流式细胞术的样品制备课件
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《流式细胞术的原理》PPT课件
光学系统
电子系统
流式细胞仪的工作原理
散射光信号
前向角散射光〔FSC，Forward Scatter〕： 细胞相对大小及其外表积 侧向角散射光〔SSC，Side Scatter〕： 细胞颗粒度及细胞核相对复杂性
散射光信号
荧光信号
特异荧光信号
背景信号
荧光素
•什么是荧光及荧光素？ •某些物质在特定波长范围内的光线照射下，可发出波长比照射 光波长长的光线-即荧光。而这些受激发后能产生荧光的物质称 为荧光素。 •什么是荧光发生机理？ •室温下的荧光素分子大局部处于稳定的“基态〞。当荧光素在 激发光的照射下吸收足够的光能后，跃迁到新的状态，即“激发 态〞。处于激发态的荧光分子极不稳定，它可以通过极短时间
•液流驱动系统
Fluorescence signals
Focused laser beam
鞘液三大作用： 防止堵塞喷孔 约束样本位于喷嘴中心、提高测量精度 保持细胞活性
液流系统
对灵敏度要求不是很苛刻的实验，可调高样本进样速率，从而 提高采样分析速度。
光学系统
主要由激发光源、光束成形及收集系统组成
荧光染料的选择
1，首先，了解目标抗原 1〕细胞外表抗原 2〕细胞内或是核内抗原〔固定、透膜步骤〕 3〕以上两者兼备。先标记外表抗原，固定后，破膜标记 胞内抗原。 4〕细胞内细胞因子的测定。使用细胞内蛋白分泌抑制剂， 如monensin、BFA，使得细胞因子不能分泌到细胞外。 〔活化、固定、透膜〕
《流式细胞术的原理》 PPT课件
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流式细胞术课件
b.荧光抗体标记：使用同厂家、同批次抗体，足量、足程标记， 抗体过少或过量均会出现问题.
11
FCM使用注意事项
c.减少非特异染色：充分洗掉未结合抗体，使用间 标抗体注意非特异背景干扰（如Fc受体）.
d.每批、每步实验条件要一致：如PBS、PH值、温度 等 .
e.未固定样本在2h内，固定样本24小时内测定完毕： 避免荧光强度衰减
完成仪器设置、数据获取、统（实习1）
1.开机
2.运行FACSComp：监测仪器工作状态并记录数据
3.建立获取模板
4.调出FACSComp生成的仪器条件 5.条件优化：用阴性和单阳性样本确定电压、补偿和域值，确 定获取的目的细胞数＞10000 6.确定存储数据的地址
7.记录数据
8.分析数据：建立分析模板-调出已存储的原始数据-调整 Gate(门)或 Region(区域)-设置Marker(标尺)-显示象限统计框 （Quadrant Stats） -打印分析数据
对计数 绝对值
2）ProCOUNT：造血干/祖细胞自动化分析，报告CD34+细胞 3）HLA-B27分析软件：血液T淋巴细胞HLA-B27定量分析 4）ReticCOUNT：网织红细胞自动化分析
6
BD仪器软件
5）ModFit软件：DNA周期、倍体和凋亡的自动或手动分析 6）QuantiCALC：荧光定量分析，报告每个细胞抗体结合量 （ABC），要检测白细胞表面分化抗原和细胞活化指标 7）PAINT-A-GATE：多维参数资料分析，同时分辨显示多个 细胞群体 8）ATTRACTOR软件：多参数资料的自动快速批量分析
22
23
•DNA分析时，FSC、SSC和FL2都应使用线性模式采集信号。
•调节FL2的电压，使FL2-A的G1期细胞的峰位于200道数 的位置上。
流式细胞术实验技巧及数据分析ppt课件
FITC+T red
488
568
FITC+PeCy5 488
FITC+ ECD
488
F+P +PeCy5
488
F+ ECD +PeCy5 488
F+P +PeCy5 +APC 488
633
525 、575
绿色、橙色
525
绿色
615
红色
525、 675
绿色、 红色
525、 625
绿色、橙红色
525、575、675
17
流式细胞术操作流程：
