临床微生物标本采集送检要求
临床微生物标本规范化采集和送检
注意事项
✓ 虽粪便含有多种杂菌,但应尽量采用 无菌容器。
✓ 为提高检出率,要采集新鲜粪便作培 养,且应挑取其脓血、 粘液部分。
四、痰及上呼吸道标本的采集
采集痰标本作细菌培养,或涂 片后经特殊染色以检查细菌、真 菌或抗酸杆菌等,以助诊断;从 咽部及扁桃体采取分泌物作细菌 培养或病毒分离
痰及上呼吸道标本
尿液标本
➢ 采集时间: 一般原则 通常应采集晨起第一次尿 液送检。原则上应选择在抗菌药物应 用之前采集尿液。
尿液标本的采集时间
A. 结核分枝杆菌感染 留取晨尿或24小时 尿的沉渣部分10-15ml作涂片检查,若为 培养,患者应停药1-2天后再采样,以提 高阳性率
B. 沙门菌、钩端螺旋体感染 感染后2周左 右采集
采集方法
➢ 自然排便采集法 自然排便后,挑取其脓血、 粘液部分2-3g,液状粪便取絮状物2-3ml, 盛于灭菌容器内或保存液中送检
➢ 直肠拭子方法 如不易获得粪便时,或排 泄困难的患者及婴儿,可用直肠拭子采取, 即以无菌棉拭子用生理盐水湿润后,插入肛 门内4-5cm(幼儿2-3cm)轻轻转动取出, 插入无菌试管内送检。
标本采集--保留导管
• 经由导管抽取5-10ml血液, 进行血培养;
• 再由静脉端抽血进行另外 一套血培养。
标本采集--决定拔除导管 • 从2个独立的外周静脉部 位,无菌采集2套血培养, 同时无菌操作取出导管并 剪下5cm导管末梢送实验 室培养。
血培养标本采集与送检要求--4
2. 未留置深静脉导管者: (1)怀疑血流感染时,从2个不同的外周静脉穿刺部位无
➢ ④尽可能采集更多的液体,至少1ml
手术切口分泌物标本采集
➢ 1、涂片:常规检查+革兰染色 ➢ 先用无菌生理盐水擦拭切口2遍,再用含生
临床微生物标本的采集与运送图文
临床微生物标本的采集与运送在医学临床的诊断过程中,微生物检验是不可缺少的一环。
临床微生物标本的采集与运送是保证准确诊断的关键步骤之一。
本文将介绍临床微生物标本的采集与运送的一些注意事项。
1. 标本类型临床微生物标本通常包括血液、尿液、粪便、血培养瓶、脑脊液、切口分泌物等。
2. 采集方法2.1 血液标本采集血液标本时,一定要做好消毒工作。
选择采血部位后,用酒精或碘酒消毒,再用无菌针头采血,避免受污染。
血液标本采集后可以分成两份,一份用于血常规,另一份用于血培养。
2.2 尿液标本收集尿液标本时,要让患者用清洁肥皂清洁外阴部,再用无菌尿杯收集尿液,避免手部直接触摸尿杯和尿液。
尽量将尿液标本送至检验室的时间控制在2小时之内。
2.3 粪便标本采集粪便标本时,要确定所采集的粪便样本来自于患者的肛门临近处。
最好不要使用纸巾,而是用无菌容器收集粪便。
粪便标本采集窗口为3天。
2.4 血培养瓶标本采集血培养瓶标本时,首先要选择采血部位进行消毒,然后将血培养瓶插入采血针器上,打开外部装置,使血液顺利流入血培养瓶中。
采集集中在早晨时段,每次采集2-3个血培养瓶。
2.5 脑脊液标本采集脑脊液标本需要医生进行,患者应严格卧床休息,医生在患者腰部,采用穿刺的方式进行脑脊液的采集。
2.6 切口分泌物标本采集切口分泌物标本时,需要选择无菌医用棉签,消毒采集部位。
在采集过程中,应尽量避免被采集部位感染污染到。
3. 运送方法临床微生物标本的运送是重要的环节。
标本在采集后应及时送至细菌学检验实验室。
并且在运送过程中需要遵循以下几点:3.1 收集后尽早送检临床微生物标本的采集窗口不长,应尽早将标本送至检验室进行分析。
3.2 标本容器和包装标本容器必须选择无菌容器,容器体积大小要相应合适。
送检前,要核对标本标签与标签上的医学记录是否一致。
标本包装时,应采取干燥、保温、防震、防漏、防碎的原则。
3.3 运输温度不同种类的标本,其运输温度介于4-25摄氏度之间。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则一、临床微生物标本采集基本原则1.标本来源与采集部位临床微生物标本主要来源于患者体内的各类体液、组织和生物材料。
采集部位包括呼吸道、消化道、泌尿生殖道、皮肤、创伤、手术部位等。
采集时应选择感染灶、病变部位或易感部位,以确保标本的代表性和可靠性。
2.采集工具与消毒采集微生物标本时,应使用无菌、一次性采集器具。
采集器具在使用前应进行消毒处理,以确保不会引入外来微生物污染。
消毒方法可选用高温、高压、化学消毒剂等。
3.采集操作步骤(1)准备工作:评估患者病情,向患者及家属解释采集目的和注意事项,取得患者知情同意。
(2)佩戴个人防护装备:口罩、手套、护目镜或面罩。
(3)消毒:使用消毒剂对采集部位进行皮肤消毒。
(4)采集:根据不同标本类型,进行相应操作,如穿刺、刮片、抽取等。
(5)封装:将采集完成的标本放入无菌容器中,密封,注明患者信息、采集部位、日期等。
二、临床微生物标本运送基本原则1.标本容器与标记运送微生物标本时,应选用防漏、耐压、易保存的容器。
容器表面应清晰标记患者信息、采集部位、标本类型等,以便于实验室接收和处理。
2.运送条件与时间要求微生物标本应在采集后尽快送达实验室,一般要求在2-4小时内完成。
