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j酵母双杂交 ppt课件

j酵母双杂交 ppt课件
酵母双杂交
专业:微生物与生化药学 学号:21140811040 姓名:崔小清
j酵母双杂交 ppt课件 2021/3/26
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酵母双杂交系统 Yeast Two-hybrid System
酵母双杂交系统是在1989年由StanleyFields和k-kyu Song首次提出并初步建立的在酿酒酵母体内分析蛋白质与 蛋白质相互作用的系统。
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具体事例
《应用酵母双杂交筛选与 FAM172A相互作用蛋白的研究》
FAM172A蛋白的生理功能之一是参与细胞生长的调控, 与糖尿病大血管为深入研究新发现的 蛋白质 FAM172A,生物学功能及在疾病中的作用奠定基础。 FAM172A基因的过表达改 变了细胞周期的分布,促使细胞从 G1期加速向 S期过渡,最终促进了HEK293 细 胞 的 增 殖,抑 制 了 细 胞 凋 亡,因 此, FAM172A基因可以通过抑制细胞凋亡,增加细胞增 殖而促进细胞的生长。
j酵母双杂交 ppt课件 2021/3/26
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j酵母双杂交 ppt课件 2021/3/26
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1、材/OB,酵 母表达载体p GB-VectorB,PDC315-FAM172A质粒。
2、主要试剂和试剂盒 营养缺陷培养基(Leu-/Trp-、 Leu-/Trp- /His-),X-gal,Sfi Ⅰ限制性内切 酶,T4DNA连接酶, 鲑鱼精 DNA, 高保真Pfu DNA 聚合酶,DNA胶回 收试剂盒,PCR产物回收试剂盒
自建立已有153年的历史,已经逐步发展成一个较完 善的分析蛋白质与蛋白质相互作用的系统,并基于原初
的基本原理衍生了一系列类似的系统:酵母单杂交系统、
反向双杂交系统、三杂交系统,还有人预测,将来还可

酵母双杂交原理ppt演示

酵母双杂交原理ppt演示
第一个蛋白质是DNA结合域,通常来源于酵母转录因子GAL4,能够特异结合上游 激活序列;第二个蛋白质是转录激活域,能够激活转录起始复合物的形成。
当两个蛋白质之间发生相互作用时,DNA结合域和转录激活域之间的空间构象发生 变化,从而激活报告基因的表达。
酵母双杂交系统的应用领域
蛋白质相互作用研究
通过酵母双杂交系统可以检测蛋白质 之间的相互作用,为研究蛋白质的功 能和调控机制提供有力支持。
将诱饵蛋白基因克隆到表达载 体中,转化大肠杆菌进行表达。
通过亲和纯化技术,如镍柱亲 和纯化,分离纯化诱饵蛋白。
目的
• 制备钓饵蛋白,用于与诱饵蛋白进行相互作用筛 选。
目的
• 将诱饵蛋白和钓饵蛋白导入酵母细胞中, 通过相互筛选找到与诱饵蛋白相互作用的 蛋白质。
目的
• 验证筛选得到的阳性克隆是否真正与诱饵蛋白相互作用。
03 酵母双杂交系统的应用实 例
蛋白质相互作用研究
01 02
蛋白质相互作用研究
酵母双杂交系统能够用于研究蛋白质之间的相互作用,通过将两个蛋白 质分别与转录激活域和转录抑制域融合,观察它们之间的相互作用是否 会导致转录活性的变化。
验证已知相互作用
利用酵母双杂交系统可以验证已知的蛋白质相互作用,从而验证相关生 物学过程的机制。
缺点
由于酵母双杂交系统依赖于真核生物的转录调控机制,因此对于某些在酵母中 不表达或表达水平较低的蛋白质可能无法检测到相互作用。此外,酵母双杂交 实验也可能受到非特异性干扰因素的影响。
02 酵母双杂交系统的实验流 程
目的
• 制备诱饵蛋白,用于筛选与钓饵蛋白相互作用的蛋白质。
步骤
设计诱饵蛋白的基因序列,确 保其在大肠杆菌中表达,并具 有可纯化的标签。