培养细胞 新鲜组织 石蜡包埋
单细胞悬液 制备
荧光抗体标记
上机检测
表型测定 细胞分选
统 计 学 分 析
FISH PCR
继 续 培 养
18
单 分 散 细 胞
19
FSC
FSC信号的强弱与细胞的大小和活力相关
20
SSC
SSC信号的强弱与细胞内颗粒多少相关
21
细胞散色光信号
22
排除双联体细胞
27
细胞阻滞在G2M期
28
双 克 隆 细 胞 周 期 分 析
29
BrdUrd和DNA双标记染色
溴脱氧尿嘧啶核苷( Bromodeoxyuridine， BrdUrd )是胸苷的一种类似物。它可以替代
胸腺嘧啶掺入到细胞新合成的DNA分子中，成为S 期细胞的一种标记物。流式细胞术采用抗BrdUrd 单克隆抗体免疫荧光和PI双参数检测细胞，不仅 可检测一个细胞群体的动力学参数和DNA含量，同
层流是液体稳定流动的必要条件,管道中层流 的形成要满足雷诺数
流式细胞术原理及应用通用课件
抗菌药物敏感性测试
通过流式细胞术可以检测细菌对抗菌药物的敏感性，为临床合理用 药提供科学依据。
05 流式细胞术的数 据分析与解读
数据文件类型与读取方式
FCS文件
流式细胞术数据文件常用FCS格式，可以使用专业软件（如FlowJo、Cytobank 等）或编程语言（如R、Python等）读取和处理。
快速检测。
多参数分析：可同时检测细胞 的多个参数，如大小、形态、
内部结构、表面抗原等。
灵活性：可根据研究需求灵活 调整检测参数和实验方案。
流式细胞术的应用范围
01
02
03
04
05
基础医学研究
临床医学诊断
用于细胞生物学、免疫学、 辅助临床疾病的诊断、病
遗传学等领域的基础研究， 情评估和疗效观察，如白
历史发展
起源：流式细胞术起源于20世纪60年代，当时为了满足生物医学研 究中对细胞快速、准确分析的需求。
技术发展：随着激光技术、计算机科学和生物学的不断进步，流式细 胞术逐渐发展成为一项高精度、高通量的细胞分析技术。
技术原理与特点
技术原理
液态样本流动：将细胞悬浮于液体中，形成细胞悬液，通过微管道连续流动。
数据读取方式
数据读取方式分为文件导入和实时获取两种。文件导入方式是将存储在硬盘中的 FCS文件导入到分析软件中，而实时获取方式则是通过流式细胞仪与电脑连接， 直接将数据获取到分析软件中。
数据预处理与质量控制
数据清洗
去除噪声、杂质和不必要的信号，以减少分析时的干扰和误差。
补偿调 整
对于多色荧光染色，需要进行荧光补偿调整，以消除荧光染料间的 交叉干扰。
多模态流式细胞术
多模态流式细胞术允许在单个平台上整合多种检测技术，如荧光共振能量转移 （FRET）、质量细胞术等，从而提供更丰富的细胞信息。
通过流式细胞术可以检测细菌对抗菌药物的敏感性，为临床合理用 药提供科学依据。
05 流式细胞术的数 据分析与解读
数据文件类型与读取方式
FCS文件
流式细胞术数据文件常用FCS格式，可以使用专业软件（如FlowJo、Cytobank 等）或编程语言（如R、Python等）读取和处理。
快速检测。
多参数分析：可同时检测细胞 的多个参数，如大小、形态、
内部结构、表面抗原等。
灵活性：可根据研究需求灵活 调整检测参数和实验方案。
流式细胞术的应用范围
01
02
03
04
05
基础医学研究
临床医学诊断
用于细胞生物学、免疫学、 辅助临床疾病的诊断、病
遗传学等领域的基础研究， 情评估和疗效观察，如白
历史发展
起源：流式细胞术起源于20世纪60年代，当时为了满足生物医学研 究中对细胞快速、准确分析的需求。
技术发展：随着激光技术、计算机科学和生物学的不断进步，流式细 胞术逐渐发展成为一项高精度、高通量的细胞分析技术。
技术原理与特点
技术原理
液态样本流动：将细胞悬浮于液体中，形成细胞悬液，通过微管道连续流动。
数据读取方式
数据读取方式分为文件导入和实时获取两种。文件导入方式是将存储在硬盘中的 FCS文件导入到分析软件中，而实时获取方式则是通过流式细胞仪与电脑连接， 直接将数据获取到分析软件中。
数据预处理与质量控制
数据清洗
去除噪声、杂质和不必要的信号，以减少分析时的干扰和误差。
