大鼠腹腔麻醉方法的改进_童松_熊南翔_沈建英
鼠腹腔注射戊巴比妥钠的麻醉技巧
鼠腹腔注射戊巴比妥钠的麻醉技巧雷艳，郭洪峰，侯晓宇，杨爱军，兰阳军，蒋登金，文灿(第三军医大学卫勤训练基地医学综合教研室，重庆400038)【期刊名称】局解手术学杂志【年(卷),期】2015(024)006【总页数】2【关键词】［关键词］鼠;腹腔;戊巴比妥钠;麻醉鼠(包括大鼠、豚鼠、小鼠、裸鼠等)是科学研究中常用的实验动物，广泛应用于构建各种动物模型和药物学、行为学研究等领域［1］。
在众多的鼠类实验研究过程中，常需对其实施科学、有效的麻醉，且多采用腹腔注射给药方式［2］。
戊巴比妥钠是动物实验的常用麻醉药物，具有给药简便、起效快、麻醉效果好且较为持久等优点［3-4］，但该药具有较强的呼吸抑制作用，有效剂量和致死剂量之间的安全范围较小，容易引起动物死亡［5］。
而鼠的体质量小，小鼠不到30 g，有的仅10 g 多甚至不到10 g，因此，使用戊巴比妥钠麻醉时非常容易引起鼠死亡，影响实验顺利进行和结果分析。
本文针对鼠戊巴比妥钠腹腔注射麻醉的各环节，详细描述其操作细节，以期为正确掌握此麻醉技巧提供操作指导。
1 戊巴比妥钠溶液的准备1.1 浓度的选择关于戊巴比妥钠溶液的浓度，各实验室常有其习惯用法，如3.0%、1.0%、0.3%等［6］。
对鼠(尤其是小鼠)进行麻醉时，若无注射溶液量影响实验数据的情况(如血液稀释后影响血生化指标)，笔者强烈推荐采用0.3%的浓度。
采用这一浓度时，安全范围较大，且易于计算溶液量，也便于在追加药物后掌握注射总量，减小计量误差，这与梅福荣的观点一致［7］。
麻醉时若按30 mg/kg 体质量实施基础给药，则该浓度溶液的给药剂量为1.0 mL/100 g 体质量。
例如，150 g 大鼠的给药量为1.5 mL;25 g 小鼠的给药量为0.25 mL(用1.0 mL 注射器几乎可以做到精确抽取，即使注射略多也不易造成死亡)。
1.2 配制方法戊巴比妥钠为白色粉末，用蒸馏水或0.9%生理盐水溶液配制均可。
大鼠麻醉
10%水合氯醛溶液经预试确定麻醉剂量为4. 5 ml/kg;按文献(刘忠和等,2006)戊巴比妥钠配 制为1%溶液,麻醉剂量为6ml/kg。麻醉方法均为 腹腔注射。
②将大鼠固定，腹腔注射。
③计时观察与判断大鼠的麻醉程度及苏醒时 间。水合氯醛 麻醉起效时间 3.3±1.9 分钟， 麻醉维持时间为 85.3±25.3 分钟，麻醉死亡率 为 10.0 %，总死亡率为15.0％。
特点：作用不够稳定，而且常需加佐剂麻醉 效果才能理想。因而，多数实验室不选用这类麻 醉剂进行麻醉。
乙醚
(1)药理学作用：乙醚在简便装置中也容易挥发。乙醚的使 用是比较安全的，因为它很少因为过量而致动物死亡。
(2)不良反应：动物诱导时不舒服，而且乙醚对粘膜的刺激 可导致咳嗽、大量的支气管和唾液腺分泌物，偶尔还会 导致喉痉挛。乙醚还能在动物的麻醉苏醒期后诱发既有 的慢性呼吸系统疾病急性发作，特别是兔和啮齿类动物。 乙醚是可燃的，和空气或氧气构成爆炸性混合物。
肌肉或皮下注射，剂量1～1.5g/kg，宜用于鼠类。 作用温和持久，有效麻醉时间可长达6～10小时， 对于深度外科麻醉，呼吸及循环均无明显抑制。但 此药本身有致癌作用，不能用作与肿瘤有关的实验。 工作人员亦应小心，禁止长期接触。使用此药的动 物，用后即作为有害废弃物，严格按照规定深埋或 作其他无害处理。
2．局部麻醉
浸润麻醉。根据手术，按皮下、筋膜、肌 肉、腹膜、骨膜等顺序逐步深入注射到术野周围。
3. 麻醉的基本原则
• 注意不同个体的耐受性 • 及时判断麻醉的深浅 • 静脉麻醉坚持先快后慢原则 • 补充麻醉
(三) 麻醉前准备：
• 禁食8～12h，防止呕吐，可饮水。 • 犬、猪、猴等大动物可在麻醉前给予一些药物以减
盲肠结扎穿刺大鼠脓毒症模型改良
China &Foreign Medical Treatment中外医疗脓毒症病情凶险,病死率高,给临床救治带来极大困难,成为现代危重病医学面临的突出难题。
目前,尽管抗感染治疗和器官功能支持技术取得了长足的进步,其发病率和死亡率仍居高不下且不断攀升[1]。
作为研究脓毒症的工具,各种脓毒症动物模型被广泛应用于不同目的的实验研究中。
与其他模型相比,盲肠结扎穿刺(Cecum Ligation and Puncture ,CLP)模型与临床脓毒症有较高的相似性,能较好的模拟脓毒症的病理过程,被认为是研究脓毒症的金标准[2]。
尽管如此,在实际操作过程中仍存在一些问题,如对手术的一致性要求较高,易形成局限性脓肿、具有自限性,使该模型不能达到研究要求。
该研究在该基础上进一步改良,初步取得满意结果,现报道如下。
1材料与方法1.1动物和分组75只健康SD 大鼠(SPF 级),购自天津山川红实验动物科技有限公司(合格证0004018),雄性,体重240~260g ,8周龄,随机分为CLP 组、实验组及假手术组,每组25只。
饲养于清洁级大鼠饲养室,环境温度18~25℃,相对湿度45%~55%。