运送过程中,应保持标本容器密封,避免剧烈晃动,确保标本质量。
3.运送过程中的注意事项(1)夏季高温时,可采取冰袋降温措施,防止标本变质。
(2)注意标本容器不离手,避免摔碎或泄露。
(3)如需长途运输,应采取适当包装,确保标本在运输过程中不受损。
三、标本质量控制与标准化1.微生物实验室的质量管理体系实验室应建立完善的质量管理体系,包括人员培训、设备维护、检测方法、室内质量控制等,以确保检验结果的准确性和可靠性。
2.标本接收与处理实验室接收标本时,应核对标本信息,检查标本容器、运送条件等。
对标本进行登记、分类、编号,并按照标准化流程进行处理。
3.室内质量控制与外部质量评估实验室应定期进行室内质量控制,包括质控品的检测、方法比对、仪器校准等。
临床微生物标本的采集与送检资料
血培养采集次数
成年患者:推荐同时采集2-3套(不同部位)血培养 标本(即双瓶双臂同时采集血培养标本)。 婴幼儿患者:推荐同时采集2次(不同部位)血培养标 本。 原因: 血培养做1套的检出率为65%。 做2套和3套检出率的检出率分别为80%和90%。 单瓶的血培养检出率不高,而且结果很难临床解释。 在采取血培养后的2至5天内,无需重复采取血培养。 两个例外:细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。
保存(15-30℃),切勿放冰箱保存。
骨髓标本的微生物学检查
采集部位:骨髓穿刺法从髂骨采集标本。
采集时间:在用药前、发热初期或高热期
当骨髓炎时或长期使用抗菌药物患者,抽取骨髓培养阳性率远 高于血液培养
二、尿液标本的采集
尿液标本的送检指征
1 有典型的尿路感染症状; 2 肉眼脓尿或血尿; 3 尿常规检查表现为白细胞和/或亚硝酸盐阳性; 4 不明原因的发热,无其他局部症状; 5 留置导尿管的病人出现发热; 6 膀胱排空功能受损; 7 泌尿系统疾病手术前。
3 男性生殖系统表现
4 女性生殖系统表现
5 疑为下列疾病时需送检标本:前庭大腺脓肿、外阴阴 道念珠菌病、细菌性阴道病、急性子宫颈炎、急性盆腔 炎、急性尿道炎、急性膀胱炎、羊膜腔感染、产褥期感 染。
生殖道标本采集容器
无菌试管、男性拭子、女性拭 子
生殖道标本采集方法
1 尿道分泌物 ①男性:清洗尿道口,用灭菌纱布或棉球擦拭,采取从 尿道口溢出的脓性分泌物或用无菌男性拭子插入尿道内 2~4厘米取出分泌物。如无脓液溢出,可从阴茎的腹面 向龟头方向按摩,促使分泌物溢出。 ②女性:清洗尿道口,用灭菌纱布或棉球擦拭,然后从 阴道内诊压迫尿道,或从尿道的后面向前按摩,使分泌 物溢出。无肉眼可见的脓液,可用灭菌拭子轻轻深入前 尿道内,旋转拭子,采集标本。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则【最新版】目录一、微生物标本采集和运送的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.无菌操作3.采集量4.标本保存5.标本运输三、微生物标本运送的基本原则1.运送条件2.运送时间3.运送包装四、微生物标本采集和运送的意义正文微生物标本采集和运送是临床微生物学检验的基础环节,对于保证检验结果的准确性和可靠性具有重要意义。
本文将详细介绍微生物标本采集和运送的基本原则。
一、微生物标本采集的基本原则1.采集时机:微生物标本的采集应在抗生素使用前,以避免抗生素对病原微生物的杀灭作用。
在感染初期或病情加重时采集标本,可提高病原体的检出率。
2.无菌操作:在微生物标本采集过程中,应严格执行无菌操作,避免正常菌群和其他杂菌的污染。
采集非无菌部位的标本时,应尽量减少污染。
3.采集量:微生物标本的采集量要充足,以便进行后续的培养和检测。
不同类型的标本有不同的采集量要求,一般要求采集足够量的标本。
4.标本保存:微生物标本在采集后应及时保存,室温下保存时间不得超过 2 小时(夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存),冷藏保存时间不得超过 8 小时。
5.标本运输:微生物标本在运输过程中应保持无菌状态,避免温度过高或过低,以及剧烈震动。
运输包装应具有良好的保护性能,防止标本破损或泄漏。
二、微生物标本运送的基本原则1.运送条件:微生物标本在运送过程中应保持适宜的温度和湿度,避免高温、低温和干燥。
不同类型的标本有不同的运送条件要求,一般要求在 2-8℃的条件下运送。
2.运送时间:微生物标本的运送时间应尽量缩短,以减少病原体的死亡或活性降低。
一般要求在采集后 24 小时内送检。
3.运送包装:微生物标本的运送包装应具有良好的保护性能,防止标本在运输过程中破损或泄漏。
包装材料应无毒、无菌、防渗漏。
三、微生物标本采集和运送的意义微生物标本采集和运送的质量直接关系到临床微生物学检验的结果。
正确采集和运送微生物标本,可以提高病原体的检出率,为临床诊断、治疗和预防感染提供可靠的依据。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则有:
