实验动物采血技术给药技术一优秀课件
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实验小鼠给药与采血方法
实验小鼠给药与采血方法1.实验小鼠给药方法：a.静脉注射：i.静脉注射是一种常用的给药方法，适用于需要迅速将药物输送到循环系统中的实验。
ii. 首先，选择小鼠尾静脉作为给药途径。
悬空小鼠尾部并握紧尾根，使用角度较小的针头（例如26G针头）直接注射药物。
iii. 注射前，可以先用温水或者温湿纱布预热小鼠的尾部，以增强血管的扩张和血流。
iv. 确认成功注射药物后，将小鼠放回饲养笼中，并观察其行为和健康状况。
b.口服给药：i.口服给药是一种常用的给药方法，适用于需要药物通过消化系统进行吸收的实验。
ii. 在给药前，可以在小鼠笼子的饮水中添加药物溶液，或将药物悬浮液灌注到小鼠胃部。
iii. 同时，在给药过程中，需要将小鼠固定住，可以使用实验动物颈环进行固定。
iv. 给药后，观察小鼠的饮食情况和健康状况，并适当调整药物剂量和给药方式。
2.实验小鼠采血方法：a.尾静脉采血：i.尾静脉采血是一种常用的、非常便捷的小鼠采血方法。
ii. 首先，选择小鼠尾部静脉作为采血部位。
悬空小鼠尾部并使用温湿纱布加热，以增加血管扩张和血流。
iii. 使用角度较小的针头，例如26G针头，刺入尾静脉，然后将血收集到适当的试管中。
iv. 在采血过程中，保持顺利的血流，可以使用温湿纱布加热尾部以保持血管扩张。
v.采集到所需血液样本后，用棉球或止血带对采血部位施加轻压，以避免出血和感染。
vi. 采血结束后，观察小鼠的健康状况，并给予适当的处理和护理。
b.眼窝静脉注射采血：i.眼窝静脉采血是一种比较特殊的小鼠采血方法，适用于需要大量血液样本的实验。
ii. 在采血前，可以使用温湿纱布加热小鼠眼部，以增加血管扩张和血流。
iii. 使用角度较小的针头，例如26G针头，插入眼窝静脉并拔回，将血液从针头收集到适当的试管中。
iv. 在采血过程中，保持稳定的手部和注射器位置，以避免对小鼠造成伤害。
v.采集到所需血液样本后，用棉球或止血带对采血部位施加轻压，并进行适当的处理和护理，以减少对小鼠的不适和伤害。
实验动物注射给药的方法 ppt课件
也可注射于颈部的静脉。助手抱住犬，术者用左手拇指压迫颈部的上 1/3 部位，使颈静脉充血，注射针刺入静脉，回血后缓缓注入药液。 不熟练者，可先剪掉注射部位的毛，待看到清楚的静脉(充血)后再注 射。
此时如感觉针头无阻抗 ， 且能自由活动针头时，抽 吸无回血，即可推压针筒 活塞注射药液。如需注射 大量药液时，应分点注射。
注完后，左手持干棉 球按住刺入点，右手拔 出针头。
拔出针后，再次消 毒。
可对局部进行轻轻按 摩，促进吸收。
皮内注射
皮内注射时需将注射的局部脱毛、消毒，然后用 左手拇指和食指按住皮肤并使之绷紧，先将针头 刺入皮下，然后使针头向上挑起直至看到透过真 皮为止，如在皮内，肉眼可见到针头的方向。然 后即可缓慢注射，皮肤表面应马上出现白色橘皮 样隆起，此证明药液在皮内。
家兔 其耳缘血管为静脉，耳中间一条血管是动脉。注射部位去 毛、热敷和消毒，待血管扩张后，以左手拇指与食指压住静脉 耳根端，使静脉充盈将4 1/2号针头平行刺入静脉，抽动针管， 见有回血即可推注，注射完毕后，拔出针头，用手或药棉压迫 针眼片刻
犬 已麻醉的犬可选用股静脉给药。未麻醉 的犬则可选用前肢皮下头静脉或后肢小隐静 脉给药。注射前先将注射部位毛剪去，在静 脉向心端处用橡皮带绑紧(或用手抓住)使血 管充血。针向近心端刺入静脉。为保证药物 确实注入静脉，应在注入药液之间回抽针栓， 倘有回血即可推注药液。
实验动物注射给药的方法
1 皮下注射
2 皮内注射
3 肌肉注射 4 腹腔注射 5 静脉注射
皮下注射: 皮下注射（Subcutaneousinjection, SC）是将药液注射于皮下 结缔组织内，经毛细血管、淋巴管吸收进入血液，发挥药效作用，而达 。 到防治疾病的目的活动性较大的部位,猫多选 不在背胸 部、股内侧、颈部和肩胛后部