自由饮食,饲喂大鼠颗粒饲料(购于天津中医药大学实验动物中心),每2d 更换垫料1次,饲养1周后开始实验。
1.2动物模型术前禁食12h ,自由饮水,以5%水合氯醛(0.6ml/100g 体重)腹腔注射麻醉。
麻醉满意后固定、常规消毒、腹部脱毛,沿腹正中线作1.5cm 切口,找到盲肠,游离肠系膜,避免损伤系膜血管。
假手术组将盲肠还纳腹腔,逐层关腹;CLP 组距盲肠根部1/3处用4号手术缝线结扎,于结扎处远端约0.8~1cm 处用3mm 宽锥贯通穿刺,将盲肠还纳腹腔,逐层缝合腹壁切口;实验组用同样方法结扎穿刺后,留置30mm ×3mm (长×宽)胶条贯穿盲肠,结扎离断双侧网膜,将盲肠还纳腹腔,逐层缝合。
术后各组大鼠立即皮下注射生理盐水10mL 抗休克。
序贯法测定大鼠腹腔注射苯巴比妥钠和丙泊酚的麻醉半数有效量
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大鼠小鼠腹腔注射的操作方法
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法腹腔注射是生物医学实验中常用的一种操作方法，它可以用于给小鼠、大鼠等实验动物进行药物注射、细胞悬液注射等操作。
正确的腹腔注射操作方法对于实验结果的准确性和实验动物的健康都有着重要的影响。
下面将介绍大鼠小鼠腹腔注射的操作方法。
一、实验前的准备工作1. 实验动物的准备：选择健康、体型适中、年龄相近的实验动物，进行一定的适应性饲养时间，使其适应实验环境。
2. 实验操作的准备：准备好需要使用的注射器、针头、药物或细胞悬液等实验物品，确保其干净无菌。
3. 实验环境的准备：在无菌、安静的实验环境中进行操作，保持操作台面的清洁，并准备好消毒酒精、无菌纱布等清洁物品。
二、腹腔注射操作步骤1. 实验动物的准备：将实验动物取出，放置在实验操作台上，使用专用的实验动物夹夹住实验动物的颈部，固定实验动物的身体，使其保持固定姿势。
2. 操作人员的准备：操作人员穿戴好实验服，戴好口罩，佩戴实验手套，保持手部的清洁，以防止实验操作过程中对实验动物造成感染。
3. 注射器的准备：将所需药物或细胞悬液等实验物品装入注射器中，确保注射器内无气泡，并检查针头是否安装牢固。
4. 定位实验动物：在实验动物的腹部找到解剖点，即离前肢近侧肋骨下缘处，用无菌纱布蘸取适量消毒酒精，对实验动物的腹部进行消毒处理。
5. 注射操作：用一只手握住实验动物的身体，用另一只手拿起装有药物的注射器，将针头从腹部向腹腔方向穿刺。
穿刺时要轻柔但有力，直到感觉针尖进入腹腔内，然后停留片刻以确保针尖在腹腔内，确认无误后慢慢注射药物。
6. 注射结束：将药物全部注射完毕后，慢慢将注射器从腹部拔出，用无菌纱布轻压注射部位，使药物不会外溢，并保持实验动物的安静。
7. 操作后的处理：将使用过的注射器、针头等实验用品进行无菌处理，以防止交叉感染的发生，将实验动物放回适宜的环境中继续饲养。
三、注意事项1. 选择适当的注射器和针头：根据实验动物的大小和实验物品的性质，选择合适的注射器和针头，以确保操作的准确性和安全性。
大鼠重症急性胰腺炎模型制备方法的探讨与改进
大鼠重症急性胰腺炎模型制备方法的探讨与改进目的：探讨大鼠重症急性胰腺炎模型制备方法的改进。
方法：36只健康SD 大鼠随机分为模型组（n=18）和对照组（n=18）。
应用硬膜外导管经十二指肠乳头逆行胰胆管穿刺注射5%牛磺胆酸钠诱导大鼠重症急性胰腺炎；使用创面封闭胶封闭穿刺孔。
两组大鼠分别于术后3、6、12 h检测腹水量、血清淀粉酶活性，观察胰腺大体及光镜下病理改变并评分。
结果：模型组胰腺呈出血坏死性改变，3、6、12 h的腹水量，血清淀粉酶活性，大体及镜下评分均显著高于对照组（P ＜0.05）。
结论：联合应用硬膜外导管和创面封闭胶对逆行胰胆管穿刺注射法加以改进，具有创伤小，操作简单，诱导成功率高，模型稳定性好等优点，是一种较理想的制模方法。
标签：重症急性胰腺炎；动物模型；硬膜外导管；创面封闭胶；改进急性胰腺炎的发病机制尚不十分清楚，制备动物模型来模拟人类急性胰腺炎的病变将有助于进一步研究其发病机制，并可结合实验性治疗探索临床治疗的新途径。
逆行胰胆管穿刺注射牛磺胆酸钠制备的大鼠重症急性胰腺炎（severe acute pancreatitis，SAP）模型，在病因、发病机制及病理改变等方面与人类胆汁反流性胰腺炎极为相似，是目前应用最为广泛的侵入性胰腺炎模型制备方法。
我们在文献回顾和预实验的基础上对其进行探讨并加以改进，现报道如下：1 材料与方法1.1 实验动物及分组健康清洁级SD大鼠36只（购自南华大学动物实验中心），雌雄不拘，体重（280±20）g，购回后适应性喂养1周。
随机分为模型组、对照组，每组18只。
1.2 实验材料及试剂戊巴比妥钠（上海试剂采购供应试剂厂）；硬膜外导管（深圳凯思特精工塑料有限公司）：拉细至直径为0.8～1.0 mm，1∶1000新洁尔灭浸泡消毒；微量泵（OLYMPUS公司）；牛磺胆酸钠（北京丰特斯化工材料有限公司）；创面封闭胶（广州香雪生物医学工程有限公司）。
