率和呼吸速率的方法。
我们还研究了气孔导度和蒸腾速率对植物光合和呼吸的影响。
最新植物生理学实验理论实验报告
最新植物生理学实验理论实验报告实验目的：探究不同光照强度对植物光合作用速率的影响，并结合最新的植物生理学理论进行数据分析。
实验材料：1. 生长状况相似的豌豆苗若干2. 可调节光照强度的人工光源3. 光合作用测定仪4. 称重天平5. 蒸馏水6. 培养皿和培养土实验方法：1. 将豌豆苗随机分为五组，每组五株，分别放置在不同光照强度的环境中，光照强度分别为低、中低、中等、中高和高。
2. 每日定时使用光合作用测定仪测量各组豌豆苗的光合作用速率，连续观察一周。
3. 记录每天的光照强度和对应的光合作用速率数据。
4. 使用最新的植物生理学理论，结合C3和C4光合作用途径，分析光照强度变化对植物光合作用的影响。
5. 通过统计软件对数据进行方差分析，确定光照强度对光合作用速率的影响是否显著。
实验结果：数据显示，在中等光照强度下，豌豆苗的光合作用速率达到最高。
随着光照强度的进一步增加或减少，光合作用速率均有所下降。
方差分析结果表明，光照强度对植物光合作用速率有显著影响。
理论分析：根据最新的植物生理学理论，植物的光合作用包括光反应和暗反应两个阶段。
光照强度的变化会影响光反应中光合色素的吸收和激发，进而影响ATP和NADPH的生成，这些都是暗反应中合成有机物所必需的。
在中等光照强度下，光合色素的有效利用达到最佳，从而使得光合作用速率最高。
过低的光照强度无法提供足够的能量和还原力，而过高的光照强度可能导致光抑制现象，影响光合作用的效率。
结论：本实验验证了光照强度对植物光合作用速率有显著影响，并与最新的植物生理学理论相符合。
实验结果表明，适当的光照强度是提高植物光合作用效率的关键因素。
未来的研究可以进一步探讨不同植物种类对光照强度的适应性和最适光照强度范围。
植物生理学实验 实验报告
植物生理学实验实验报告植物生理学实验实验报告摘要：本实验旨在探究植物的生理反应和适应机制。
通过观察植物在不同环境条件下的生长和生理指标的变化，我们可以更好地理解植物的生理过程和适应策略。
本实验采用了盆栽植物的生长观察和测量方法，结合实验室中的设备和技术手段，得出了一系列有关植物生理学的结论。
1. 引言植物生理学是研究植物生长、发育和适应环境的科学，它涉及植物的生理过程、代谢调节、信号传导等方面。
通过实验研究，我们可以揭示植物在不同环境条件下的生理反应和适应机制，为植物的生产和保护提供理论依据。
2. 材料与方法本实验选取了常见的盆栽植物作为实验对象，包括绿萝、仙人掌和吊兰。
为了模拟不同环境条件，我们设置了三组实验组：阳光组、阴影组和干旱组。
每组实验设置五个重复，以保证实验结果的可靠性。
3. 结果与讨论3.1 生长观察在阳光组中，绿萝的叶片呈现出深绿色，茂密且向阳生长；仙人掌的刺变得更加粗壮，颜色也更加鲜艳；吊兰的叶片展开较大，叶色浅绿。
而在阴影组中，绿萝的叶片变得较为苍白，茂密度下降；仙人掌的刺变得细长，颜色较为暗淡；吊兰的叶片展开较小，叶色深绿。
在干旱组中，绿萝的叶片开始出现萎蔫现象；仙人掌的刺变得干瘪，颜色变得暗淡；吊兰的叶片开始卷曲，叶色变黄。
3.2 生理指标测量我们通过测量叶片的光合速率、蒸腾速率和叶绿素含量等指标，来进一步了解植物在不同环境条件下的生理变化。
在阳光组中，绿萝的光合速率较高，蒸腾速率也较高；仙人掌的光合速率较低，蒸腾速率也较低；吊兰的光合速率和蒸腾速率处于中等水平。
而在阴影组中，绿萝的光合速率和蒸腾速率下降明显；仙人掌的光合速率和蒸腾速率几乎停止；吊兰的光合速率和蒸腾速率也有所下降。
在干旱组中，绿萝的光合速率和蒸腾速率急剧下降；仙人掌的光合速率和蒸腾速率几乎停止；吊兰的光合速率和蒸腾速率也有所下降。
叶绿素含量的测量结果与光合速率和蒸腾速率的变化趋势一致。
4. 结论通过本实验的观察和测量，我们可以得出以下结论：1) 植物在阳光充足的环境下生长更加茂盛，叶片颜色更加鲜艳。
植物生理学实验报告植物生理学实验基本理论
植物生理学实验报告植物生理学实验基本理论一、植物生理学实验的基本理论1.植物生理学的基本概念：植物生理学是研究植物的生命过程和功能的学科，包括植物的营养、吸收与运输、呼吸、光合作用、生长发育等方面的研究。
2.实验的重要性：实验是科学研究的基础，通过实验可以验证理论，揭示现象背后的机制，推动学科的发展。
3.实验设计的原则：实验设计应具有科学性、可重复性、控制性和操作性。
科学性是指实验要有明确的科学目的和科学问题；可重复性是指实验的方法和结果可以被其他人重复验证；控制性是指实验中要对可能影响结果的因素进行控制；操作性是指实验的方法和步骤应具有可行性和操作性。
二、植物生理学实验的实施步骤1.实验前的准备工作：确定实验的目的和科学问题，收集相关的文献资料，了解实验的背景和已有研究成果。
2.实验器材和试剂准备：选择适当的实验仪器和试剂，确保其质量和可靠性。
3.实验的操作步骤：按照实验设计的方法和步骤进行实验操作，记录下关键的观察和测量数据。
4.实验结果的分析与讨论：将实验数据进行统计和分析，通过统计学方法对结果进行验证，并对实验结果进行解释和讨论。
5.实验结论的总结：根据实验结果和讨论的内容，总结出实验结论，并对下一步的研究方向提出建议。
三、实验示例：光合作用速率与光强的关系实验1.实验目的：探究光合作用速率与光强之间的关系。
2.实验步骤：(1)实验器材准备：太阳光度计、荧光光度计、并联光电度数计、光源、植物叶片。
(2)实验操作：a.在不同的光强条件下，测量光合作用速率和光强的关系。
b.分析测量结果，绘制光合作用速率与光强的曲线图。