动物的给药、麻醉、处死术ppt课件
五、直肠给药和阴道给药
动物的给药、麻醉、处死术
17
不同种类实验动物不同给药方法一次给药能耐受的最大容量（ml）
动物名称 灌胃给 药
小鼠 0.9
大鼠 5.0
家兔 200
猫
250
皮内注射 皮下注射 肌肉注射 腹腔注 射
0.1
1.5
0.2
1
0.1
5.0
0.5
2
0.2 10
2.0 5
0.2 10
2.0 5
动物的给药、麻醉、处死术
19
实验目的： 通过对动物的麻醉，掌握最常用的吸
入麻醉法和注射麻醉法以及不同种类动物、 不同麻醉药品的使用方法和使用剂量。 实验材料： 动物：小鼠、大鼠、兔或狗
药品：乙醚、戊巴比妥钠、咖啡因 器材：麻醉箱或其它密闭容器如烧杯、棉球
动物的给药、麻醉、处死术
20
实验方法：
（一）全身麻醉法
1.吸入法：吸入麻醉是将乙醚、氯仿等挥发性麻醉 剂经呼吸道吸入体内而产生麻醉效果的方法。本法 最适合于大、小鼠的短期操作试验的麻醉。
将大鼠、小鼠或兔放入杯或缸内，将乙醚倒在 棉花上，在室温下乙醚逐渐变成气体挥发，将缸内 动物麻醉，动物倒下后立即取出，此时动物肌肉松 弛，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失。
动物的给药、麻醉、处死术
动物的给药、麻醉、处死术
11
动物的给药、麻醉、处死术
12
（5）腹腔注射
使鼠腹部朝上，鼠头 略低于尾部，在下腹部靠近 腹白线的两侧进行穿刺，针 头到达皮下后，再稍向前进 针，后以45°角刺入腹腔， 保持针尖不动，回抽针栓， 如无回血、肠液和尿液后即 可注射药液。注射量为0.10.2ml/10g体重。
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2.注射麻醉法：
动物的给药、麻醉、处死术
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不同种类实验动物不同给药方法一次给药能耐受的最大容量（ml）
动物名称 灌胃给 药
小鼠 0.9
大鼠 5.0
家兔 200
猫
250
皮内注射 皮下注射 肌肉注射 腹腔注 射
0.1
1.5
0.2
1
0.1
5.0
0.5
2
0.2 10
2.0 5
0.2 10
2.0 5
动物的给药、麻醉、处死术
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实验目的： 通过对动物的麻醉，掌握最常用的吸
入麻醉法和注射麻醉法以及不同种类动物、 不同麻醉药品的使用方法和使用剂量。 实验材料： 动物：小鼠、大鼠、兔或狗
药品：乙醚、戊巴比妥钠、咖啡因 器材：麻醉箱或其它密闭容器如烧杯、棉球
动物的给药、麻醉、处死术
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实验方法：
（一）全身麻醉法
1.吸入法：吸入麻醉是将乙醚、氯仿等挥发性麻醉 剂经呼吸道吸入体内而产生麻醉效果的方法。本法 最适合于大、小鼠的短期操作试验的麻醉。
将大鼠、小鼠或兔放入杯或缸内，将乙醚倒在 棉花上，在室温下乙醚逐渐变成气体挥发，将缸内 动物麻醉，动物倒下后立即取出，此时动物肌肉松 弛，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失。
动物的给药、麻醉、处死术
动物的给药、麻醉、处死术
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动物的给药、麻醉、处死术
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（5）腹腔注射
使鼠腹部朝上，鼠头 略低于尾部，在下腹部靠近 腹白线的两侧进行穿刺，针 头到达皮下后，再稍向前进 针，后以45°角刺入腹腔， 保持针尖不动，回抽针栓， 如无回血、肠液和尿液后即 可注射药液。注射量为0.10.2ml/10g体重。
