常见标本采集方法和注意事项课件

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检验标本的采集及运送ppt课件

检验标本的采集及运送ppt课件

4、检验人员:必须等收到临床医生书面或电子打印的检验申请单
时,才可接收标本进行检验。
5、检验申请单及检验结果记录:保存2年。
5/22/2024
4
四、标本采集方法:
收取检验申请单——审核合格后,检查真空管标识和检验 申请单一致——做好患者准备工作——找好采血静脉并消毒—— 采集致标本容器——送至检验科。
2:血液标本的运送应由患者(除血交叉标本外) 或临床卫生员运送。运送过程中必须保证安全, 防止容器破裂、遗漏等现象。
5/22/2024
3
三、检验的申请:
1、临床医生:应完整填写申请单各项内容,字迹必须清楚,包
括患者姓名、性别、年龄、科别、床号、病案号、住院号、申请序
号、标本类型、临床诊断、采集标本日期和时间、申请检查的实验
3.5 溶血标本拒收 3.6 血糖标本 3.6.1 要注意:患者的饮食,高糖饮食、剧烈运动、情
绪激动等,都会引起血糖生理性增高。 血清管抽血后,尽快送检验科检测,因为葡萄糖
在空气中,在血细胞的作用下,很容易孝解。 全血标本室温放置1小时,血糖值下降。3-6% 全血标本室温放置4小时,血糖值下降。10-30%

阻断葡萄糖的分解
5/22/2024
2
二、采集血液标本的职责:
1:住院病人血液由临床医护人员采集。临床医 护人员必须明确告知病人标本采集前的准备条 件,要求及注意事项(如禁食、禁水、特殊标 本采集前的准备等);医护人员有义雾向患者 解释标本采集中的各种问题,标本采集的类型、 血量、保存条件、注意事项、生物参考区间、 临床意义等,指导患者进行正确的准备。
介绍
检验标本的采集及运送是保证检验结果 准确与否首要的、重要环节。包括适当的患 者准备、检验申请,适当的标本收集、标记、 保存、运送和处理。

《标本采集注意事项》课件

《标本采集注意事项》课件
《标本采集注意事项》 ppt课件
CATALOGUE
目 录
• 采集前的准备 • 采集过程中的注意事项 • 采集后的处理与保存 • 特殊情况的处理 • 总结与展望
01
CATALOGUE
采集前的准备
了解采集目的
01
明确采集的目的和用途,是为了 科学研究、教学演示还是其他用 途。
02
确保采集行为符合法律法规和伦 理规范,不侵犯他人权益。
02
加强对采集过程中的伦理和法律问题的研究和探讨,提高相关
人员的意识和素养。
完善伦理审查和法律保障机制,确保采集工作的合法性和伦理
03
性。
THANKS
感谢观看
急救措施
对于一些突发的严重意外 ,应立即进行急救,并尽 快将患者送往医疗机构救 治。
记录与调查
对意外情况进行详细记录 ,并开展调查,以便总结 经验教训,防止类似事件 再次发生。
采集对象的特殊要求
特殊人群
对于一些特殊人群,如老年人、儿童 、孕妇、身体虚弱者等,采集时应特 别注意其身体状况和需求。
采集过程中的注意事项
正确保存
根据不同标本的特性,选择适当 的保存方式,如冷藏、冷冻或干 燥等,以确保标本的有效性和安 全性。
定期检查标本质量
定期检查
为了确保标本的有效性,应定期对标 本进行检查,观察其是否发生变质或 受到污染。
记录与报告
对检查结果进行记录,并及时向上级 报告,以便及时采取措施解决问题。
确保标本的保密性和安全性
采集时应尽量保持标本的完整性和原始状态,避免对标本造 成不必要的损坏或改变。
对于具有特殊意义的标本,应采取特殊的保护措施,如使用 保护罩或进行特殊处理,以确保其完整性。