c.讨论实验结果，解释光合作用速率与光强之间的关系。
3.实验结果：(1)测量结果表明，光合作用速率与光强之间存在正相关关系。
(2)高光强条件下，光合作用速率较高；低光强条件下，光合作用速率较低。
4.实验结论：光合作用速率与光强呈正相关关系，即光合作用速率随着光强的增加而增加。
通过以上实验示例，我们可以看到植物生理学实验的基本理论和实验设计。
植物生理学实验报告
首都师范大学生命科学学院实验报告课程名称植物生理学实验成绩姓名苗雪鹏班级 1班学号 1080800021 实验题目实验三植物体中N、P、K主要养分的速测【实验目的】1．了解植物体内N、P、K测定的意义和方法2．掌握如何测定植物体中N、P、K的实验技能【实验原理】植物体主要由C、H、O、N、P、K、Ca、Mg、S、Fe等十几种元素组成，除此以外还包括Ca、Zn、Mn、B、Mo，但需要量较少。
在通常条件下，植物利用太阳光能，从空气中获得C，从水中获得氢和氧，而N、P、K等元素则是来源土壤肥力。
在栽培过程中，能够知道植物的需要和土壤内N、P、K变动的情况，对考虑施肥措施是有帮助的，因此测定土壤及植物体内的N、P、K是很重要的。
硝态N测定：硝态N是硝酸的阴离子（NO3-），它是强氧化剂，所以鉴定N-离子几乎都用氧化反应，用二苯胺（C6H5）2NH的方法，这个方法的原理是在NO3-存在时二苯胺被硝酸氧化而显蓝色。
有效P和无机P测定：P与钼酸铵反应生成磷钼酸铵，然后以氧化亚锡作为还原剂时，使磷钼酸铵还原为“磷钼兰”（低价钼化合物混合物）溶液呈兰色。
此法能测土壤有效P，过磷酸钙中有效P和植物体内的无机磷。
速效K的测定：四苯硼钠〔NaB(C6H5)4〕与钾离子生成白色沉淀为四苯硼酸钾〔KB(C6H5)4〕【实验材料和试剂】在完全培养液、缺乏N、P、K、Fe的营养液中培养四周的玉米苗硝态氮试剂、磷试剂Ⅰ、磷试剂Ⅱ、K试剂、标准溶液1、5、10、20、40ppm【实验方法】1．植物组织浸提液制备将植物剪成小块，称取1g，迅速倒入已沸腾的蒸馏水（约10ml）烧杯中，用毛细玻璃棒经常搅动，小火煮十分钟，煮液倒入10ml容量瓶中，另加少量蒸馏水，继续小火煮植物材料5分钟，浸提液倒入上述容量瓶内，再以少量蒸馏水洗植物材料，使最后容量为10ml。
植物组织在计算含量时要乘以10，因每克鲜组织稀释了10倍。
2．硝态N测定在白瓷板的凹内分别滴入1、5、10、20、40ppm的混合标准液1滴，然后将待测液（植物浸提液）分别滴入其他凹内，最后每个凹内各加5滴二苯胺硫酸溶液，用毛细玻璃棒搅匀，3-5分钟，观察标准液与待测液蓝色变化，待测液的蓝色近似于某标准液的蓝色，就是待测液的硝态N含量。
植物生理学实验报告
实验一植物组织水势的测定（小液流法）——2013.3.11 一、目的用小液流法（落滴法）测定植物组织的水势，由水势大致了解植物体内的水分状况二、原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，谁从水势高处流向低处。
植物体细胞之间，组织之间以及植物体和环境间的水分移动方向都由水势插决定。
三、材料与设备植物材料：阔叶树叶片（大叶女贞）实验器具：细滴管一支；试管及指形管各五支（带塞）；100mL烧杯一只；镊子、剪刀各一把；2mL、5mL移液管各一支；标签纸；钻孔器；木板试剂：1ml/L蔗糖溶液；甲烯蓝溶液四、操作步骤1.用短滴管吸取1,mol/L蔗糖液配制一系列浓度递增的蔗糖溶液（0.05,0.1,0.2,0.3,0.4mol/L）各10 ml，加入干燥刻度试管内，各管都加上塞子，充分混合，并编号。
用移液管从浓度各试管中吸取1ml注入第二指形管内，各管均加塞，并贴上标签。
2.用钻孔器（取相同部位）钻取同大小叶片。
每支指形管中放入10片，加塞，放置20~30分钟（期间摇动2~3次），到时间后，加入2~3滴甲烯蓝溶液于指形管中，使其溶液呈蓝色，以区别原来的颜色。
3.用细长滴管从各指形管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入相同编号（原相同浓度）试管的中部，缓慢从细长滴管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，在无色透明背景上观察小液滴移动的方向。
如果有色液滴向上移动，说明细胞液中水分外流，试验比重比原来小；如果有色液向下移动，则说明细胞从溶液中吸收了水分，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动，向外扩散则说明两者的浓度相等或接近，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
记录液滴不动的试管中蔗糖溶液的浓度，若找不到改浓度，取在下降上升转变时量浓度的均值。
五、作业1.记录小液流在试管内的移动方向2.按下列公式计算组长的水势：ψW（细胞水势）=ψs=-CRT式中：ψs——溶液的渗透势，以Mpa为单位R——气体常数，为0.008314Mpa*L/（mol*K）。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告摘要：本实验旨在通过一系列实验来研究植物的生理特性及其对外界环境的响应。
我们使用了单子叶植物蔗糖苦苣菜（Saccharum officinarum L.）作为研究对象，并分别对其光合作用、光反应及水分运输进行了分析。
通过实验结果，我们得出了一些重要结论，对于深入了解植物生理学及其应用具有重要的意义。
引言：植物生理学是研究植物如何在内外环境的调节下进行生长和发育的科学。