1.3 实验方法术前大鼠禁食12 h，自由饮水。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法腹腔注射是一种常见的动物实验操作方法，用于给实验动物注射药物或其他实验物质。
本文将介绍大鼠小鼠腹腔注射的操作方法，以便于科研工作者正确、安全地进行相关实验操作。
一、准备工作1.1 实验室准备需要确保实验室的环境整洁、明亮，并且通风良好。
应保持实验室的温度和湿度处于适宜的范围，以确保动物在实验过程中能够处于良好的生理状态。
实验室内应配备必要的实验器材和药品，以便于进行实验操作。
在进行腹腔注射实验之前，需要对实验动物进行充分的准备工作。
应选择健康状态良好、体重适中的大鼠或小鼠作为实验动物，并将其放置在适宜的实验室环境中进行适当的驯化和饲养。
还需要对实验动物进行必要的体格检查，确保其身体状况良好，以保证实验结果的准确性。
二、操作步骤2.1 注射器和针头准备需要准备一支干净的注射器和一根适宜的注射针头。
通常情况下，对于大鼠，可选择1ml或2ml的注射器，并配备18号至22号的注射针头；对于小鼠，可选择0.5ml的注射器，并配备22号至26号的注射针头。
在使用前，应检查注射器和针头是否完好无损，并且进行必要的消毒处理，以确保实验的安全性和准确性。
2.2 动物准备在进行注射操作之前，需要将实验动物取出并置于操作台上，用纸巾或棉签轻轻擦拭其腹部，以保持注射部位的清洁。
还需要将实验动物固定在操作台上，以防止在注射过程中出现不必要的移动和颤动。
2.3 麻醉和消毒在进行腹腔注射之前，通常需要对实验动物进行适当的麻醉处理，以减轻其疼痛感和焦虑感。
一般情况下，可选择将实验动物放置在麻醉盒中进行麻醉处理，或者使用适当的麻醉药物进行注射处理。
在进行注射操作之前，还需要对注射部位进行必要的消毒处理，以防止感染和其他并发症的发生。
2.4 注射操作在完成麻醉和消毒处理之后，即可进行腹腔注射操作。
取出预先准备好的注射器和针头，将需要注射的药物吸入注射器中，并确保注射器中无气泡和溢出。
然后，选择注射针头插入实验动物的腹部，通常可选择在肚脐周围1-2厘米的处所。
实验动物麻醉技术在医学教学中的现状和改进策略
实验动物麻醉技术在医学教学中的现状和改进策略摘要】动物麻醉是动物实验的最基本环节，是确保实验顺利进行的先决条件，本文调查研究了动物麻醉方法及常用麻醉药物的使用现状，提出了提高理论知识培训，规范动物实验麻醉技术，更新麻醉方法和应用新药物的应对策略，推动动物麻醉技术的提高，增加实验的准确性和科学性。
【关键词】动物实验；麻醉方法；麻醉药物【中图分类号】R614 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752（2016）23-0387-02动物麻醉(animal anesthesia)是指用药物或其他方法使实验动物整体或局部暂时失去感觉与意识的支配，以达到无痛的目的，便于进行手术的方法。
麻醉在动物实验中是一项重要的问题，可以避免疼痛，保护动物福利，减少对实验结果的干扰[1-3]。
长期以来，在教学和科研中，麻醉药品依然按照经验在使用，对各种禁忌和不良反应的认识仍需提高重视。
本文基于对286名本科生和73名研究生进行的调查，对动物实验中常用麻醉药物的药理知识麻醉方法，麻醉的不良反应等问答，旨在掌握医学教育和科研实验中，学生对动物实验麻醉药品及使用原理的了解，提高对麻醉不良反应的重视，引导学生对动物麻醉的科学使用。
1.现状分析在收到的359份有效问卷中，100%的同学参加过动物实验的教学，36.2%的同学参加过使用动物实验的科研活动，并且使用过麻醉药物。
其中99%的同学使用的是静脉注射和腹腔注射方式，只有1%使用过其他给药方式，并且其中76.3%的同学认为可以静脉给药的药品就是静脉麻醉药，严重混淆麻醉药品的分类概念。
79.7%的学生表示最常使用的药物是乌拉坦，但问及选用乌拉坦的麻醉机制，生物活性，优点和禁忌，回答时均概念模糊，知识点混淆。
分析这些现状的原因可能有以下几点：1.1 麻醉药理知识储备不足在本科教学当中，麻醉药物的药理知识在药理学当中是有一定要求的。
但是动物麻醉药物又具有一些自己的特点。
局部麻醉药的作用机制是与神经膜上的钠离子通道上的某些特定部位结合后，通过钠离子通道的钠离子减少从而改变神经膜电位，导致神经冲动的传导被阻断，最终实现麻醉效果的[3]，常用的如普鲁卡因、丁卡因、利多卡因、布比卡因等，在动物实验中一般用做复合麻醉中的一种药物，起到辅助作用[4]。
实验动物麻醉方法及注意事项
实验动物麻醉方法及注意事项麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5%～1%;利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1%～2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25%～0.5%溶液作局部浸润麻醉。