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2.注射麻醉法：
猪只采血技术及血样处理方法ppt课件
精选ppt
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3、耳静脉采血技术
❖ 耳静脉采血（图一）。适用于40Kg以上的中大 猪或种猪。采用站立保定，由1名助手用猪保定器 套住猪的上颌骨、收紧，用力向前方牵引，另一助 手在猪耳根处用力压住耳静脉近心端，采血员左手 拉伸猪耳，右手用酒精棉球反复涂擦耳静脉使血管 怒张后，右手持连接9号针头的注射器，沿血管走 向刺入，针头与猪耳水平面呈10～15度角进针，回 血后，缓慢抽取所需血液量后，用干棉球或棉签按 压止血。
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6
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7
猪耳静脉采血的缺点
❖ 1 操作难：猪耳静脉采血，应缓慢回抽注射 器活塞，若回抽活塞过快过猛，会使血管壁 紧贴针尖，而抽不出血液。
❖ 2 费时：从耳静脉抽血，每采一头猪需要 5分 钟以上。
❖ 3 易失败：由于猪的耳静脉细（特别是小 猪），采血过程中猪只又经常晃动，使本来 已经扎准的针头经常抽不出血来
精选ppt
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选取合适的针筒和针头
A、通常是10ml一次性注射器。 B、针头规格：种公母猪(12×38#)； 30千克以上中猪(12×30#)；10～30千 克小猪（12×25#）；10千克以下乳猪 （9×15#）；由于猪的大小不同，所 用的针头规格不同。
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20千克以上的中大猪采血
❖ 种公母猪需要用保定绳固定，并且要求尽可 能吊得高一点，使猪的头颈与水平面呈 30 度以上（如图 ）。这样，既方便采血人员察 看采血部位，又使前腔静脉向外突出，静脉 血充胀。
❖ 4 血样不卫生。
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3、猪颈部采血操作技术
❖ 猪颈部静脉采血，因有一定的技术难度， 采血员必须具备准确而熟练的操作技术。猪 前腔静脉采血技术要点：一是根据猪的大小 选用不同型号的针头；二是做好保定，注意 人畜安全。根据猪体大小，采用不同保定方 式。猪保定后应相对稳定，不能骚动、后缩 及左右摇摆；三是进针部位准。由于左侧靠 近膈神经，故多在右侧进行采血。
实验动物采血技术给药技术(一)
（2）腹腔和静脉给药麻醉法 非挥发性和中药麻醉剂均可用作腹腔和静脉注射 麻醉，操作简便，是实验室最常采用的方法之一。 腹腔给药麻醉多用于大小鼠和豚鼠，较大的动物如 兔、狗等则多用静脉给药进行麻醉。由于各麻醉剂 的作用长短以及毒性的差别。所以在腹腔和静脉麻 醉时，一定要控制药物的浓度和注射量 。
2．局部麻醉 ⑴ 猫的局部麻醉一般应用 0.5～1.0% 盐酸普鲁卡 因 注 射 。 粘 膜 表 面 麻 醉 宜 用 2% 盐 酸 可 卡 因 。 ⑵ 兔在眼球手术时，可于结膜囊滴入0.02%盐酸 可卡因溶液，数秒钟即可出现麻醉。 ⑶ 狗的局部麻醉用0.5～1%盐酸普鲁卡因注射。 眼鼻、咽喉表面麻醉可用2%盐酸可卡因。
二、兔的性别鉴定
Female
Male
第三节 年龄的大致判断
一、大、小鼠 1. 根据形态鉴定日龄（大、小情况基本一样）
日龄/d 1 3 4 5 8 外观形态特征 仔鼠裸体鲜红 耳壳露出表皮 脐带瘢痕脱落 能翻身 能爬行
日龄/d 10 9～11
外观形态特征 能听到声音 全身被白毛，门齿长出
13～15
采血时要注意