补偿调 整
对于多色荧光染色，需要进行荧光补偿调整，以消除荧光染料间的 交叉干扰。
多模态流式细胞术
多模态流式细胞术允许在单个平台上整合多种检测技术，如荧光共振能量转移 （FRET）、质量细胞术等，从而提供更丰富的细胞信息。
实用流式细胞技术及其样品处理ppt课件
G0/G1
G2/M
Aneuploid peak
S
# of Events
PI
0
200
400
600
800
1000
PI
必须用RNase去除RNA
精选课件
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DNA合成---BrdU Incorporation
BrdU+ 或 S期细胞
凋亡细胞
G0/G1期精细选胞课件
G2/M期细胞
32
增殖细胞核抗原（Proliferating cell nuclear antigen，PCNA）: 参与DNA复制和核酸的 切补修复（excision repair ）的一种蛋白
Skatron, Partec, Dako (Galaxy), Cytomation (MoFlo).
July 2002 : DakoC精yt选om课a件tion: Cyan benchtop.
24
精选课件
25
Long pass
460 500 540
滤光片
Short pass
460 500 540
Data are stored in so-called flow cytometry standard (FCS) format.
Data stored on one cytometer may not be analyzable
on software from another cytometer.
FACS I,II,III,IV,400,420,440,FACStar,Vantage, DiVa, Aria : Sorters. FACS Analyser, can, Calibur* , LSR, Canto: ‘Benchtop’.
流式细胞术(免疫学检验课件)
Region设置 Gate设置
第四节 FCM的临床应用
一、淋巴细胞亚群分析
淋巴细胞是机体免疫系统中的一群重要细胞群， 是执行免疫功能和参与免疫调节的免疫活性细胞， 主要分为T细胞、B细胞和NK细胞3大类。
不同淋巴细胞表达的CD抗原都有独自的抗原特性， 在临床疾病发生过程中对各淋巴细胞的CD抗原进 行测定，对于判断机体免疫功能状态、了解免疫 相关疾病的发病机制具有十分重要的意义。
最常用的方法是酶消化法、机械法、化学处理法 和表面活性剂处理法等。
（四）石蜡包埋组织单细胞悬液制备
该制备方法的建立扩大了流式细胞术的应用范围， 有利于进行临床回顾性研究和利用。
常用的方法有二甲苯脱蜡法、组织清洁剂脱蜡法和 甲氧-双氧水处理法。
石蜡切片一般适宜厚度是40μm~50μm，脱蜡须彻底， 获取组织后，用酶进行消化处理，消化时间不宜过 长，以免细胞核被消化溶解，经过滤、漂洗后即可 获得单细胞悬液。
三、三参数直方图
三维坐标均为参数 （散射光或荧光）而 非细胞数
对复杂的细胞亚群观 察更为直观、准确， 但对其数据的统计分 析较难
四、多参数组合分析
FCM常常需要分析三个以上的参数，但软件技术 能够无法显示四维空间结构。
随着FCM多色荧光信号检测的发展，所得到的荧 光信号和散射光信号需根据需要进行组合分析以 获得所需的信息。
SSC信号的强弱与 细胞内颗粒结构的 质量成正比，用于 检测细胞内部结构 属性
前向散射光示意图 细胞大小
结构复杂程度
侧向散射光示意图
血
液
白
细
胞
粒细胞
散
点
单核细胞
图
淋巴细胞
荧光信号：由待检细胞上标记的特异性荧光染料 受激光激发后产生。
流式细胞术PPT课件
电荷式分选
lasers
–超声振动器(15-100kHz)
–液流充电系统
–高压偏转板
–收集装置(流式管、培养板)
断裂点(充电) 高压偏转板
29
四路分选原理
电荷式分选装置
30
分选指标
• 分选时间由三方面决定：进样速度、目标细胞所占比例、 需要收集的细胞数。