常见标本采集方法及注意事项课件

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护士应了解各种检验的目的,掌握真正的采集方 法。
严格执行查对制度,认真核对医嘱。 严格执行无菌技术原则及标准预防措施。
操作方法:
、真空采血法 根据标本类型选择合适的真空采血 管,按无菌技术操作规程进行穿刺,见回血后, 按顺序依次插真空采血管。同时抽取几项血标本 时:血培养瓶抗凝管干燥试管。
、注射器直接穿刺采血法 根据采集血标本的种类准 确计算采血量,选择合适的注射器,按无菌技术操 作规程进行穿刺。采集完成后,取下注射器针头, 根据不同标本所需血量,分别将血标本沿管壁缓慢 注入相应的容器内,轻轻混匀,勿用力振荡。
过冷过热的气候等。
()选择性蛋白尿指数 ()
参考值:正常情况:<表示选择性好 ~表示选择性一般 >表示选择性差。
临床意义:当尿中排出大分子的量少时,表示选择性好。相反,表示选
择性差。
()β 微球蛋白清除试验
参考值:正常情况:~μ
临床意义: 增高:肾小管损害。本试验是了解肾小管损害程度的可靠指
标,特别有助于发现轻型患者。
操作方法:
、患者取卧位或坐位,暴露穿刺部位(成人常选择 桡动脉或股动脉,新生儿宜选择桡动脉)
、宜选用血气专用注射器采集标本。若使用常规注 射器,应在穿刺前抽取肝素钠转动注射器针栓使注 射器内均匀附着肝素钠,针尖向上推出多余液体和 注射器内残留的气泡。
、选择并消毒患者穿刺部位和操作者的食中指,以 两指固定动脉搏动最明显处,持注射器在两指间垂 直或与动脉走向呈度角刺入动脉。
()、总胆固醇()及胆固醇酯():可了解肝病时 脂质代谢障碍情况,阻塞性黄疸时可增加,脂 肪肝时也可能增加,如严重肝脏损害,总胆固 醇和胆固醇酯均可下降。
()、谷丙转氨酶():参考值为小于单位, 是诊断肝细胞实质损害的主要项目,其高低往 往与病情轻重相平行。在急性肝炎及慢性肝炎 与肝硬化活动,均可升高。但缺乏特异性,许 多肝疾和肝外疾患均可升高,另外,活性变化

标本采集法及注意事项ppt课件

标本采集法及注意事项ppt课件

24小时痰标本:
嘱其将晨7时至次日7时的痰液全部留在容 器中送验,不可将漱口水、唾液、鼻涕等 混入。
咽拭子培养标本采集法
用物 : 无菌咽拭子培养管,无菌生理盐水, 压舌板。
操作方法 :备齐用物,贴好标签,向病人说 明目的及配合方法,以取得合作。将拭子取出 蘸无菌生理盐水(必要时以压舌板轻压舌部) ,嘱病人发“啊”音,以轻快的动作,迅速擦 拭两侧腭弓及咽、扁桃体的分泌物后,将拭子 插入试管中塞紧,并立即送验。取真菌培养标 本,须在口腔溃疡面上采取分泌物
3、如作尿肌酸、肌酐、17-羟类固醇、17 -酮类固醇、钾、钠、尿糖定量检查。可 测定24小时尿总量,记录于检验单上,取 出其中100ml尿液送验,其余弃去。如浓缩 检查结核杆菌或作尿蛋白定量检查,则将 24小时全部尿液送验。
尿液标本采集注意事项
——女性者月经期间不宜留取尿标本 ——做早孕检查应留晨尿 ——留取尿培养标本时,无菌操作 ——留取12h或24h尿标本,采集瓶应放在 阴凉处,根据检验要求加防腐剂。
2、留置导尿管的患者留取尿标本 时,先放空尿袋中的尿,夹闭尿管,
留12小时或24小时尿标本
用物:备清洁带盖的广口容器(容量为 3000-5000ml),防腐剂。 方法:1、24小时尿标本:嘱患者于清晨7 时排空膀胱,弃去尿液,记录开始留尿时 间,至次晨7时排尽最后一次尿于容器中, 即24小时尿液全部送验。 2、12小时尿标本:应从19时开始至次晨7 时止。
大便标本采集注意事项
1、采集标本时,如患者无表意,用长棉签 蘸生理盐水,由肛门插入6-7cm,顺一个方 向轻轻旋转后取出,将棉签插入培养试管 内,盖紧送检。 2、病人服用驱虫药或做血吸虫孵化实验, 应留取全部粪便送检。
嘱病人晨起用痰清水标漱本口清采洁集口腔,然后深呼吸

