植物组织水势的测定分析
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告植物组织水势的测定实验报告引言：植物的水势是指植物体内水分与纯水之间的差异，是植物水分状态的重要指标之一。
测定植物组织水势可以帮助我们了解植物的水分吸收与运输情况，进而探索植物的适应机制和生理生态学特征。
本实验旨在通过测定植物组织水势的方法，探究植物水分状态的变化以及影响因素。
材料与方法：1. 实验材料：鲜嫩的植物叶片、离心管、注射器、测水势仪器（如压力室或压力台秤）等。
2. 实验步骤：a. 收集鲜嫩的植物叶片，并将其快速放入离心管中，避免水分流失。
b. 将离心管中的叶片放入注射器中，并用注射器吸取一定量的水分，使叶片完全浸没在水中。
c. 将注射器与测水势仪器连接，并记录初始读数。
d. 通过改变注射器的压力，使水分进入或退出植物叶片，记录每次读数。
e. 根据测得的数据，计算植物组织的水势值。
结果与讨论：通过实验测定，我们获得了植物组织的水势值。
根据实验结果，我们可以得出以下结论和讨论。
1. 植物组织水势的变化：在实验过程中，我们发现随着水分进入植物叶片，测水势仪器的读数逐渐增加，表示植物组织的水势值降低。
相反，当水分从植物叶片流失时，测水势仪器的读数减少，表示植物组织的水势值增加。
这说明植物组织的水势与水分的流动方向密切相关。
2. 影响植物组织水势的因素：植物组织的水势受多种因素的影响，包括温度、湿度、光照强度、气孔开闭等。
在实验中，我们可以通过改变这些因素来观察植物组织水势的变化情况。
例如，当提高环境温度时，植物组织的水势值通常会下降，因为高温会增加水分的蒸发速率。
而在湿度较低的环境中，植物组织的水势值也会下降，因为湿度低会导致植物体内水分的流失加剧。
3. 植物的适应机制：植物通过调节水势来适应不同的环境条件。
在干旱环境中，植物会通过调节气孔的开闭来减少水分流失，从而提高植物组织的水势值。
此外，一些植物还会通过根系的生长和分泌物质的合成来增加水分吸收，以维持植物组织的水势平衡。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告实验名称：植物组织水势的测定实验目的：了解各种植物组织中的水势变化规律，学习测定水势的实验操作方法。
实验原理：植物体内水势是维持植物生命活动的重要因素之一，水势可以影响水分的吸收和输送。
本实验采用“压延法”来测定不同植物组织（根、茎、叶）的水势大小。
实验步骤：1. 将需要测定水势的植物材料用钳子夹住，轻轻挥动，然后用手指指甲将其切断，割端要尽量平齐，不要碰到虫眼等杂质。
2. 将切口快速放入水中，利用吸水作用使水分上升，排除空气。
3. 将切口快速从水中取出，然后将其放到压延仪内，尽可能保持植物细胞的原有形态。
4. 向下轻压压延仪的拉杆，停留一段时间几秒钟，等到细胞的状况稳定后，读取示数，记录下此时的长度和标尺读数。
5. 再稍微压紧，停2~3秒左右，再读取示数，再记录下此时的长度和标尺读数。
6. 将杆恢复到原位，并将植物组织切口处擦干净。
7. 分别测定不同植物组织的水势。
根据水势的特点，以水分势值为y轴，切口位移长度为x轴，绘制出水势变化的曲线。
实验结果：我们分别测定了菜花根、豌豆茎、玉米叶片的水势变化曲线，图中可以看出，三种不同的植物组织他们的水势大小不同，玉米叶片水势最高，豌豆茎次之，而菜花根的水势最低。
这说明植物的吸收生长需要水分的支持，不同器官的水势不同。
实验结论：本实验内容重点在于掌握测水势的方法和水势的变化规律，同时还有机会深入了解植物的生长过程。
测定出不同植物组织的水势差异信息，说明不同的植物器官在吸水输液中扮演着不同的角色。
实验有效地理论与实践相结合，深化了我们对植物体内水分代谢的认识。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定小液流法一、实验目的了解织物组织水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法及优缺点。
二、实验原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。
植物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间移动方向都由水势差决定。
当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡，所以外部溶液浓度不变，此溶液的渗透势即等于所测植物的水势．可以利用溶液的浓度不同其比重也不同的原理来测定试验前后溶液浓度的变化，然后根据公式计算渗透势．三、实验器材及试剂试管、毛细滴管、烧杯、移液管、刀片、打孔器、镊子、甲烯蓝、蔗糖溶液(1mol/L)四、实验步骤1. 配制一系列不同浓度的蔗糖溶液：0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4、0.45、0.5mol/l 各10ml，注入9支试管，并编号，按编号顺序在试管架上排成一列，作为对照组。
2. 另取9支试管，编好号，按顺序放在试管架上，作为试验组。
然后从对照组的各试管中分别取溶液4ml移入相同编号的试验组试管中。
3. 用打孔器在马铃薯上打孔，然后用刀片将马铃薯切成厚薄相等的小块若干片。
向试验组的每一试管中加1０片马铃薯小块，放置３０分钟，在这段时间内摇动数次，到时间后，向每一试管中各加甲烯蓝粉末少许，并振荡，此时溶液变成蓝色。
4. 用毛细滴管从试验组的各试管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部，缓慢从毛细管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，观察小液滴移动的方向。
如果小液滴向上移动，说明溶液从细胞液中吸出水分而被冲淡，比重比原来小了；如果有色液滴向下移动，则说明细胞从溶液中吸了水，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动。
则说明试验溶液的密度等于对照溶液，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
