《临床检验标本采集》PPT课件
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• 第一管：病理、微生物学检查 • 第二管：肝素抗凝作化学、细胞学检查 • 第三管：干燥试管作一般性状、凝固性检查
2020/11/10
.
26
• 脑脊液 • 胃液 • 引流液
其他体液
2020/11/10
.
27
微生物学标本采集
• 血培养、痰培养、尿培养、鼻咽拭子、穿刺液、
分泌物、导管
2020/11/10
• 随机尿
晨尿在膀胱停留时间长，偏酸，不利 于检出酸性环境易变的物质（葡萄 糖、盐酸）
建议采集第二次晨尿代替首次晨尿
2020/11/10
.
临床检验标本采集手册
23
尿标本采集
• 24h尿：尿肌酐、尿蛋白定量、尿电解质等 • 送检量50ml，充分混匀，标记总尿量 • 尿沉渣分析或结核杆菌检查可留取尿沉淀部分
.
13
凝血试验注意事项
• 采血量与抗凝剂比例将影响血浆Ca2+浓度 • 蝶翼型采血针避免空气对采血量的影响 • 如允许范围内血量不足需正确及时释放负压、避
免CO2散失
2020/11/10
.
14
自动、静脉置管采集血标本
• 却保密封，避免空气混入导致溶血、凝血、血量
不足
• 考虑肝素化和样本稀释 • 管道需用5ml盐水冲洗，并弃去6倍无效腔体积的
刺液、分泌物、导管等
• 组织物
2020/11/10
.
4
血液标本采集
• 静脉血、动脉血、混合静脉血、毛细血管血
2020/11/10
.
5
静脉血标本采集
• 临床实验室以静脉血为标本的检验项目比例占全
部项目的90%
• 任一环节的疏漏将发生不可估计的错误（错误鉴
别标本、溶血、抗凝剂比例不当、血肿形成、血 液浓缩或稀释）
.
31
标本送检
采集的标本需立即送检， 若不能立即送检，应置于35℃温箱或室温，绝不可
放置冰箱
2020/11/10
.
32
培养瓶去帽75%酒精消毒 2双针采血系统穿刺采血 3先注厌氧瓶再注需氧瓶
• 标本量 成人抽取8～10ml
婴幼儿或儿童抽取1～4ml
2020/11/10
.
30
中心静脉导管血标本采集
1消毒 2弃去前段0.5~1.0ml液体 3留取0.5~1.0ml血液（注入儿童血培养瓶） 4肝素水封管
2020/11/10
血
2020/11/10
.
临床检验标本采集手册
15
动脉血采集
• 评估病人呼吸和代谢状况的首选标本 • 全身各部位成分基本一致、恒定 • 动、静脉血区别：
O2、CO2、PH、乳酸、CL-、葡萄糖等
2020/11/10
.
16
物品准备
2020/11/10
.
17
病人准备
பைடு நூலகம்
• 进食 • 体温 • 呼吸模式 • 吸氧浓度
束臂时间过长可至局部血液浓缩或激活凝血系统
• 使用血压计压力套，压力=40mmHg • 穿刺成功后立即释放对静脉的压力，2-5秒后再留
取标本。
使血液循环，消除止血带对局部血液质量的影响
2020/11/10
.
临床检验标本采集手册
11
被忽略的细节
• 采血过程中采血管底部应低于采血针前端 • 采集足量标本并立即使血液与试剂充分混合 • 避免剧烈摇晃 • 任何制剂的消毒液都需自然晾干方可穿刺 • 基于生物安全因素，不建议使用注射器采血
2020/11/10
.
临床检验标本采集手册
12
真空采血管注血顺序
• 1 血培养瓶：厌氧菌培养瓶、需氧菌培养瓶 • 2 凝血项目采集管（蓝） • 3 无添加物管/含促凝剂管/分离胶试管（红、黄） • 4 肝素管（绿） • 5 EDTA抗凝管（紫） • 6 糖酵解抑制剂管（灰）
蓝 红黄 绿 紫 灰
2020/11/10
临床检验标本采集
2020/11/10
.
1
临床生物检验流程示意
分 析 前
门诊 病房 诊所
不合格
临床标本
留取
运送
SOP +
环节一
环节二
SOP
IQ
合格
标本合格？ 环节三
标本合格
判定
实验室 分 析 中
直接检测 EQA标本
接种 培养
检测
环节四 环节五
培养基、冰箱 温箱、气体
仪器设备、试剂
分 析 2020/后11/10
.
28
血培养标本采集
• 采血时机
最好在抗菌治疗前 ,以正在发冷发热时或 发冷 发热前半小时为宜。
• 采血部位
应从身体不同部位采血（双侧双瓶），以排除 皮肤菌丛污染的可能；要避免从动静脉导管内及 肝素帽穿刺取血；用来培养的血应该是静脉血
2020/11/10
.