2024版标本采集PPT课件

2024版标本采集PPT课件

定期对质量管理体系进行内部审 核和外部评审,确保其有效性。
加强人员培训与考核
对标本采集人员进行专业培训, 包括理论知识、操作技能、安全
防护等方面。
定期对标本采集人员进行考核, 评估其操作技能水平和理论知识
掌握程度。
建立奖惩机制,对表现优秀的标 本采集人员给予表彰和奖励,对 操作不规范或造成质量问题的进
穿刺与采血
穿刺静脉,使血液自然流入采 血管。
止血与后处理
用无菌棉球按压穿刺点止血, 嘱患者保持穿刺部位干燥、清
洁。
尿液标本采集
01
02
03
采集前准备
核对患者信息,指导患者 正确留取尿液。
采集方法
留取清晨第一次尿或随机 尿,避免污染。
标本保存与运输
及时送检,避免光照和高 温。
粪便标本采集
采集前准备
保持低温环境
01
对于需要低温保存的标本,要确保在运输过程中维持适当的低
温环境,防止标本变质。
避免剧烈震动
02
在运输过程中要避免剧烈震动和碰撞,以免对标本造成损坏。
防止污染和泄漏
03
要确保容器密封性良好,防止标本在运输过程中发生泄漏或污
染。
到达后接收与登记流程
接收核对
在接收标本时,要仔细核对标本信息、容器完整性以及运输文件 等,确保无误。
生殖道分泌物标本采集
根据不同部位选择合适的采集方法,注意无 菌操作。
04
标本处理与保存
标本处理流程
接收标本
核对患者信息、标本类型及数量, 确保准确无误。
标本前处理
根据检测项目要求,对标本进行 离心、分离血清或血浆等处理。
标本检测
按照实验室标准操作程序进行标 本检测,确保结果准确可靠。

常见标本的采集及注意事项 课件

常见标本的采集及注意事项 课件
? 3 多发性骨髓瘤病人,血浆中出现大量异常球蛋白,血 沉加快非常显著,血沉可作为重要诊断指标之一
2020/4/16
? C反应蛋白 ? 在感染 、心脑血管性疾病、 糖尿病 、代谢综合征 、外周
血管病 、慢性阻塞性肺病、哮喘、 肿瘤等多种疾病中用 于指导临床诊疗。 ? ATM ? 新的肿瘤标记物。
2020/4/16
? 如:血常规,糖化血红蛋白,定血型,交叉配血。
? 注:输血病人必须有定血型,交叉配血。且临时医嘱单签 字时不能签同一时间。
? 蓝头管:内含浓度为3.2%的枸橼酸钠抗凝剂,标本为血浆。 用于血液凝固实验,凝血因子的检测实验。需准确采集 2ML血液。
? 如:凝血功能,D2聚体 ? 黑头管:内含浓度为3.8%的枸橼酸钠抗凝剂,制备标本为
(2)取肱动脉血时,病人平卧或斜坡卧位,上肢伸直略外展,手心朝上, 肘关节下可垫一软枕,使病人舒适伸直,穿刺点在肱二头肌内侧沟肱 动脉搏动明显处。
(3)取股动脉血时,病人取平卧位,伸直略外展,股动脉搏动点一般在 耻骨结节和髂前上棘连线的中点,以搏动明显处为穿刺点。
(4)足背动脉的搏动点最明显处一般在足背,内、外踝连线的中点。
? 血淀粉酶
? 过高提示胰腺有损伤。急性胰腺炎在起病后 6-12小时血淀 粉酶升高 48小时达到高峰 持续3-5天,大于300u/L 具有 诊断胰腺炎的意义。
? 心衰因子 NT-PROBNP
? 年龄
NTቤተ መጻሕፍቲ ባይዱPROBNP
? < 50
<300
300-450
>450
? 50-75
<300
300-900
>900
全血。用于红细胞沉降率实验。 ? 如:血沉 ? 采血管颠倒 5~8次为标准操作,动作应迅速而轻柔。用力

