无菌检测标准操作规程(培养法)

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医疗器械产品无菌检验操作规程

医疗器械产品无菌检验操作规程

医疗器械产品无菌检验操作规程在医疗领域,无菌检验是确保手术器械和医疗用品的无菌性的重要程序。

无菌检验的目的是保证医疗器械产品在使用过程中不会引发感染,从而保障病患的安全。

正确的操作规程对于无菌检验至关重要,下面将介绍一套涵盖多个方面的医疗器械产品无菌检验操作规程。

首先,在进行无菌检验之前,操作人员应当做好个人防护。

这包括正确佩戴防护手套、口罩、帽子和无尘服等。

这些措施旨在有效防止潜在的污染源对待检器械产生影响。

同时,操作人员要做到洁净双手,勤洗勤消毒。

其次,在检验过程中,操作人员应该严格执行消毒程序,确保工作环境的洁净度。

在操作过程中,应避免过多的谈话,减少细菌的传播。

同时,操作台面、工作区域和操作的器械等都应该进行定期的清洁和消毒。

只有保持良好的消毒环境,才能确保检验结果的准确性。

在实施无菌检验时,操作人员需要注意选择合适的检测方法。

根据医疗器械产品的特点和使用领域的不同,选择合适的指标和试验方法是十分重要的。

例如,一些高级手术器械需要进行生物指示器试验来检验其灭菌效果,而一些常用的医疗用品则可以通过物理指标进行检测,例如斯特林试验等。

在实施无菌检验时,操作人员也需要关注器械本身的无菌特性。

比如,要确保手术器械在运输过程中没有受到损坏或者污染。

同时,要保证器械的包装完好无损,防止任何尘土或异物进入包装内部。

另外,操作人员在进行无菌检验时,需要严格遵守操作规范,确保操作的严密性和准确性。

例如,在打开包装之前,要先检查包装是否完好,如发现有任何不正常情况,必须重新选择无菌包装进行检验。

在打开包装后,操作人员应在洁净工作台上进行操作,避免接触任何非无菌区域。

操作人员还需要关注无菌实验室的环境条件。

实验室的通风、温度和湿度等环境因素都会对无菌检验的结果产生影响。

因此,操作人员需要确保实验室的环境符合规范要求,并按照规程进行工作。

实验室设备也需要经过严格的校准和维护,确保其正常运行。

在无菌检验的过程中,操作人员还应该保持耐心和细心,遵守操作步骤,确保每一步都得到正确执行。

GMP-无菌检查操作规程

GMP-无菌检查操作规程

1.目的:建立无菌检查的标准操作规程,确保检验结果的准确性。

2.范围:适用于本厂质监科化验室对本厂生产的注射剂进行无菌检查。

3.责任:化验员有责任按本操作规程操作,并对检验结果负责。

4.定义:无菌检查法系指检查药品是否无菌的一种方法。

5.内容:5.1无菌操作设备:无菌操作室或超净工作台,无菌衣、口罩、帽子、消毒鞋、酒精灯等。

5.1.1无菌室分无菌操作室和缓冲间。

在缓冲间内应有洗手盆、干手器、无菌衣放置架及挂钩、拖鞋等。

无菌操作室应具有空气除菌过滤的层流装置,局部洁净度100级超净工作台。

缓冲间及操作室内均设置能达到空气消毒的紫外光灯和照明灯,操作室或工作台应保持空气正压。

5.1.2无菌室应每周和每次操作前用0.1%新洁尔灭或2%甲酚液擦拭操作台及可能污染的死角,开动无菌空气过滤器及紫外光灯杀菌1小时。

在每次操作完毕,同样用2%甲酚或0.1%新洁尔灭溶液擦拭工作台面,用紫外光灯杀菌半小时。

5.1.3无菌室的无菌程度检查:无菌室在消毒处理后,无菌试验前及操作过程中需检查空气中菌落数。

取直径90mm双碟,在接种室内点燃酒精灯,在酒精灯旁,以无菌操作,将双碟半开注入溶化的营养琼脂培养基约20ml,制成平板:在35-37℃预培养48小时,证明无菌后将3个平板以无菌方式带入无菌操作间的洁净区域左、中、右各放1个;打开碟盖扣置,平板在空气中暴露30分钟后将盖盖好,置35-37℃培养48小时,取出检查,3个平板上生长的菌落数相加总数不得超过10个。

无菌操作台面或超净工作台应定期请有关部门检测其洁净度,应达到100 级(一般用尘埃粒子计数仪),检测尘埃粒径≤5μm的粒数不得超过3.5个/升;空气流量应控制在0.75-1.0m3/s;细菌菌落数平均<1个,可根据无菌状况定期置换过滤器。