通过对植物的生理特性进行研究，我们可以更好地了解植物生活的基本规律。
因此，本实验旨在通过一系列实验来深入研究植物的生理学特性。
材料与方法：1. 实验材料：蔗糖苦苣菜植株、草状质量秤、光谱辐射计、叶绿素荧光仪、离心机等。
2. 实验步骤：- 实验一：光合作用a. 将蔗糖苦苣菜植株放置在恒温暗房内恢复一段时间。
b. 将光谱辐射计放在适当位置，记录光照强度和光质。
c. 将一片健康的叶片置于夹层式草状质量秤上，记录叶片重量。
d. 将叶片暴露在光源下，测量一定时间内的叶片重量。
e. 重复实验步骤c和d，以获得多组数据并进行统计分析。
- 实验二：光反应a. 将蔗糖苦苣菜叶片置于叶绿素荧光仪上，等待测量稳定。
b. 记录初始叶绿素荧光（F_o）值。
c. 迅速打开强光源，记录最大叶绿素荧光（F_m）值。
d. 计算有效光能利用率（Yield）和光化学淬灭（qP）等参数。
- 实验三：水分运输a. 随机选取两片蔗糖苦苣菜叶片，将其离枝并切割横截面。
b. 快速将一片叶片放置在自来水中，随即用另一片叶片封住叶脉。
c. 将样品放置在离心机上，启动离心机以模拟植物体内水分运输。
d. 一段时间后，观察叶片的水分状态，并记录数据。
结果与讨论：1. 实验一的结果显示，蔗糖苦苣菜的光合作用明显受到光照强度和光质的影响。
光照强度越高，光合速率越快。
同时，特定波长范围的光对光合作用的促进作用更为明显。
2. 实验二的结果表明，蔗糖苦苣菜的光反应能力非常高，有效光能利用率和光化学淬灭都表现出良好的性能。
23年电大春植物生理学实验报告
23年电大春植物生理学实验报告植物生理学是植物学的一个重要分支，研究植物的生长、发育、代谢和适应环境的生理过程。
本次实验旨在通过对植物生长适应环境的生理过程的研究，了解植物的生理特性及其对环境的响应。
本次实验主要包括光合作用、呼吸作用、光周期和温度对植物生长的影响四个方面。
一、光合作用光合作用是植物体内最为重要的生理过程之一，其主要功能是将光能转化为化学能，用于植物生长发育。
光合作用的速率受到环境因素和植物本身因素的影响，如光照强度、气温、二氧化碳浓度、水分和养分等。
本次实验以豆科植物菜豆为实验材料，通过对菜豆在不同光照强度下的光合速率的测定，探究光合作用对光的适应性。
实验结果表明，随着光照强度的增加，菜豆的光合速率逐渐增加，但当光照强度超过一定范围时，光合速率不再增加反而下降。
这说明植物对光照强度有一定的适应性，同时也提示我们在种植植物时应注意合理调节光照强度，以促进植物生长发育。
二、呼吸作用呼吸作用是植物代谢中的重要过程之一，主要功能是将有机物质氧化解除其中的化学能，提供能量和物质物质合成。
呼吸作用的速率受环境因素和植物本身因素的影响，如温度、光照强度、二氧化碳浓度和物质代谢等。
本次实验以菜豆为实验材料，通过对菜豆在不同温度下呼吸速率的测定，探究温度对植物呼吸作用的影响。
实验结果表明，随着温度的升高，菜豆的呼吸速率逐渐增加，在一定范围内呼吸速率与温度呈正相关关系，而当温度超过一定范围时，呼吸速率逐渐降低。
这说明植物对温度有一定的适应性，同时也提示我们在种植植物时应注意调节温度，以促进植物生长发育。
三、光周期光周期是指植物在每24小时内所接受到的光照和黑暗时间的比例。
光周期的变化可以影响植物的生长发育、花期和产量等。
本次实验以短日植物马铃薯为实验材料，通过对马铃薯在不同光周期下的生长情况的观察，探究光周期对植物生长的影响。
实验结果表明，马铃薯的生长发育受到光周期的影响，长日照下马铃薯生长缓慢，而短日照下马铃薯生长明显加快，根系发达，叶片增多，这是因为短日照能够刺激马铃薯的花芽分化和生长，促进植物生长发育。
植物生理学实验 实验报告
植物生理学实验实验报告
《植物生理学实验实验报告》
实验目的：
本实验旨在探究植物生长过程中的生理学特性，通过实验观察和数据分析，了
解植物对外界环境的适应能力。
实验材料：
本次实验所需材料包括小麦种子、培养皿、水、土壤、温度计、光照计、湿度
计等。
实验步骤：
1. 将小麦种子放置于培养皿中，分别在不同的条件下进行实验观察。
其中包括
不同的温度、光照和湿度条件。
2. 记录每组实验条件下小麦种子的发芽率、生长速度、叶片颜色等生理学特征。
3. 对实验数据进行统计分析，比较不同条件下植物生长的差异，分析植物对外
界环境的适应能力。
实验结果：
经过实验观察和数据分析，我们发现在不同的温度、光照和湿度条件下，小麦
种子的生长状况存在显著差异。
在适宜的温度和湿度条件下，小麦种子的发芽
率和生长速度较高，叶片颜色也更加翠绿。
而在极端的温度和湿度条件下，小
麦种子的生长受到抑制，甚至出现枯萎现象。
实验结论：
通过本次实验，我们深刻认识到植物对外界环境的适应能力，以及不同环境条
件对植物生长的影响。
这不仅有助于我们更好地了解植物生理学特性，也为农
业生产和植物保护提供了重要的理论依据。
总结：
植物生理学实验是深入了解植物生长过程和生理特性的重要手段，通过实验观察和数据分析，我们可以更加全面地了解植物对外界环境的适应能力，为植物生长和保护提供科学依据。
希望本次实验能够对植物生理学研究和相关领域的发展起到一定的推动作用。
植物生理学实验报告植物组织水势测定
植物生理学实验报告植物组织水势测定实验目的：本实验旨在通过测量植物组织的水势，了解植物在不同生理状态下的水分状况和水分调节能力。
实验原理：植物组织的水势是一个重要的生理指标，用来描述植物的水分状态。
水势的测定是通过测量植物组织与纯水之间的压力差来实现的。
当植物组织的水势为负值时，说明组织在吸水，而正值则表明组织有排水的趋势。
实验步骤：1.准备材料：取一盆植物，将其叶片切下并放入离心管中；准备一些试管和纯水。