常见标本的采集及注意事项ppt课件

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动脉血标本采集法
【目的】常用于作血液气体分析。 【用物】注射盘内备无菌2ml或5ml 一次性注射器、
肝素、无菌纱布、无菌软木塞。必要时备无菌手套 【部位】
①桡动脉 穿刺点位于前臂掌侧腕关节上2cm,动 脉搏动明显处。 ②股动脉 穿刺点见股静脉定位法。
动脉血标本采集法
❖ [步骤] 1.查对医嘱,携用物至病人床旁。 2. 选择穿刺部位。 3. 抽取肝素液湿润整个注射器。 4 .常规消毒。 5. 找准穿刺点,进针见鲜血入针芯,利用动脉压力自
血清 全血 血浆 全血 血浆
3.5—5.0ml 2.0--5.0ml 1.8--2.7ml 1.8--2.4ml 3.0—5.0ml
操作方法:
1.查对医嘱,贴标签于标本容器上,携用物至 病人床旁。
2.床旁核对,解释采血的目的和配合方法。 3.选择静脉,采血。 4.整理用物,及时送检。
❖ 2.注射器抽血
12小时或24小时尿标本的采集
[目的] 作各种尿生化的检查。 [用物] 容量3000~5000毫升的清洁带盖广口瓶、防腐剂。 [方法] 7am—次日7am 7pm—次日7am [注意] 集尿瓶应放于阴凉处,并根据检验要求加入防腐剂,
及时送检。
尿培养标本的收集
[目的]
取未被污染的尿液标本作细菌学检查。
注意: 1、采样时 2、及时送检 3、无法咳痰或不合作的病人,
叩击背部、使用集痰器
❖ 痰培养标本
❖ 时间:清晨醒来未进食前 ❖ 方法:先漱口(漱口先用漱口溶液、再用清水)—
数次深呼吸—用力咳、盛于痰盒内—送检
※ 严格无菌操作
❖ 24小时痰标本
在集痰器里加少量清水 从清晨醒来未进食前漱口后第一口痰 至次日晨未进食前

《标本采集方法》课件

《标本采集方法》课件

通过按摩前列腺采集前列腺液,用于诊断 前列腺炎等疾病。
精液采集
宫颈刮片
通过手淫或性交后采集精液,用于生育能 力评估或遗传学检查。
通过刮取宫颈上皮细胞样本进行细胞学检 查,用于宫颈癌筛查。
03
特殊标本采集方法
脑脊液采集
腰椎穿刺采集
患者需侧卧,屈膝抱头,选择腰 椎第3-4间隙或第4-5间隙作为穿 刺点,局部麻醉后用穿刺针刺入
采集原则
01
02
03
无菌操作
采集过程中应遵循无菌原 则,确保样本不被污染。
标准化采集
采集方法、流程应标准化 ,以确保样本的一致性和 可比性。
保护被采集者隐私
采集过程中应保护被采集 者的隐私,遵循伦理和法 律规定。
采集流程
采集前准备
确定采集目的、采集对 象、采集部位及采集量 ,准备好必要的设备和
器材。
04
标本采集注意事项
采集前准备
明确采集目的
了解采集的目的和要求,确保采集的标 本能够满足实验或检测的需要。
准备采集工具
根据采集对象和采集目的,准备合适 的采集工具,如容器、剪刀、镊子等