酵母双杂交系统PPT课件

酵母双杂交系统PPT课件
• ii. GAL4存在两个结构域:N-端(1-147)具有UAS-DNA结 合域(DNA-binding domain, BD), C-端(768-881)具有转录 激活结构域(transcriptional activation domain, AD)。二个 结构域不但可在其连接区适当部位打开,仍具有各自的功 能,而且不同两结构域可重建发挥转录激活作用。单独的 DB虽然能和启动筛选相互作用的蛋白
.
8
序列分析
• 从酵母中分离质粒然后转化E. coli • 从大肠杆菌中提取质粒并测序 • 在数据库中比对所测定序列与已知蛋白的同源性
.
9
质粒构建
• 在Gal4(或其他合适的蛋白功能域)的 DNA结合域前面的多克 隆位点处插入待测基因序列构建诱饵质粒
Promoter LacZ(or HIS3) reporter gene
.
12
iii. 如果AD和BD分别与两个基因编码序列融合,且两种
蛋白质能相互发生结合,就可导致GAL1-LacZ基因
的表达。其中与AD融合的基因称之为钓饵基因,与
BD融合的基因可称之为目的基因(即建立的基因文
库)。
为了提高报告基因的表达活性,LacZ基因还可以
.
3
酵母双杂交的原理
• 利用酵母作为真核鉴定蛋白的相互作用 • 使用不同的培养基筛选阳性克隆
.
4
• 双杂交系统的两个重要元件:
• 转录激活因子: DNA结合结构域(DNA binding domain, 简称为DB)和转录激活结构域(activation domain,简称 为AD)
• 再次,双杂交鉴定过程中要经过两次转化,而且,酵母细 胞的转化效率比细菌要低约4个数量级。

酵母单、双杂交PPT

酵母单、双杂交PPT

Amp抗 评 价及 鉴定分装 及冻存诱饵质粒构建流程
目 的 基 因 合 成
载目

体的

的片

连段

接与
重 组 质 粒 纯 化
诱饵质粒 自激活 及细胞质 定位检测
自激活检测 (排除bait蛋白可 与myristlyation
signal结合)
细胞质定位检测 (用于验证Sos-bait
信号(Myr) ,加入galactose可诱导表达
Sos蛋白介导的双杂交系统原理
人类Sos蛋白和所研究的基因融合而成诱饵蛋白。靶蛋白上连有一 个十四烷基化(Myristylation)膜定位信号,它使靶蛋白锚定到细 胞膜上。诱饵和靶蛋白的相互作用使人类Sos蛋白在酵母细胞膜上定 位,从而激活Ras信号转导级联反应(cascade)。
细胞信号传导研究
通过细胞内一系列蛋白 质间的相互作用或蛋白质与 其它分子间的相互作用完成 的
5 Part
赛尔生物酵母单、双杂交技术服务
酵母单、双杂交验证实验
基因克隆的获得
及DNA测序检验
1
每个基因克隆的酵母
双杂交自激活检验
3
赛尔 生物
基因的酵母单、双杂交
2
载体构建及其DNA测序
检验
酵母细胞内的蛋白-蛋
酵母菌株标志性表型的鉴定


酵 母 菌 表 型
营养缺陷 型筛选
Trp(-)、Leu (-) 、 His (-) 、Ura (-) 不能生长,在 YPDA上可以生长
检测 回复 突变
接种于YPDA 培养基, 25℃有菌生长, 37 ℃无菌生长构建流程ds cDNA +
连接并转化 XL1-blue 感受态细菌

酵母双杂交系统技术介绍.ppt

酵母双杂交系统技术介绍.ppt
T Kiyomitsu, H Murakami… - Molecular and Cellular …, 2011 - Am Soc Microbiol
主要内容
• 酵母双杂交的背景介绍 • 酵母双杂交的基本原理 • Clontech 酵母双杂交系统 • 常见问versal Pr量 大大降低假阳性 更高的基因代表性
混合
DD
取1ml菌液按 照一定比例 用LB稀释, 150ul/板进 行涂板,过 夜培养。
在GAL4 based双杂交系统中:
GAL4 AD
Reporter Gene
基本原理: 三个启动子,四个报告基因
获得阳性克隆子
报告基因表达
AbA 抗性筛选
X-a-gal 蓝白筛选
Ade 营养筛选
His 营养筛选
M1
G1
G2
主要内容
• 酵母双杂交的背景介绍 • 酵母双杂交的基本原理 • Clontech酵母双杂交系统 • 常见问题分析
酵母单杂交-蛋白与DNA的相互作用
• Matchmaker™ Gold Yeast One-Hybrid Library Screening System (630491)
酵母双杂交-蛋白与蛋白的相互作用
• Matchmaker™ Gold Yeast Two-Hybrid System(630489) • Make your own “Mate & Plate™”library System (630490)
基本原理: 酵母双杂交参考文献
• Nature. 1989 Jul 20;340(6230):245-6.
• A novel genetic system to detect protein-protein interactions. • Fields S, Song O. • Department of Microbiology, State University of New York at Stony