2.测量植物组织的水势：将离心管放入测水袋中，并将测水袋连至一根透气玻璃管，然后将试管插入水槽中以保持温度恒定。
通过气压计记录水势值。
3.测量植物组织在不同条件下的水势：可以在不同的实验条件下测量植物组织的水势，如在光照、温度变化或干旱条件等。
4.数据记录与分析：记录测得的水势数值，并进行统计和比较，以检验不同条件对植物组织水势的影响。
实验结果与讨论：通过对植物组织水势的测定，我们可以得到一些有意义的结果。
首先，测量不同植物组织在水势上的差异。
由于植物不同部位的组织结构和功能不同，其水分状况也会有差异。
比如，叶片的水势可能会更高，因为它们是光合作用和气体交换的主要结构。
其次，测定不同环境条件下植物组织的水势变化。
例如，在干旱条件下，植物会通过减少蒸腾作用和调节根部的水分吸收来保持水势平衡。
因此，测量植物组织在干旱条件下的水势，可以帮助我们了解植物对干旱的应对机制。
此外，还可以通过对不同温度和光照条件下植物组织水势的测定，来研究植物的生长和适应性。
不同的温度和光照条件会影响植物的光合作用和蒸腾作用，从而改变植物的水分平衡。
综上所述，植物组织水势的测定是一个重要的植物生理学实验，在研究植物的水分状况和水分调节能力方面具有重要意义。
通过进行多方面的测定和分析，我们可以更好地了解植物的生理机制和适应性。
植物生理学实验报告叶绿体色素的提取分离理化性质和叶绿素含量的测定
植物生理学实验报告叶绿体色素的提取分离理化性质和叶绿素含量的测定引言：叶绿体是植物细胞中的一个重要细胞器，其中主要存在着叶绿素等色素，它们在光合作用中起着重要的作用。
研究叶绿体色素的提取、分离、理化性质和叶绿素含量的测定，对于了解光合作用的机理以及研究植物生理生化过程具有重要意义。
本实验旨在通过实验手段提取叶绿体色素，进行色素的分离、理化性质的研究和叶绿素含量的测定。
材料与方法：材料：菠菜叶片、研钵、磨杵、丙酮、乙醇、石油醚、叶绿素提取液、测色皿、高锰酸钾溶液、浓硫酸。
方法：1.取适量菠菜叶片放入研钵中，加入适量丙酮，用磨杵捣碎成糊状。
2.将捣碎的菠菜糊状物转移到玻璃漏斗中，用石油醚冲洗3次，使叶绿体附着物进一步析出。
3.将漏斗中的上清液收集，并加入适量乙醇，振摇混合，使叶绿素慢慢析出。
4.将释放出的叶绿体颗粒通过离心机离心沉淀10分钟，收集沉淀。
5.取收集到的叶绿体沉淀，加入适量叶绿素提取液，用乳钙酸钠解离剂进行叶绿素含量的测定。
6.将其中一部分叶绿体溶液加入高锰酸钾溶液，观察颜色变化。
7.将其余叶绿体溶液与浓硫酸混合，观察颜色变化。
结果与讨论：通过上述方法，我们成功地提取并分离出菠菜叶片中的叶绿体色素。
加入石油醚可以去除一部分杂质，使叶绿体进一步纯化。
加入乙醇可以使叶绿素从叶绿体中溶出。
通过离心沉淀，我们收集到了叶绿体的沉淀物。
叶绿体的提取液与高锰酸钾溶液反应后呈现蓝色或紫色，这是由于高锰酸钾通过氧化反应将一些具有现菌酮结构的物质氧化为合成叶绿素的前体物质所引起的。
这种反应也证实了叶绿体的存在。
叶绿体溶液与浓硫酸混合后呈现蓝绿色，这是由于浓硫酸通过剥离叶绿体周围的蛋白质和其他有机物质，将叶绿素分子释放出来，产生颜色变化。
叶绿素的含量测定是通过与乳钙酸钠解离剂反应来进行的。
乳钙酸钠解离剂能够与叶绿体中的叶绿素结合，并形成稳定的叶绿素-乳钙酸钠络合物。
这种络合物通过光密度的测定，可以根据比色法来测量叶绿素的含量。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告植物生理学实验报告引言：植物生理学是研究植物内部生理过程的科学，通过实验方法可以深入了解植物的生长发育、代谢、适应环境等方面。
本实验旨在探究植物对光照强度的响应机制，以及光合作用对植物生长的影响。
材料与方法：实验材料包括小麦种子、培养皿、土壤、水、光照强度计等。
首先，将小麦种子均匀撒在培养皿中，然后在不同的光照条件下进行培养。
实验分为三组，分别是高光照组、中光照组和低光照组。
每组设置三个重复样本。
在实验过程中，使用光照强度计测量不同组的光照强度，并根据需要调整光照灯的距离。
结果与讨论：实验结果显示，光照强度对小麦的生长发育有明显的影响。
在高光照组下，小麦的生长速度较快，茎秆高度和根系发达。
而在低光照组下，小麦的生长速度明显减缓，茎秆矮小，根系生长不良。
中光照组的小麦生长状况介于两者之间。
这种光照对植物生长的影响主要是由于光合作用的变化引起的。
光合作用是植物通过光能转化为化学能的过程，是植物生长发育的重要能量来源。
在高光照条件下，植物叶片能够充分接收到光能，从而促进光合作用的进行，提供足够的能量和养分供植物生长发育所需。
而在低光照条件下，植物叶片接收到的光能减少，光合作用能力减弱，因此植物生长速度减缓。
此外，实验还观察到了光照强度对小麦叶片颜色的影响。
在高光照组下，小麦叶片呈现出浓绿色，而在低光照组下，叶片颜色较为苍白。
这是因为光照强度的不同导致了叶绿素的合成和降解速率的变化，进而影响了叶片的颜色。
结论：通过本实验，我们得出了光照强度对植物生长发育的影响是显著的结论。
高光照能够促进植物的生长速度和光合作用的进行，而低光照则会导致植物生长减缓和叶片颜色苍白。
这对于植物生理学研究和植物栽培具有一定的指导意义。
然而，本实验还存在一些不足之处。
首先，实验中使用的小麦种子数量较少，样本量较小，因此实验结果的可靠性有待进一步验证。
其次，本实验只研究了光照强度对植物生长的影响，未涉及其他因素如温度、湿度等对植物生理的影响。
植物生理学综合实验
第九组 MJ与NO、H2O2的关系
