(优选)实验七营养缺陷型菌株的筛选

1、菌种培养收集洗涤 （第一天）
大肠杆菌接种于肉汤液体培养基，37℃静 止培养18~24小时（老师处理）。
无菌取10mL培养液放入无菌15mL离心管中， 3500转/分钟离心10分钟，弃上清液，留下 菌体沉淀。
在上述沉淀中加入5mL无菌生理盐水，悬 浮沉淀（均匀），备用。
2、诱变剂处理（第一天）
取上一步骤处理好后的菌悬液0.1mL加入到 5mL灭菌溶化后冷却至45-50 ℃基本固体培 养基（MMA）中（试管），快速搓动混匀 后（快速） ，倒入上述有底层的培养皿中， 铺满铺平，冷却凝固。——第二层
冷却凝固后，再倒入5mL灭菌溶化后冷却 至45-50 ℃基本固体培养基（MMA） ，铺 满铺平，冷却凝固。——第三层
目的要求
1、了解应用物理、化学因素对细菌进行诱 变的方法。
2、初步掌握诱变产生营养缺陷型菌株的筛 选与鉴定的方法技术。体会其相应的科学 理念。
实验原理 ——诱变及诱变剂说明
利用化学、物理等诱变手段诱发突变是遗传学研 究和育种工作的常用手段。
主要有DNA碱基化学性质改变引起置换、插入移 码、大片段畸变、碱基二聚体形成等。最终引起 遗传信息在复制中的改变。
（优选）实验七营养缺陷型菌 株的筛选
与营养要求有关的3种遗传型关系
培养基的基本概念 （按营养需求成分分）
与筛选营养缺陷型突变株有关的三类培养 基：
基本培养基（MM）：仅能满足某微生物的 野生型菌株生长所需要的最低成分的组合 培养基。——不同菌株的要求不同，此试 验要先确定，非常重要。
完全培养基（CM）：凡可满足一切营养缺 陷型菌株营养需要的天然或半组合培养基。
补充培养基：凡只能满足相应的营养缺陷 突变株生长需要的组合或半组合培养基。
营养缺陷型的用途
营养缺陷型在生产上和科学研究上用途 很大，主要有两方面应用：
1、是作为研究代谢途径和遗传规律及 育种技术不可少的标记菌种；
2、可直接用于生产氨基酸、核苷酸等 代谢产物——目的在于切断某些代谢途径 以积累中间代谢产生或切断一条代谢途径 而积累另一分支途径的末端产生。 ——解除代谢途径中的反馈抑制和阻遏。
3、淘汰野生型，浓缩缺陷型 （第Biblioteka Baidu天）
（4）培养24小时后，按1∶1加入2N基本培 养液5毫升（含青霉素钠盐2000单位/毫 升），使青霉素钠在菌液中的最终浓度约 为1000单位/毫升，再放入37℃温箱中培 养。——利用青霉素只作用于生长的细胞， 杀死在基本培养基中生长的野生型，留下 休眠不生长的缺陷型。
放入37 ℃恒温培养箱中，培养48小时。
培养好后，仔细观察培养皿，标记已生长出的菌 落。
标记好后，倒入5mL灭菌溶化后冷却至45-50 ℃肉 汤固体培养基（CMA） ，铺满铺平，冷却凝 固。——第四层——第六天内容
放入37 ℃恒温培养箱中，培养48小时。——第八天内容 再次仔细观察培养好培养皿，前后对照标记，找
实验步骤
1、菌种培养收集洗涤 2、诱变剂处理 3、淘汰野生型，浓缩缺陷型——基本培养
基
抗生素法：青霉素适用于细菌；制霉菌素 适用于真菌
菌丝过滤法：适用于丝状生长的真菌和放 线菌 4、检出缺陷型——夹层培养法 5、鉴定营养缺陷型（此步骤因时间关系不 再进行）——下学期《微生物学实验》中 有相关内容学习
未发生突变的野生型在两种培养基上都能 生长。
——筛选的理论依据
实验原理 ——营养缺陷型筛选的四个环节
第一步：诱变剂处理
第二步：淘汰野生型，浓缩缺陷型——基本培养 基（使营养缺陷型由少数变为多数）
抗生素法：青霉素适用于细菌；制霉菌素适用于 真菌
菌丝过滤法：适用于丝状生长的真菌和放线菌
高温杀菌法：利用芽孢和营养体对热敏感性的差 异。
（5）培养24小时后， 3500转/分离心10分 钟，用基本液体培养基重复离心洗涤三次， 悬浮于5mL基本培养液，备用。——去除 青霉素钠（第四天内容）
4、检出缺陷型——夹层培养法
（第四天）
取1无菌培养皿，倒入5mL灭菌溶化后基本 固体培养基（MMA） ，铺满铺平培养皿皿 底，凝固后形成底层。——第一层
本次实验利用紫外线进行诱变处理（主要是形成 嘧啶二聚体，引起后续DNA复制错误，达到诱变 的目的）。
诱变后需要暗培养（防止光复活作用）。
紫外线剂的控制——紫外灯的功率、照射距离、 照射时间。——（需要前期试验确定，杀菌率在 70%左右）
实验原理 ——营养缺陷型的培养生长情况
营养缺陷型在完全培养基（CM） 上生长良 好，而在基本培养基（MM） 上则不生长；
吸取上述洗涤悬浮好的菌悬液3mL，放至 60mm培养皿中，摇晃成薄层。
将上述培养皿（连盖）放在40W的紫外灯下， 距离30厘米（处理前先开紫外灯稳定30分 钟），灭菌1分钟，然后开盖处理5分钟。照 射完毕后，先盖上皿盖，再关紫外灯。
吸取3毫升2倍肉汤培养液到上述处理后的培 养皿中。置于37℃恒温培养箱内，避光培养 12小时以上。——诱变后DNA复制形成纯合 子过程。
第三步：检出缺陷型
第四步：鉴定营养缺陷型（此步因时间关系不再 进行）
实验材料
菌种：大肠杆菌 实验培养基：肉汤液体培养基（CM） ；肉
汤固体培养基（CMA）； 2倍肉汤液体培 养基（2×CM） ；基本液体培养基 （MM） ；基本固体培养基（MMA） ；无 N基本液体培养基（无N） ；2倍含N基本 液体培养基（2×N） 实验试剂：生理盐水；青霉素钠 实验器材：10mL带盖离心管、10mL吸管、 90mm培养皿、15×150mm试管（带硅胶 塞）、1mL刻度吸管（或微量加样枪和吸头）
注意紫外线防护（不要长时间暴露在其下）。
3、淘汰野生型，浓缩缺陷型 （第二天）
（1）吸5毫升紫外线处理过并重新培养的菌 液，放入已灭菌的15mL离心管，3500转/分 离心10分钟。
（2）倒去上清液，加入5mL生理盐水，打 散混匀沉淀，如此重复离心洗涤三次，加 生理盐水到原体积（5mL）。
（3）吸取经离心洗涤的菌液0.1毫升于5毫 升无N基本培养液，37℃培养12~24小 时。——缺营养情况下休眠菌体（饥饿处 理）。