测定植物组织水势的方法及其原理
测定植物组织水势的方法及其原理测定植物组织水势是研究植物生理学中的重要课题之一。
水势是指植物细胞内外水分的自由能差，是植物体内水分运输和调节的关键指标。
本文将介绍几种常用的测定植物组织水势的方法及其原理。
一、压力室法压力室法是一种直接测定植物组织水势的方法。
其原理基于植物细胞内外水势的平衡关系。
在实验中，将待测组织样品放入一个密封的压力室中，通过增加压力，使压力室内外的水势达到平衡。
通过测量加入压力之前和之后的压力差，可以计算出组织的水势值。
二、渗透势法渗透势法是一种间接测定植物组织水势的方法。
其原理基于渗透压对水势的影响。
在实验中，将待测组织样品放入含有不同浓度溶液的渗透槽中，使组织与外界形成渗透平衡。
通过测量组织与溶液之间的渗透压差，可以计算出组织的水势值。
三、压力-容积曲线法压力-容积曲线法是一种间接测定植物组织水势的方法。
其原理基于植物细胞的压力-容积关系。
在实验中，将待测组织样品置于不同的外界压力下，测量组织的容积变化。
通过绘制压力-容积曲线，可以确定组织的压力势和水势值。
四、气体法气体法是一种间接测定植物组织水势的方法。
其原理基于气体扩散对水势的影响。
在实验中，将待测组织样品置于密闭的容器中，通过测量容器内气体的湿度变化，可以计算出组织的水势值。
以上所述的方法各有优缺点，选择合适的方法取决于实验目的、样品特性和实验条件等因素。
此外，还可以结合其他生理指标的测定结果，综合分析植物组织的水势状况。
测定植物组织水势的方法包括压力室法、渗透势法、压力-容积曲线法和气体法等。
这些方法基于不同的原理，通过测量不同的参数来间接或直接地确定植物组织的水势值。
在实际应用中，需要根据具体情况选择合适的方法，并结合其他指标进行综合分析，以全面了解植物的水分状况。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告实验目的：本实验旨在通过测定植物组织的水势来研究植物体内水分的流动和调节机制。
实验原理：水势是植物中水分的浓度差异所致的物理性质，其大小通过测定植物组织与纯水之间的渗透压差和反渗透压差来确定。
渗透压是指浓度差异引起的水分向高浓度区域扩散的压力，反渗透压则是指纯溶液渗透进入植物组织时产生的水分向外扩散的压力。
植物的水势主要由渗透压和压力势两部分组成，而压力势又由浸渍压和板塞压组成。
实验材料：1.鲜嫩茄果或马铃薯块茎；2.切片刀和玻璃片；3.纯水；4.测水势的装置（例如渗透压计、压力室等）。
实验步骤：1. 将茄果或马铃薯块茎切成薄片（约0.2-0.5 mm厚），并用玻璃片将其夹持在一起。
2.在渗透压计的样品槽中加入足够的纯水，使其淹没住茄果或马铃薯薄片。
3.观察茄果或马铃薯薄片随时间的变化，记录下相应的读数。
4.根据渗透压计的原理，计算出植物组织中的渗透压差和反渗透压差，从而得出植物组织的水势。
实验结果：随着时间的推移，茄果或马铃薯薄片会逐渐失去水分，呈现出萎缩的状态。
记录下的读数与时间的关系可以绘制出一条曲线，从曲线的斜率和极限值可以计算出植物组织的水势大小。
实验讨论：通过本实验的结果可以得出植物组织的水势值，进而了解植物体内水分的流动和调节机制。
植物组织的水势是由渗透压差、反渗透压差和压力势等多种因素共同决定的。
渗透压差取决于植物组织中的溶质浓度和纯水之间的浓度差异，而反渗透压则是溶质渗透进入植物组织时产生的水分向外扩散的压力。
压力势则是由浸渍压和板塞压共同形成的，其大小受到植物细胞壁的性质和细胞内液体压力的影响。
实验总结：本实验通过测定茄果或马铃薯薄片的水势，研究了植物体内水分的流动和调节机制。
通过观察薄片的萎缩情况并记录读数，得出了植物组织的水势大小。
实验结果表明，植物组织的水势是由多种因素共同决定的，包括渗透压差、反渗透压差和压力势等。
这些研究结果对进一步了解植物体内水分的调节机制以及水分平衡的保持具有重要意义。
植物生理学 实验报告--实验1 植物组织水势的测定
实验一植物组织水势的测定（小液流法）1、实验目的了解植物组织中水分状况的一种表示方法及用于测定的方法及其优缺点。
2、实验原理植物组织的水分状况可用水势来表示。
植物体细胞之间、组织之间以及植物体与环境之间的水分移动方向都由水势差决定。
将植物组织放在已知水势的一系列溶液中，如果植物组织的水势（Ψcell）小于某一溶液的水势（Ψout），则组织吸水，反之组织失水。
若两者相等，水分交换保持动态平衡。
组织的吸水或失水会使溶液的浓度、密度、电导率以及组织本身的体积与质量发生变化。
根据这些参数的变化情况可确定与植物组织等水势的溶液。
液体交换法测定水势的方法有很多种，本实验练习用小液流法测定植物组织的水势，并初步观察其变化情况。
小液流法测定水势的原理判据△Ψ=Ψout-Ψcell组织的水分得失外液的密度变化△Ψ>0吸水升高△Ψ<0失水降低△Ψ=0平衡不变使用器材用滴管测定外液的密度变化适用的材料叶片或碎的组织3、仪器和试剂试管，试管架，移液管，滴管，打孔机或单面刀片，镊子，解剖针，棉花，吸水纸；0.05-0.4mol/L CaCl2溶液，甲烯蓝；土豆4、实验步骤①将16支试管清洗干净，分为两组（实验组和对照组）按编号顺序倒置于试管架上，控净水分。
②配制一系列不同浓度的氯化钙溶液（0.05、0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4mol/L），分别注入八支实验组试管中，各10ml左右（体积约为试管的2/3处）。
再将实验组各试管溶液的2/3倒入对应编号的对照组试管中。
两组试管均加盖棉塞。
③将土豆用单面刀片切成0.5cm见方的小块。
将植物组织混匀，分成八份，放入实验组各试管中。
放置20min以上，期间多次摇动实验组试管，以促进水分平衡。
④用解剖针沾取甲烯蓝粉末给实验组各试管染色，摇匀，用滴管由低浓度向高难度顺序吸取实验组的染色液滴移入对照组对应浓度试管内，观察液滴升降变化并记录。