(二)常用全身麻醉剂：1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20-30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。
待恢复自动呼吸后再进行操作。
2.苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。
小鼠大鼠麻醉介绍课件
麻醉操作不当：可 能导致神经损伤、 出血等并发症
03
06
麻醉剂相互作用： 可能导致药物相互 作用，影响麻醉效 果和患者安全
05
麻醉后并发症：可 能导致感染、疼痛、 恶心呕吐等不良反 应
04
麻醉后苏醒延迟： 可能导致呼吸抑制、 脑损伤等严重后果
麻醉后处理
苏醒观察
1 观察呼吸：确保小鼠大鼠呼吸正常 2 观察意识：观察小鼠大鼠是否清醒，有无异常行为 3 观察体温：确保小鼠大鼠体温正常，避免低体温症 4 观察伤口：检查麻醉部位有无出血、感染等异常情况 5 观察饮食：观察小鼠大鼠饮食情况，确保正常进食 6 观察活动：观察小鼠大鼠活动情况，确保正常活动
记录麻醉后动物的恢复 情况和不良反应
录麻醉过程中出现的 异常情况和处理措施
06
记录麻醉后动物的行为 和生理指标
08
记录麻醉后动物的死亡 情况和原因
谢谢
小鼠大鼠麻醉介绍 课件
演讲人
目录
01. 麻醉方法 02. 麻醉注意事项 03. 麻醉后处理
麻醉方法
吸入麻醉
03
04
注意事项：确保麻醉气 体浓度合适，避免过度 麻醉或麻醉不足
缺点：需要特殊设备， 可能对呼吸道产生刺激
01
02
优点：操作简便，麻 醉效果迅速
原理：通过吸入麻醉气 体，使小鼠大鼠失去意 识
注射麻醉
01
注射部位：通常 选择颈部或背部
02
麻醉剂：常用的 有戊巴比妥钠、 硫喷妥钠等
03
注射剂量：根据 动物体重和麻醉 剂种类确定
04
注意事项：注射 前要固定动物， 避免针头误伤； 注射后要观察动 物反应，确保麻 醉效果
复合麻醉
大小鼠麻醉手册
抗胆碱类药物。
（ 3 ）象 其 它 卤 素 麻 醉 剂 一 样 ，异 氟 烷 可 引 起 血 压 下 降 和 呼 吸 抑 制 ，要 密 切 注 意 血压和呼吸的变化。
（ 4 ）麻 醉 维 持 期 间 血 压 明 显 下 降 与 麻 醉 加 深 有 关 ，发 生 此 现 象 应 降 低 吸 入 浓 度 。 老年患者使用本品时其维持浓度应酌减，并加用其它药物。
管理
10 11 13
四.封闭群大鼠
物
16
动 第三部分 麻醉药品申购与管理 验 一．科研、教学购用特殊药品（含对照品）申请步骤
17 17
二．科研、教学购用特殊药品（含对照品）申请表
市实 三．麻醉药品管理制度（样本）
20 21
海 附 表
22
上一.封闭群 KM 小鼠麻醉的实验数据
22
二.近交系小鼠麻醉的实验数据
引起近似生理性睡眠，无明显后作用。较大剂量有抗惊厥作用，可用于小儿高热、
实 破 伤 风 及 子 癎 引 起 的 惊 厥 。 大 剂 量 可 引 起 昏 迷 和 麻 醉 。 抑 制 延 髓 呼 吸 及 血 管 运 动 中 市 枢 ， 导 致 死 亡 。 曾 作 为 基 础 麻 醉 的 辅 助 用 药 ， 现 已 极 少 应 用 。
药物相互作用：
5
（ 1 ）中 枢 神 经 抑 制 药 、中 枢 抑 制 性 抗 高 血 压 药（ 如 可 乐 定 、硫 酸 镁 、单 胺 氧 化 酶 抑 制 药 、三 环 类 抗 抑 郁 药 ）与 本 品 合 用 时 可 使 水 合 氯 醛 的 中 枢 性 抑 制 作 用 更 明 显 。
（ 2 ）与 抗 凝 血 药 同 用 时 ，抗 凝 效 应 减 弱 ，应 定 期 测 定 凝 血 酶 原 时 间 ，以 决 定 抗 凝血药用量。
大鼠的麻醉
大鼠的麻醉点击次数：3690 发表于：2008-06-25 22:38转载请注明来自丁香园来源：<a href=''>丁香园</a>一、SD大鼠的麻醉1、SD大鼠腹腔麻醉把异氟烷和脂肪乳混合做成乳化异氟烷，腹腔注射，3分钟麻醉，30分钟清醒。
乳化异氟烷制备：用30%的脂肪乳为载体，在室温下（20℃）应用玻璃瓶法，配制成8%的乳化异氟烷。
即将1.2ml的液态异氟烷和21.3ml的30%脂肪乳加入至一个气密性良好的25～30ml玻璃容器内，在振荡器上以2000r/min的速度剧烈震荡30s，静置30s，然后再以2000r/min速度剧烈震荡50min，达到平衡后放置于4℃冰箱保存备用。
乳化异氟烷，大鼠腹腔注射的半数有效量（ED50）相当于液态异氟烷0.51～0.64ml/ kg，半数致死量（LD50）相当于液态异氟烷1.10～1.46ml/kg，治疗指数（TI）为2.24。
致死量大鼠表现为呼吸抑制、心律失常，继而心跳停止。
病理解剖显示腹腔注射乳化异氟烷不会引起心、肺、肝、肠系膜的病理改变。