采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在 25～28℃，冬季，15～20℃为宜； ② 采血用具有采用部位一般需要进行消毒； ③ 采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥； ④ 若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入 抗凝剂。
①
１．取少量血 部位 ａ．尾静脉 ｂ．耳静脉 ｃ．眼底静脉丛 d．舌下静脉 动物种类 大鼠、小鼠 兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊 兔、大鼠、小鼠 兔
尾 部 采 血
心脏采血
二、豚鼠的采血方法 1．耳缘剪口采血 2．心脏采血方法同大、小鼠。 3．股动脉采血方法同大、小鼠。 4．后肢背中足静脉采血
药理学动物实验基本方法ppt课件
用右手食指将 针栓慢慢往下 压，将注射器 中的药液灌入 动物的胃中。
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•灌胃给药——兔
将兔放进固 定架
内，灌胃者用左 手拇指和中指挤 压兔两颊，将下 颌挤开使兔被动 张口。
右手将开口器 从一侧口角插 入口腔并固定。
胃管经开口器 的孔插入，向 前推进约15cm， 可达胃内。
在插管时应将 胃管另一端泡 在水中确认没 有冒气泡，即 可用注射器经
对象：兔、豚鼠等。
特点：采血量较大，继续保存动物生命。
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6
静脉采血
方法：将家兔放在固定箱内，剪去拟采血耳壳上的毛，用电灯照射
加热或用二甲苯棉球涂擦耳壳，使耳部血管扩张。用粗针头刺破耳缘 静脉或以刀片在血管上切一小口，让血液自然流出，滴入已放有抗凝 剂的盛器中。采血完毕，用干棉球压住出血口，以待止血。如一时不 易止血，可用木夹夹住耳壳10～20分钟。
2.在C2单元格键入“=RAND()”后回车产生一个随机数字，然后同样利用其自动填充功能在C2～C33 生成一列随机数。需注意的是这里产生的随机数是会随着单元格的操作而变化的。故需选中“C2” 至“C33”单元格区域,复制所选中的区域,并以数据格式进行选择性粘贴。
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3.选中A、B、C 列,单击菜单栏“数据”→“排序”,在弹出的“排序”对话框中,选择以“区组” 为“主要关键字”排序“, 随机数”为“次要关键字”排序,然后,单击“确定”按钮,即完成以区 组单位的随机数字排序
先将注射部位毛 剪去 。
在静脉血管的 近心端，用乳 胶管扎紧肢体， 使血管充盈， 注射器针头向 静脉血管的近 心端方向穿刺 。
回抽注射器针 栓，如有回血， 则证明针尖在 血管内，即可 推注药液。
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•静脉注射给药——兔
猪的采血技术课件PPT
猪场动力网
猪场动力网
4000千转／分钟的转速，运转15分钟
成功分离后抽取血清１－２毫升，做好标记， 冷冻后送到检测中心，进行检测。
将采血用的废品，进行焚毁或深埋。 至此，全过程结束！
猪场动力网
猪场动力网
猪的血液循环模式图
猪场动力网
现将这种技术介绍如下：
1. 选取合适的针筒和针头。针筒一般为5ml或10 毫升规格的一次性针筒。
由于猪的大小不同，前腔静脉的深浅不一样，要 求使用的针头是不一样的。针头太短，刺不到前 腔静脉；针头太长，则可能刺穿前腔静脉，同样 采不到血。
根据经验，公母猪宜选用16# 45mm针头(这种针 头猪场不常用，但很多针头生产厂家都有生产， 可以找兽医药械销售店联系购买)；30kg以上的 中大猪，宜选用12# 38mm针头；10-30kg小猪， 可选用9# 25mm(一次性注射器常配的针头)； 10kg以下乳猪，应选择9# 20mm针头(一次性注 射器所配的另一种规格的针头)。