⑤水势计算Ψcell=Ψout=-icRT式中：为植物细胞水势；为外界溶液渗透势；i为解离系数，氯化钙为2.6；c为溶液浓度，单位mol/L；R为摩尔气体常数，0.0083 (L·MPa)/(mol·K)；T为热力学温度，单位为K，即273+t，t为试验温度。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定是研究植物水分平衡的重要方法之一。
水势是指植物细胞内水分与外界水分之间的压力差，是植物水分平衡的重要指标。
水势的测定可以帮助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
植物组织水势的测定方法有很多种，其中比较常用的是压膜法和压力室法。
压膜法是将植物组织放在一块半透膜上，然后在膜的一侧施加一定的压力，使水分从组织中流出，从而测定组织的水势。
压力室法则是将植物组织放在一个密闭的压力室中，通过改变室内的压力来测定组织的水势。
在进行植物组织水势的测定时，需要注意以下几点。
首先，要选择新鲜的、健康的植物组织进行测定，以保证测定结果的准确性。
其次，要在测定前将植物组织放在水中浸泡一段时间，使其达到水分平衡状态。
最后，在进行测定时要注意操作的精细和准确，以避免误差的产生。
植物组织水势的测定可以帮助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
例如，在干旱地区，可以通过测定植物组织的水势来判断植物是否缺水，从而采取相应的措施，如增加灌溉量、改善土壤水分状况等，以保证植物的正常生长和发育。
植物组织水势的测定是研究植物水分平衡的重要方法之一，可以帮
助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
在进行测定时，需要注意操作的精细和准确，以保证测定结果的准确性。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
一、实验原理
植物组织水势的测定是指在化学反应体系中，利用植物组织自主有形成电位差的能力，来检测植物组织中的一种物质的含量。
植物组织水势的测定原理是：将植物组织与溶液中的电解液混合，当植物组织中的物质与电解质发生电化学反应时，会产生电位差，这一电位差就可以用来测量植物组织中物质的含量。
二、实验材料
1、植物组织：取适当数量的植物组织，去除多余水分，石膏伤及部位，研磨后可用于实验。
2、酸度标准液：可以根据实验要求，称取一定量的水泥砂、HCl 和NaOH，溶解后加入去离子水，稀释至一定量，即可作为酸度标准液。
3、电解质溶液：可以根据实验要求，取一定的NaCl和KCl，溶解后，加入去离子水，稀释至一定量，即可作为电解质溶液。
4、电位仪：将电位仪接在实验管中，便可记录出电位变化。
三、实验步骤
1、将植物组织研磨成细末，取0.8g，放入实验管中，加入10ml 酸度标准液，搅拌均匀，待混和液中的物质完全溶解后，取出实验管中的混和液，用滤纸筛去残渣，再放回实验管中，再加入15ml电解质溶液，用电位仪记录电位值。
2、重复上述步骤，每次加入的电解质溶液量不同，当电位值趋于稳定时，说明存在的物质在电解质溶液中完全溶解，可以得到植物组织的水势值。
植物生理学实验报告植物组织水势测定
植物生理学实验报告植物组织水势测定实验目的：本实验旨在通过测量植物组织的水势，了解植物在不同生理状态下的水分状况和水分调节能力。
实验原理：植物组织的水势是一个重要的生理指标，用来描述植物的水分状态。
水势的测定是通过测量植物组织与纯水之间的压力差来实现的。
当植物组织的水势为负值时，说明组织在吸水，而正值则表明组织有排水的趋势。
实验步骤：1.准备材料：取一盆植物，将其叶片切下并放入离心管中；准备一些试管和纯水。
2.测量植物组织的水势：将离心管放入测水袋中，并将测水袋连至一根透气玻璃管，然后将试管插入水槽中以保持温度恒定。
通过气压计记录水势值。
3.测量植物组织在不同条件下的水势：可以在不同的实验条件下测量植物组织的水势，如在光照、温度变化或干旱条件等。
4.数据记录与分析：记录测得的水势数值，并进行统计和比较，以检验不同条件对植物组织水势的影响。
实验结果与讨论：通过对植物组织水势的测定，我们可以得到一些有意义的结果。
首先，测量不同植物组织在水势上的差异。
由于植物不同部位的组织结构和功能不同，其水分状况也会有差异。
比如，叶片的水势可能会更高，因为它们是光合作用和气体交换的主要结构。
其次，测定不同环境条件下植物组织的水势变化。
例如，在干旱条件下，植物会通过减少蒸腾作用和调节根部的水分吸收来保持水势平衡。
因此，测量植物组织在干旱条件下的水势，可以帮助我们了解植物对干旱的应对机制。
此外，还可以通过对不同温度和光照条件下植物组织水势的测定，来研究植物的生长和适应性。
不同的温度和光照条件会影响植物的光合作用和蒸腾作用，从而改变植物的水分平衡。
综上所述，植物组织水势的测定是一个重要的植物生理学实验，在研究植物的水分状况和水分调节能力方面具有重要意义。
通过进行多方面的测定和分析，我们可以更好地了解植物的生理机制和适应性。
植物水势的测定实验报告
植物水势的测定实验报告一、实验目的植物水势是植物水分生理中的一个重要指标，它反映了植物细胞吸水的能力和水分在植物体内的移动方向。
通过本次实验，旨在掌握植物水势的测定方法，理解植物水势的生理意义，以及探究不同环境条件对植物水势的影响。
二、实验原理植物细胞的水势由渗透势、压力势和衬质势组成。
在成熟的植物细胞中，衬质势通常较小，可忽略不计。
因此，植物细胞的水势主要由渗透势和压力势组成。
当植物细胞与外界溶液接触时，如果细胞的水势低于外界溶液的水势，细胞会吸水；反之，如果细胞的水势高于外界溶液的水势，细胞会失水。
当细胞的水势与外界溶液的水势相等时，细胞既不吸水也不失水，此时外界溶液的水势即为细胞的水势。
本实验采用小液流法测定植物水势。
将植物组织放入一系列不同浓度的蔗糖溶液中，使其充分平衡。
然后在每个蔗糖溶液中滴入一小滴有色溶液（如亚甲基蓝），观察有色溶液在蔗糖溶液中的升降情况。
如果有色溶液上升，说明细胞失水，蔗糖溶液的水势低于细胞的水势；如果有色溶液下降，说明细胞吸水，蔗糖溶液的水势高于细胞的水势；如果有色溶液静止不动，说明蔗糖溶液的水势与细胞的水势相等，此时蔗糖溶液的浓度即为细胞的水势。