《酵母双杂交自激活》课件

《酵母双杂交自激活》课件

利用酵母双杂交自激活技术揭示疾病 发生和发展过程中蛋白质相互作用机 制,为疾病诊断和治疗提供新思路。
利用酵母双杂交自激活技术检测生物 安全威胁和生物防御,为公共卫生安 全提供有力保障。
药物发现与筛选
通过酵母双杂交自激活技术筛选潜在 的药物靶点,发现新的药物候选分子 ,加速药物研发进程。
未来研究的方向与挑战
酵母双杂交自激活的实例分
03

实验材料与试剂
01 酵母菌株
用于表达不同蛋白的酵母 菌株。
03 重组蛋白
用于构建融合蛋白的蛋白

02 培养基
用于培养酵母菌株的培养
基。
04 抗体
用于检测融合蛋白的表达
和相互作用。
实验步骤与操作
构建融合蛋白
将目的蛋白与诱饵蛋白或检测蛋 白融合,构建成融合蛋白。
转化酵母细胞
实验流程
准备实验材料
选择适当的酵母菌株、质粒载体、酶、DNA 片段等。
构建融合蛋白
将目的蛋白与转录激活域或DNA结合域融合, 构建成融合蛋白表达载体。
转化酵母细胞
将融合蛋白表达载体转化入酵母细胞中。
筛选阳性克隆
通过抗生素筛选、PCR鉴定等方法筛选出成功转化 的阳性克隆。
检测报告基因表达
通过β-半乳糖苷酶活性检测、荧光素酶活性检测 等方法检测报告基因的表达水平。
THANKS
感谢观看
结果判断
根据实验结果,判断融合 蛋白之间是否存在相互作 用。
讨论
对实验结果进行深入讨论 ,分析可能的影响因素和 实验误差,提出改进措施 和未来研究方向。
酵母双杂交自激活的未来发
04
展与展望
酵母双杂交自激活技术的改进与创新

酵母双杂交酵母单杂交酵母三杂交ppt课件

酵母双杂交酵母单杂交酵母三杂交ppt课件
而来,酵母双杂交技术通过对报告基因的表型进行 检测以实现对蛋白质间相互作用的研究,而酵母单 杂交技术则通过对报告基因的表型检测,分析DNA、 蛋白之间的相互作用,以研究真核细胞内的基因表 达调控。

原理用于酵母单杂交系统的酵母GAL4蛋白即是一种典型的转录因
子。研究表明GAL4 的DNA结合结构域靠近羧基端,含有几个锌指结 构,可激活酵母半乳糖苷酶的上游激活位点(UAS);而转录激活结构 域可与RNA 聚合酶或转录因子TFIID相互作用,提高RNA 聚合酶的 活性。在这一过程中,DNA 结合结构域和转录激活结构域可完全独 立地发挥作用。 • 据此,我们可将GAL4 的DNA结合结构域置换为其他蛋白,只要 他能与我们想要了解的目的基因相互作用,就照样可以通过其转录激 活结构域激活RNA聚合酶,从而启动对下游报告基因的转录。


• •
• •
正是基于这一理论,酵的报告质粒. 首先将报告质粒整合入酵母基因组基白通过第三个融合的RNA分子相连,其一端 为含有噬菌体衣壳蛋白MS2结合位点的MS2RNA,另一端 为有待研究的RNA“X”。一旦“X”和“Y”能有相互作用就使 得这个复合物形成一个功能性的转录激活因子,从而使得 下游的LacZ基因和His3基因得以表达。LacZ基因的表达水 平能够通过在体外检测β半乳糖苷酶的活性来确定,His3基因 的表达赋予了酵母细胞在缺乏组氨酸的培养基上生存的能 力。通过缺陷培养基及β半乳糖苷酶的活性的测定就能判断 在酵母菌内是否发生了RNA“X”和蛋白质“Y”的相互作用。

3、利用酵母双杂交筛选药物的作用位点以及药物对蛋白 质之间相互作用的影响 酵母双杂交的报告基因能否表达在于诱饵蛋白与靶蛋 白之间的相互作用。对于能够引发疾病反应的蛋白互作可 以采取药物干扰的方法,阻止它们的相互作用以达到治疗 疾病的目的。例如:Dengue病毒能引起黄热病、肝炎等疾 病,研究发现它的病毒RNA复制与依赖于RNA的RNA聚合 酶(NS5)与拓扑异构酶NS3,以及细胞核转运受体BETAimportin的相互作用有关。研究人员通过酵母双杂交技术找 到了这些蛋白之间相互作用的氨基酸序列。如果能找到相 应的基因药物阻断这些蛋白之间的相互作用,就可以阻止 RNA病毒的复制,从而达到治疗这种疾病的目的。