需要细胞数
目标细胞所占比例(%)
1
5
50
104
• Hoechst（343, 450）常见为Hoechst33342和Hoechst33258，非嵌入的 方式与DNA链上的A-T碱基对结合。能对活细胞染色，用于活细胞 DNA定量分析，如精子分选；还用于侧群细胞的分选。
• PY（派若宁 560, 573） RNA染料，能进入活细胞。
• AO（吖啶橙 509, 525） DNA、RNA染料，染色后DNA呈黄绿色荧光， RNA呈橙黄色荧光，可进行DNA/RNA双参数分析。
• 多色标记荧光素搭配原则：每个通道只能选择一种荧光素； 各个通道之间的荧光素可以随意搭配。
FACSCalibur常用四色搭配：FITC、PE、PerCP、APC。
33
B 根据抗原表达强弱合理选择 抗体
• 不同的荧光素强度有所不同；
CD5
• 高表达的抗原可用不太“亮” 的染料，更“亮”的荧光素分 配给表达低的抗原：
99%以上。 • 分选收获率是指被分选出的细胞与原来总细胞的百分比。 • 分选纯度和收获率永远是相互矛盾的，纯度提高，收获率
降低，反之亦然。
– 富集模式(enrich mode) – 纯化模式(purify mode) – 单细胞模式(single cell mode)
流式细胞术精品PPT课件
4
四、 流式细胞术的应用
1 细胞DNA含量检测：
细胞固定后用PI染色，因为PI特 异性结合于细胞DNA，荧光强度与PI 的结合量呈良好的线性关系，根据这 个原理，并通过专用的DNA分析软件， 可测出细胞的DNA含量。用于细胞周 期、细胞倍体以及凋亡的检测。
5
• 肿瘤诊断：
•
DNA异倍体的出现是癌变的一个重
• 一、 流式细胞术的概念 流式细胞术（FCM）就是对在的鞘
液包括下的细胞、粒子进行分析和分选 的技术，这种细胞或粒子是经过特异荧 光标记的。其特点是测量速度快，每秒 钟能测数千个乃至上万个细胞，且可进 行多参数测量，另一特点是在分析的同 时可把具有指定特征的细胞分离出来， 这就是分选技术。
1
二、流式细胞仪的工作原理
产生及发展，现在CD系统已有247种之多。
细胞用带有荧光的单克隆抗体标记后，用
流式细胞仪可对其进行检测分析，可分析
出荧光细胞的含量，也可分析出这种阳性
细胞的CD分子的相对含量。标记的方法一
般用直标法，也可用间标法。荧光探针多
为FITC、PE、PE-CY5、PerCP、CY5、
APC等。
9
淋巴细胞分类：
•
红细胞表面CD59缺失
18
5 细胞内蛋白的分析：
•
细胞破膜后将细胞内某一蛋白成分进行荧
光标记，用流式细胞仪进行测量分析，同表型
分析一样，可以测量出这种阳性细胞的数量和
这种蛋白的相对含量。并且，结合细胞表型分
析，进行多标记和多参数分析，可以检测出含
这种蛋白的细胞是属于哪一种表型的细胞。多
用间标法，荧光探针多为FITC。也可以与周期
27
•
流式细胞仪对一个样品提供的结果是否可
四、 流式细胞术的应用
1 细胞DNA含量检测：
细胞固定后用PI染色，因为PI特 异性结合于细胞DNA，荧光强度与PI 的结合量呈良好的线性关系，根据这 个原理，并通过专用的DNA分析软件， 可测出细胞的DNA含量。用于细胞周 期、细胞倍体以及凋亡的检测。
5
• 肿瘤诊断：
•
DNA异倍体的出现是癌变的一个重
• 一、 流式细胞术的概念 流式细胞术（FCM）就是对在的鞘
液包括下的细胞、粒子进行分析和分选 的技术，这种细胞或粒子是经过特异荧 光标记的。其特点是测量速度快，每秒 钟能测数千个乃至上万个细胞，且可进 行多参数测量，另一特点是在分析的同 时可把具有指定特征的细胞分离出来， 这就是分选技术。
1
二、流式细胞仪的工作原理
产生及发展，现在CD系统已有247种之多。
细胞用带有荧光的单克隆抗体标记后，用
流式细胞仪可对其进行检测分析，可分析
出荧光细胞的含量，也可分析出这种阳性
细胞的CD分子的相对含量。标记的方法一
般用直标法，也可用间标法。荧光探针多
为FITC、PE、PE-CY5、PerCP、CY5、