第九组组要是两个实验，第一个是将茉莉酸甲酯和维生素C合用，维生素C是延 缓叶片衰老的，茉莉酸甲酯的促进叶片衰老的，两者的作用应该是相互抵消的。 第二个是将茉莉酸甲酯和过氧化氢在一起合用，两者都是促进细胞衰老的，当 一定合用是，衰老效果更加的明显，因为两者的作用相互叠加了。但是第一个 实验的实验现象在鉴定细胞活性的时候，结果却不是很明显，看了一下，叶片 时没什么问题的，导致这样的原因可能是染色环节上出错了，有可能是脱色时 间不够，也有也能是有光亮环境的时间过多，导致脱色效果不好等等。
第七小组
第八组
5×10-4mol/L MJ+300umol/L SNP
5×10-6 mol/L MJ+100umol/LHb
5×10-6mol/L MJ+1.0g/L ETH
5×10-4 mol/L MJ+75umol/L COCl2
第八小组
第九组
5×10-4mol/L MJ+1.0g/L Vc
植物生理综合实验 细胞死活与H2O2鉴定
学号 姓名
一 实验目的：
1.了解信号物质、激素对植物子叶的影响 2.掌握细胞死活与过氧化氢鉴定方法
二 实验原理：
植物受到一些物质处理时，会作出相应的反应。 产 生活性物质（信号物质）。一些细胞甚至会死亡。这些反 应可被检测。
三实验内容：
一、茉莉酸甲酯对黄瓜子叶的作用 二、一些物质对茉莉酸甲酯作用的影响
茉莉酸甲酯在植物生长和发育过程中是体现出类似 激素的作用，能够促进种子的萌发，植物的生长、开 花、还能促进叶片的衰老，块茎形成，果实成熟等。 从第一组的实验可以看出茉莉酸甲酯促进了叶片的衰 老，并且浓度越高，对细胞的衰老作用就越强。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告实验一、植物组织水势测定（小液流法）一、实验原理水总是从水势高的系统流向水势低的系统。
将植物叶片分别与一系列不同浓度的蔗糖溶液接触，蔗糖溶液浓度从小到大，开始时，植物叶片水势低于蔗糖溶液，溶液中水分向叶片转移，蔗糖溶液浓缩，蔗糖溶液密度较原始浓度升高；蔗糖溶液高到一定浓度后，蔗糖溶液水势低于植物叶片，叶片水分向溶液中转移，蔗糖溶液稀释，密度较原始浓度降低。
如果植物组织的水势等于蔗糖溶液的水势，水分不发生净移动，外液浓度较原浓度不发生变化上述浸泡过植物组织、浓度发生改变的蔗糖溶液为乙组。
原始浓度的蔗糖溶液为甲组。
将乙组溶液染色后，取乙组溶液一小滴（小液流），放入对应浓度的甲组溶液中，观察小液流因密度不同而下降、上升或不动的情况，记录与之相对应的甲组溶液的浓度。
二、材料与设备1.材料：植物叶片；2.仪器设备：试管、试管架、打孔器、尖头镊子、尖头针、移液管、毛细滴管；3.试剂：1M蔗糖液、甲烯蓝粉。
三、实验步骤1.蔗糖溶液配制：l)取干燥洁净试管5支，贴标签标记，用1M蔗糖母液配制蔗糖溶液，浓度由小到大分别为0.1、0.25、0.5、0.75、1M，每个浓度均配8m1，放入对应标记的试管中，作为甲组（一定要混匀）2）另取干燥洁净的指形管5支，标明0.1、0.25、0.5、0.75、1M浓度的蔗糖溶液，分别从甲组取相应浓度蔗糖溶液1m1置于指形管，作为乙组。
2.取样及测定1)选取生长一致的叶片，用打孔器钻取小圆片4-6片/管，将小圆片全部浸入乙组指形管溶液中，摇动20分钟；2）用针尖蘸取少许甲烯蓝粉末，分别放入乙组各指形管中，摇匀，可看见乙组指形管中溶液颜色变蓝：3）用毛细滴管吸取蓝色溶液，轻轻插入相应浓度的甲组溶液中部，用吸耳球轻柔吹气，以帮助蓝色溶液从毛细滴管中流出。
在流出的一瞬间观察并记录液滴的升降情况；4）若液滴下降，说明组织吸水使溶液变浓，比重变大；若液滴上升，说明组织失水使溶液变稀，比重变小；若液滴静置不动，说明此溶液的溶质势与叶圆片组织的水势相等，水分交换平衡，溶液比重不变，根据溶液的浓度可计算水势：若前一浓度溶液小液流下沉，而后一浓度溶液中上浮，则组织的水势值介于两蔗糖溶液水势之间，可取平均值计算。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告
植物是我们周围不可或缺的重要生物，它们通过各种生理过程实现
生长、发育和适应环境。
为了更深入地了解植物的生理特点，我们进
行了一系列植物生理学实验。
以下是我们的实验报告：
实验一：光合作用速率与光照强度的关系
在这个实验中，我们收集了不同光照强度下植物的光合作用速率数据。
结果显示，随着光照强度的增加，植物的光合作用速率呈现出增
加的趋势。
这表明光照强度对植物光合作用的影响十分显著，光合作
用速率与光照强度呈正相关关系。
实验二：水分蒸腾速率与相对湿度的关系
在这个实验中，我们测量了不同相对湿度下植物的水分蒸腾速率。
结果显示，随着相对湿度的增加，植物的水分蒸腾速率逐渐降低。
这
表明植物的水分蒸腾速率受相对湿度的影响，相对湿度与水分蒸腾速
率呈负相关关系。
实验三：温度对植物呼吸速率的影响
在这个实验中，我们调节了不同温度下植物的呼吸速率。
结果显示，随着温度的升高，植物的呼吸速率也随之增加。
这表明植物的呼吸速
率受温度影响，呼吸速率与温度呈正相关关系。
通过以上实验，我们对植物的光合作用、水分蒸腾和呼吸等生理过
程有了更深入的了解。
这些实验为我们研究植物的生长发育及环境适
应性提供了重要的参考依据。
希望我们的实验结果能对今后的植物生理学研究有所启发和帮助。
《植物生理学实验》
植物生理学实验引言植物生理学实验是研究植物生长和发育过程中的生理过程的一种科学方法。
通过对植物进行不同条件下的实验观察和分析，可以了解植物对外界环境的适应能力、生长调控机制等重要信息。
本文将介绍几个常见的植物生理学实验，包括光合作用实验、呼吸作用实验和植物生长调控实验。