采血化验和送检是猪场的一项重要工作 目前,大多数猪场都是使用从猪耳静脉抽血的方法采血。这种
方法实际上存在很多缺点:： (1)费时。从耳静脉抽血，每采一头猪需要5分钟以上。 (2)易失败。由于猪的耳静脉小(特别是小猪)，采血过程中猪
只又经常晃动，使本来已经插准的针头，经常抽不出血来。 (3)血样不卫生。很多时候，特别是猪小的情况下，用一次性 针筒抽血，很难抽得出来。 为此，很多兽医人员都是用针头刺穿耳静脉后，直接用西林 瓶在耳沿接血，这样接到的血样，不符合卫生要求。 由于耳静脉采血费时费力，很多兽医技术人员为贪图方便， 应付工作任务，往往只采一头或几头猪血，然后稀释成几份 送检，造成检验结果不准而误诊，贻误猪场治疗时机，给猪 场带来严重经济损失。
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4000千转／分钟的转速，运转15分钟
成功分离后抽取血清１－２毫升，做好标记， 冷冻后送到检测中心，进行检测。
将采血用的废品，进行焚毁或深埋。 至此，全过程结束！
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猪的血液循环模式图
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现将这种技术介绍如下：
1. 选取合适的针筒和针头。针筒一般为5ml或10 毫升规格的一次性针筒。
由于猪的大小不同，前腔静脉的深浅不一样，要 求使用的针头是不一样的。针头太短，刺不到前 腔静脉；针头太长，则可能刺穿前腔静脉，同样 采不到血。
根据经验，公母猪宜选用16# 45mm针头(这种针 头猪场不常用，但很多针头生产厂家都有生产， 可以找兽医药械销售店联系购买)；30kg以上的 中大猪，宜选用12# 38mm针头；10-30kg小猪， 可选用9# 25mm(一次性注射器常配的针头)； 10kg以下乳猪，应选择9# 20mm针头(一次性注 射器所配的另一种规格的针头)。
采血化验和送检是猪场的一项重要工作 目前,大多数猪场都是使用从猪耳静脉抽血的方法采血。这种
方法实际上存在很多缺点:： (1)费时。从耳静脉抽血，每采一头猪需要5分钟以上。 (2)易失败。由于猪的耳静脉小(特别是小猪)，采血过程中猪
只又经常晃动，使本来已经插准的针头，经常抽不出血来。 (3)血样不卫生。很多时候，特别是猪小的情况下，用一次性 针筒抽血，很难抽得出来。 为此，很多兽医人员都是用针头刺穿耳静脉后，直接用西林 瓶在耳沿接血，这样接到的血样，不符合卫生要求。 由于耳静脉采血费时费力，很多兽医技术人员为贪图方便， 应付工作任务，往往只采一头或几头猪血，然后稀释成几份 送检，造成检验结果不准而误诊，贻误猪场治疗时机，给猪 场带来严重经济损失。
常见小鼠给药及采血方法
常见小鼠给药及采血方法常见的小鼠给药和采血方法是科研实验中非常常用的技术手段，在实验过程中对小鼠进行给药和采血可以获取药物的药代动力学信息，并且用于评估药物的疗效。
下面将详细介绍常见的小鼠给药方法和小鼠采血方法。
一、小鼠给药方法：1.口服给药：口服给药是最常见且简单的给药方法，适用于药物通过胃肠道吸收的情况。
通常使用胃管或者灌胃针将药物溶液灌入小鼠的胃中，可以精确控制给药剂量。
在给药前需要将小鼠禁食一段时间，以确保胃中没有食物。
2.稀释给药：稀释给药主要是用于药物溶解度较低的情况，通常使用溶剂将药物稀释后进行给药。
常用的稀释溶剂有PBS、麦芽糊精等。
在给药过程中需要控制好溶剂比例，避免对小鼠造成不必要的伤害。
3.注射给药：注射给药分为皮下注射、腹腔注射和静脉注射等。
皮下注射适用于需要给予较小剂量的药物，腹腔注射适用于需要给予中等剂量的药物，静脉注射适用于需要给予大剂量的药物。
注射给药需要掌握好注射技巧，避免对小鼠造成伤害。
4.气管给药：气管给药主要用于给药物通过呼吸道吸收的情况，通常使用雾化器将药物转化为粒径合适的颗粒进行给药。
此方法可以避免药物通过其他途径的代谢和消除，提高药物的生物利用度。