APC等。
9
淋巴细胞分类：
•
红细胞表面CD59缺失
18
5 细胞内蛋白的分析：
•
细胞破膜后将细胞内某一蛋白成分进行荧
光标记，用流式细胞仪进行测量分析，同表型
分析一样，可以测量出这种阳性细胞的数量和
这种蛋白的相对含量。并且，结合细胞表型分
析，进行多标记和多参数分析，可以检测出含
这种蛋白的细胞是属于哪一种表型的细胞。多
用间标法，荧光探针多为FITC。也可以与周期
27
•
流式细胞仪对一个样品提供的结果是否可
流式细胞术课件
抗体使用原则
Ø 根据仪器型号和抗原表达强弱合理选择荧光 抗体
Ø 低表达抗原标记高S/N（信噪比）荧光素， 如PE、APC
Ø 使用双标以上抗体必做荧光补偿
几种常见的荧光染料
细 胞 悬 液
激光
FITC 异硫氰酸荧光素
Texas red 得州红
PE.PC.APC 藻胆蛋白类 PEcy5 能量传递复合染料
原理：细胞在有丝分裂的过程中 DNA 会加倍。 （n----2n）
以二倍体细胞为例，流式检测细胞周期的过程。 首先，我们知道细胞分为处于静止期的细胞 （G0）和处于分裂状态的细胞，分裂期状态的 细胞又有 G1 期，S 期,G2 期和 M 期。
Flow cytometry of cell cycle
线粒体功能的变化
TMP会在凋亡中产生，可以通过一些标记用流 式细胞仪检测。使用有膜穿透性的亲脂性阳离 子荧光染料，如Rh123, DiOC6, JC-1,CMXRos 等，可作为流式检测的探针。
当细胞发生凋亡时，一个线粒体膜表面蛋白— —7A6抗原会出现
Bcl-2/bax family of proteins.
酸化的检测同样可以用对pH敏感的荧光探针，如 DCH, BCECF, BCECF-AM, SNAFLs, SNARFs等进行检测
Flow cytometry of apoptotic cell death
Phospholipid redistribution
第七节 细胞周期的检测
Flow cytometry of cell cycle
光 强
Ø便于数据统计
度
Ø不同的细胞群可
以用不同的色标
记
Ø主要表达方式
绿色荧光强度
流式细胞术ppt课件
可区分高FL细胞与低FL细胞。 一般的流式细胞仪装有一个激光光源（488nm），可
测出三个FL，即FL1、FL2、FL3，大型的流式细胞仪 装有三个激光光源（488nm、633nm和407nm），可测 出13个FL。
2、荧光信号
双色直接染色
二、荧光染料的选择
选择荧光染料要考虑: 1、流式细胞仪配置的激光可否激发该荧光染料； 2、流式细胞仪可否检测该荧光染料的发射波长； 3、使用多种荧光染料时，要考虑荧光染料之间的干扰。
二、荧光染料的选择
颜色补偿
➢荧光染料的发射波长范围一般宽于检测器检测到的波 长范围；检测范围之外的波长可能会进入相邻的检测器 被检测，从而造成荧光信号之间的干扰。流式细胞仪可 以通过“颜色补偿”校正这一干扰。 ➢ 单标管用于调补偿。
Fluorescein (FITC)
300 nm
400 nm
Excitation
500 nm
Wavelength
Emisson
600 nm
700 nm
400 nm
500 nm
600 nm
700 nm
Protein
Phycoerytherin (PE)
300 nm 400 nm
Excitation Emisson
500 nm
600 nm
700 nm
Protein
FITC和PE荧光光谱
直接染色
间接染色
样品制备过程中常见的问题及解决对策
常见问题 细胞密度低 非特异荧光
强
碎片多 细胞聚集
荧光弱
原因 细胞损失 抗体不纯、死细胞多
细胞死亡、机械损伤 消化不完全
抗体少、反应时间短
解决对策 增加离心时间、弃上清 选择纯度高的抗体、用同型 对照抗体或双标记排除非特
测出三个FL，即FL1、FL2、FL3，大型的流式细胞仪 装有三个激光光源（488nm、633nm和407nm），可测 出13个FL。
2、荧光信号
双色直接染色
二、荧光染料的选择