实验一：光合作用实验实验目的研究光合作用在植物生理过程中的影响。
实验材料和仪器•适用于实验的植物样本•光照箱•光合作用测定仪器（如光合速率测定仪）实验步骤1.准备植物样本，并将其放置于光照箱中。
2.分别设置不同光照强度（如低光、中光、高光）的条件，并记录光照强度。
3.使用光合速率测定仪器，测定每个条件下的光合速率。
4.分析结果并得出结论。
实验结果和讨论根据实验结果，可以得出光照强度对光合作用速率的影响。
光照强度越高，光合作用速率越快，因为光合作用需要光能作为能量来源。
这个实验表明了光合作用对植物生长和发育的重要性，同时也可以用于评估植物对不同光照条件下的适应能力。
实验二：呼吸作用实验实验目的研究植物呼吸作用的过程和机制。
实验材料和仪器•成活的植物样本•呼吸速率测定仪器实验步骤1.准备植物样本并放置于呼吸速率测定仪器中。
2.记录植物在不同条件下的呼吸速率，如不同温度、不同光照等。
3.分析结果并得出结论。
实验结果和讨论通过呼吸速率的测定，可以了解到不同条件下植物呼吸的强度和速率。
温度对植物呼吸速率的影响比较显著，一般情况下，随着温度的升高，植物呼吸速率也会提高。
这个实验可以帮助我们理解植物的能量代谢过程，为植物生长和发育的调控机制提供重要信息。
实验三：植物生长调控实验实验目的研究不同条件对植物生长和发育的调控作用。
实验材料和仪器•可控环境设备（如生长箱）•不同生长因子的处理液（如植物激素）实验步骤1.准备植物样本，并将其种植在生长箱中。
2.设置不同生长条件，如温度、湿度、光照等，并记录相关参数。
3.分别加入不同处理液，如植物激素，观察植物生长和发育的变化。
植物生理学实验报告
一、实验名称植物生理学实验：植物蒸腾作用的观察与测定二、实验目的1. 观察植物蒸腾作用的现象。
2. 测定植物叶片的蒸腾速率。
3. 了解影响植物蒸腾作用的因素。
三、实验原理植物蒸腾作用是指植物体内水分通过叶片气孔以水蒸气形式散发到大气中的过程。
蒸腾作用是植物体内水分循环的重要环节，对植物的生长发育和生态环境具有重要意义。
实验中，通过观察植物叶片气孔的开闭情况，测定叶片的蒸腾速率，分析影响蒸腾作用的因素。
四、实验材料与仪器1. 实验材料：新鲜植物叶片、剪刀、蒸馏水、滤纸、玻璃片、温度计、秒表、透明塑料袋。
2. 实验仪器：分析天平、蒸馏水器、温度计、秒表、量筒、透明塑料袋。
五、实验步骤1. 将新鲜植物叶片用剪刀剪成约1cm²的小块，用蒸馏水洗净，晾干。
2. 将叶片放入透明塑料袋中，密封袋口。
3. 用温度计测量叶片和塑料袋内的温度，记录初始温度。
4. 将塑料袋置于室温下，每隔一定时间（如5分钟）观察叶片气孔的开闭情况，记录气孔开闭次数。
5. 将叶片从塑料袋中取出，用分析天平称量叶片质量，记录初始质量。
6. 将叶片放入蒸馏水中浸泡，使其充分吸水。
7. 将吸水后的叶片重新放入塑料袋中，密封袋口。
8. 将塑料袋置于室温下，每隔一定时间（如5分钟）观察叶片气孔的开闭情况，记录气孔开闭次数。
9. 将叶片从塑料袋中取出，用分析天平称量叶片质量，记录吸水后的质量。
10. 计算叶片的蒸腾速率。
六、实验结果与分析1. 观察叶片气孔的开闭情况，发现叶片在室温下蒸腾作用明显，气孔开放次数较多；在蒸馏水中浸泡后，气孔开放次数明显减少。
2. 通过实验数据计算，得到不同条件下叶片的蒸腾速率。
3. 分析影响植物蒸腾作用的因素，如温度、光照、水分等。
七、实验结论1. 植物蒸腾作用是植物体内水分循环的重要环节，对植物的生长发育和生态环境具有重要意义。
2. 温度、光照、水分等因素对植物蒸腾作用有显著影响。
3. 本实验通过观察植物叶片气孔的开闭情况和测定叶片的蒸腾速率，验证了植物蒸腾作用的存在。
植物生理学实验报告
植物⽣理学实验报告植物⽣理学实验报告实验⼀、植物组织⽔势测定（⼩液流法）⼀、实验原理⽔总是从⽔势⾼的系统流向⽔势低的系统。
将植物叶⽚分别与⼀系列不同浓度的蔗糖溶液接触，蔗糖溶液浓度从⼩到⼤，开始时，植物叶⽚⽔势低于蔗糖溶液，溶液中⽔分向叶⽚转移，蔗糖溶液浓缩，蔗糖溶液密度较原始浓度升⾼；蔗糖溶液⾼到⼀定浓度后，蔗糖溶液⽔势低于植物叶⽚，叶⽚⽔分向溶液中转移，蔗糖溶液稀释，密度较原始浓度降低。
如果植物组织的⽔势等于蔗糖溶液的⽔势，⽔分不发⽣净移动，外液浓度较原浓度不发⽣变化上述浸泡过植物组织、浓度发⽣改变的蔗糖溶液为⼄组。
原始浓度的蔗糖溶液为甲组。
将⼄组溶液染⾊后，取⼄组溶液⼀⼩滴（⼩液流），放⼊对应浓度的甲组溶液中，观察⼩液流因密度不同⽽下降、上升或不动的情况，记录与之相对应的甲组溶液的浓度。
⼆、材料与设备1.材料：植物叶⽚；2.仪器设备：试管、试管架、打孔器、尖头镊⼦、尖头针、移液管、⽑细滴管；3.试剂：1M蔗糖液、甲烯蓝粉。
三、实验步骤1.蔗糖溶液配制：l)取⼲燥洁净试管5⽀，贴标签标记，⽤1M蔗糖母液配制蔗糖溶液，浓度由⼩到⼤分别为0.1、0.25、0.5、0.75、1M，每个浓度均配8m1，放⼊对应标记的试管中，作为甲组（⼀定要混匀）2）另取⼲燥洁净的指形管5⽀，标明0.1、0.25、0.5、0.75、1M浓度的蔗糖溶液，分别从甲组取相应浓度蔗糖溶液1m1置于指形管，作为⼄组。
2.取样及测定1)选取⽣长⼀致的叶⽚，⽤打孔器钻取⼩圆⽚4-6⽚/管，将⼩圆⽚全部浸⼊⼄组指形管溶液中，摇动20分钟；2）⽤针尖蘸取少许甲烯蓝粉末，分别放⼊⼄组各指形管中，摇匀，可看见⼄组指形管中溶液颜⾊变蓝：3）⽤⽑细滴管吸取蓝⾊溶液，轻轻插⼊相应浓度的甲组溶液中部，⽤吸⽿球轻柔吹⽓，以帮助蓝⾊溶液从⽑细滴管中流出。