酵母双杂交酵母单杂交酵母三杂交课件

酵母双杂交酵母单杂交酵母三杂交课件

精选可编辑ppt
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The End
Thankyou
精选可编辑ppt
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株 具有许多优点: 〈1〉 易于转化、便于回收扩增质粒。 〈2〉具有可直接进行选择的标记基因和特
征性报道基因。 〈3〉酵母的内源性蛋白不易同来源于哺乳
动物的蛋白结合
精选可编辑ppt
6
根据这个特性,将编码DNA-BD的基因与
已知蛋白质Bait protein的基因构建在同 一个表达载体上,在酵母中表达两者的
精选可编辑ppt
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4、利用酵母双杂交建立基因组蛋白连锁图
众多的蛋白质之间在许多重要的生命活动中都是彼此 协调和控制的。基因组中的编码蛋白质的基因之间存在着 功能上的联系。通过基因组的测序和序列分析发现了很多 新的基因和EST序列,HUA等人利用酵母双杂交技术,将因之间的联系,建立基因 组蛋白连锁图。对于认识一些重要的生命活动:如信号传 导、代谢途径等有重要意义
细胞起始基因转录需要有反式转录激活因子的参与反式转录激活因子结构的即这些因子往往由两个或两个以上相互独立的结构域构成其中有dnadnabindingdomainbd和activationdomainad这两个结合域将它们分开时仍分别具有功能但不能激活转录只有当被分开的两者通过适当的途径在空间上较为接近时才能重新呈现完整的转录因子活性并可激活上游激活序列upstreamactivatingsequenceuas的下游启动子使启动子下游基因得到转酵母双杂交酵母双杂交系统的另一个重要的元件报道株指经改造的含报道基因reportergene的重组质粒的宿主细胞