第一,要及时采集微生物标本,做病原学检查。
第二,严格执行无菌操作,减少和避免污染。
第三,标本采集之后,要立即送到实验室,床旁接种可以提高病原菌的检出率。
第四,尽量的在使用抗菌药物之前采集标本,这样对于结果的影响比较小一些。
第五,以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子要立刻送检。
第六,盛标本容器须经灭菌处理,不要使用消毒剂。
第七,送检标本应注明来源和检验目的,使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境,必要时应注明选用何种抗菌药物。
第八,对于混有正常菌群的污染标本,要做定量或半定量培养,然后判断是感染菌和定植菌。
第九,对分离到的病菌,要做药敏实验,提倡分级报告和现实报告。
微生物检验标本采集运送程序
标本的采集和运送具有重要意义,其质量直接影响到微生物实验室检测结果的可靠性。标本的采集和处理方式不当将导致病原体分离失败,或无法确定真正致病的微生物,给医院感染的病原学诊断造成困难,因此必须规范微生物检验标本的采集、运送,保证实验检测前标本质量。
标本
类型
采集
时间
温度
转运
报告时间
2、液体粪便取1~3ml
无菌
容器
常温
≤2h
住院超过3d或入院诊断不是胃肠炎的病人,不做常规粪便培养
直肠拭子
1、小心插入拭子超越肛门括约肌,轻轻旋转拭子,在肛门隐窝取样
2、用于检测病原的拭子应能见到粪便
无菌
试管
褥疮溃疡
1、一般不选择拭子标本
2、无菌盐水清洗表面
3、如得不到活检标本或抽吸物,则用拭子用力采集损伤底部
由于褥疮溃疡拭子提供不了什么临床信息,一般选择组织活检或针头抽吸标本
1/d#表示一天中仅需送检1次,无需多次重复送检相同标本
涂
片
抗
酸
染
色
痰
量多为宜
无菌容器
无
1h出报告
至少连续送3d,每日1次
尿(24h尿沉淀或12h全夜尿沉淀)
10ml
无菌管
留取24h尿或12h全夜尿于洁净容器中,必须静止2h后,弃上清液,收集沉渣约10ml于无菌容器送检
血培养瓶有两种规格,采血量不一样。
成人瓶:
8~10ml/瓶
小儿瓶:
1~3ml/瓶
≤2h
常温
禁止冷藏
阴性:5d
阳性:随时报告危急值,最终报告及时发出
建议从不同部位各采1瓶,共2瓶同时送检。
1、采集部位通常为肘静脉,疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉为宜。
临床常见微生物标本的采集与运送
临床常见微生物标本的采集与运送唐玉英正确的标本采集,运送,保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要,为了准确检出病原菌,避免漏检与误诊,临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择,采集,运送,保存及处理的一般原则。
一标本采集的一般原则1.早期采集采集时间最好在病程早期,急性期,且必须在使用抗菌药物之前采集,确保病原菌的检出。
2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染,使病原菌与正常菌群混淆,造成临床误诊。
采集的标本应存放在无菌容器内,容器不能使用消毒剂处理,标本中也不能添加防腐剂,以免降低病原菌的检出。
3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。
4.适当的采集方法对于厌氧菌,需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的,用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物,室温保存,不能冷藏和冷冻。
5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌,防漏,应带有螺旋盖的容器内。
二标本的运送1.标本采集后立即送检,若有延迟也应在2小时内送到实验室,否则会影响病原菌的检出,一般性的细菌培养标本若需延迟送检时,应置于4度冰箱保存,且不能超过24小时。
2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量,少量液体(小于1ml)或组织(小于1cm3)应在15~30分钟内送到实验室,较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时,厌氧培养标本原则上是床边接种,如延迟送检,需保存在厌氧运送培养基中,室温保存,不得超过24小时。
三不同标本的采集,运送(一)血液标本采集,运送1.血培养指针当患者出现:发热(大于38度)或低温(小于36度),寒战,白细胞增多,皮肤黏膜出血,休克,多器官衰竭,血压降低,c反应蛋白升高及呼吸加快,血液病患者出现粒细胞减少,血小板减少等,具备上述一种或几种体征时,临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养,对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前,及时做血培养。