2、SD大鼠吸入麻醉可以作一个小金鱼缸（四方形）算出体积，钻个眼用橡皮塞塞住，老鼠装进去封住缸口，从橡皮塞插上注射器给液态吸入麻醉药（如1ml异氟烷可挥发成196ml的气体），算出需要的浓度就会算出需要的液态麻醉药量，一般一个MAC就够了，老鼠的异氟烷MA C大约是2%。
3、SD大鼠经口气管插管腹腔麻醉，四肢仰面固定，上下切牙用丝线系住作牵引，操作者头戴额镜（五官科检查耳朵用的），对面放置好光源（一个射灯），牵出舌头和下切牙丝线一起由左手捏住，上切牙丝线由助手提着或用止血钳夹住用自己的前胸固定，拉动丝线使头部上提和口充分张开，右手持18G或16G套管针（戴芯但不超过管口），看到声门（鱼口状）既可插管。
二、异氟醚大鼠麻醉安全且具有麻醉科特色。
我们是用异氟醚（应该是国产的吧）麻醉的，用那种市面上常见的可以提的比较大的带盖塑料水杯自制一个封闭的小麻醉空间，水杯是那种直桶透明，盖子类似特百惠按盖，上有一个约2cm饮水孔的那种，用一个合适的注射器前端堵住饮水孔。
腹腔注射吗啡对神经病理痛大鼠镇痛效应的观察及其对
腹腔注射吗啡对神经病理痛大鼠镇痛效应的观察及其对DRG P2X3受体表达的影响中南大学湘雅医院410008彭静鄢建勤目的：本研究拟采用免疫组织化学方法，观察慢性神经病理性疼痛大鼠背根神经节（DRG）P2X3受体的表达，以及腹腔注射不同剂量的吗啡对慢性神经病理性疼痛大鼠镇痛效应的观察及其对DRG P2X3受体表达的影响。
方法：30只雄性SD大鼠，体重180～220g，随机分为假手术组（S组，n＝6）和手术组(n=24).测定大鼠右后足热痛敏阈基础值，然后腹腔注射10％水合氯醛300～350mg·kg-1麻醉后，手术组构建大鼠右侧坐骨神经慢性结扎损伤（chronic constriction injury，CCI）模型，假手术组只暴露坐骨神经但不结扎。
手术后第3天测定热痛敏阈值，选取热痛敏阈值下降，热痛敏稳定形成的24只大鼠又随机分为4个亚组：腹腔注射生理盐水组（NS组，n＝6），腹腔注射吗啡2.5mg ／kg组（M1组，n＝6），吗啡5.0 mg／kg组（M2组，n＝6）以及吗啡5.0mg／kg＋纳络酮1.0mg／kg组（M+N组，n＝6）。
第4天开始给药，M组每天上午10时分别予以腹腔注射吗啡2.5mg／kg、5.0 mg／kg（用生理盐水稀释至2.0ml），M+N组予以腹腔注射纳络酮1.0mg／kg 10min后腹腔注射吗啡5.0mg／kg，NS组则腹腔注射等体积生理盐水至术后14天。
分别于术后7天、14天后测定各组大鼠右后足热痛敏阈值，术后14天测试完毕后深麻醉下将各组大鼠固定并取手术侧L4 DRG，用免疫组化法观察各组大鼠侧L4 DRG P2X3受体的表达。
结果：（1）术后三天各组均出现了不同程度的热痛敏阈值的下降，明显低于术前，差异有显著性意义（P＜0.05），提示坐骨神经结扎后大鼠患足出现了慢性神经性疼痛的特征之一－自发性疼痛；除S组外其余各组大鼠术后足部形态发生改变，表现为患足的足趾并拢，足呈轻度外翻，在安静状况下常出现突然舔拭术侧后足，患足常取保护姿势悬于空中，未观察到自噬现象。
大鼠原位肝移植模型制作过程中麻醉方法的选择
大鼠原位肝移植模型制作过程中麻醉方法的选择彭勇;龚建平;刘长安;王炜;严律南【期刊名称】《中国普通外科杂志》【年(卷),期】2003(12)9【摘要】目的研究在大鼠原位肝移植模型制作过程中麻醉对大鼠的影响 ,以便合理选择正确的麻醉方法。
方法用SD大鼠以改进的二袖套法制作大鼠原位肝移植模型。
将 10 0只大鼠随机分为5组 :对照组 ,乙醚组 ,氯胺酮组 ,水合氯醛组 ,戊巴比妥组。
观察每种麻醉剂的麻醉过程、对大鼠生理和肝功能的影响以及无肝期开始后的死亡率。
结果每种麻醉剂的麻醉过程不尽相同。
麻醉对大鼠生理均有影响 ,其中以乙醚的影响较小 ,戊巴比妥有较大的肝毒性。
无肝期开始后氯胺酮组、水合氯醛组、戊巴比妥组死亡率较高 ,而乙醚组无死亡发生。
结论各种麻醉对肝移植大鼠均有明显影响。
乙醚具有对生理、肝功影响小 ,无肝期开始后死亡率低的优点 ,可作为制作大鼠原位肝移植模型的首选麻醉方法。
【总页数】4页(P673-676)【关键词】肝移植;疾病模型;动物;麻醉方法【作者】彭勇;龚建平;刘长安;王炜;严律南【作者单位】重庆医科大学附属第二医院肝胆外科;四川大学华西医院普外科【正文语种】中文【中图分类】R657.3;R363【相关文献】1.大鼠原位肝移植动物模型制作 [J], 彭勇;李敬东;肖江卫;刘海忠;刘作金;龚建平2.大鼠心脏停搏供体动脉化原位肝移植模型制作体会 [J], 张宝良;袁庆鑫;刘彤3.大鼠原位肝移植模型制作的体会 [J], 栗彦琪;张彧4.大鼠原位肝移植模型制作的若干技术问题 [J], 辛海荣;张彧;冯变喜5.大鼠脑缺血模型制作过程中麻醉方法的选择与应用 [J], 卜碧涛;王伟因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
SD大鼠腹部磁共振研究中呼吸麻醉的剂量控制