了解采集对象
对采集对象进行了解,包括其生物学 特性、生活习性等,以便选择合适的 采集方法。
选择采集时间和地点
根据采集对象的生物学特性,选择最 佳的采集时间和地点,确保采集到的 标本具有代表性。
采集过程中需严格无菌操作,避免感染,同时确保骨髓液量充足,满 足检验需求。
生殖道分泌物标本采集
需注意采集部位的特异性,如阴道分泌物和前列腺液等,需按照规定 方法留取,避免污染和混淆。
THANKS
感谢观看
采集后处理与保存
及时处理标本

各种标本采集检测与注意事项ppt课件

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*留尿过程中将盛尿容器置 阴凉处,并根据检验要求加 入防腐剂.
12
二.尿标本采集法
名称
甲醛 浓盐酸
甲苯
常用防腐剂的作用及用法
作用
用法
固定尿中有机成 24小时尿中加
分,
40%甲醛1m
防腐
l~2ml
防止尿中激素被 24小时尿液中
氧化,
加5ml~10
防腐
ml
举例
爱迪计数
17-羟类固醇 17-酮类固醇
保持尿液的化学 成分不变
防腐
每100ml尿 尿蛋白定量,尿
中加0.5%~ 糖定量
1%甲苯2ml, K.Na.Cl
应在第一次尿液 肌酐.肌酸的定
倒入后再加
量检查
13
二.尿标本采集法
3.尿培养标本 取未污染的尿液做细菌
学检查 采集方法:导尿术和留
取中段尿法(嘱病人自 行排尿,弃去前段,用 试管夹夹住无菌试管, 接取中断尿约5ml, 盖紧塞子,贴标签,标 标签,及时送验)
17
三.粪便标本采集
4.培养标本: 检查粪便中的致病菌 (1).用物:粪便培养管或
无菌蜡纸盒,无菌棉签 (2).操作步骤: 向病人解释目的,嘱病人排便
于盆中,用无菌棉签取带脓血 或黏液的粪便少许,置培养管 或无菌蜡纸盒中,立即送检. 如病人无便意时,用长棉签蘸 无菌生理盐水,由肛门插入约 6cm~7cm,顺一方向轻 轻旋转并退出棉签,置于无菌 培养管中送验.
清洁玻璃瓶 (2)操作步骤: 核对无误,向病人解释目的,以取得
合作. 嘱病人将晨起第一次尿约100ml
留于清洁玻璃瓶内,因晨尿浓度较高, 未受饮食影响,故检验较准确. *尿潴留或昏迷病人可通过导尿术留 取标本. *女病人在经期不宜留取尿标本