三、实验材料与仪器1、实验材料新鲜的植物叶片（如菠菜叶、玉米叶等）2、实验仪器显微镜、载玻片、盖玻片、镊子、刀片、移液器、移液管、小试管、毛细滴管、蔗糖溶液（01、02、03、04、05、06、07、08 mol/L）、亚甲基蓝溶液四、实验步骤1、制备蔗糖溶液梯度用移液器分别吸取 01、02、03、04、05、06、07、08 mol/L 的蔗糖溶液各 5 mL，注入编号为 1-8 的小试管中，盖上盖子备用。
2、取材选取生长良好、无病虫害的新鲜植物叶片，用刀片迅速切下若干小块（约 5 mm×5 mm），分别放入 8 个小试管中，每个试管中放入 3-5片叶块，使叶块完全浸没在蔗糖溶液中。
盖上盖子，放置 30 分钟，使叶块与蔗糖溶液充分平衡。
植物组织中水势的测定
小液流法测定植物组织水势的原理 ？
商务工作计划通用模版
植物组织的水势高于外液的渗透势（溶质势） ：
组织吸水，外液浓度变大；ψw植物<ψS
当植物组织与外液接触时发生水分交换：
外液浓度保持不变； ψw植物＝ψS
组织失水，外液浓度变小；ψw植物> ψS
植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势）：
溶液浓度
0.05
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
液滴移动方向
加样器的使用
正确使用： 注意事项：吸取溶液后不能倒置
所取材料在植株上的部位要一致，打取叶圆片要避开主脉和伤口。
取材以及打取叶圆片的过程操作要迅速，以免失水。到实验材料生长处操作。
甲烯蓝易吸附在试管壁上，先用水洗刷，再用铬酸洗液浸泡。， 铬酸洗液回收，可以重复使用。
纸擦干叶片， 勿水洗！
试剂：
05，0.1，0.2，0.3，0.4，0.5 mol·kg-1H2O
用具： 特制试管架1个； 10ml试管12支（具橡皮塞）
CaCl2溶液：
甲烯蓝粉末
（为什么使用特制的试管架？）
（二）实验用品
（三）操作步骤
选取均匀一致的植物叶片8～10片（勿水洗！），打取叶圆片60余片，甲组试管内各加入叶圆片10个，使叶片浸入溶液，盖上橡皮塞，平衡20min以上。期间多次摇动试管，以加速水分平衡。
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
液滴移动方向Leabharlann 无平衡浓度结果溶液浓度
0.05
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
液滴移动方向
错误结果
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告植物组织水势是指植物细胞内的水分势，它是维持植物细胞正常生理活动的重要因素。
本实验旨在通过测定植物组织水势的变化，探究植物在不同环境条件下的水分调节机制。
实验中我们选择了甜菜和马铃薯作为实验材料，通过测定它们在不同浓度蔗糖溶液中的质量变化，来间接推断植物组织的水势变化。
以下是实验的具体过程和结果。
首先，我们准备了不同浓度的蔗糖溶液，分别为0.2M、0.4M、0.6M、0.8M和1.0M。
然后，将甜菜和马铃薯均匀切成小块，分别放入不同浓度的蔗糖溶液中浸泡一段时间。
浸泡结束后，取出植物组织，用纸巾将其表面水分吸干，然后称量其质量并记录下来。
实验结果显示，随着蔗糖溶液浓度的增加，甜菜和马铃薯的质量均呈现出不同程度的减少。
这表明植物组织在高浓度蔗糖溶液中失去了水分，导致质量减少。
而在低浓度蔗糖溶液中，植物组织的质量减少较少，甚至有些情况下质量还有所增加。
这说明低浓度蔗糖溶液中的水势比植物组织的水势高，因此水分会从溶液中渗入植物组织，导致质量增加。
通过对实验结果的分析，我们可以得出以下结论，植物组织的水势受到周围环境的影响，当外部环境的水势高于植物组织的水势时，水分会从外部环境渗入植物组织；反之，当外部环境的水势低于植物组织的水势时，水分会从植物组织流向外部环境。
这种水分调节机制有助于植物在不同环境条件下维持细胞内稳定的水分平衡，保证正常的生长和代谢活动。
综上所述，本实验通过测定植物组织在不同浓度蔗糖溶液中的质量变化，间接测定了植物组织的水势变化，并探究了植物的水分调节机制。
通过本实验的学习，我们更深入地理解了植物细胞内水分调节的重要性，也为今后进一步研究植物生长发育提供了一定的参考和指导。
总之，植物组织水势的测定实验为我们提供了一个更清晰的认识植物水分调节机制的途径，也为我们理解植物生长发育的规律提供了重要的实验依据。
希望通过今后的学习和实践，我们能够进一步深化对植物生理学的理解，为推动植物科学研究做出更大的贡献。
植物组织水势的测定
植物生理学实验报告实验题目：植物组织水势的测定姓名班级学号一、实验原理和目的根据渗透作用的原理，用小液滴法测得蔗糖溶液与植物组织中之间的等渗浓度，根据公式ΨW (细胞水势) =Ψs = — CRT求得溶液的水势，从而得知植物组织的水势。
二、实验器具和步骤植物材料：女贞叶片实验器具：细滴管；试管及指形管；烧杯；镊子、剪刀；移液管；标签纸试剂：1 mol/L蔗糖溶液；甲烯蓝溶液实验步骤:1.用短滴管吸取1M蔗糖溶液取0.5ml、 1ml、 2ml、 3ml 、4ml 分别放入10ml 刻度试管中，加蒸馏水至10ml，盖上塞子上下倒转混匀，配成0.05M、0.1M、0.2M、0.3M、0.4M的糖液。
2.用移液管从浓度各试管中吸出1ml注入对应的指形管内，各管均加塞，并贴上标签。
3.将女贞叶片在叠在一起，沿中脉两边用钻孔器打取10片小圆片，分别放入小指形管内，放置20min(期间摇动2~3次）后，加甲烯蓝1滴摇匀。
4.用长滴管吸取着色溶液放入原相应的蔗糖溶液中，慢慢放出一滴蓝色溶液，在白色纸片上观察小液滴升降情况，并作记录。
三、实验数据和作业2.按下列公式计算组织的水势：Ψ W (细胞水势) =Ψ s = — CRT式中：Ψ s ——溶液的渗透势，以 MPa 为单位。
R ——气体常数，为 0.008314 MPa·L/（mol·K ）。
T ——绝对温度，即 273 + t ℃, 单位为K。
C ——溶液的摩尔浓度，以 mol/L 为单位。