SD大鼠腹部磁共振研究中呼吸麻醉的剂量控制郭宇;张伟国;方靖琴;杜学松;陈晓;解添;陈金华【期刊名称】《分子影像学杂志》【年(卷),期】2015(038)001【摘要】目的探讨在7.0T小动物磁共振研究中,呼吸麻醉剂量对实验动物和图像质量的影响及临床意义.方法选取80只130 g左右的SD大鼠,采用2.0 lps氧气加0.5％异氟烷,进行诱导麻醉,待麻醉完全后,移至检查床,按持续麻醉剂量进行分组,分为0.1％,0.15％,0.2％,0.25％四组,每组20只,进行大鼠腹部T2 WI成像.结果 80例实验动物共死亡4只,实验中进行二次麻醉15只,完成实验76只,与A、B、D组对比,C组的安全性及实用性最好,其差异有统计学意义.结论小动物腹部实验中,实验动物的呼吸质量直接影响图像的质量,实验的进程及实验结果,对病变的诊断有着直接的影响,适量的麻醉能有效控制实验动物的状态,提高实验的质量,为临床的诊断提供实验保障.【总页数】3页(P1-3)【作者】郭宇;张伟国;方靖琴;杜学松;陈晓;解添;陈金华【作者单位】第三军医大学大坪医院野战外科研究所放射科,重庆400042;第三军医大学大坪医院野战外科研究所放射科,重庆400042;第三军医大学大坪医院野战外科研究所放射科,重庆400042;第三军医大学大坪医院野战外科研究所放射科,重庆400042;第三军医大学大坪医院野战外科研究所放射科,重庆400042;第三军医大学大坪医院野战外科研究所放射科,重庆400042;第三军医大学大坪医院野战外科研究所放射科,重庆400042【正文语种】中文【相关文献】1.高浓度磁共振对比剂在腹部MRA中的应用研究 [J], 陈国勇;唐鹤菡;孙家瑜;王开红;潘云龙;刘紫渲2.腹部CT、B超与磁共振胰胆管成像在肝外胆管结石诊断中的临床价值研究 [J], 姜梹3.SD大鼠腹部磁共振研究中呼吸麻醉的剂量控制 [J], 郭宇;张伟国;方靖琴;杜学松;陈晓;解添;陈金华;4.对比腹部CT与磁共振胰胆管成像在肝外胆结石诊断中的应用研究 [J], 屈雷5.呼吸门控在腹部核磁共振中的应用 [J], 周全红;毛毳;张雪梅;毕冬梅;齐旭红;任冰;赵建华;温志勇因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
戊巴比妥钠腹腔注射联合利多卡因局部浸润麻醉在心肌梗死大鼠模型制作中的应用
戊巴比妥钠腹腔注射联合利多卡因局部浸润麻醉在心肌梗死大鼠模型制作中的应用马石楠;刘欣;王友伟;安庆宝【期刊名称】《贵州医药》【年(卷),期】2013(37)8【摘要】目的观察戊巴比妥钠腹腔注射联合利多卡因局部浸润麻醉在心肌梗死大鼠模型制作中的效果.方法24只雄性SD大鼠随机分为两组,采用左冠状动脉结扎术制作心肌梗死模型.对照组单纯给予1％戊巴比妥钠30mg/kg腹腔注射麻醉；观察组给予1％戊巴比妥钠30 mg/kg腹腔注射联合1％利多卡因1 mL局部浸润的麻醉方式.分别观察麻醉起效时间和维持时间、戊巴比妥钠追加次数、手术时间、室性心律失常发生率及死亡率.结果与对照组相比较,观察组麻醉维持时间明显延长(115.33±10.88 VS 128.58±3.82 min),手术时间明显缩短(51.75±5.22 VS44.42±3.45 min),并可明显减少手术过程中室性心律失常发生率,差异具有统计学意义(P＜0.05).两组间麻醉起效时间(4.67±0.72 VS 4.58±0.79min)、戊巴比妥钠追加次数和动物死亡率差异均无统计学意义(P＞0.05).结论戊巴比妥钠腹腔注射联合利多卡因局部浸润可显著改善麻醉效果,减少心肌梗死动物模型制作过程中的室性心律失常发生率,有利于完成心肌梗死大鼠模型的制作.【总页数】3页(P691-693)【作者】马石楠;刘欣;王友伟;安庆宝【作者单位】湖北医药学院附属太和医院胚胎干细胞研究湖北省重点实验室,湖北十堰442000;湖北医药学院实验动物中心,湖北十堰442000;湖北医药学院研究生工作处,湖北十堰442000;湖北医药学院实验动物中心,湖北十堰442000【正文语种】中文【中图分类】R-332【相关文献】1.腹腔注射利多卡因对切口痛模型大鼠自发痛行为及脊髓背角大麻素受体表达的影响 [J], 刘艳军;李庆华2.腹腔注射利多卡因对切口痛模型大鼠自发痛行为及脊髓背角大麻素受体表达的影响 [J], 刘艳军;李庆华;;3.舒心安神膏灌胃对大鼠自主活动的影响及联合戊巴比妥钠腹腔注射对小鼠睡眠和肌肉协调力的影响 [J], 徐福平;梁皓越;林立宇;杨志敏4.腹腔注射50mg/Kg戊巴比妥钠对Lewis大鼠动脉血气及电解质的影响 [J], 赵阳;郑志楠;靳三庆;梁慧明5.乙醚吸入与戊巴比妥钠腹腔注射联合麻醉的应用 [J], 何华因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