选择荧光染料要考虑: 1、流式细胞仪配置的激光可否激发该荧光染料； 2、流式细胞仪可否检测该荧光染料的发射波长； 3、使用多种荧光染料时，要考虑荧光染料之间的干扰。
二、荧光染料的选择
颜色补偿
➢荧光染料的发射波长范围一般宽于检测器检测到的波 长范围；检测范围之外的波长可能会进入相邻的检测器 被检测，从而造成荧光信号之间的干扰。流式细胞仪可 以通过“颜色补偿”校正这一干扰。 ➢ 单标管用于调补偿。
Fluorescein (FITC)
300 nm
400 nm
Excitation
500 nm
Wavelength
Emisson
600 nm
700 nm
400 nm
500 nm
600 nm
700 nm
Protein
Phycoerytherin (PE)
300 nm 400 nm
Excitation Emisson
500 nm
600 nm
700 nm
Protein
FITC和PE荧光光谱
直接染色
间接染色
样品制备过程中常见的问题及解决对策
常见问题 细胞密度低 非特异荧光
强
碎片多 细胞聚集
荧光弱
原因 细胞损失 抗体不纯、死细胞多
细胞死亡、机械损伤 消化不完全
抗体少、反应时间短
解决对策 增加离心时间、弃上清 选择纯度高的抗体、用同型 对照抗体或双标记排除非特
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二、实体组织单分散细胞的制备
㈠新鲜实体组织
新鲜实体组织是手术或活检后根据 检测目的而采取的样品，此样品应及时 进行适当的保存处理，如及时用固定剂 或低温对组织进行保存，以避免由于室 温过高、放置时间过长而造成组织自溶， 影响检测结果。
各种酶的分散程度都有一定的限制性，特别是在进行免 疫标记实验时，酶处理可能改变细胞膜的成分，从而影响细 胞亚群的区分。应指出，用于组织分散的很多酶是不够纯的， 不仅含有一种占主导的酶，而且在不同程度上也混有其他污 染物质，它们的活性可能有利于组织分散，也可能对组织的 结构或功能产生不利的影响。
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﹡一是可以破坏组织间的胶原。
﹡二是可以水解组织细胞的紧密连结装置的蛋白性物质。
﹡三是可以水解组织间的粘多糖物质。
酶消化法是实体组织分散为单细胞的主要方法，常用 的酶类试剂有：
• 蛋白酶类，(如胃蛋白酶，木瓜蛋白酶，链蛋白酶和中性 蛋白酶等)都能够释放所有组织中的细胞； • 胰酶，能水解脂键和肽键； • 胶原酶，能降解几种分子类型的胶原； • 溶菌酶，能水解糖蛋白和肽的糖苷键； • 弹性蛋白酶，能消化连接组织的糖蛋白和弹性蛋白的纤 维，可用于解离血管、心脏和肝脏的细胞。
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FCM的样品制备包括单分散细胞悬液制备 技术，细胞生物学特征标记技术及荧光染色技 术，FCM是对细胞或细胞器的结构和某些功能 进行定量测定，并可以根据细胞亚群的特点性 质对其进行分类的技术。
FCM的实验对象是单细胞或单细胞核的悬液，在 FCM技术中制备出合格的单细胞悬液是非常重 要的环节，这些单细胞悬液主要来源于单层细 胞、血液、脱落细胞、实体组织及石蜡包埋组 织等。
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为使组织细胞分散下来，应用酶学方法必须注意条件的 选择和影响因素：
※ 酶需要溶解于适当的溶液中，而这种溶液不致于造成 酶效 价降低
※ 注意组织在消化液中的消化时间
※注意酶活性的PH值 ※ 注意酶的适用浓度
※ 随时注意影响酶活性的其他因素
பைடு நூலகம்
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网搓法： ①将100目铜网扎在小烧杯上。 ②把剪碎的组织放在网上，以眼科镊子轻轻搓组织
块，边搓边用生理盐水冲洗，直到将组织搓完。 ③用300目的尼龙网过滤细胞悬液除去大的团块 ④收集细胞悬液，离心沉淀1000prm，5分钟。 ⑤70%乙醇固定，置4℃冰箱备用。