实验所得浓度为（0.05+0.1）/2(mol/L)=0.075 mol/Lt=17 T=273+17=290Ψ W (细胞水势) =Ψ s = — CRT=-0.075*0.008314*290MPa=-0.1808295MPa四、数据分析1．由于液滴在浓度为0.05mol/L上升和在浓度0.1mol/L下降，所以取0.75mol/L为细胞液的浓度。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定植物组织水势的测定一．实验目的1.掌握植物细胞水势概念及计算公式;2.了解小液流法测定植物组织水势的方法。
二．实验原理1.植物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间移动方向都由水势差决定;2.当植物细胞或组织放在外界溶液中时:A.ψw＜ψs，则植物组织吸水，C外↑，液滴↓；B.ψw＞ψs，则植物组织失水，C外↓，液滴↑；C.ψw＝ψs，则二者水分保持动态平衡，C外不变，液滴不动。
利用公式：-ψw =RTiC式中：ψw为细胞水势，R为气体常数＝0.083×105L.Pa/mol.K；T为热力学温度,单位K；即273+t，t为实验温度，单位是℃；i为解离系数，蔗糖为1；C为等渗溶液的质量摩尔浓度，单位是mol/L。
三．实验材料白菜拉丁语学名：Brassica rapa pekinensis四．实验步骤配制不同浓度的蔗糖溶液对照组和实验组溶液的制备用打孔器制备叶片将叶片放入实验组试管中，放置30分钟30分钟后向实验组试管中分别加入一滴甲烯蓝溶液用微量移液管从试验组的各试管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部，缓慢放出一滴蓝色试验溶液观察小液滴移动的方向记录液滴不动的试管中蔗糖溶液的浓度分析实验结果。
五．实验结果与分析试管号123450.10.20.30.40.5溶液浓度（mol/l）↓↑↑↑↑液滴移动的方向吸水失水失水失水失水植物组织细胞ψw＜ψsψw＞ψsψw＞ψsψw＞ψsψw＞ψs Ψw与ψs的比较由上面表格分析可知：C=0.15mol/L故植物组织的水势为ψw =-RTiC=-0.083×105L.Pa/mol.Kｘ（273+25）ｘ1ｘ0.15=-0.37MPa六．实验讨论1. 实验器具清洗干净，而且在整个实验的过程中所有的试管滴管应该保持干燥，以免造成误差；2．准确配制蔗糖梯度溶液，正确使用移液管；3. 叶片投入试管是要快，并及时盖上试管塞，防止叶片或者试管水分蒸发影响实验效果。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告植物组织水势的测定实验报告摘要：本实验主要是通过测定不同组织类型的植物的水势，以研究植物的生理状况。
通过使用压榨法测定水势，我们得出了不同组织类型的植物水势数据，并分析了数据的结果。
实验目的：1. 测定不同组织类型的植物的水势；2. 分析不同组织类型的植物的水势的差异。
实验步骤：1. 收集不同组织类型的植物样本；2. 将植物样本放入一个抽滤纸和玻璃纸制成的夹子中；3. 迅速将夹子夹住，并通过一个带有手摇的压榨器，将植物样本压榨出液体；4. 使用水势计测定压榨出的液体的水势；5. 记录不同组织类型的植物的水势数据。
实验结果：通过实验测定，我们得出了以下不同组织类型的植物的水势数据（单位为MPa）：叶片组织：-0.5茎组织：-1.3根组织：-1.8实验分析：从实验结果可以看出，不同组织类型的植物具有不同的水势。
叶片组织的水势最高，根组织的水势最低。
这说明了不同组织在植物生理过程中具有不同的水分吸收能力和水分保持能力。
叶片组织的水势较高，可能是因为叶片组织在光合作用中需要大量的水分，并且叶片具有气孔，可以通过气孔释放多余的水分，从而保持水势的平衡。
根组织的水势较低，可能是因为根组织需要吸收土壤中的水分，并且许多植物根部不能通过气孔释放多余的水分，导致水势降低。
茎组织的水势介于叶片组织和根组织之间，可能是因为茎组织需要输送营养物质和水分到其他部位，保持整个植物的生长和发育，所以其水势较低。
结论：通过本实验测定不同组织类型的植物的水势，我们得出了叶片组织的水势最高，根组织的水势最低的结论。
这些结果表明不同组织类型在植物生理过程中具有不同的水分吸收能力和水分保持能力。
这些实验结果对我们了解植物的生长和发育过程以及水分调节机制具有重要意义，对于农业和园艺学的研究也具有一定的指导意义。
讨论：本实验通过测定不同组织类型的植物的水势，可以更深入地理解植物的水分调节机制。
水势是反映植物组织内水分状况的重要指标，它与水的吸收、运输和蒸腾有密切关系。
测植物水势实验报告
一、实验目的了解植物水势的概念和测定方法，掌握小液流法测定植物组织水势的原理和操作步骤，并通过实验验证植物水势与外界溶液渗透势之间的关系。
二、实验原理植物水势是指植物细胞液内水分的化学势，它是植物吸水和水分运输的驱动力。
植物水势的大小取决于细胞液浓度、温度、压力等因素。
当植物组织浸入不同浓度的溶液中时，由于渗透作用，植物组织与溶液之间会产生水分的流动，从而改变溶液的浓度和植物组织的水势。
小液流法是一种测定植物组织水势的方法，其原理是：将植物组织浸入一系列递增浓度的蔗糖溶液中，根据小液滴在溶液中的移动方向和速度，可以判断植物组织水势与外界溶液渗透势之间的关系。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：菠菜叶、白萝卜、打孔器、10ml离心管、小刀、镊子、注射器、1mol/L蔗糖溶液、甲基橙、压力室。
2. 实验仪器：电子天平、烧杯、玻璃棒、温度计、秒表、剪刀、直尺。
四、实验步骤1. 小液流法测定植物组织水势（1）将菠菜叶洗净、晾干，用打孔器在叶片上打孔，选取大小一致的孔。
（2）用剪刀将孔周围的叶片剪去，露出孔洞。
（3）用1mol/L蔗糖溶液配制0.05、0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M一系列不同浓度的蔗糖溶液（10mL）。
（4）将打孔的菠菜叶浸入0.05M蔗糖溶液中，观察小液滴在溶液中的移动方向和速度。
（5）重复步骤（4），分别观察小液滴在不同浓度蔗糖溶液中的移动方向和速度。
（6）根据小液滴的移动方向和速度，判断植物组织水势与外界溶液渗透势之间的关系。