5.1.4无菌室内应准备好盛有消毒用5%甲酚的玻璃缸、酒精灯、火柴、镊子、75%酒精棉及拖鞋等。

5.2仪器、用具:5.2.1真空泵、恒温培养箱、生物显微镜、托盘天平(精度0.1g)、抽滤瓶(500ml)、三角瓶(100、500 ml)、移液管(1、10ml)、注射器(要求规格)、试管、双碟(9cm)、注射针、镊子、剪刀、白金耳、橡皮管、纱布、棉花(原棉)、不锈钢吸管筒、接种环、微孔滤膜(直径约5cm),孔径应在0.45±0.02μm )载玻片、洒精灯、取样勺、吸耳球、喷雾瓶。

sop无菌检查操作规程

sop无菌检查操作规程

sop无菌检查操作规程SOP无菌检查操作规程1. 目的本操作规程的目的是确保无菌检查操作的标准化和正确性,以保证无菌产品的质量和安全性。

2. 适用范围本操作规程适用于无菌产品的生产和质检过程中的无菌检查。

3. 责任与义务(1) 生产人员应确保在无菌检查操作中遵守本操作规程,并按照要求进行操作。

(2) 质检人员应按照本操作规程进行无菌检查,并确保检查准确性和可靠性。

(3) 监督人员应对生产和质检过程中的无菌检查进行监督,并及时发现和纠正操作不规范的情况。

4. 设备和试剂(1) 无菌工作台:具备净化和无菌过滤功能的工作台。

(2) 紫外线灯:用于灭菌工作台和无菌操作区域的紫外线照射。

(3) 无菌检查培养基:用于培养和检测无菌产品中的微生物。

(4) 无菌接种环:用于取样和转移样品至培养基。

5. 操作步骤5.1 环境准备(1) 打开无菌工作台并等待净化系统启动,确保工作台内部洁净无菌。

(2) 打开紫外线灯,照射工作台和操作区域20分钟,杀灭空气和表面的细菌。

(3) 把无菌检查培养基准备好,摆放在无菌工作台上。

5.2 样品准备(1) 取无菌接种环,焰烧消毒后待其冷却。

(2) 打开无菌产品包装,取出样品。

(3) 用消过毒的剪刀将样品切取一小块,果皮向内。

5.3 样品接种(1) 将取好的样品迅速转移到无菌工作台上的无菌检查培养基上。

(2) 将样品放在培养基的中央,轻轻压一下以确保样品与培养基接触。

(3) 焚烧消毒无菌接种环,接种环冷却后用它切取一部分培养基上样品。

5.4 培养(1) 将接种好的无菌检查培养基盖好,记录好样品的相关信息。

(2) 将培养基培养在恒温培养箱中,温度设置为适宜的培养温度。

(3) 根据培养基的类型,进行适当的培养时间。

5.5 结果判断(1) 在培养时间到达后,观察培养基上是否有细菌生长。

(2) 如果培养基上有细菌生长,表示样品不符合无菌要求。

(3) 如果培养基上没有细菌生长,表示样品符合无菌要求。

无菌检验标准操作规程(SOP)

无菌检验标准操作规程(SOP)

目的:制定无菌检验标准操作规程,确保检验操作正确。

范围:本标准适用于本公司大容量注射剂无菌检验操作。

责任者:质管部、化验室主任、QC检验员内容:1、标准依据:《中国药典》2015年版二部附录XI H。

2、简述:无菌检查方法系用于检查药品是否无菌的一种方法。

检查项目包括需气菌、厌气菌及真菌检查。

若供试品符合该项检查方法的有关规定,仅表明了在该检验条件下未发现微生物污染。

3、环境要求:该项检查应在环境洁净度万级(C级)背景下的局部百级(A级)的单向流区域内或隔离系统中进行。

其全过程必须严格遵守无菌操作。

防止微生物污染,但所采取的措施不得影响供试品中微生物的检出。

操作前环境洁净度应经验证。

日常检验需对试验环境进行监控。

5、方法验证:进行该项检查前应按照《无菌检查方法验证规程》确认该方法的适用性。

4、人员要求:无菌检查人员必须具备微生物专业知识,并经过无菌技术培训。

6、检验数量及检验量:6.1、接种每种培养基所需的最少检验数量:2%或10个(取较少者),供试品无菌检查若采用薄膜过滤法,应增加1/2的最小检验数量作阳性对照用;若采用直接过滤法,应增加供试品无菌检查时每个培养基容器接种的样品量作阳性对照用。

6.2、每支供试品接入每种培养基的最少量:半量(100ml≤V≤200ml),采用薄膜过滤法时,检验量应不少于直接接种的供试品总接种量,只要供试品特性允许,应将所有容器内的全部内容物过滤。

7、细菌培养温度为30~35℃,真菌培养温度为23~28℃。

8、仪器用具:垂直层流超净工作台、生化培养箱、电热恒温水浴箱、显微镜、离心机、双碟、试管、三角瓶、刻度离心管、注射器(针头)、剪刀、镊子、注射器盒、75%酒精棉球、紫外光灯365nm、真空泵、一次性使用集菌培养器。