标本采集及注意事项PPT课件

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针头? ◆ ——无需更换,对提升阳性率无统计差异,增加了针刺伤的几率
20
血培养标本采集注意事项
◆ 1.严格无菌操作,避免污染。 ◆ 2.不应从留置静脉或动脉导管处抽血,
因为导管易被固有菌群污染。 ◆ 3.采血量及采血间隔 成人8~10ml,婴幼
儿1~3ml。两部位采血时间小于5min。 ◆ 4、根据是否使用过抗生素,准备合适
22
痰标本采集注意事项
◆ 1、除24小时痰标本外,痰液收集时间宜选 择在清晨。
◆ 2、查痰培养及肿瘤细胞标本应立即送检。 ◆ 3、避免在进食后两小时内留取咽拭子标本,
以防呕吐,棉签不要触及其它部位以免影响检验 结果。
23
二、采集指征
痰液标本是临床微生物学检验最常见的标本。 有下列体征之一,应进行痰培养: 1、咳嗽:咳嗽咳痰是下呼吸道感染最常见的 症状。 2、咳血:包括泡沫血痰、鲜血和痰中带血等 3、呼吸困难:呼吸急促或哮喘,常伴有胸痛 4、发热伴白细胞增高尤其是中性粒细胞或 CRP明显增高 5、胸部影像学检查提示有感染可能。
◆ 2、明确检验项目、检验目的及注意事项 标本的容器贴好标签,附上化验单,包
括:患者的姓名、科室、床号、住院号、送 检目的、送检日期和时间等。每次采集血标 本时应做到“三个一”:一患者、一化验单、一 容器。
4
一、血液标本采集
◆ 3、标本采集的时间 空腹标本:一般指空腹8-10小时后采集的
标本。清晨空腹血液标本常用于临床生化定 量测定,受饮食、体力活动、生理活动等的 影响较小,易于发现和观察病理情况,而且 重复性较好。尽可能在上午9点前空腹,空腹 过久也会影响检验结果。
采集血标本。先抽取抗凝管,再抽取干燥管。只 能轻柔上下摇匀,不能剧烈左右震荡,防止溶血。 ◆ 4、采血时尽可能缩短止血带的结扎时间。 ◆ 5、标本采集后尽快送检,送检过程中避免过度震 荡。

标本采集方法PPT课件

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血交叉受血者血标本超过二十四小时后要重新采血
检验标本采集
常用的采血管
黄 色:临床生化 临床免疫
淡蓝色:凝血检查
紫 色:血常规 糖化血红蛋白 血型
绿 色:微量元素 血流变
黑 色:血沉
长紫色: 血交叉
各种血液标本的采集量
• 常规管(紫色) 1.5-2ml • 生化管(红色) 3-5ml • 凝血管(蓝色) 2ml • 血沉(黑色) 至刻度 • 微量元素(绿色) 5ml
标本的运送
避免振摇样品管,溶血的危险。 尽量使标本或样品管处于直立状态。 标记为传染物,必须作特殊处理。 避免光线的影响。光使胆红素、维生素C、卟啉、肌酸
• 压脉带使用时间延长:导致血液分析物浓度改变。为避免 血液浓缩或血液稀释,可让患者休息15~20min后采血。
• 病人握拳:但不能反复握/放,因为前臂肌肉快速运动,肌细 胞去极化,细胞内阴离子外溢,导致K+外流,血K+增高。
静脉采血基本要求
转入容器:拔去针头,将血液沿管壁徐徐注入标 本容器,避免泡沫产生或溶血。
3-羟基丁酸

饿


乙酰乙酸




游离脂肪酸
丙酮酸、乳酸
甘油
胰胰高岛血素糖素
取血时体位的影响
体位(站立、坐位、卧位)改变。建议取 血时以坐位5min后取血为宜。如TP、 Alb、ALP、铁、Chol、TG,部份酶等, 在站立时会增加5%以上。
某些激素变化更明显,从仰卧改为站立, 含量在数分钟内增加数倍。
n结核分枝杆菌集菌检查:留取24小时尿液,取沉淀部 分送检。
粪便检验标本采集
• 病人要求:检查粪便隐血,患者收集标本前3日禁食肉 类、肝、血等动物性食物和大量绿色蔬菜,禁食维生 素 C和含铁剂药物,以免干扰化学法潜血试验。