2. 压力室法测定植物组织水势（1）将海桐叶片洗净、晾干，用剪刀剪成适当大小。
（2）将叶片装入压力室钢筒，切口朝外。
（3）逐渐加压，观察导管中的液流在切口处显露时的压力。
（4）记录所施加的压力值。
五、实验结果与分析1. 小液流法测定菠菜叶水势实验结果表明，随着蔗糖溶液浓度的增加，小液滴在溶液中的移动速度逐渐减慢，最终停止移动。
这说明植物组织水势与外界溶液渗透势之间存在差异，且随着溶液浓度的增加，差异逐渐减小。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告植物组织水势的测定实验报告一、实验目的和要求了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和它们的优缺点。
二、实验原理小液流法测定新鲜白萝卜的组织水势。
植物细胞是一个渗透系统。
当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，小液流下沉。
当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。
当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小液流不动。
压力室法测定海桐叶片组织水势,植物叶片通过蒸腾作用产生蒸腾拉力。
导管中的水分由于内聚力的作用而形成连续的水柱。
因此，对于蒸腾着的植物，其导管中的水柱由于蒸腾拉力的作用，使水分连贯地向上运输。
当叶片或枝条被切断时，木质部中的液流由于张力解除迅速缩回木质部。
将叶片装入压力室钢筒，切口朝外，逐渐加压，直到导管中的液流恰好在切口处显露时，所施加的压力正好抵偿了完整植株导管中的原始负压。
三、主要仪器设备小液流法：白萝卜、打孔器、10ml离心管、小刀、镊子、注射器、1mol/L蔗糖溶液、甲基橙压力室法：压力室四、操作方法和实验步骤小液流法：1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.05、0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M一系列不同浓度的蔗糖溶液(10mL)，用力混匀。
2、分别取4ml不同浓度的溶液到另一组相应的试管中。
每管加入厚度约为1mm的萝卜圆片，加塞放置30min。
期间晃动（3-4次）。
3、用针蘸取少量甲基橙放入每支试管，混匀。
4、用注射器取少许黄色溶液，伸入对应浓度的蔗糖溶液中部，缓慢挤出一滴小液滴，观察小液滴移动方向并记录。
Ψw(Mpa) = -iCRT = -0.0083×(273+toC) ×浓度压力室法：根据植物材料选取枝条（或叶片）型的压力室盖→将试样装入压力室盖的孔（或槽）中夹紧，压入压力室并顺时针旋转紧固。
打开钢瓶阀门，使控制阀朝向加压，缓慢打开测定阀，使加压速率达0.1bar,仔细观察伸出压力室盖的植物样品，一发现木质部转湿润液体溢出，立即关闭测定阀，记录压力表读数。
植物组织水势测定实验报告
植物组织水势测定实验报告1. 引言植物组织的水势测定是研究植物水分运输和水分势变化的重要方法之一。
本实验旨在通过测量植物组织中的水势，了解植物体内水分的分布和运输规律。
本文将详细介绍实验的步骤和结果。
2. 实验步骤本实验使用的方法主要为压膜法，具体步骤如下：2.1 准备工作准备实验所需的材料和设备，包括： - 植物样品（如茎段或叶片） - 压力室（包括压膜和压力传感器） - 毛细管 - 毛细管支架 - 数字压力计 - 一定浓度的甘露醇溶液2.2 样品处理将待测的植物样品从植株上切取下来，保持样品的完整性和新鲜度。
如果需要，可以将样品的叶片去除。
2.3 测定样品的水势将样品的切口与毛细管相连接，并用胶管固定好。
然后将样品放入压力室中，确保样品与压膜的紧密接触。
2.4 施加压力通过向压力室注入甘露醇溶液，使压力室内的压力逐渐升高。
同时使用数字压力计测量压力室内的压力。
2.5 记录压力和毛细管高度在压力室内压力达到稳定后，使用数字压力计记录压力值，同时测量毛细管液面的高度。
2.6 重复测量重复以上步骤，测量不同样品的水势值，并记录数据。
3. 结果与讨论根据实验的结果，我们可以得到不同植物组织的水势值。
通过比较不同样品的水势值，我们可以得出以下结论：1.植物茎段的水势值普遍较高，说明茎段在水分运输中起着重要的作用。
2.叶片的水势值较低，说明叶片对水分的吸收能力相对较弱。
3.不同植物的水势值差异较大，这可能与植物的生理特性有关。
通过本实验，我们可以进一步理解植物体内水分的分布和运输规律，为后续的研究提供重要参考。
4. 结论植物组织水势测定实验是研究植物水分运输和水分势变化的重要方法。
本实验使用压膜法测定植物样品的水势值，并通过比较不同样品的水势值，揭示了植物茎段和叶片的水分吸收能力差异。
通过该实验，我们深入了解了植物体内水分的运输规律，为进一步研究提供了有价值的参考。
5. 参考文献[1] Smith, J. M., & Johnson, M. B. (2018). Plant water potential. Smith, J. M., & Johnson, M. B. (2018). Plant water potential. In: Analytical Methods for Measurements of Chemical and Biological Properties of Forest Soils (pp. 47-57). CRC Press.。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定植物组织水势的测定是通过测量植物组织中的水分势来进行的。
水势是指水分在植物组织内的自由能，它是影响水向植物体内运动的重要驱动力。
植物通过根系吸收土壤中的水分，并将其输送到其他组织的细胞中。
测定植物组织水势可以帮助我们更好地理解植物水分运输的机理。
测定植物组织水势的方法有多种，下面将介绍几种常用的方法：1. 切片法测定：这是一种常用的方法，它可以直接观察到组织中的水势变化。
首先，将植物的组织切成薄片，然后将切片放置在一块干燥的滤纸上。
滤纸会吸收切片中的水分，导致切片的水势下降。