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收稿日期： 2013 － 07 － 01 * 基金项目： 国家自然科学基金资助项目（ No． 81371380） 作者简介： 童 松（ 1988 － ） ，男，医学硕士。研究方向： 显微神经外科和神经再生。E-mail： tongsong110@ 126． com 通信作者： 熊南翔 E-mail： mozhuoxiong@ 163． com
给药后动物倒下，全身无力，肌肉松弛，呼吸平 稳和针刺大鼠足底没有反应，表明已达到适宜的麻 醉状态。记录从第一次腹腔注射到针刺大鼠足底无 反应的时间为麻醉起效时间（ min） 。麻醉一段时间 后，大鼠四肢开始抖动，此时用针刺大鼠足底有反应 则表明开始进入苏醒状态，从大鼠麻醉起效到针刺 大鼠足底有反应的时间记作麻醉维持时间。大鼠给 麻醉药后一段时间若呼吸心跳停止，则判断为麻醉 中死亡，若大鼠麻醉苏醒后次日或次日以后出现死 亡，则不纳入大鼠麻醉死亡率计算，其大鼠死亡的原 因可能不仅仅是由麻醉引起［2］。 1. 4 统计学方法
［3 ］ Jiang X，Gao L，Zhang Y，et al． A comparison of the effects of ketamine，chloral hydrate and pentobarbital sodium anesthesia on
·54·
实验动物科学
31 卷
isolated rat hearts and cardiomyocytes［J］． J Cardiovasc Med （ Hagerstown） ，2011，12（ 10） ： 732—735． ［4 ］ 牛义民． 外科动物手术学［M］． 西安： 第四军医大学出版社， 2010： 78—82．
表 1 两组大鼠麻醉中死亡率的比较 Table 1 The comparison of the anesthetic
mortality in the two groups
组别 对照组 实验组
动物数 /只 50 50
死亡数 /只 6 0
死亡率 /% 12 0*
注： 与对照组比较，矫正 χ 2 = 4. 432，P = 0. 035 ＜ 0. 05． Note： Compare experimental group to control group，corrected χ2 =
［5 ］ 钟伟邦，武兆忠，郭露萍，等． 三种常用动物实验麻醉药对小 白鼠麻醉效果比较分析［J］． 中国煤炭工业医学杂志，2006，9 （ 6） ： 633—634．
The Improvement of Method of Intraperitoneal Injection in Ｒat Anesthetization
2. 3 麻醉中死亡率的比较 实验组大鼠全部存活，对照组有 6 只大鼠在麻
醉中死亡，实验组与对照组大鼠死亡率分别为 0% （ 0 /50 只） 与 12% （ 6 /50 只） ，差 异 有 统 计 学 意 义 （ 矫正 χ 2 = 4. 432，P = 0. 035 ＜ 0. 05） ，见表 1。
University of Science and Technology，Wuhan 430022，China）
Abstract： Objective To introduce a new method of intraperitoneal injection in rat anesthetization to decrease the anesthesia mortality． Method One hundred SD rats were divided into 2 groups： control group and experimental group． The animals were anesthetized by intermittent intraperitoneal injection in experimental group，while the control group anesthetized by single injection． Differences in the anesthetic onset timespan，duration and mortality were assessed between two groups． Ｒesult In control group，the rats with the onset time of 3. 8 ± 1. 4 minutes， duration 115. 5 ± 12. 8 minutes and anesthesia mortality was 12% ； in experimental group，onset time of 10. 9 ± 2. 5 minutes，duration 129. 3 ± 9. 8 minutes and zero anesthesia mortality． Conclusion Intermittent intraperitoneal injection in rat anesthetization could decrease the anesthesia mortality and improve the animal surgery success ratio． Key words： rats； chloral hydrate； anesthesia； mortality 檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶
参考文献
［1 ］ 张 栋． 不同麻醉药对大鼠麻醉效果的比较［J］． 实验动物 科学，2007，24（ 1） ： 19—20．
［2 ］ 张全鹏，王 慧，陈 旦，等． 水合氯醛、乌拉坦及其 1： 1 混合 液在 SD 大鼠麻醉中的效果比较及应用［J］． 现代生物医学 进展，2011，11（ 7） ： 1208—1212．
TONG Song，XIONG Nan-xiang，SHEN Jian-ying
（ 1． Department of Neurosurgery，Union Hospital，Tongji Medical College，Huazhong University of Science and Technology， Wuhan 430022，China） （ 2． Section of Histology and Embryology，Department of Anatomy，Tongji Medical College，Huazhong
100 只大鼠分为 2 组，每组 50 只。麻醉前禁食 24 h，禁饮 6 h，进行麻醉时，左手的小指与无名指抓 住大鼠的尾巴，另外 3 个手指抓住大鼠颈部，使腹部
向上，头处于低位，使内脏移向上腹，右手持注射器 于右下腹部刺入皮下向前穿行 0. 5 cm，再以 45° 角 穿过腹肌［1］，将 5% 水合氯醛按 6 mL / kg 腹腔注射， 对照组将麻醉药物一次性注入腹腔； 实验组将麻醉 药物分为 3 等份，每间隔 3 min 注射 1 次，在第 3 次 注射前先观察大鼠麻醉效果，如大鼠已进入麻醉状 态则取消第 3 次注射，注射完麻醉药物后，缓缓拔出 针头，并轻微旋转针头，防止漏液。
1 材料和方法
1. 1 实验动物 选取 5 周龄 SD 大鼠 100 只，雌雄各半，体质量
（ 150 ± 10） g，由华中科技大学同济医学院实验动物 中心提供，在室温 20—26℃ 、相对湿度 45% —55% 环境下饲养，动物合格证号 SCXK（ 鄂） 2010 － 0009。 1. 2 麻药
将水合氯醛（ 国药集团化学试剂有限公司） 用 生理盐水配制成 5% 的无菌溶液。 1. 3 方法
櫴毷
第 31 卷 第 1 期 2014 年 2 月
櫴櫴櫴櫴毷 研究简报
实验动物科学 LABOＲATOＲY ANIMAL SCIENCE
Vol． 31 No． 1 February 2014
櫴櫴櫴櫴毷
櫴毷
大鼠腹腔麻醉方法的改进*
童 松1 熊南翔1 沈建英2
（ 1． 华中科技大学同济医学院附属协和医院神经外科，武汉 430030） （ 2． 华中科技大学同济医学院基础医学院解剖学系组织胚胎学教研室，武汉 430030）
第1 期
童 松等： 大鼠腹腔麻醉方法的改进
·53·
（ x珋± s） 表示，两组比较用 t 检验，死亡率的比较采用 四格表 对照组大鼠的麻醉起效时间为
（ 3. 8 ± 1. 4） min，实 验 组 大 鼠 的 麻 醉 起 效 时 间 为 （ 10. 9 ± 2. 5） min，与对照组相比，差异有统计学意 义（ P ＜ 0. 05） ，表明实验组的麻醉起效时间明显较 对照组延长（ 图 1） 。实验组有 3 只大鼠未进行第 3 次间断注射便进入麻醉状态。
实验动物麻醉是动物实验的重要环节，安全有 效的麻醉是保证实验顺利进行的重要基础。传统的 大鼠腹腔麻醉是将麻醉药物一次性注入腹腔，我们 在进行动物实验的过程中发现该方法有着较高的死 亡率，为此，我们将传统的注射方法进行改进，将麻 醉药物分为 3 等份间断腹腔注射，旨在降低腹腔注 射麻醉的死亡率，提高动物手术的成功率。
摘要： 目的 介绍一种大鼠腹腔麻醉的改进方法，提高大鼠麻醉存活率。方法 取 100 只 SD 大鼠随机分为 2 组， 每组 50 只大鼠，对照组采用传统的一次性腹腔注射，实验组采用改进的间断腹腔注射。分别比较两组麻醉起效时 间、麻醉维持时间、麻醉药浓度可控性及术中及术后死亡率等。结果 对照组麻醉大鼠的起效时间（ 3. 8 ± 1. 4） min，维持时间（ 115. 5 ± 12. 8） min，死亡率为 12% ； 实验组麻醉大鼠的起效时间（ 10. 9 ± 2. 5） min，维持时间（ 129. 3 ± 9. 8） min，死亡率为 0。结论 采用间断腹腔注射法进行麻醉可降低大鼠麻醉死亡率，提高动物手术的成功率。 关键词： 大鼠； 水合氯醛； 麻醉； 死亡率 中图分类号： Q95 － 33 文献标识码： A 文章编号： 1006 － 6179（ 2014） 01-0052-03