据此,我们可将GAL4 的DNA结合结构域置换为其他蛋白,只要
他能与我们想要了解的目的基因相互作用,就照样可以通过其转录激

酵母各种杂交课件PPT

酵母各种杂交课件PPT

DNA结合结构域(BD)
转录激活因子
(DNA binding domain) 转录激活结构域(AD)
(activation domain)
BD:识别DNA上特定序列,转录激活域定位调控 基因的上游。 AD:与转录复合体其他成分作用,从而启动所调节基因的转录。
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两个结构域分开时仍具有功能,但不能激活转录,只有他 们以适当 途径在空间上相互靠近时,才能具有转录因子活性, 激活报告基因的表达。 酵母双杂交系统利用杂交基因通过激活报告基因的表达,探 测蛋白-蛋白的相互作用。
蛋白B基因按正确阅读框 克隆到GAL4的AD片断 之后。
筛选标志:LEU2
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2. 两种重组质粒共同转化酵母菌(HF7c) 3.筛选观察
(1)双载体转化能合 成亮氨酸和色氨酸。
TrpLeu-
(2)筛选蛋白A和蛋 白B能相互作用的双载 体转化子。
HisTrpLeu-
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酵母双杂交步骤
1、构建质粒(诱饵蛋白不发生自激活) 2、转化酵母细胞(本身不表达GAL4) 3、阳性筛选
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1.(1)BD-plasmid
靶基因(蛋白A基因)按正确的读码 结构和取向克隆在GAL4的BD之后。
筛选标志:TRP
(2)AD-plasmid
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应用举例
《应用酵母双杂交筛选与 FAM172A相互作用蛋白的研究》
实验步骤: (1)诱饵质粒构建: ①扩增诱饵蛋白基因 ②与质粒载体连接 ③重组载体鉴定 ④诱饵蛋白自我转录激活检测:将诱饵质粒转入酵母菌株, 若转化了诱饵质粒的酵母菌落表达β-半乳糖苷酶,则可使 底物X-Gal 变蓝,说明存在自激活(假阳性),否则无自 激活。
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C
Interaction between the bait and library proteins in vivo a activates transcription of
The reporter gene.
构建诱饵蛋白质粒(BD质粒)
↓ 检查BD质粒单独是否能激活报告基因转录(如果不能,继续)
天然Gal4分子由一条多肽链组成,含881个氨基酸。它有 两个结构域:DNA结合域(DNA-binding domain, DB),由位 于N-末端的1~147个氨基酸构成,能够识别位于 Gal1 基因的 上游激活序列(upstream activating sequence,UAS),此外, 在其N-端还具有一段核定位序列;转录激活域(DNAactivating, AD),由位于C-末端的768~881位氨基酸构成。当 Gal4的两个结构域位于不同肽链上,只要它们在空间上充分 接近,则能够恢复Gal4作为转录因子的活性。
Fields等以与调控SUC2基因有关的两个蛋白质Snf1和Snf2为 模型设计了一个新的检测蛋白-蛋白相互作用的系统。
将Snf1与DB融合,Snf4与AD融合,构建在穿梭质粒上。其 中,Snf1是一种依赖于丝氨酸、苏氨酸的蛋白激酶,Snf4是它的 一个结合蛋白。研究者将两种穿梭质粒转化酵母GGY:171菌株, 该菌株含有LacZ报告基因,并已去除相应转录因子基因。
transcription; b. hybrids containing either DB(upper)or AD(lower)are incapable of inducing transcription; c. a protein-protein interaction between proteins X and Y brings the Gal4 domains into closes proximity
↓ AD质粒转化带有BD质粒的酵母菌,再次验证其相互作用
↓ 阳性AD质粒测序,按在酵母中读框方式进行蛋白同源性查询
↙ 如果找到候选蛋白,克隆其
↘ 如果找不到候选蛋白,有可能
全基因,采用GST融合表达 技术和体外翻译技术在蛋白
是新基因,可进一步分析,设 计引物,克隆全基因并进一步验证
↓ 基因,铺 SD/四缺平板
↓ 挑his+、ade+双阳性克隆作β-galactosidase分析,消除假阳性
பைடு நூலகம்
↓ β-gal分析阳性质粒在SD/四缺平板与摇管中传代,去除无效AD质粒
↓ 传代阳性酵母质粒分离,转化大肠杆菌,获得大量阳性AD质粒
↓ 检查AD质粒单独是否能激活报告基因转录(如果不能,继续)
and results in transcriptional activity
双杂交系统是由Fields和Song于1989年提出的[1]。它的建立是基于对真核 生物掉空转录起始过程的认识,细胞起始基因转录需要有反式转录激活因子 的参与。
转录激活因子,例如酵母转录因子Gal4,在结构上是组件式的(modular), 往往由两个或两个以上结构上可以分开、功能上相互独立的结构域(domain) 构成。其中有DNA结合结构域(DNA bonding domain, DNA-BD)和转录激活 结构域(activation domain, DNA-AD〉。这两个结合域将它们分开时仍分别具 有功能,但是不能激活转录,只有当两者通过适当的途径在空间上较为接近 时,才呈现完整的转录因子活性,并可激活上游激活序列(uostream activating sequence, UAS)的下游启动子,使启动子下作原理示意图 Fig.1 Model of transcriptional activation by reconstitution of Gal4 activity
a. 天然Gal4蛋白具有DNA结合域和转录激活域,诱导Gal1-LacZ转录; b. 只有DNA结合域(上)或转录激活域(下)的杂合蛋白不能激活报告基因的转录; c. 蛋白X和Y之间的相互作用使Gal4的两个结构域接近导致报告基因的转录 a. the native Gal4 protein contains both DNA-binding and activating regions and induces Gal1-LacZ
]酵母双杂交
传统的检测蛋白质相互作用的方法
1. 蛋白质亲和层析
2.
(protein affinity chromatography)
2. 亲和印迹(affinity blotting)
3. 免疫沉淀(immunoprecipitation)
反映的只是蛋白的体外相互作用
2
蛋白质的相互作用是生命活动的基础,一切生命活动 几乎都是通过蛋白质之间的相互作用而实现的。在生 物体发育的不同阶段,细胞分裂、分化的不同时期, 都离不开蛋白质间的相互作用。近年,随着分子生物 学技术的发展,人们对基因的结构和功能的认识不断 加深,尤其是基因组研究的飞速进展,为揭示生命的 奥秘提供了条件。然而,只凭借基因序列很难认识蛋 白质的功能及在整个细胞中所处的位置和作用。由于 蛋白质相互作用的复杂性,使得这方面的研究工作进 展缓慢。最近兴起的双杂交系统为研究蛋白质的相互 作用提供了一套崭新的方法。
酵母双杂交系统的基本原理
The DNA-BD/protein X (bait) hybrid binds to the GAL1 UAS but cannot activate
A
transcription without the activation domain (AD).
B In the absence of bait protein, the AD/library fusion protein cannot bind to the GAL 4 UAS and thus does not activate transcription.
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