9、消毒剂配制:9.1、75%乙醇溶液(配制酒精棉球用)。

9.2、0.2%新洁尔灭溶液(配制消毒棉球用)。

9.3、2%来苏尔溶液(配制消毒棉球用)。

10、试剂及培养基的配制:10.1、0.1%蛋白胨水溶液:取蛋白胨1.0g,加水1000ml,微温使溶解,滤清,调节PH值至7.1±0.2,分装,灭菌。

细胞无菌检查标准操作规程

细胞无菌检查标准操作规程

细胞无菌检查标准操作规程标准操作规程:细胞无菌检查1. 引言细胞无菌检查是实验室进行细胞培养和实验的关键步骤。

细胞环境的无菌性是保证实验结果准确性和细胞生长的重要因素。

本标准操作规程旨在规范细胞无菌检查的操作,以确保实验结果的可靠性。

2. 器材准备2.1 离心机:用于离心培养物,以分离细胞和培养液。

2.2 高温消毒器:用于消毒培养器具和试剂。

2.3 紫外线灯:用于消毒培养箱和操作台面。

2.4 细胞培养箱:用于细胞培养的环境,保持恒定的温度和湿度。

2.5 无菌离心管和移液器:用于处理无菌液体和细胞移植。

2.6 片玻片和培养皿:用于制备细胞标本。

2.7 无菌培养物:用于细胞培养和细胞无菌检查。

2.8 无菌培养基:用于培养细胞。

2.9 无菌生理盐水:用于洗涤细胞。

3. 操作步骤3.1 消毒操作台面和培养箱:使用紫外线灯对操作台面和培养箱进行紫外线照射消毒,确保无菌环境。

3.2 滴漏法消毒培养器具和试剂:将培养器具和试剂放入高温消毒器中,设置合适的温度和时间进行高温消毒。

3.3 细胞无菌接种:将需要无菌检查的细胞接种到无菌培养基中,按照实验要求进行培养,保持适宜的温度和湿度。

3.4 细胞收获和处理:在培养达到一定密度后,使用离心机将培养物离心,收集上清液。

将上清液转移至无菌离心管中,并进行离心,去除细胞沉淀。

3.5 细胞标本制备:将细胞沉淀转移至无菌离心管中,加入适量的无菌生理盐水悬浮细胞,然后将悬浮细胞制备成片玻片或涂布于无菌培养皿上。

3.6 烘干和固定:将制备好的片玻片或培养皿放入培养箱中,保持适宜的温度和湿度进行烘干固定,使细胞附着于玻片或培养皿上。

3.7 染色和观察:使用适当的染色方法对细胞进行染色,并通过显微镜观察细胞状态和无菌性。

3.8 结果判断:根据染色结果和观察到的细胞状态判断细胞是否具有无菌性。

4. 注意事项4.1 操作时需佩戴无菌手套,避免污染试剂和培养器具。

4.2 使用无菌移液器和管道处理液体,避免交叉污染。

无菌检验标准操作规程(最全)

无菌检验标准操作规程(最全)

无菌检验标准操作规程一、目的无菌检验是指检查经灭菌方法处理后的医疗器械(具)、植入物品、敷料等是否达到无菌标准的一种方法。

临床部门不应常规进行无菌检验,如有需要,可联系当地疾病预防控制中心派专人来采样检测。

二、试验前准备1.无菌检验应在洁净度为100级以上的洁净实验室内实施,并证实该实验室各项指标符合GB50073—2001《洁净厂房设计规范》、GB/T16292~16294—1996《医药工业洁净室(区)悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法》等相关要求,且在有效期范围之内。

2.按卫生部《消毒技术规范》(2002年版)制备无菌检验用洗脱液、需氧一厌氧培养基与真菌培养基(见附)。

3.在无菌检验前三日,分别在需氧一厌氧培养基与真菌培养基内各接种1ml洗脱液,分别置30~35℃与20~25℃:培养72h,应无菌生长。

4.阳性对照管菌液制备:(1)在检验前一天取金黄色葡萄球菌[CMCC(B)26003]的普通琼脂斜面新鲜培养物,接种一环至需氧一厌氧培养基内,在30~35℃培养16~18h 后,用0.9%无菌氯化钠溶液稀释至10~100cfu/ml(可通过比浊法或稀释后用1m1接种平板来确认)。

(2)取生孢梭菌[CMCC(B)64941]的需氧菌、厌氧菌培养基新鲜培养物一接种环种于相同培养基内,于30~35℃培养18~24h后,用0.85%无菌氯化钠溶液稀释至10~100cfu/ml。