2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者,在考虑使用抗菌药物之前,应立即采集血培养标本。
临床微生物标本规范化采集和送检
临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。
在临床诊断和治疗过程中,微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行,以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。
本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。
一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时,应使用无菌采集工具,如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。
采集工具应一次性使用,避免交叉感染。
2. 采集方法(1)棉签采集法:适用于采集分泌物、排泄物等标本。
将无菌棉签蘸取适量标本,轻轻涂抹于无菌培养基表面,注意避免棉签与培养基接触过紧,以免污染。
(2)拭子采集法:适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。
将无菌拭子轻轻擦拭采集部位,将拭子置于无菌培养基中,轻轻按压使标本附着于培养基表面。
(3)注射器采集法:适用于采集深部组织、关节液等标本。
将无菌注射器刺入采集部位,抽取适量标本后,将注射器置于无菌培养基中,拔出活塞使标本流出。
3. 采集注意事项(1)严格遵守无菌操作原则,防止标本污染。
(2)采集标本时,应尽量减少对标本的挤压,避免细胞破裂、毒素释放等现象。
(3)采集标本后,应尽快送检,避免长时间存放导致病原体死亡或变异。
二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后,应尽快送检,一般不超过2小时。
如无法及时送检,应将标本置于4℃冷藏保存,并在24小时内送检。
2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器,避免与其他物品接触。
标本运送过程中,应注意保持容器密封,防止标本污染。
3. 标本接收实验室接收微生物标本时,应详细核对标本信息,包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。
如发现标本不符合要求,应立即与临床工作人员沟通,重新采集标本。
4. 标本处理实验室接收标本后,应按照实验室规程进行对标本的处理,包括开盖、分区、接种、培养等。
在处理过程中,严格遵守无菌操作原则,防止标本污染。
临床微生物检验标本采集规范要求★
24小时尿
记录尿量,将尿液混匀后取适量用于 检验。
粪便标本采集
自然排便
排便后用干净竹签取粪便 表面部分。
直肠拭子
在特殊情况下,如肠道感 染,可用直肠拭子采集粪 便。
粪便量
一般需采集足够量的粪便 用于检验。
呼吸道标本采集
痰液
患者自行咳出痰液,避免唾液和 鼻咽部分泌物。
支气管肺泡灌洗
在特殊情况下,如重症肺炎,可通 过支气管肺泡灌洗采集呼吸道标本 。
确定采集时间
根据患者的病情和检验目的,选择最 佳的采集时间,如空腹采集、餐后采 集等。
注意采集时间与用药时间的间隔,避 免药物对检验结果的影响。
采集人员防护措施
采集人员应穿戴符合要求的防护服、手套、口罩等,确保自 身安全。
采集过程中应遵循无菌操作原则,避免交叉感染和环境污染 。
02
标本采集方法
足或采集方法不当导致检验结果出现偏差。
03
标准化采集时间
根据疾病类型和病情发展,选择合适的采集时间可以提高检验准确性。
例如,对于急性感染患者,应在发热期采集标本;对于慢性感染患者,
应选择在疾病活动期采集。
保障患者安全
减少交叉感染风险
遵循无菌操作原则可以降低交叉感染的风险,保护患者安全。
避免患者不适
采集过程中,应避免接触非检 验部位,确保标本不受污染。
采集后应及时送检,避免长时 间存放导致污染。
防止标本变质
采集的标本应尽快送检,避免长时间 存放导致变质。
保存过程中应定期检查,确保标本质 量。
对于需要长时间保存的标本,应采取 适当的保存措施,如低温、干燥等。
其他注意事项
采集前应了解患者病情和用药情 况,避免干扰检验结果。
临床微生物标本采集和送检指南
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
在临床微生物标本采集和送检过程中,可能会遇到以下挑战和问题: 1、如何正确采集微生物标本
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