在流出的⼀瞬间观察并记录液滴的升降情况；4）若液滴下降，说明组织吸⽔使溶液变浓，⽐重变⼤；若液滴上升，说明组织失⽔使溶液变稀，⽐重变⼩；若液滴静置不动，说明此溶液的溶质势与叶圆⽚组织的⽔势相等，⽔分交换平衡，溶液⽐重不变，根据溶液的浓度可计算⽔势：若前⼀浓度溶液⼩液流下沉，⽽后⼀浓度溶液中上浮，则组织的⽔势值介于两蔗糖溶液⽔势之间，可取平均值计算。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
一植物组织中ETH（乙烯）释放量的测定测定原理：ACC是乙烯合成的直接前体，为了更好地了解乙烯对植物的调节作用，有必要测定植物中ACC的含量，在冷却的Hg+存在下，NaClO专一地使ACC转化成乙烯。
ACC：1-氨基环丙烷-1-羧酸测定中气相色谱仪用的是氢火焰检测器FID。
色谱仪包括固定相和流动相。
由于固定相和流动相对各种物质的吸附或溶解能力不同，因此各物质的分配系数不一样。
当待测样（含ETH混合气体）加入固定相以后，不断通以流动相（通常为氮气、氢气）待测物不断再分配，最后按照分配系数大小顺序依次被分离，并进入检测系统被检测，检测信号的大小，反映出物质含量的多少，在记录仪上呈现色谱图。
判断气相色谱仪氢火焰检测器是否点燃的3种方法？如何判断检测器已工作？1、将不锈钢镊子接触到检测器的喷扣处，若镊子上有水珠证明氢气已被点燃；2、根据记录笔的位置来判断；3、微电流放大器的“引燃开关”切换“引燃”时，检测器如发出扑声火焰已被点燃。
结果分析：经冷冻的苹果ETH释放速率低于常温的乙烯释放速率。
经低温处理ACC合成酶的形成受到损伤和影响，从而降低乙烯的合成与释放。
3大温度3大气流量：基线成一直线表明稳定了柱温80度进样器温度120度检测器温度140度N2 流量35微升每分钟400 H2 流量45 微升每分钟55千帕空气流量350 微升每分钟40 千帕二植物组织中脂肪氧化酶活力测定原理根据基质浓度一定，反应体系中溶解氧浓度的变化与酶活力大小呈线性相关原理进行测定。
LOX氧化多元不饱和脂肪酸生成具有共轭双键的过氧化物时消耗氧气，溶液中氧浓度的减少速率与酶活力大小成正比，用氧电极可精确的测定酶活力。
结果：经过干旱处理的小麦组织中LOX活力低（受干旱条件的诱导LOX基因的表达）注意事项：1测定时，维持温度恒定，氧电极对温度变化非常敏感;2 反应杯中不应有气泡，否则会造成信号不稳3 进行试验时要保持磁转子的转动，以平衡氧气浓度4 电极使用一段时间后，在阳极上形成一层氧化膜，使电极的灵敏度下降，需要用清洁剂清洁阳极。
三半伤害温度的求算1 以伤害度为纵坐标，温度为横坐标，制作曲线，50%伤害对应的温度即半伤害温度；2 以Logistic生长曲线方程拟合Y=K/(1+Ae-BT)Y 伤害度（相当于胁变）K 最大外渗量T 温度（相当于胁强）A，B 常数据Logistic方程，以Ln（（K/Y）-1）为纵坐标，以T为横坐标作图，的一直线，直线与横轴交点即半伤害温度。
半伤害温度的生理意义，半伤害温度通常可用来表示植物对高温或低温抗性的大小。
在高温伤害情况下，若半伤害温度高，说明对高温伤害抗性强；在低温伤害时，则半伤害温度越低，植物对低温伤害抗性强。
对于其他逆境，具有相应的生理意义。
但是对于高温伤害，同样以Ln（（K/Y）-1）为纵坐标，以T为横坐标作图，发现做出的不是直线而是S型曲线。
四蒸汽压渗透压计测植物组织渗透势蒸汽压渗透压计的工作原理1 原理对于一种溶液来说，溶质颗粒数的增加改变了溶剂分子的自由度，导致溶剂分子主要特征的改变。
这些溶液特征的相对变化与溶液中粒子的增加量呈线性相关，所以称他们为溶液的“依数性”。
溶液的依数性（colligative）是指这种特性依赖于溶解在溶液中的粒子数量，而与各种溶质的性质无关。
在用蒸汽压渗透压计测溶液渗透势时，10ul的样品通过移液器加到洁净的滤纸圆片上，滤纸圆片放到载物台上进入样品小时并封闭。
仪器的温度探头是一个热电偶温度计，它与小室形成一个整体。
这种敏感的温度探头以独特的能量平衡理论为基本原理，测量小室中露点的下降，通过露点下降直接测出溶液蒸汽压。
渗调能力（OA）：在干旱、腌渍、寒冷等条件下植物细胞主动积累溶质，从而降低细胞的渗透势，降低水势，增强吸水能力，维持细胞膨压，维持光合作用。
蒸汽压渗透压计优点：1 不需要改变样品的物理状态，样品用量少；2 任何生物液体均可进行常规测定；3 样品的物理特性测定，如粘度质量均不影响蒸汽压渗透压计；4 仪器的机械复杂程度小，测定具有良好的可靠性。
OA的计算：OA=结果：正常，中度水胁，严重水胁渗透势测定方法：质壁分离法测定基态渗透势；冰点下降法测定组织渗透势（1 试管不干净，旱冻；2 有气泡不冻）；露点法测植物组织水势；蒸汽压渗透压计测植物组织渗透势。
渗透势下降，OA增加，叶的OA>根的OA植物组织水势的测定方法：液相平衡法（小液流法和称重法），气相平衡法（露点法），压力平衡法（压力室）植物组织渗透势测定方法：质壁分离法冰点下降法蒸汽压渗透压计法露点法五压力室法测植物组织水势和P-V曲线1 原理：在蒸腾植物中，其导管内水柱按“内聚力学说”被蒸腾拉力牵拉得很紧，承受着巨大的负压，连贯的向上运输。
当叶片或枝条被切断时，离体叶（枝条）切口处汁液由于张力的作用要缩回木质部导管内，知道这些汁液在穿过半透膜时被阻止。
离体叶（枝条）装入压力室钢管内，逐渐加压，直到导管中液流恰好在切口处显露时，表明外部压力抵偿了完整植株导管中的原始负压。
这时所施加的压力称为平衡压。
P-V曲线测定测定P-V曲线时，应首先将植物样品水合至饱和状态，以后在逐渐增高平衡压的过程中将植物组织中的水分逐步压出来，这种情况类似于水饱和的组织因失水而转向萎蔫以致严重脱水的过程。