给药时需要注意控制好呼吸机的参数。
二、小鼠采血方法：1.尾静脉采血：尾静脉采血是最常用的小鼠采血方法，适用于需要采集较小量血液的情况。
通常使用尾静脉切口钳夹住小鼠的尾部，然后用刀片或者盖玻片划破尾静脉进行采血。
在采血前可以将小鼠的尾部浸泡在温水中，以扩张血管。
2.空心针穿刺静脉采血：空心针穿刺静脉采血适用于需要采集较大量血液的情况。
通常选择小鼠的颈静脉或者股静脉进行穿刺。
在采血前需要消毒采血部位，并使用无菌技术进行采血操作。
3.心脏穿刺采血：心脏穿刺采血是最常用于大量采血的方法，但是操作较为复杂且有一定难度，需要具备一定的技术经验。
在采血前需要消毒采血部位，并使用无菌技术进行采血操作。
给药和采血对小鼠的健康和生长状态有一定的影响，需要在实验过程中注意动物的福利和保护动物的权益，严格按照实验伦理和动物保护法规进行操作，以确保实验结果的准确性和可靠性。
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动物种类 狗、猴、猫 狗、猴、猫 兔 狗、猫、兔 豚鼠、大鼠、小鼠 大鼠、小鼠 鸡、鸭、鸽、鹅 鸡、鸭、鸽、鹅
３．取大量血 部位
ａ．股动脉、颈动脉 ｂ．心脏 ｃ．颈静脉
ｄ．摘眼球
动物种类 狗、猴、猫、兔 狗、猴、猫、兔 马、牛、山羊、绵羊
大鼠、小鼠
4. 最大安全采血量与最小致死采血量
动物种类
小鼠 大鼠 豚鼠
2．小白鼠和大白鼠
一般采用尾静脉注射，操作时先将动物固定在鼠 筒内或扣在烧杯中，使尾巴露出，尾部用45～50℃ 的温水浸润半分钟或用酒精擦拭使血管扩张，并可 使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧， 使静脉充盈，用中指从下面托起尾巴，以无名指和 小指夹住尾巴的末梢，右手持注射器连4(1/2)号细针 头，使针头与静脉平行（小于30℃），从尾下四分
常规采血方法
一、大、小鼠的采血方法 1．颈静脉或颈动脉采血 2．股静脉或股动脉采血 3．心脏采血 4．尾部采血 5．眼眶采血 6．断头取血
颈静脉或颈动脉采血
尾 部 采 血
心脏采血
二、豚鼠的采血方法 1．耳缘剪口采血 2．心脏采血方法同大、小鼠。 3．股动脉采血方法同大、小鼠。 4．后肢背中足静脉采血
Байду номын сангаас
初生
5
体重 /g
1.8
4.0
10 15 20 6.0 11.0 15.0
25 30 21.0 21.0
⑵ 大鼠日龄与体重的对应
日龄/d 体重/g 日龄/d 体重/g
初生 10 20 30
40
6～7 17～25 35～50 55～90 100～150
50
60
70
80
150～210 170～240 210～270 240～320
兔 狼狗 猎狗
猴
最大安全采 血量 (ml)
0.2 1 5 10 100 50 15
最小致死采 血量 (ml)
0.3 2 10 40 500 200 60
给药途径与方法
在动物实验过程中，应根据不同的实验目的、 动物种类、药物类型来决定动物的给药途径与方 法。动物的给药方法主要分为注射法和投入法两 种，不同方法按给药途径又分为很多具体类型。 注射法分为：皮下注射、肌肉注射、腹腔注射、 脑膜下注射、脑内注射、胸腔内注射、腰椎内注 射、静脉注射、关节腔注射和心内注射。
研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐 代谢紊乱，需要比较动、静脉血氧分压、二氧化碳 分压和血液pH值以及 K+、Na+、Cl-离子浓度，必 须采取动脉血液。
采血时要注意
① 采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在
25～28℃，冬季，15～20℃为宜；
② 采血用具有采用部位一般需要进行消毒； ③ 采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥； ④ 若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入