2、如何妥善保存标本,避免污染和交叉感染 3、如何及时、安全地将标本运送至实验室 4、如何与实验室保持密切,确保检测结果的准确性
三、临床微生物标本采集和送检 的具体方法和步骤
三、标本运送
2、防止污染:在运送过程中,应确保标本不受污染。使用清洁、干燥的容器 存放标本,并封闭容器以防止细菌、病毒等微生物的侵入。
三、标本运送
3、及时送达:标本应在采集后尽快送至实验室进行检测,以确保检测结果的 准确性。如有特殊情况需延迟送检,应告知实验室技术人员并妥善保存标本。
三、标本运送
四、临床微生物标本采集和送检的建议
3、建立有效的沟通渠道,加强与实验室、医生之间的协作和信息共享,及时 调整治疗方案。
四、临床微生物标本采集和送检的建议
4、针对具有传染性的标本,应严格遵守相关规定,确保运输、处理等过程的 安全性。
5、借助信息化手段,如电子病历、远程诊断等,提高临床微生物标本采集和 送检的效率和质量。
4、记录信息:在运送过程中,应记录标本的相关信息,包括采集时间、送检 时间、接收人员等,以便实验室技术人员对标本进行跟踪和管理。
四、常见问题及处理方法
四、常见问题及处理方法
1、采血困难:如遇采血困难,可适当调整采血部位或改变采血方式,如更换 采血针或调整患者体位。如仍无法采血,可咨询医生或实验室技术人员寻求帮助。
四、常见问题及处理方法
4、标识错误:如遇标识错误,应立即纠正并重新标识标本。同时,对可能造 成标识错误的原因进行分析和总结,以避免类似错误再次发生。
临床微生物标本采集与运送
临床微生物标本采集与运送临床微生物标本采集与运送一、血培养标本采集、运送与报告标准操作规程血培养是一种常见的检测方法,适用于疑似血流感染的患者。
当患者出现寒战、体温超过38℃或低体温时,应考虑进行血培养检测。
特别是对于存在以下情况的患者,更应该抽血做细菌和真菌培养:医院内肺炎;留置中心静脉导管超过72小时;感染性心内膜炎;骨髓炎;有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状;临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采血时机一旦怀疑患者可能存在血流感染,应立即采血做血培养。
最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24小时后采集,以寒战、发热时采集为宜。
三、采血流程一)消毒对于培养瓶,应使用消毒液进行消毒,并等待其干燥后再使用。
对于皮肤,应使用消毒液从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达5 cm以上。
待消毒液挥发干燥后(常需30秒以上),再进行穿刺采血。
二)静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后,排尽针头内空气,直接注入血培养瓶,勿换针头。
如果行第二次穿刺或用头皮针取血时,应换针头。
先注于厌氧培养瓶,避免注入空气,然后注入需氧培养瓶,轻轻混匀以防血液凝固。
近年来,临床普遍采用负压血培养瓶,将血从患者静脉直接吸入血培养瓶,减少污染环节。
三)注意事项检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
采血部位通常为肘静脉,疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染,否则不应从留置静脉或动脉导管取血,因为导管易被皮肤正常菌群污染。
对于成年患者,应该同时分别在两个部位采集血标本,在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4.关于细菌性心内膜炎的血培养方法:需要在24小时内取血3次,每次间隔不少于30分钟;如果必要,可以在次日再做2次血培养。
5.采血量的要求:推荐采用培养基与血液1:10的比例,以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
临床微生物标本规范化采集和送检
四)标签及申请单
每份标本都应贴上标签并标明必要信息,在检验申请单上填写足够的有关 临床资料。包括病人情况(病区、病人姓名、住院号)、标本情况(标本类 型、检验目的、采集部位、采集方法、采集时间等)和病人用药等信息。
五)标本运输
标本应在室温下15分钟内送到检验科。如果超过2小时送达,冷藏保存。
六)实验室拒收标准
烧伤患者的创面、组织活检、血培养等的细菌学检测结果对临床医生进行烧伤感染的诊断和治 疗十分重要。创面的拭子标本或组织活检标本都可以进行细菌定量培养。出现全身感染症状时,应 同时采集血培养标本。在采集表面拭子或组织活检标本之前,应对创面彻底清洁,且未局部应用抗 菌药物。
一)临床采样指征:
由于烧伤的早期创面无菌,烧伤后12小时勿采集标本。当患者出现发热、创面恶化时, 考虑采样。
二)采样要求 1.病原体培养应在抗菌药物应用前或停药一周后采集标本。 2.生殖器是开放性器官,标本采集过程中应遵循无菌操作以减少杂菌 污染。 3.阴道内有大量正常菌群存在,采取宫颈标本应避免触及阴道壁。 4.沙眼衣原体在宿主细胞内繁殖,采集时尽可能多的取上皮细胞。