(3)取白念珠菌[CMCC(F)98001]真菌琼脂培养基斜面新鲜培养物一接种环种于相同培养基内,于20~25℃培养24h后,用0.85%无菌氯化钠溶液稀释至10~100cfu/ml。

三、样本制备根据检样的类型与大小,以及带孔(腔)与否,可以按照以下不同的方法进行制备。

1.敷料类等非管道类样品:取2个包装内的样本,剪成约10mm×30mm 大小的样片21片,接种需氧一厌氧菌培养管5管与真菌培养管2管。

每培养管含培养基40m1,各接种3片样片。

无菌检验标准操作规程(SOP)

无菌检验标准操作规程(SOP)

目的:制定无菌检验标准操作规程,确保检验操作正确。

范围:本标准适用于本公司大容量注射剂无菌检验操作。

责任者:质管部、化验室主任、QC佥验员内容:1、标准依据:《中国药典》2015年版二部附录XI H。

2、简述:无菌检查方法系用于检查药品是否无菌的一种方法。

检查项目包括需气菌、厌气菌及真菌检查。

若供试品符合该项检查方法的有关规定,仅表明了在该检验条件下未发现微生物污染。

3、环境要求:该项检查应在环境洁净度万级(C级)背景下的局部百级(A级)的单向流区域内或隔离系统中进行。

其全过程必须严格遵守无菌操作。

防止微生物污染,但所采取的措施不得影响供试品中微生物的检出。

操作前环境洁净度应经验证。

日常检验需对试验环境进行监控。

5、方法验证:进行该项检查前应按照《无菌检查方法验证规程》确认该方法的适用性。

4、人员要求:无菌检查人员必须具备微生物专业知识,并经过无菌技术培训。

6检验数量及检验量:6.1、接种每种培养基所需的最少检验数量:2%或10个(取较少者),供试品无菌检查若采用薄膜过滤法,应增加1/2的最小检验数量作阳性对照用;若采用直接过滤法,应增加供试品无菌检查时每个培养基容器接种的样品量作阳性对照用。

6.2、每支供试品接入每种培养基的最少量:半量(100ml w V< 200ml),采用薄膜过滤法时,检验量应不少于直接接种的供试品总接种量,只要供试品特性允许,应将所有容器内的全部内容物过滤。

7、细菌培养温度为30〜35C,真菌培养温度为23〜28C。

8、仪器用具:垂直层流超净工作台、生化培养箱、电热恒温水浴箱、显微镜、离心机、双碟、试管、三角瓶、刻度离心管、注射器(针头)、剪刀、镊子、注射器盒、75%酒精棉球、紫外光灯365nm真空泵、一次性使用集菌培养器。