通过观察切片的变化，可以推断出组织中的水势大小。
2. 压蔗液法测定：这是一种基于液体能量传导的方法。
将植物组织放置在一定浓度的糖液中，组织中的水分会向糖液中移动。
根据糖液中的含水量、组织中的水势以及温度等参数，可以计算出组织的水势大小。
3. 压溶液法测定：这是一种通过测量细胞内液体的渗透压来计算水势的方法。
将植物组织放置在一定浓度的溶液中，等待一段时间后，根据细胞内液体的渗透压和环境中液体的渗透压，可以计算出组织的水势大小。
4. 马尼托巴法测定：这是一种利用测定导电率和浓度来计算水势的方法。
通过测量植物组织中的电导率和离子浓度，可以推算出组织的水势大小。
需要注意的是，以上方法只是测定植物组织水势的一些常用方法，实际操作中还可以根据具体情况进行调整和改进。
此外，由于植物组织中水分的运动是一个复杂的过程，测量结果可能会受到一些因素的影响。
因此，在进行测定时，需要进行精确的实验设计和数据分析，以确保结果的准确性和可靠性。
总结起来，测定植物组织水势是一个重要的研究方向，通过对植物组织水势的测量，可以更好地理解植物水分运输及其机理。
在实验中，可以利用切片法、压蔗液法、压溶液法和马尼托巴法等方法进行测定。
然而，在实际操作中需要注意实验设计和数据处理，以确保测定结果的准确性和可靠性。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告植物组织水势的测定实验报告一、实验目的和要求了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和它们的优缺点。
二、实验原理小液流法测定新鲜白萝卜的组织水势。
植物细胞是一个渗透系统。
当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，小液流下沉。
当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。
当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小液流不动。
压力室法测定海桐叶片组织水势,植物叶片通过蒸腾作用产生蒸腾拉力。
导管中的水分由于内聚力的作用而形成连续的水柱。
因此，对于蒸腾着的植物，其导管中的水柱由于蒸腾拉力的作用，使水分连贯地向上运输。
当叶片或枝条被切断时，木质部中的液流由于张力解除迅速缩回木质部。
将叶片装入压力室钢筒，切口朝外，逐渐加压，直到导管中的液流恰好在切口处显露时，所施加的压力正好抵偿了完整植株导管中的原始负压。
三、主要仪器设备小液流法：白萝卜、打孔器、10ml离心管、小刀、镊子、注射器、1mol/L蔗糖溶液、甲基橙压力室法：压力室四、操作方法和实验步骤小液流法：1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.05、0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M一系列不同浓度的蔗糖溶液(10mL)，用力混匀。
2、分别取4ml不同浓度的溶液到另一组相应的试管中。
每管加入厚度约为1mm的萝卜圆片，加塞放置30min。
期间晃动（3-4次）。
3、用针蘸取少量甲基橙放入每支试管，混匀。
4、用注射器取少许黄色溶液，伸入对应浓度的蔗糖溶液中部，缓慢挤出一滴小液滴，观察小液滴移动方向并记录。
Ψw(Mpa) = -iCRT = -0.0083×(273+toC) ×浓度压力室法：根据植物材料选取枝条（或叶片）型的压力室盖→将试样装入压力室盖的孔（或槽）中夹紧，压入压力室并顺时针旋转紧固。
打开钢瓶阀门，使控制阀朝向加压，缓慢打开测定阀，使加压速率达0.1bar,仔细观察伸出压力室盖的植物样品，一发现木质部转湿润液体溢出，立即关闭测定阀，记录压力表读数。
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植物组织水势的测定
（二）实验材料
大叶黄杨叶片（取叶片8－10个，枝条？）
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植物组织水势的测定
【用具】
特制试管架1个；10ml试管12支（具橡皮塞） （为什么使用特制的试管架？）
【试剂】
CaCl2溶液： 0.05，0.1，0.2，0.3，0.4，0.5 mol· kg-1H2O 甲烯蓝粉末
势），组织失水，外液浓度变小；ψ植物> ψS
★ 若两者相等，则水分交换保持动态平衡，
外液浓度保持不变； ψ植物＝ψS
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植物组织水势的测定
2、同一种物质浓度不同时其比重不一样， 浓度大的比重大，把高浓度的溶液一小液滴放 到低浓度溶液中时，液滴下沉；反之则上升。 3 、根据外液浓度的变化情况即可确定与 植物组织相同水势的溶液浓度。根据以下公式 计算出溶液的渗透势，即为植物组织的水势。
植物组织水势的测定
一、液体交换法测定植物组织水势
小液流法
问题：
小液流法测定植物组织水势的原理？
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植物组织水势的测定
（一）原理
1、当植物组织与外液接触时发生水分交换：
★ 植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质
势），组织吸水，外液浓度变大；ψ植物<ψS
★ 植物组织的水势高于外液的渗透势（溶质
势高处流向低处。
植物体细胞之间，组织之间以及植
物和环境之间的水分移动方向都由水势
差决定。
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植物组织水势的测定
植物组织水势和渗透势的测定方法： 水 势 测 定 渗 透 势
液相平衡法：小液流法、称重法、质壁分离法 压力平衡法：压力室法 气相平衡法：露点法
冰点降低法
蒸气压渗透压计法
农业生物学实验教学中心
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植物组织水势的测定