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研磨法 准备一只70ml组织研磨器 ①将组织剪碎至小块。 ②放入组织研磨器中，加入1-2ml生理盐水。 ③转动研棒，研至匀浆即可。 ④加入生理盐水10-20ml，冲洗研器。 ⑤收集细胞悬液，并经300目尼龙网过滤，离心
沉淀500-800prm，1-2分钟，再用生理盐水洗三 次，离心沉淀。
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新鲜实体组织单细胞悬液制备方法如下：
⒈酶消化法 ⒉机械法
剪碎法 网搓法 研磨法
⒊化学试剂处理法
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⒈酶消化法
酶对实体组织分散作用原理主要有三方面：
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（二）悬浮培养细胞单细胞悬液的制备
操作步骤： 1、离心去除旧培养液，PBS液洗涤细胞一次，离心去掉
上清液，约留0.5ml细胞悬液，用振荡器使细胞分散。 2、如果不是及时上机检测，则需要对细胞进行固定，常
规固定液为70%乙醇，然后保存于4℃冰箱中。
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⒉机械法 机械法分裂实体组织包括：用剪刀剪碎或
用锋利的解剖刀剁碎，用匀浆器匀浆，用细注 射针头抽吸细胞以分散细胞，采用网搓法同样 也能获得大量的细胞，机械法易造成细胞悬液 中细胞碎片，所以机械法常与其他方法配合使 用。
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酶学方法的一般程序： ①将适合于酶消化的组织置于离心管中。 ②将选好的酶溶液1-2ml加入盛有被消化组织的试
管中。 ③一般消化20-30分钟(恒温37ºC或室温)，消化期
间要间接振荡或吹打。 ④终止消化，收集细胞悬液，以尼龙网(200目)过
滤，除去大团块，以低速离心除去细胞碎片。 ⑤将制备好的单细胞进行流式细胞术分析或保存。
常用的几种机械法制备过程如下： 剪碎法：
①将组织块放入平皿中，加入少量的盐水。 ②用剪刀将组织剪至匀浆状。 ③加入10ml生理盐水。 ④用吸管吸取组织匀浆，先以100目尼龙网过滤到试管中。 ⑤离心沉淀1000prm3-5分钟，再用生理盐水洗三次，每
次以短时低速离心沉淀(500-800prm)去除细胞碎片。 ⑥以300目尼龙网过滤除去细胞团块。 ⑦70%冰乙醇固定，放入4℃冰箱。
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⒊化学试剂处理法
化学试剂处理法的主要原理是将细胞间起粘连作用 的钙镁离子置换出来，从而使细胞分散下来。 试剂配制： ①0.2%EDTA配制 EDTA0.2g溶解后，加入Hank´s液100ml，封装高压消 毒，置0-4℃保存。 ②胰酶加EDTA配制 胰酶0.25g+PBS(PH7.0)200ml，浓度0.125%， EDTA0.2g+PBS(PH7.0)200ml，浓度0.2%。 各取40ml混合，分装置冰箱保存，用时过滤既可。
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一、单层培养细胞分散为单个细胞
㈠贴壁的单层培养细胞单细胞悬液的制备
操作步骤： 1、将单层培养细胞(对数生长期)中的旧培养液倒掉。 2、加入少量0.25%胰酶，消化细胞，在倒置显微镜下观
察，见细胞稍变圆时，立即终止消化（假如含有10%胎 牛血清的培养基），收集细胞，离心后去上清，PBS液 洗涤细胞一次，离心去掉上清液，约留0.5ml细胞悬液， 用振荡器使细胞分散。 3、如果不是及时上机检测，则需要对细胞进行固定，常 规固定液为70%乙醇，然后保存于4℃冰箱中。