29
血培养标本采集
• 方法 1消毒皮肤：面积、时间
2020/11/10
.
6
静脉采血用物
•
2020/11/10
.
7
2020/11/10
.
8
2020/11/10
.
9
采血部位选择
• 肘正中静脉-首选
•
• 头静脉-可选
• 手背静脉-可选
• 一般不选-贵要静脉
（易损伤动脉及神经）
• 动脉穿刺替代
静脉穿刺
2020/11/10
.
10
被忽略的细节
• 长时间扎紧止血带以充盈血管 • 止血带使用<1min,不得>2min
2020/11/10
.
20
毛细血管血采集
• 局部温热（<42。3~5min）处理可增加7倍动脉血
液流量。
• 避免过度挤压至组织液渗出
2020/11/10
.
21
体液标本采集 •尿液、粪便、浆膜腔积液、脑脊液、胃液等
2020/11/10
.
22
尿标本采集
• 晨尿：标本较浓缩，有形成分完整
尿常规、尿沉渣、hCG等
如果氧浓度发生改变，至少等待20~30min后方可 采血
2020/11/10
.
18
穿刺部位的选择
• 良好的侧支循环*：改良ALLEN试验/B超 • 浅表易触及的动脉 • 动脉周围组织
桡动脉* 足背动脉 肱动脉 股动脉
2020/11/10
.
19
动脉采血危险因素
• 血管迷走神经反射 • 动脉痉挛 • 血肿 • 血栓形成或栓塞
报告
环节六
. 对每个环节进行控制，构成质量保证体系2
经过规范培训的采集者 +
全程执行规范的标本采集操作程序 =
提供生物典型样品
2020/11/10
.
3
常见标本类型
• 血液：静脉血、动脉血、混合静脉血、毛细血 管血 • 体液：尿液、粪便、浆膜腔积液、脑脊液、胃 液
等
• 微生物：血培养、痰培养、尿培养、鼻咽拭子、穿
• 12/3h尿：细胞、管型等有形成分计数、细胞排泄率
• 防腐剂：甲醛、甲苯、浓盐酸、麝香草酚
2020/11/10
.
临床检验标本采集手册
24
粪便标本采集
• 异常粪便：取黏液、脓、血等病变部位 • 无异常粪便：取表面、深处多部位取样
2020/11/10
.
25
浆膜腔积液
• 胸、腹膜腔、心包积液：无菌技术穿刺取样
2020/11/10
.
26
• 脑脊液 • 胃液 • 引流液
其他体液
2020/11/10
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27
微生物学标本采集
• 血培养、痰培养、尿培养、鼻咽拭子、穿刺液、
分泌物、导管
2020/11/10
• 随机尿
晨尿在膀胱停留时间长，偏酸，不利 于检出酸性环境易变的物质（葡萄 糖、盐酸）
建议采集第二次晨尿代替首次晨尿
2020/11/10
.
临床检验标本采集手册
23
尿标本采集
• 24h尿：尿肌酐、尿蛋白定量、尿电解质等 • 送检量50ml，充分混匀，标记总尿量 • 尿沉渣分析或结核杆菌检查可留取尿沉淀部分
.
13
凝血试验注意事项
• 采血量与抗凝剂比例将影响血浆Ca2+浓度 • 蝶翼型采血针避免空气对采血量的影响 • 如允许范围内血量不足需正确及时释放负压、避
免CO2散失
2020/11/10
.
14
自动、静脉置管采集血标本
• 却保密封，避免空气混入导致溶血、凝血、血量
不足
• 考虑肝素化和样本稀释 • 管道需用5ml盐水冲洗，并弃去6倍无效腔体积的
刺液、分泌物、导管等
• 组织物
2020/11/10
.
4
血液标本采集
• 静脉血、动脉血、混合静脉血、毛细血管血
2020/11/10
.
5
静脉血标本采集
• 临床实验室以静脉血为标本的检验项目比例占全
部项目的90%
• 任一环节的疏漏将发生不可估计的错误（错误鉴
别标本、溶血、抗凝剂比例不当、血肿形成、血 液浓缩或稀释）
.
31
标本送检
采集的标本需立即送检， 若不能立即送检，应置于35℃温箱或室温，绝不可
放置冰箱
2020/11/10
.
32
培养瓶去帽75%酒精消毒 2双针采血系统穿刺采血 3先注厌氧瓶再注需氧瓶
• 标本量 成人抽取8～10ml
婴幼儿或儿童抽取1～4ml
2020/11/10
.
30
中心静脉导管血标本采集
1消毒 2弃去前段0.5~1.0ml液体 3留取0.5~1.0ml血液（注入儿童血培养瓶） 4肝素水封管
2020/11/10
血
2020/11/10
.