9、消毒剂配制:9.1、75%乙醇溶液(配制酒精棉球用)。

9.2、0.2 %新洁尔灭溶液(配制消毒棉球用)。

9.3、2%来苏尔溶液(配制消毒棉球用)。

无菌检测操作规程

无菌检测操作规程

无菌检测操作规程无菌检测操作规程一、目的无菌检测是对生产环境、物品和人员进行无菌状态的监测,以保障生产过程的无菌条件,防止污染和交叉感染的发生。

二、适用范围本操作规程适用于医疗机构、制药企业、实验室等需要进行无菌检测的场所。

三、设备和试剂准备1. 无菌检测器具:包括无菌采样器、玻璃培养皿、无菌滤膜等。

2. 无菌试剂:包括无菌生理盐水、无菌琼脂培养基等。

3. 其他辅助设备:无菌手套、试验操作台、灭菌器等。

四、操作步骤1. 所有操作人员需佩戴无菌手套并消毒双手。

2. 检测前检查无菌器具是否完好无损,无菌试剂是否在有效期内。

3. 打开灭菌器,按照灭菌器操作规程进行灭菌。

4. 取出灭菌的无菌器具放置在无菌工作台上。

5. 打开无菌生理盐水,用无菌采样器采集样品,将样品转移到无菌琼脂培养基上。

6. 用无菌滤膜过滤空气样品,将滤膜放置在无菌琼脂培养基上。

7. 将培养皿密封好,标记好样品信息和日期。

8. 将培养皿放入恒温培养箱中进行培养,温度设置在37℃左右,培养时间为24-48小时。

9. 培养结束后,观察培养皿中是否有菌落的形成,通过目测判断是否有无菌条件被破坏。

10. 将培养结果记录在相应的登记表上,并及时处理无菌条件被破坏的情况。

五、注意事项1. 操作过程中要保持操作台面整洁,避免产生细菌交叉污染。

2. 操作前要先进行培养皿的灭菌,防止细菌的污染。

3. 操作人员要注意穿戴无菌手套,避免手部污染物的接触。

4. 操作完毕后要将废弃物经过正确处理,避免外源性菌的传播。

5. 操作人员要接受相关培训,熟悉操作规程,并定期进行技能评估。

六、操作记录和报告1. 每次进行无菌检测都要详细记录操作时间、地点、样品名称、操作人员等信息,形成操作记录。

2. 若有无菌条件被破坏的情况,要及时报告负责人,并进行相应的处理措施。

七、操作规程的验证1. 操作规程的准确性和有效性需要定期进行验证,包括设备的灭菌效果、样品的灭菌效果等。

2. 验证结果要记录并备案,为操作规程的修订提供依据。

医疗器械无菌检查操作规程

医疗器械无菌检查操作规程

医疗器械无菌检查操作规程1.目的建立无菌检查的标准操作规程,确保检验结果的准确性。

2。

适用范围本规程适用于本公司质管部对本厂生产的一次性微波消融针的无菌检测。

3.职责质量部负责实施。

4.内容4。

1检验依据4。

1.1产品注册标准4。

1.2《中华人民共和国药典2015年版》无菌检查法4.2仪器、设备超净工作台、电热干燥箱、恒温培养箱、压力蒸汽灭菌器、集菌仪、电子天平、PH计、冰箱、恒温水浴锅、酒精灯、三角烧瓶,接种环、镊子,试管架,大试管若干等。

4。

3培养基及稀释液4.3。

1需气菌、厌气菌培养基:硫乙醇酸盐流体培养基;4。

3.2 霉菌培养基:大豆酪蛋白肉汤培养基;4。

3.3 培养基的无菌性检查每批配制的培养基均应进行无菌性检查(可与产品无菌检验同步进行)。

检查时,每批培养基随机取不少于5支(瓶)培养14天,应无菌生长;4.3。

4稀释液pH7。

0 氯化钠—蛋白胨缓冲液,9g/L无菌氯化钠溶液;4.4无菌检验室的环境要求(1)无菌检验应在环境洁净度10000级下的局部百级的单向流空气区域内进行。

(2)缓冲区与外界环境、无菌检验室与缓冲区之间空气应保持正压,阳性对照室与缓冲区之间空气应保持负压.无菌检验室与室外大气之间静压差应大于10Pa.无菌检验室的室温应保持18~26℃,相对湿度:45~65%。

(3) 无菌检验室的单向流空气区、工作台面及环境应定期按《医药工业洁净室(区)悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法》的现行国家标准进行悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的监测.(4)无菌检验过程中应同时检查超净工作台单向流空气中的菌落数:每次操作时在层流空气所及台面的左中右置3个TSA琼脂平板,暴露30min,于30~35℃培养48小时,菌落数平均应不超过1CFU/平板。

4.5无菌检验前的准备4。

5.1 器具灭菌、消毒可经压力蒸汽灭菌器内121℃蒸汽灭菌30分钟后使用。

4。

5。

2 人员、物料进入无菌检验室开启紫外线灯或臭氧发生器进行空间灭菌处理,消毒时间不得少于30min。

无菌检查法标准操作规程

无菌检查法标准操作规程
每次操作时,均应取相应溶剂和稀释剂、及冲洗液同法操作,作为 阴性对照。 4.1.3 实验完毕
将废液和实验物品及已操作完毕的含培养基的集菌培养器等移至 传递窗并拿出,擦拭工作台面,检查电源是否关闭,是否有遗留物品 等。按照《人员进出实验室的净化更衣规程》脱掉无菌服并装入配套 的袋中,开启无菌室紫外灯半小时,将无菌服送至特定的洗衣机进行 清洗灭菌。实验完毕的样品按照《检验用样品管理规程》进行销毁处 理。 4.1.4阳性对照
关闭紫外灯10分钟后,进入缓冲间,按照《人员进出实验室的净化 更衣规程》进入,并按照此规程穿戴无菌服、口罩。
4.操作
4.1薄膜过滤法 4.1.1操作前准备
检查无菌室电源和仪器是否完好,标示状态卡是否正确,是否有前 次遗留物品及废液等,戴上无菌手套将供试品及所需物品移入无菌操作 室,开启超净工作台并擦拭工作台面。 4.1.2操作 4.1.2.1根据药液性质选用不同型号的培养器,对于普通药液选用型号
菌检查法的要求。 (2)回顾无菌试验过程,发现有可能引起微生物污染的因素。 (3)供试品管中生长的微生物经鉴定后,确证是因无菌试验中所
使用的物品和(或)无菌操作技术不当引起的。 试验若经确认无效,应重试。重试时,必须重新取同量供试品,依
法重试,若无菌生长,判供试品符合规定;若有菌生长,判供试品不符 合规定。
否无菌的一种方法。若供试品符合无菌检查法的规定,仅表明了供试品 在该检验条件下未发现微生物污染。无菌检查法包括薄膜过滤法和直接 接种法。 1.2 检验数量
指一次检验所用供试品最小包装容器的数量。除另有规定外,按表 1规定的最少检验数量进行,最少检验数量不包括阳性对照试验的供试 品用量。采用薄膜过滤法,应增加1/2的最小检验数量做阳性对照用; 采用直接接种法,增加每个培养基容器接种的样品量作为阳性对照用。