尿道分泌物
三)采集方法
(1)男性:取样前至少1小时内不要小便。 用无菌生理盐水清洗尿道口,用灭菌纱布 或棉球擦干,用男性拭子采取从尿道口溢 出的脓性分泌物或将男性拭子插入尿道内 2~4厘米取分泌物,置无菌试管中。如无 脓液溢出,可从阴茎的腹面向龟头方向按 摩,促使分泌物溢出。
应尽量送检无菌部位的标本,尤其是血培养。有菌部位标本应避免“正常菌群导致 标本的污染”。人体很多部位,如下呼吸道(痰液标本)、鼻窦、皮肤伤口等处的正常 菌群极易污染标本。因此,从这些部位采集标本,要尽可能降低这些部位正常菌群或定 植细菌对标本污染的可能性。有菌部位的标本不是最理想的微生物标本。
临床微生物检验标本的采集、运送及接种要点
检查采集器具和试剂的有效期
在采集前,检查采集器具和试剂的生产日期和有 效期,确保采集过程中使用的物品符合质量要求。
无菌操作技术规范培训
01
02
03
培训采集人员
对采集人员进行无菌操作 技术规范的培训,确保他 们掌握正确的采集方法和 注意事项。
报告审核
由经验丰富的专业人员对报告进行审核,确 保报告的准确性和可靠性。
报告存档
对出具的报告进行存档管理,以备后续查询 和追溯。
07 注意事项与常见问题解答
采集过程中注意事项
严格无菌操作
采集标本时应避免污染,确保无菌操作,以免影响检验 结果。
采集适量标本
采集标本量应适中,过多或过少均可能影响检验结果。
定期监测
定期对保存条件进行监测和记录,确保标本保存环境稳定可靠。
超出保存期限处理
对于超出保存期限的标本,应按照相关规定进行处理,避免误用 或浪费。
05 标本接种操作要点
接种前培养基准备工作
选择合适培养基
根据待检微生物种类选择合适的培养基,确保能 够提供其生长所需的营养物质和环境条件。
培养基灭菌
对培养基进行高压蒸汽灭菌或干热灭菌,以消除 杂菌和污染。
将拭子插入鼻腔至鼻咽部,轻轻旋 转后取出。
03
02
咽拭子
用无菌拭子擦拭咽后壁及两侧扁桃 体,避免触及舌部。
采集容器
应使用无菌、有盖、干燥的容器, 痰标本也可使用无菌痰杯。
04
其他类型标本采集
脑脊液标本
由医生进行腰椎穿刺采集,过程中需严格无 菌操作。
穿刺液标本
临床微生物标本的正确采集及运送
患者出现以上一种或同时具备几种临床表现时可作为血 培养的重要指征
血液标本的采集与运送
2、血培养标本的采集时间 尽可能在患者寒战或开始发热时采血 在患者接受抗生素治疗前采血 如患者已经使用抗生素进行治疗,应在下一次用药
前采血
血液标本的采集与运送
3、血培养标本的采集 ⑴皮肤消毒程序:严格执行以下3步法:①75%酒 精擦拭静脉穿刺部位待30s以上,②再用1%-2%碘 酊作用30s或10%碘伏作用90s以上,从穿刺点向外 画圈消毒,至消毒区域直径3cm以上;③最后用 75%酒精脱碘。如对碘过敏的患者,可用75%酒精 消毒60s,待酒精挥发干燥后采血。 注意:不允许在消毒后按压静脉,除非戴有无菌手 套
化脓和创伤标本的采集与运送
采集方法 ⑴未破裂脓肿:在采集标本前,对患者病灶局部的
皮肤或黏膜表面,用2.5%—3%碘酊消毒、75%酒精 脱碘,用无菌注射器将脓肿内容物吸出,然后切开脓 肿、引流,采集的脓液(>1ml),并取部分脓肿壁置 于厌氧运送装置或接种于厌氧培养基中立刻送检。 注意不主张用拭子采集标本。
血液标本的采集与运送
5、血培养采集的次数 ⑴对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者,推荐同时 或短时间间隔(10分钟内)从不同部位(如双臂) 采集2套血培养标本,做到“双瓶双侧”。如有必 要,可同时或短时间间隔内从下肢静脉采血接种第 3套培养瓶。在采集血培养后的2-5天内,不需要重 复采集血培养。当采血量不能满足推荐的采血量时, 应首先接种需氧瓶。 ⑵婴幼儿患者,需要同时采集2次(不同部位)血培 养标本。
穿刺液标本的采集及运送
2、标本运送 采集后应正确盖好,防止泄露或容器外部留有残留
物。 标本应在15min内送检。若不能及时送检室温保存
不超过24h。
临床微生物标本采集和运送规范
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室,1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点,应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物,枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记:不要只写“伤口〞标记标本,应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序:推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序:75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量:成人8-10ml,儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h,或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养;无菌体液(胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁)真菌培养;支原体培养;衣原体检查;血清学检查(包括ASO、RF、 肥达反应)