（三）肌肉注射
肌肉内血管丰富，注射后吸收较快，仅次于静脉 注射；又因感觉神经较皮下少，故引起疼痛较轻，临 床上应用较多。 1、部位 凡是肌肉丰富的部位，均可进行肌肉注射。犬 猫在脊柱两侧的腰部肌肉或股部肌肉。 2、方法 局部消毒，将针头迅速刺入肌肉内，抽拔活塞 无回血后缓慢注入药液。注射时，不要将针头全刺入 肌肉内，以免折断时不易取出。
抗凝剂。
１．取少量血
部位
动物种类
ａ．尾静脉
大鼠、小鼠
ｂ．耳静脉
兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊
ｃ．眼底静脉丛
兔、大鼠、小鼠
d．舌下静脉
兔
e．腹壁静脉
青蛙、蟾蜍
f．冠、脚蹼皮下静脉 鸡、鸭、鹅
２．取中量血
部位 ａ．后肢外侧皮下小隐静脉 ｂ．前肢内侧皮下头静脉 ｃ．耳中央动脉 ｄ．颈静脉 ｅ．心脏 ｆ．断头 ｇ．翼下静脉 ｈ．颈动脉
（四）腹腔注射
用大、小白鼠做实验时，以左手抓住动物，使腹 部向上，右手将注射针头于左（或右）下腹部刺入 皮下，使针头向前推 0.5～1.0cm，再以45度角穿过 腹肌，固定针头，缓缓注入药液，
为避免伤及内脏，可使动 物处于头低位，使内脏移 向上腹。若实验动物为家 兔，进针部位为下腹部的 腹白线离开1cm处。
实验动物采血技术给药技术一
第一节 实验动物的抓取与固定
一、大、小鼠的抓取固定
小 鼠 固 定 盒 固 定
大鼠固定盒固定
二、豚鼠的抓取固定法
三、家兔的抓取固定法
第二节 性别鉴定
一、大、小鼠的性别鉴定
二、兔的性别鉴定
Female
Male
第三节 年龄的大致判断
一、大、小鼠 1. 根据形态鉴定日龄（大、小情况基本一样）
日龄/d 1 3 4 5 8
外观形态特征 仔鼠裸体鲜红 耳壳露出表皮 脐带瘢痕脱落
能翻身 能爬行
日龄/d 10
9～11 13～15 18以后
外观形态特征 能听到声音
全身被白毛，门齿长出 眼皮张开，能跳跃，能抓取东西
能自行采食，独立生活
2. 根据体重鉴定日龄 ⑴ 小鼠日龄与体重的对应
日龄 /d
（五）静脉注射
1．兔：兔耳部血管分布清晰。兔耳中央为动脉， 耳外缘为静脉。内缘静脉深不易固定，故不用。外 缘静脉表浅易固定，常用。先拔去注射部位的被毛， 用手指弹动或轻揉兔耳，使静脉充盈，左手食指和 中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名 指及小指垫在下面，右手持注射器连6号针头尽量从 静脉的远端刺入，移动拇指于针头上以固定针头， 放开食指和中指，将药液注入，然后拔出针头，用 手压迫针眼片刻。
投入法可分为：鼻腔内投入、胃腔内投入、肠管
内投入、气管内投入和经口腔投入。 以下将各种动物的主要给药途径和方法做一介绍。
（一）皮下注射
皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚 鼠在后腿的内侧或小腹部；大白鼠可在侧下 腹部。兔在背部或耳根部注射。蛙可在脊背 部淋巴腔注射。
（二）皮内注射
皮内注射时需将注射的局部脱去被毛，消 毒后，用左手拇指和食指按住皮肤并使之绷 紧，在两指之间，用注射器连4(1/2)细针头， 紧贴皮肤表层刺入皮内，然后再向上挑起并 再稍刺入，即可注射药液，此时可见皮肤表 面鼓起一白色小皮丘。
三、家兔的采血方法 1．心脏采血 2．耳中央动脉采血 3．耳静脉采血
四、狗、猫的采血方法
1．后肢外侧跗外静脉、内侧隐静脉、前肢内侧 皮下头静脉采血
2．股动脉采血 3. 心脏采血同大、小鼠心脏采血 4．耳缘静脉采血同兔耳缘静脉采血
采血方法的选择，决定于实验目的所需血量以及 动物种类。凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、 血红蛋白的测定，血液涂片以及酶活性微量分析法 等，可刺破组织取毛细血管的血。当需血量较多时 可作静脉采血。静脉采血时，若需反复多次，应自 远离心脏端开始，以免发生栓塞而影响整条静脉。