临床检验标本正确采集课件

临床检验标本正确采集课件
(4) 采血的体位:体位改变可引起一系列的生理变化,使血液中的许多指标发生改变。采取直立位采血,其二标本的测定值比卧位高5 %~15 %。因此,采血时要注意保持正确的体位(坐位或卧位),以及体位的一致性。
(5) 很多生化成分受膳食影响,因此,采血前要确认病人是否空腹。
(4) 采血的体位:体位改变可引起一系列的生理变化,使血液中
根据检验目的,常用如下尿标本。10
(二) 尿液采集注意事项 1.应用清洁、有盖、干燥、最好为一次性容器,防止日照与污染。2.采集尿液量:尿常规与一般定性检查留取尿液约10-20ml。3.尿标本要新鲜,留取后立即送检。放置4h以上尿中成分可发生变化,如红细胞、白细胞溶解等。4.尿标本要防止月经血、白带、精液、前列腺液、粪便、烟灰等异物混入。为此应避免月经期验尿。女性患者先要清洁外阴部,用0.1%苯扎溴铵溶液浸过的棉球擦洗外阴部并消毒尿道口。一般检查留取晨起第一次清洁中段尿,作细菌培养者应先做尿道口局部消毒处理并注意无菌操作。5.尿胆原等化学物质因光分解或氧化,需要避光。
1、红细胞计数(RBC)
[
血常规各指标参考范围及临床意义
1、红细胞计数(RBC)
(5)单核细胞(M): 正常参考值:0.03~0.08(3%~8%)【0.01】 临床意义: 增多:亚急性细菌性心内膜炎、急性感染的恢复期、单核细胞性白血病。 减少:临床意义不大。 (6)、血小板计数(PLT) 正常参考值:(100~300)×109/L((100~300)×10【1.0】 临床意义: 减少:原发性或继发性血小板减少性紫癜如弥漫性血管内凝血、血栓性血小板减少性紫癜、再障、急性白血病、伤寒、脾功能亢进及进行体外循环时、化学药物中毒。 增高:某些化疗药物或放疗可引起血小板减少。其他的疾病引起则较少见,有特发性血小板增多症、脾切除术后。
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二、血培养标本采集
操作方法: 1、注射器直接穿刺采血法(同血标本采集) 2、经血管通路静脉采血法(同血标本采集) 3、经外周穿刺的中心静脉导管(PICC)取
血法:取一只注射器抽生理盐水20ml备用, 另备两只注射器。取下肝素帽,连接一支空 注射器,抽出5ml血液弃去。另接一支注射 器抽取足量血标本,然后以20ml生理盐水 脉冲式冲洗导管,消毒导管接口,清除残留 血迹。连接肝素帽或三通管。
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各种标本采集的原则
护士应了解各种检验的目的,掌握真正的采集方 法。
严格执行查对制度,认真核对医嘱。 严格执行无菌技术原则及标准预防措施。
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一、血标本采集
5、轻轻转动注射器,使血液与抗凝剂充分混匀, 以防止凝血。动脉血颜色鲜红,静脉血颜色暗红。
6、经动脉测压管采血法:先用注射器抽出冲洗用 肝素盐水并丢弃,缓缓抽出约5ml血液,换2ml肝 素化的注射器抽取标本1ml。
7、注明患者的体温、吸氧浓度或呼吸机参数,立 即送检。
文档仅供参考,不能作为科学依据,请勿模仿;如有不当之处,请联系本人改正。
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一、血标本采集
注意事项: 1、在安静状态下采集血标本。 2、若患者正在进行输液治疗,应从非输液侧肢体采
集。 3、同时采集多种血标本时,根据采集管要求依次采
集血标本。先抗凝管再干燥管,只能轻柔上下摇 匀,不能剧烈左右震荡,防止溶血。 4、采血时尽可能缩短止血带的结扎时间。 5、标本采集后尽快送检,送检过程中避免过度振荡。
检验结果分析
1.血常规各指标参考范围及临床意义
(1). 血红蛋白(HB) 正常参考值: 男:120~160g/L(12.0~16.0g/dl)【10】 女:110~150g/L(11.0~15.0g/dl【10】 临床意义: 增高:有生理性或病理性,在肺癌病人中较少见。 减低:可反映贫血的程度。病人的营养状况不佳、手术后失血过多、化疗