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意:从静脉取血;不要与血气和血沉标本一起采血; 不推荐血入瓶前换针头;不推荐静脉血直接入瓶;不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕,儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1%〕。血液和肉汤之比为1:5~1: 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜,并注明左眼还是右眼。
18
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
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龚瑞娥 中南大学湘雅医院
1
临床微生物标本送检意义
• 明确诊断 • 合理选用抗感染药物,提高感染治愈率 • 了解细菌耐药情况 • 及时发现感染及暴发
2
细菌学标本送检基本原则
• 及时采集 • 在抗菌药物使用前采集 • 采样时严格执行无菌操作 • 采样后及时送检 • 送检标本应注明来源和目的
13
闭锁性脓肿、瘘采样
• 穿刺 • 引流 • 开放性瘘 • 闭锁性瘘
14
结果分析
• 革兰染色阳性 • WBC>+ • 细菌培养阳性 • 细菌培养阴性
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血标本采集
• 采集时机 • 血量 • 室温 • 厌氧培养
16
采血部位与时机
• 通常为肘静脉,切忌在静滴抗菌药物的静 脉处采血。
• 除非怀疑有导管相关的血流感染,否则不 应从留置静脉或动脉导管取血,因为导管 常伴有定植菌存在。
18
为什么不采集单瓶的血培养
• 有研究表明,对于全自动的血培养仪,分 析24小时内采集满3套(每套为1瓶需氧,1 瓶厌氧,每套采血量20ml,每瓶10ml)分 离率,第一套检出率73.1%,第2套累积检 出率为89.7%,第三套累积检出率为98.3%。
19
采血指征时机
20
中心静脉导管监测采血要求
保留导管
拔除导管
从该可疑的CR-BSI患者采 从独立的外周静脉无菌采 集至少2套血培养,其中 集2套血培养。无菌状态 至少一套来自外周静脉, 下取出导管并剪下5cm导 并做好标记,另一套则 管尖端或近心断做半定量 从导管中心采集,2个来 或定量培养 源的采血时间必须接近 (不›5分钟)并做好标 记
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3
及时送检
• 出现感染临床症状体征时 • 在抗菌药物使用前
4
标本采集部位
• 无菌部位的标本更具有临床价值,有菌部位采 集的标本需要清除正常菌群和 定植细菌才有意 义。应尽量送检无菌部位的标本,尤其是血培 养。有菌部位 标本应避免“正常菌群导致标本 的污染”。人体很多部位,如下呼吸道 (痰液 标 本)、鼻窦、皮肤伤口等处的正常菌群极易 污染标本。因此,从这些部位采 集标本,要尽 可能降低这些部位正常菌群或定植细菌对标本 污染的可能性。 有菌部位的标本不是最理想的 微生物标本。
24
血培养检出细菌的判断
• 血培养结果可确诊解释 • 1)导管半定量细菌培养阳性(>15CFU/导管尖段5cm)或者
定量培养阳性(>102CFU/导管段),同时从导管血培养的细 菌与外周血培养结果一致(种属和药敏结果); • 2)从血管导管、外周静脉同时抽血做细菌定量培养,二者细 菌浓度比例超过3∶1; • 3)同时从血管导管内、外周静脉抽血送细菌培养,导管内所 取血样培养出现阳性的时间比外周血早2个小时以上。
用压力蒸汽等物理灭菌方法,不得使用化 学消毒剂灭菌。 • 采集无菌标本时应注意对局部及周围皮肤 的消毒。如使用消毒液消毒皮肤, 须作用 一定时间,待其干燥后采样。
8
及时运送标本
• 采集后及时送检,尽可能在2小时以内 • 保证必要的运送条件送要求
• 脓液及创伤标本采集 • 血标本采集 • 痰标本采集 • 尿标本采集 • 其他
细胞或椎状上皮细胞与白细胞同时存在, 白细胞数量可以不严格限定。
31
结果判断
• 经筛选的痰液,连续两次分离到相同病原体。 • 2.痰细菌定量培养分离病原菌数≥106cfu/ml。 • 3.血培养或并发胸腔积液者的胸液分离到病原体。 • 4.经纤维支气管镜或人工气道吸引采集的下呼吸道分泌