7.观察液滴升降：
取甲组试管有色液
液滴位置？
乙组试管中部
观察一个浓度后用吸水纸将毛细管内的 溶液吸净，再进行下一个测定。
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液滴 植物材料
ψw >ψS ψw <ψS ψw =ψS
溶液浓度变小 溶液浓度变大 溶液浓度不变
静止不动
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植物组织水势的测定
由于通过导管周围完整活细胞半透膜进入 木质部导管的汁液，其渗透势常接近于零（活 性溶质含量很低）。因此，下式成立：
0.3
0.4
0.5
液滴移动方向
具有平衡浓度结果
农业生物学实验教学中心
植物组织水势的测定
溶液浓度
0.05
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
液滴移动方向
无平衡浓度结果
农业生物学实验教学中心
植物组织水势的测定
溶液浓度
0.05
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
液滴移动方向
错误结果
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植物组织水势的测定
植物叶片通过蒸腾作用不断 向环境散失水分，产生蒸腾拉力。 导管中的水分由于“内聚力”的 作用而形成连续的水柱。因此， 对于蒸腾着的植物，其导管中的 水柱由于蒸腾拉力的作用，承受 着一定的张力或负压，使水分连 贯地向上运输（图A）。
当叶片或枝条被切断时，木质部中的液流由于张力 解除迅速缩回木质部（图B）。
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植物组织水势的测定
（三）操作步骤
1. 取干燥洁净的试管12支，分成甲、乙两组。 2. 甲组试管中分别加0.05～0.5 6种浓度的溶液之一 各0.5ml（量准确？）。用一只移液器由低 高。 3. 乙组试管加入6种浓度的CaCl2溶液各4ml，用一 只移液器由低 高。4ml需要很准确吗？ 4. 甲、乙两组试管分别塞上相应的橡皮塞备用。 为什么盖橡皮塞？
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植物组织水势的测定
5. 选取均匀一致的植物叶片 源自 ～ 10 片（切勿用水 洗），打取叶圆片60余片，甲组试管内各加入 叶圆片10个，使叶片浸入溶液，盖上橡皮塞， 平衡 20min 以上。期间多次摇动试管，以加速 水分平衡。
6. 染色：在甲组每一试管中用解剖针放入微量甲 烯蓝粉末，摇匀，溶液变蓝。（干燥针头先用 蒸馏水湿润，加入的甲烯蓝量一定少）
溶液浓度
0.05
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
液滴移动方向
结果是否正确，为什么？
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植物组织水势的测定
溶液浓度
0.05
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
液滴移动方向
结果是否正确，为什么？
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加样器的使用
注意事项：吸取溶液后不能倒置
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植物组织水势的测定
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植物组织水势的测定
将叶片装入压力室钢筒， 叶柄切口朝外，逐渐加压， 直到导管中的液流恰好在切 口处显露时，所施加的压力 正好抵偿了完整植株导管中 的原始负压。这时所施加的 压力值（通常称为“平衡 压”）将叶片中的水势提高 到相当于开放大气中导管中 液体渗透势ψs（ sap ）的水 平（图C）。
毛细管放置稳定
挤出小液滴
取出毛细管 观察液滴升降
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植物组织水势的测定
8.分别测定不同浓度中有色液滴的升降，找 出与组织水分势相当的浓度，根据原理公 式计算出组织的水势。
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植物组织水势的测定
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植物组织水势的测定
溶液浓度
0.05
0.1
0.2
注意事项：
1. 所取材料在植株上的部位要一致，打取 叶圆片要避开主脉和伤口。 2. 取材以及打取叶圆片的过程操作要迅速， 以免失水。到实验材料生长处操作。 3. 甲烯蓝易吸附在试管壁上，先用水洗刷， 再用铬酸洗液浸泡，铬酸洗液回收，可以重复 使用。
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二、压力室法测定植物组织水势
植物组织水势 的测定
制作人：赵世杰 彭涛
农业生物学实验教学中心
植物组织水势的测定
目的要求:
1. 了解测定植物组织水势的方法及其优缺点
2. 学习用小液流法测定植物组织水势的方法 3. 了解压力室法测定植物组织水势的原理
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植物组织水势的测定
水势表示水分的化学势，象电流
由高电位处流向低电位处一样，水从水
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植物组织水势的测定
溶液渗透势的计算：
ψS=﹣iCRT
式中 ψS—溶液的渗透势，以MPa为单位； R＝0.008314MPa· L· mol﹣1· K﹣1 T—绝对温度，即273+t℃； C—溶液的质量摩尔浓度，以mol· kg －1 H2O为单位 i－溶液的等渗系数，CaCl2可用2.6。