抗生素生物效价测定

实验一抗生素生物效价测定

【实验目的】

1. 掌握抗生素生物效价测定的原理和方法；

2. 掌握管碟法测定抗生素生物效价相关的操作方法。

【实验原理】

抗生素的效价常采用微生物学方法测定，它是利用抗生素对特定的微生物具有抗菌活性

的原理来测定抗生素效价的方法，如管碟法。管碟法是目前抗生素效价测定的国际通用方法，

我国药典也采用此法。管碟法是根据抗生素在琼脂平板培养基中的扩散渗透作用，比较标准品和检品两者对试验菌的抑菌圈大小来测定供试品的效价。管碟法的基本原理是在含有高度

敏感性试验菌的琼脂平板上放置小钢管(内径6.0 ±).1 mm外径8.0 ±).1 mm高10 ±). Imm)，

管内放人标准品和检品的溶液，经16~18小时恒温培养，当抗生素在菌层培养基中扩散时______ 会形成抗生素浓度由高到低的自然梯度，___ 即扩散中心浓度高而边缘浓度低。_因此，当抗生素

圈直径的平方成线性关系，—比较抗生素标准品与检品的抑菌圈大小，可计算出抗生素的效价。

常用的管碟法有：一剂量法、二剂量法、三剂量法。后二法已经列入药典。二剂量法系将抗生素标准品和供试品各稀释成一定浓度比例( 2:1或4:1 )的两种溶液，在同一平板上

比较其抗药活性，再根据抗生素浓度对数和抑菌圈直径成直线关系的原理来计算供试品效价。取含菌层的双层平板培养基，每个平板表面放置4个小钢管，管内分别放入供试品高、

低剂量和标准品高、低剂量溶液。先测量出四点的抑菌圈直径，按下列公式计算出检品的效价。

(1)求出W和V：W=( SH+UH -( SL+UL (

V= (UH+UL - (SH+SL (

式中：UH供试品高剂量之抑菌圈直径；

UL：供试品低剂量之抑菌圈直径；

SH标准品高剂量之抑菌圈直径；

SL：标准品低剂量之抑菌圈直径；

(2)求出0：匸Dantilog (IV/W) (

式中：0供试品和标准品的效价比；式 2.10-1)

式 2.10-2)

式 2.10-3)

D:标准品高剂量与供试品高剂量之比，一般为1;

I :高低剂量之比的对数，即Iog2或Iog4。

(3)求出Pr : Pr = Ar XQ ( 式 2.10-

4)

式中：Pr:供试品实际单位数；

Ar :供试品标示量或估计单位。

【实验材料和仪器】

1. 实验材料

(1)菌种：大肠杆菌(Escherichia coli ),菌液浓度约为106个/mL。菌株保存的时间过久，影响其对抗生素的敏感度，导致抑菌圈变大、模糊或者出现双圈。如若菌株不纯，也会

造成这样的结果。因此，菌液在使用一段时间后，可以重新配制纯化或者减小原来菌液在使用中的稀释倍数。

(2)抗生素标准品和供试品：头孢拉定标准品和供试品。

(3 )培养■基: 效价检定用培养基1号。

(4)无菌缓冲液：称取磷酸氢二钾 5.59g，磷酸二氢钾0.41g，加水1000mL即为pH 7.8 的磷酸盐缓冲液。制备缓冲液的试剂应为分析纯，配制后的缓冲液应澄清，分装于玻璃容器内，经121 C蒸气灭菌30 min备用。

2. 实验仪器

无菌室、培养皿(直径9 cm) ＞陶瓦盖、钢管、钢管放置器、恒温培养室、灭菌刻度吸管、玻璃容器、称量管、毛细滴管、天平、直尺或游标卡尺、超净工作台等。

【实验步骤】

1. 称量

称量前，将抗生素标准品和供试品从冰箱取出，使与室温平衡，供试品应放于干燥器

内至少30 min方可称取。供试品与标准品应用同一天平；吸湿性较强的抗生素在称量前1~2小时更换天平内干燥剂。标准品称量不可少于20 mg取样后立即将称量瓶或适宜的容器及

被称物盖好，以免吸水。

称样量的计算：W=V*C/P ( 式2.10-4)

式中：W需称取标准品或供试品的重量( mg)

V :溶解标准品或供试品制成浓溶液时用容量瓶的体积量( mL)

C :标准品或供试品高剂量的浓度( U/mL,用/mL)

P :标准品的纯度或供试品的估计效价( U/mg,⑷/mg)

2. 稀释

从冰箱中取出的标准品溶液，必须先在室温放置，使其温度达到室温后，方可量取。

标准品或供试品溶液的稀释应采用容量瓶，每步稀释，取样量不得少于 2 mL,稀释步骤一

般不超过3步。每次吸取溶液用胖肚吸管或密刻度玻璃吸管，量取溶液前要用被量液流洗吸

管2~3次，吸取样品溶液后，用滤纸将外壁多余液体擦去，从起始刻度开始放溶液。稀释标准品与供试品用的缓冲液应同一批和同瓶，（预计不够时，应事先与另一瓶混匀后再用），以

免因pH或浓度不同影响预定结果。稀释时，每次加液至容量瓶近刻度前，稍放置片刻，待瓶壁的液体完全流下，再准确补加至刻度。标准品与供试品高低浓度之比为2:1或4:1，但

所选用的浓度必须在剂量反应直线范围内。

3. 双碟制备

在超净工作台上，用灭菌大口吸管（20 mL）,吸取已融化的培养基20 mL注入双碟内，

作为培养基的底层，等凝固后更换干燥的陶瓦盖覆盖，放置20~30 min，备用。取出试验用

菌悬液，按已试验适当的菌量（高浓度所致的抑菌圈直径18~22 mm，用灭菌吸管吸取菌悬

液加入已融化并保温在水浴中（一般细菌48~50C,芽孢可至60C）的培养基内，摇匀作为

菌层用。用灭菌大口5mL吸管，吸取菌层培养基 5 mL,使均匀摊布在底层培养基上，置水

平台上待凝固，用陶瓦盖覆盖，放置20~30 min，备用。

4. 放置钢管

用钢管放置器，或其他方法将钢管一致、平稳地放入培养基上，钢管放妥后，应使双碟

静置5~10 min，使钢管在琼脂内稍下沉稳定后，再开始滴加抗生素溶液。

5. 滴加抗生素溶液

每批供试品取5~10个双碟，滴加溶液用毛细滴管或定量加样器，在滴加之前须用滴加

液洗2~3次。在双碟的4个钢管中以对角线滴加标准品与供试品溶液的高、低二种浓度的溶液，滴加顺序为SH R TH R SL T TL，也可用SL~ TL~TH R SH= （S代表标准品，T代表供试品，H 代表高浓度，L代表低浓度），滴加溶液至钢管口平满，注意滴加溶液间隔不可过长，因溶液的扩散时间不同影响测定结果。滴加完毕，用陶瓦盖覆盖双碟，平稳置于双碟托盘内，双

碟叠放不可超过3个，避免受热不均，影响抑菌圈大小，以水平位置平稳移入35~37C恒温培养室，培养至所需时间。

6. 抑菌圈测量

用直尺或游标卡尺测量抑菌圈的直径，以毫米为单位，误差不超过0.1mm。