物病原菌数≥ 105cfu/ml; • 经支气管肺泡灌洗(BAL)分离到病原菌数≥104cfu/ml; • 或经防污染标本刷(PSB)、防污染支气管肺泡灌洗(PBAL)
29
呼吸道标本采集
• 痰标本: • 清晨第一口痰,先用冷开水漱口 • 结核检查痰量要多 • 经纤维支气管镜或人工气道吸引采集的下
呼吸道分泌物
30
痰液筛选的标准
• 痰液涂片镜检鳞状上皮细胞<10个/低倍视 野和白细胞>25个/ 低倍视野
• 或鳞状上皮细胞:白细胞≤1:2.5; • 免疫抑制和粒细胞缺乏患者见到柱状上皮
球菌菌数≥ 104cfu/ml、革兰阴性杆菌菌数≥105cfu/ml。 • 3.耻骨联合上膀胱穿刺留取尿液培养细菌菌数
≥103cfu/ml。 • 4.新鲜尿液标本经离心应用相差显微镜检查(1×400),
在30个视野中有半数视野见到细菌。 • 5.无症状性菌尿症:患者虽然无症状,但在近期(通常
为1周)有内镜检查或留置导尿史,尿液培养革兰阳性球 菌浓度≥104cfu/ml、革兰阴性杆菌浓度≥105cfu/ml,应视 为泌尿系统感染。
23
血培养检出细菌的判断
• 对于常见皮肤污染菌,如类白喉杆菌(棒状杆菌 属)、芽孢杆菌属(除炭疽杆菌外)、丙酸杆菌 属、凝固酶阴性葡萄球菌(包括表葡菌)、草绿 色链球菌、气球菌属、微球菌属,需要不同时间、 采集两次或两次以上的血培养才能确诊。
• 如血液中一次或一次以上培养到金黄色葡萄球菌、 肠球菌属、大肠埃希菌、假单胞菌属、克雷伯菌 属、假丝酵母菌属等等,即可确诊。
• 寒战或发热初起时采集,抗菌药物应用之 前采集最佳。如果患者已经使用抗菌药物 治疗,应在下一次用药之前采血培养。
17
血培养采样量
• 每名患者至少两套血培养最好3套 • 1套是指静脉采血,一套厌氧一套需氧 • 每套至少10ml最好20ml,即每瓶6-10ml • 采血后2-5天内不需重复采血 • 成人患者不能只采一管血做培养
采血检验单填写与报告要求
• 患者基本情况 • 送检目的 • 采血时间与部位 • 足够血量 • 细菌定量 • 阳性及时报告并告知标本采集部位
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采集后送检时间及保存方式
• 血培养应在2h内送至实验室孵育或上机; 如不能及时送检,应将血培养瓶置于室温 下,切勿冷藏或冷冻。
• 应采用密闭的塑料袋和硬质防漏的容器运 送标本。
25
尿标本采集
• 采集指征: • 采集部位:清洁中段尿、导尿管采集和耻
骨上膀胱穿刺采集。 • 采样方法:
26
尿标本采样指征
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采样方法
• 中段尿:避免污染 • 导尿管:禁止从集尿袋采集;直接穿刺 • 耻骨上膀胱穿刺:
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结果判断
• 1.尿检白细胞男性≥5个/高倍视野,女性≥10个/高倍视野 • 2.清洁中段尿或导尿留取尿液(非留置导尿)培养革兰阳性
采集的下呼吸道分泌物分离到病原菌,而原有慢性阻塞性 肺病包括支气管扩张者病原菌数必须≥103cfu/ml。
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• 脑脊液 • 胸水 • 腹水 • 大便
其他标本采集
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标本筛选与拒收
• 总的拒收标准: • 申请错误 • 标识错误 • 送检错误 • 容器错误 • 标本不符
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谢谢聆听!
35
5
申请单填写要求
• 申请单的内容应包括: • 1)患者信息:姓名、 性别、年龄、患者唯一
编码 (如住院号)等; • 2)申请科室或病区、申请医生; • 3)标本信息:标本类型、采集日期及时间、
采集部位、采集方法; • 4)临床 诊断; • 5)检测目的,尤其是一些特殊检测项目; • 6)是否已使用抗菌药物。
6
标本的标签填写要求
• 每份标本上必须贴有标签,无论手工书写、条形 码、二维码标签,都应 含有以下信息:
• 1)患者姓名; • 2)患者唯一编码 (如住院号); • 3)申请医生; • 4)标本采集部位; • 5)检测目的; • 6)标本采集的日期和时间。
7
严格无菌操作
• 严格执行无菌操作,避免标本被污染。 • 盛放标本的容器须 经灭菌处理。灭菌宜采
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开放性病灶采样
• 烧伤创面、脓肿 • 1、常规检查+革兰染色
先用无菌生理盐水擦拭切口2遍,再用含生 理盐水的无菌棉签取切口分泌物放入无菌 试管中,塞上试管塞,送检 。
12
开放性病灶采样
• 2、细菌培养 用含生理盐水的无菌棉签用力擦拭病灶边缘 或脓腔囊壁放入无菌试管中,塞上试管塞, 送检。 注意:不能用干棉签取样,一定要用无菌盐 水醮湿再取样并及时送检。