医疗器械产品无菌检验操作规程

医疗器械产品无菌检验操作规程

医疗器械产品无菌检验操作规程随着医疗技术的不断发展,医疗器械在诊疗中的作用越来越重要。

在医疗器械的生产过程中,无菌是一个非常重要的环节。

本文将介绍医疗器械产品无菌检验的操作规程,以确保医疗器械的安全和可靠性。

一、无菌检验的重要性医疗器械在使用过程中与人体直接接触,如不具备无菌性,会引起严重的感染问题。

因此,无菌检验是确保医疗器械产品质量的重要环节。

只有通过无菌检验,才能保证医疗器械的无菌性,从而有效地减少感染的风险。

二、无菌检验操作规程(一)准备工作1. 确保检验环境的洁净度:无菌检验需要在无菌条件下进行,因此应确保检验环境的洁净度。

工作区域应进行深度清洁,并使用有效的空气过滤系统和洁净工作台。

2. 准备必要的无菌材料:无菌检验操作所需的材料包括无菌培养基、培养皿、观察镜等。

这些材料应该在使用前进行无菌处理,并且要保持密封。

3. 检查设备和工具的完好性:确保所使用的设备和工具没有损坏或者污染。

损坏或污染的设备和工具可能影响无菌检验的准确性和有效性。

(二)无菌检验操作步骤1. 样品采集:根据具体要求,采集待检样品。

样品采集应在无菌条件下进行,以避免外界污染。

2. 样品处理:将样品置于无菌室内进行处理。

首先,应对样品外表进行目测观察,排除明显可见的外部污染。

然后,将样品放入无菌培养皿中,采用湿敷法、浸润法等方法进行培养基的接种。

3. 培养:将培养皿放入恒温培养箱中,设置适当的温度和培养时间。

在培养过程中,需要定期观察培养皿内的情况。

4. 结果判断:根据培养结果,判断样品是否具备无菌性。

常见的无菌检验结果包括阳性、阴性和疑似阳性。

阳性结果表示样品中存在微生物生长,即不符合无菌要求;阴性结果表示样品无细菌生长,满足无菌要求;疑似阳性结果需要进行进一步的确认和处理。

5. 结果记录和报告:将检验结果进行详细记录,并根据需要制作无菌检验报告。

报告中应包括样品标识、检验结果、检验日期等信息,以便后续跟踪和管理。

无菌实验室操作规程

无菌实验室操作规程

无菌实验室操作规程引言概述:无菌实验室是进行微生物学研究和实验的重要场所,其操作规程对于实验结果的准确性和可靠性至关重要。

本文将详细介绍无菌实验室操作规程的五个部分。

一、实验室准备1.1 清洁与消毒:无菌实验室应定期进行清洁和消毒,确保实验环境的无菌状态。

清洁应使用无菌纱布和无菌溶液,消毒则应选择适当的消毒剂,如酒精或过氧化氢。

1.2 实验器材准备:在进行实验前,必须确保实验器材的无菌状态。

实验器材应经过高温高压灭菌或使用无菌过滤器过滤,确保无菌操作的可靠性。

1.3 个人防护:进入无菌实验室前,实验人员应穿戴适当的个人防护装备,包括无菌手套、口罩和实验服。

这些装备能有效减少外界微生物的污染,保证实验的无菌性。

二、无菌技术操作2.1 消毒操作:在进行无菌实验前,必须进行适当的消毒操作。

这包括用酒精或火焰对实验台面、实验器材和手术刀进行消毒处理,以杀灭表面的微生物。

2.2 灭菌操作:在进行培养基、培养皿等实验材料的制备时,必须进行灭菌操作。

常见的灭菌方法包括高温高压灭菌、紫外线辐射灭菌等,确保实验材料的无菌性。

2.3 采样操作:在进行微生物采样时,必须采取严格的无菌操作。

这包括用无菌棉签或无菌吸管进行采样,避免外界微生物的污染。

三、培养基制备与使用3.1 培养基配制:在制备培养基时,必须按照一定比例将培养基粉末与无菌蒸馏水混合,并进行高温高压灭菌,以确保培养基的无菌性。

3.2 培养基使用:使用培养基时,必须采取无菌技术进行操作。

这包括使用无菌吸管或无菌移液器取出适量的培养基,并将其均匀涂布在培养皿上。

3.3 培养基保存:未使用完的培养基应保存在冰箱或低温冷藏室中,避免细菌的生长和污染。

同时,应定期检查培养基的无菌性,确保其质量。

四、细胞培养操作4.1 细胞传代:在进行细胞培养时,必须进行细胞传代操作。

这包括将细胞从旧培养皿中取出,用无菌吸管或无菌移液器转移到新的培养皿中,以保持细胞的健康和纯度。

4.2 细胞培养液更换:细胞培养液应定期更换,以保持培养液的无菌性和营养成分的充足。

无菌检查.操作规程

无菌检查.操作规程

无菌检查.操作规程无菌检查是指对无菌状态的物品、器械、培养基等进行检查,以确定其是否具有无菌性的一种操作。