临床检验标本采集手册
15
动脉血采集
• 评估病人呼吸和代谢状况的首选标本 • 全身各部位成分基本一致、恒定 • 动、静脉血区别：
O2、CO2、PH、乳酸、CL-、葡萄糖等
2020/11/10
.
16
物品准备
2020/11/10
.
17
病人准备
பைடு நூலகம்
• 进食 • 体温 • 呼吸模式 • 吸氧浓度
束臂时间过长可至局部血液浓缩或激活凝血系统
• 使用血压计压力套，压力=40mmHg • 穿刺成功后立即释放对静脉的压力，2-5秒后再留
取标本。
使血液循环，消除止血带对局部血液质量的影响
2020/11/10
.
临床检验标本采集手册
11
被忽略的细节
• 采血过程中采血管底部应低于采血针前端 • 采集足量标本并立即使血液与试剂充分混合 • 避免剧烈摇晃 • 任何制剂的消毒液都需自然晾干方可穿刺 • 基于生物安全因素，不建议使用注射器采血
2020/11/10
.
临床检验标本采集手册
12
真空采血管注血顺序
• 1 血培养瓶：厌氧菌培养瓶、需氧菌培养瓶 • 2 凝血项目采集管（蓝） • 3 无添加物管/含促凝剂管/分离胶试管（红、黄） • 4 肝素管（绿） • 5 EDTA抗凝管（紫） • 6 糖酵解抑制剂管（灰）
蓝 红黄 绿 紫 灰
2020/11/10
临床检验标本采集
2020/11/10
.
1
临床生物检验流程示意
分 析 前
门诊 病房 诊所
不合格
临床标本
留取
运送
SOP +
环节一
环节二
SOP
IQ
合格
标本合格？ 环节三
标本合格
判定
实验室 分 析 中
直接检测 EQA标本
接种 培养
检测
环节四 环节五
培养基、冰箱 温箱、气体
仪器设备、试剂
分 析 2020/后11/10
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28
血培养标本采集
• 采血时机
最好在抗菌治疗前 ,以正在发冷发热时或 发冷 发热前半小时为宜。
• 采血部位
应从身体不同部位采血（双侧双瓶），以排除 皮肤菌丛污染的可能；要避免从动静脉导管内及 肝素帽穿刺取血；用来培养的血应该是静脉血
2020/11/10
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29
血培养标本采集
• 方法 1消毒皮肤：面积、时间
2020/11/10
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6
静脉采血用物
•
2020/11/10
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2020/11/10
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9
采血部位选择
• 肘正中静脉-首选
•
• 头静脉-可选
• 手背静脉-可选
• 一般不选-贵要静脉
（易损伤动脉及神经）
• 动脉穿刺替代
静脉穿刺
2020/11/10
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10
被忽略的细节
• 长时间扎紧止血带以充盈血管 • 止血带使用<1min,不得>2min
2020/11/10
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20
毛细血管血采集
• 局部温热（<42。3~5min）处理可增加7倍动脉血
液流量。
• 避免过度挤压至组织液渗出
2020/11/10
.
21
体液标本采集 •尿液、粪便、浆膜腔积液、脑脊液、胃液等
2020/11/10
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22
尿标本采集
• 晨尿：标本较浓缩，有形成分完整
尿常规、尿沉渣、hCG等
如果氧浓度发生改变，至少等待20~30min后方可 采血
2020/11/10
.
18
穿刺部位的选择
• 良好的侧支循环*：改良ALLEN试验/B超 • 浅表易触及的动脉 • 动脉周围组织
桡动脉* 足背动脉 肱动脉 股动脉
2020/11/10
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19
动脉采血危险因素
• 血管迷走神经反射 • 动脉痉挛 • 血肿 • 血栓形成或栓塞
报告
环节六
. 对每个环节进行控制，构成质量保证体系2
经过规范培训的采集者 +
全程执行规范的标本采集操作程序 =
提供生物典型样品
2020/11/10
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3
常见标本类型
• 血液：静脉血、动脉血、混合静脉血、毛细血 管血 • 体液：尿液、粪便、浆膜腔积液、脑脊液、胃 液
等
• 微生物：血培养、痰培养、尿培养、鼻咽拭子、穿
• 12/3h尿：细胞、管型等有形成分计数、细胞排泄率
• 防腐剂：甲醛、甲苯、浓盐酸、麝香草酚
2020/11/10
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临床检验标本采集手册
24
粪便标本采集
• 异常粪便：取黏液、脓、血等病变部位 • 无异常粪便：取表面、深处多部位取样
2020/11/10
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25
浆膜腔积液
• 胸、腹膜腔、心包积液：无菌技术穿刺取样