实验证明一般从导管中被压榨出来的汁液，都是纯净水，表明细胞膜的半透性并未因加压而受损，细胞中的溶质也没有随水分外渗而漏失。
因为可用范特霍夫关于溶液的渗透压与溶解一定量溶质的体积成反比的理论来阐明P-V曲线的压力和体积之间的关系。
植物细胞水势的组成可由下式表示：ψw=ψs+ψp+ψm一般情况下衬质势（ψm）很小，可忽略不计，即ψw=ψs+ψp当植物器官失水萎蔫时，细胞膨压消失（ψp=0),ψw=ψsVan't Hoff定律：ψπ=RTNs˙(1/V) （1）式中：ψπ-溶液渗透压（渗透势）；V-溶液体积；T-绝对温度；Ns-溶质的渗摩尔数。
由于R、T、Ns均为常数，故三者乘积RTNs亦为常数，用K表示，则公式（1）为：Ψs=K˙（1/V）（2）每次加压后测出的平衡压P应等于其水势ψw的绝对值，即ψw=-P，已知ψw=ψs+ψp在膨压消失以后ψp=0,此时ψw=ψs=-P据此可将式（2）写成：Ψw=K(1/V)定义：P-V 曲线是通过应用压力室为植物样品绘制的压力-容积曲线。
P-V 曲线是一条由膨压消失点前的曲线部分与膨压消失点后的直线部分组成的复杂曲线。
通过P-V曲线可以求得多种水分参数，利用这些参数可以推断植物的水分关系状况。
这种技术称为P-V技术。
以水势（ψW）为纵坐标，以RWC-1为横坐标作图。
（1）萎蔫点时的相对含水量:从曲线与直线的交点（萎蔫点）作纵轴的平行线，与横坐标的交点与A，取其倒数即为萎蔫点时的相对含水量。
（2）萎蔫点时的水势: 从萎蔫点作横轴的平行线，与纵坐标的交点即为萎蔫点时的水势。
（3）饱和渗透势ψS0: 作曲线的直线部分的延长线，交纵轴于点C，即为饱和渗透势。
（4） D E两点之差：P-V曲线的曲线部分的平衡压在各种相对含水量下的膨压与直线延伸部分之差。
（5）F点：萎蔫点，直线与曲线的交点。
六影响溶液电导或电导率的因素1 溶液浓度: 单位体积溶液中离子数目越多，G、K越大。
2 离子电荷: 电荷越多，G、K越大。
3 离子运动速度: 离子迁移越快，G、K越大。
4 温度: 温度升高，离子运动加快，G、K越大。
测定过程中应该注意的问题：1.取材时避开粗大叶脉；2.用同一台仪器测定；3.试管要干净，用去离子水冲洗并烘干；4.试管塞好盖子，以免空气进入污染；5.调温时从低温到高温，升温快于降温；6.要用适宜的温度计，超过50℃用50-100 ℃温度计，否则会烧坏温度计，造成汞污染；7.测定终电导（杀死）一定要冷却到室温，温度高低直接影响电导率。
8.平衡的时间对测定结果也有较大影响。
七开放式气路系统开放式气路系统以气泵为动力，空气流经同化室后排出，用IRGA（红外仪）测量进入同化室和流出同化室的空气中CO2浓度差，并按Pn=F×△C/S，计算光合速率。
开放式气路优点1 可对光合速率做长时间的动态监测2 系统恒态稳定3 易实现光强度-光合曲线测定4 易进行CO2浓度控制，测定CO2-光合曲线5 可精确测定光呼吸（通过气孔）1.开放式气路系统测定原理：该气路以气泵为动力，空气流经同化室后排出，将叶片密闭于同化室内，给以适当光照，空气中的二氧化碳刘静叶片后被光合作用所吸收，气体中二氧化碳浓度降低，用IRGA测量进入同化室和流出同化室的二氧化碳浓度差，根据流量和被测定叶片的面积，计算光合速率：Pn=F*△C/S式中Pn为光合速率，F为气流流速，△C为二氧化碳浓度差，S为被测定叶面积图a中所示IRGA为双气室类型，一气室流经参比气，另一气室流过分析气，利用“差分式”分析原理直接测出两者二氧化碳浓度差，对于大型同化室，需要供给的气流量很大，不能直接通过IRGA，则采取b采气方式，利用气泵从同化室的前端和后端个采出少量的气体流经IRGA。
开放式气路系统的优点：(1)保证叶室中的CO2和H2O 与环境条件相近,适宜长时间监测植物光合、蒸腾、气孔或呼吸对环境条件的响应。
(2)便于人为控制进入叶室的CO2和H2O,容易实现人工控制条件下的测定；(3)如果配有CO2源,可任意设定CO2浓度，实现CO2－光合曲线的测定；(4)如果配有光源,可任意设定光照强度，实现光－光合曲线的测定；(5)控制供气中的湿度，研究植物光合、气孔、蒸腾对湿度的响应；(6)便于利用配气法测定光呼吸；开放式气路系统的缺点：(1)无法直接进行群体光合速率的测定；(2)不能测定土壤呼吸。
2 密闭式气路系统P:气泵; C:叶室;A:红外分析仪；R: 显示屏Pn=△C/△t ×V/S△C:CO2浓度差；△t:时间间隔；V:同化室与气路系统体积；S: 叶室中受光叶片的面积。
原理：该气路系统中，材料于同化室内密封，无气体交换，二氧化碳浓度将随叶片的光合作用而下降，可用IRGA 连续检测同化室内的二氧化碳浓度的下降速率而计算光合速率。
密闭式气路系统的优点：（1）对红外仪的精度要求不高，一般用单气室红外仪即可（2）测定光合速率一个指标时，不用精确测定流量（3）方便进行群体光合速率的测定AIR 2（4）方便测定CO2－光合曲线（气孔开度滞后）密闭式气路系统的缺点：（1）测定过程中CO2 、H2O 浓度不断变化，无法实现恒态测定；（2）不能长时间连续监测；（3）需要精确测量整个气路系统的的容积；（4）容易漏气，影响测定准确性；（6）由于密闭，同化室的温度容易升高。
3光-光合曲线测定步骤（1）选取待测叶片夹入叶室；（2）在测定菜单状态按“Y”键，转换到参数菜单状态；（3）按3输入光强度值；（4）再按Y键返回到测定状态，光强度即为已经改变为设定的数值；（5）当二氧化碳差值稳定后，按R存储结果；（6）然后重复“2-5”步骤，改变不同的光照强度测定光合速率；（7）用光强度对应的光合速率制作光-光合曲线。