无菌检查主要是为了保证医疗器械和药品的质量,防止传播致病菌和交叉感染。

下面是无菌检查的操作规程,共1200字。

一、仪器与试剂准备1. 玻璃器皿:无菌检查中常使用的玻璃器皿应先清洗,然后用高压蒸汽高温灭菌。

确保玻璃器皿表面没有任何污物和细菌。

2. 培养基:根据需要选择适当的培养基,如营养琼脂、肉膏琼脂等。

使用前应检查培养基包装是否完好,是否过期,如有问题应废弃,以免影响检测结果。

3. 培养皿:无菌培养皿应提前准备好,如果有无细菌培养基的培养皿,最好优先选择使用。

4. 培养皿贴壁:无菌贴壁是为了避免液体滴入培养皿内引起细菌污染,使用前应检查贴壁是否完好。

5. 双口试管:用于无菌培养物的传递,提前准备好。

二、人员准备工作1. 手部卫生:进行无菌检查前,操作人员应进行手部卫生,包括洗手和消毒。

先用流动水清洗手部,然后使用75%酒精进行消毒。

2. 穿戴无菌操作服:无菌检查需要穿戴无菌操作服,操作服要求干净、整洁,且经过高温蒸汽灭菌。

穿戴手套前,应先检查手套是否完整、无损。

3. 工作台表面消毒:将工作台表面用70%酒精进行擦拭消毒,确保无菌操作环境。

三、操作步骤1. 取一份待检物品:如医疗器械或药品,然后进行外观检查。

确保物品包装完好,无明显损伤和破损。

2. 打开培养皿:将培养皿的盖子拉开一些,方便后续操作。

3. 将待检物品放入培养皿:用镊子或无菌力ps,将待检物品放入培养皿内,尽量避免让待检物品直接接触培养皿的边缘。

4. 培养皿倒置:将培养皿倒置放于工作台上,检查物品是否有菌落生成。

5. 灭菌培养皿口:用长火柴将培养皿上的边缘逐一燃烧,防止细菌飞溅和传播。

6. 检查结果:观察培养皿上是否有菌落生成。

如果有菌落,则证明待检物品不符合无菌要求;如果无菌皿上没有菌落生成,则证明待检物品具有无菌性。

7. 结果记录:将无菌检查结果记录在检验记录表格上,包括待检物品的名称、批号、检查日期等信息。

无菌检查标准操作规程

无菌检查标准操作规程

无菌检查标准操作规程1 目的明确无菌检查法的过程,保证产品质量。

2 适用范围使用薄膜过滤法或直接接种法,检查要求无菌的产品及其原、辅料等是否无菌。

3 定义无。

4 职责与权限检验员:按本标准判定产品质量并出具报告。

负责人:监督执行情况,审批最终结果。

5 内容及流程5.1 实验说明5.1.1 TSB为“胰酪大豆胨液体培养基”。

5.1.2 所用材料及用具(待检品、菌株除外)应经过灭菌处理;检验全过程必须严格遵守无菌操作,防止再污染,防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。

5.1.3 直接接种法适用于无法用薄膜过滤法进行无菌检查的供试品。

5.2 检验量最少检验量(生物制品原液或半成品):每个容器(每个容器制品)的取样量为总量的0.1%或不少于10mL,每开瓶一次,应如上法抽验。

5.3 实验材料与用具5.3.1 待检品(供试品)。

5.3.2 菌悬液(浓度≤100cfu/mL):应根据供试品特性选择阳性对照菌。

①无抑菌作用及抗革兰阳性菌为主的供试品,以金黄色葡萄球菌作对照;②抗革兰阴性菌为主的供试品,以大肠埃希菌作对照;③抗厌氧菌的供试品,以生孢梭菌作对照;④抗真菌的供试品,以白色念珠菌作对照。

5.3.3 薄膜过滤法:无菌封闭式薄膜过滤器、无菌滤膜(孔径≤0.45μm,直径约50mm)、pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液、硫乙醇酸盐流体培养基(400mL/瓶)、TSB培养基(400mL/瓶)、无菌吸头、移液器。

5.3.4 直接接种法:0.9%无菌氯化钠溶液、硫乙醇酸盐流体培养基(15mL/支)、TSB培养基(10mL/支)、无菌吸头、移液器。

5.4 薄膜过滤法5.4.1 供试品处理:打开包装前,先用75%乙醇对供试品容器表面进行彻底消毒,再以无菌操作拆开每个包装。

如有需要可将供试品混合不少于100mL的稀释液中再进行操作。

5.4.2 润湿:取10mL pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液注入滤筒,过滤,使整个滤膜表面湿润。