三、血气分析标本采集
注意事项: 洗澡、运动后,应休息30分钟再采血。 标本应隔绝空气,避免混入气泡或静脉血。刺入
橡胶塞时防止针头刺穿,斜面暴露于空气中。 凝血功能障碍者穿刺后应延长按压时间至少10分
钟。 采集标本后30min内送检。
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3、选择并消毒患者穿刺部位和操作者的食中指,以 两指固定动脉搏动最明显处,持注射器在两指间垂 直或与动脉走向呈40度角刺入动脉。
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三、血气分析标本采集
4、拔针后立即将针头斜面刺入橡皮塞或专用凝胶针 帽,压迫穿刺点5-10min。
二、血培养标本采集
5、血标本注入厌氧菌培养瓶时,注意勿将注 射器中的空气注入瓶内,一般情况下先注入 厌氧菌培养瓶,后注入需氧菌培养瓶。
6、血标本接种到培养瓶后,轻轻颠倒混匀以 防血液凝固。立即送检,切勿冷藏!
7、两次血培养标本采集时间至少间隔1小时。 8、经外周穿刺的中心静脉导管采取血培养标
本时,每次至少采集2套血培养,其中一套 从独立外周静脉采集,另外一套则从导管采 集。2套血培养的采血时间必须接近(小于 等于)5分钟,并作标记。
操作方法: 1、真空采血法 根据标本类型选择合适的真空采血
管,按无菌技术操作规程进行穿刺,见回血后, 按顺序依次插真空采血管。同时抽取几项血标本 时:血培养瓶-抗凝管-干燥试管。
2、注射器直接穿刺采血法 根据采集血标本的种类 准确计算采血量,选择合适的注射器,按无菌技术 操作规程进行穿刺。采集完成后,取下注射器针头, 根据不同标本所需血量,分别将血标本沿管壁缓慢 注入相应的容器内,轻轻混匀,勿用力振荡。
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三、血气分析标本采集
操作方法: 1、患者取卧位或坐位,暴露穿刺部位(成人常选择
桡动脉或股动脉,新生儿宜选择桡动脉)
2、宜选用血气专用注射器采集标本。若使用常规注 射器,应在穿刺前抽取肝素钠转动注射器针栓使注 射器内均匀附着肝素钠,针尖向上推出多余液体和 注射器内残留的气泡。
二、血培养标本采集
注意事项: 1、血培养应在室温下避光保存。 2、根据是否使用过抗生素,准备合适的需氧瓶和厌
氧瓶。 3、间歇性寒战患者应在寒战前或体温高峰前取血;
当预测寒战或高热时间有困难时,应在寒战或发 热时尽快采集血培养标本。 4、已使用过抗生素的患者,应在下次使用抗生素前 采集血培养标本。
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二、血培养标本采集
4、成人每次采集10-20ml,婴儿和儿童1-5ml。
5、用75%乙醇消毒培养瓶瓶塞,待干,将血标本注 入血培养瓶,迅速轻摇,混合均匀。
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后等均可出现 (2). 红细胞计数(RBC) 正常参考值: 男:(4.0~5.5)×1012L(400~550万/mm【0.01】 女:(3.5~5.0)×1012L(350~500万/mm【0.01】 临床意义:诊断各种贫血及红细胞增多症。 增高:真性红细胞增多症、肺心病、肺气肿、高原缺氧等。 减低:手术后失血过多、化放疗疗引起的红细胞减少、其他情况引起的贫
血、血液稀释后等。
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检验结果分析
(3). 白细胞计数(WBC) 正常参考值:(4~10)×109/L(4000~10000/mm【0.001】 临床意义: 增高:急性感染、严重组织损伤、大出血、中毒、恶性肿瘤及白血病等。 降低:这是化疗病人最常见的副作用。另外,某些感染、血液病、自身免疫 性疾病、脾功能亢进、再生障碍性贫血等也可出现
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