无菌检查用培养基灵敏度检查标准操作规程

无菌检查用培养基灵敏度检查标准操作规程
黑曲霉( Aspergillus niger)〔CMCC(F) 98 003〕
4.4菌液制备
接种金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌的新鲜培养物至营养肉汤培养基中或营养琼脂培养基上,接种生孢梭菌的新鲜培养物至硫乙醇酸盐流体培养基中,30℃~35℃培养18小时~24小时;接种白色念珠菌的新鲜培养物至改良马丁培养基中或改良马丁琼脂培养基上,23~28℃培养24~48小时,上述培养物用0.9%无菌氯化钠溶液制成每1ml含菌数小于100cfu(菌落形成单位)的菌悬液。接种黑曲霉的新鲜培养物至改良马丁琼脂斜面培养基上,23~28℃培养5~7天,加入3~5ml含0.05%(ml/ml)聚山梨酯80的0.9%无菌氯化钠溶液,将孢子洗脱。然后,采用适宜的方法吸出孢子悬液至无菌试管内,用含0.05%(ml/ml)聚山梨酯80的0.9%无菌氯化钠溶液制成每1ml含孢子数小于100cfu的孢子悬液。
菌悬液制备后若在室温下放置,应在2小时内使用;若保存在2~8℃可在24小时内使用。黑曲霉孢子悬液可保存在2~8℃,在验证过的贮存期内使用。
4.5培养基接种
取每管装量为12ml的硫乙醇酸盐流体培养基9支,分别接种小于100cfu的金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌、生孢梭菌各2支,另1支不接种作为空白对照,培养3天;取每管装量为9ml的改良马丁培养基5支,分别接种小于100cfu的白色念珠菌、黑曲霉各2支,另1支不接种作为空白对照,培养5天。逐日观察结果。
4.2培养基
硫乙醇酸盐流体培养基、改良马丁培养基、营养琼脂培养基、营养肉汤培养基、改良马丁琼脂斜面培养基。
4.3菌种
培养基灵敏度检查所用代),试验用菌种应采用适宜的菌种保存技术进行保存,以保证试验菌株的生物学特性。
金黄色葡萄球菌( Staphylococcus aureus)〔CMCC(B) 26 003〕

无菌实验室操作规程

无菌实验室操作规程

无菌实验室操作规程标题:无菌实验室操作规程引言概述:无菌实验室是进行微生物实验和培养的重要场所,严格的操作规程能够确保实验结果的准确性和可靠性。

本文将详细介绍无菌实验室操作规程,帮助实验人员正确操作,避免污染和误操作。

一、实验室准备1.1 确保实验室环境无菌:实验室内应经常进行消毒,保持空气清洁,避免微生物污染。

1.2 准备实验材料:提前准备好所需的培养基、试剂和器具,确保其无菌。

1.3 检查设备状态:检查培养箱、平台振荡器等设备是否正常运转,确保实验顺利进行。

二、个人操作规范2.1 穿戴实验服和手套:进入实验室前需穿戴干净的实验服和手套,避免外部微生物污染。

2.2 洗手消毒:进入实验室后,及时洗手并进行消毒,避免手部细菌污染实验物品。

2.3 避免交叉污染:每次操作前应更换手套,避免不同实验之间的交叉污染。

三、培养基制备3.1 精确称量:按照配方准确称量培养基成分,确保培养基质量准确。

3.2 消毒处理:将配制好的培养基装入试管或培养皿中,进行高温高压消毒处理,杀灭其中的微生物。

3.3 冷却保存:待培养基冷却后,放置在无菌条件下保存,避免污染。

四、微生物接种4.1 操作迅速:在无菌条件下,迅速将微生物接种到培养基上,避免空气中的细菌污染。

4.2 合理布局:将接种好的培养皿放置在培养箱中,合理布局,避免交叉污染。

4.3 注意观察:定期观察培养皿内微生物的生长情况,及时调整培养条件。

五、实验室清洁5.1 定期消毒:实验室设备和台面等应定期进行消毒,避免细菌滋生。

5.2 清洁整理:实验结束后,及时清洁实验台面和设备,保持整洁。

5.3 废弃物处理:实验后的培养皿、试管等废弃物应按规定进行处理,避免细菌外泄。

结论:无菌实验室操作规程对实验结果的准确性和可靠性起着至关重要的作用,实验人员应严格按照规程操作,确保实验过程的无菌性和准确性。

无菌检查标准操作规程

无菌检查标准操作规程

无菌检查标准操作规程无菌检查法是检查要求无菌的药品、医疗器具、原料、辅料及要求无菌的其他物品是否染有活菌的一种方法。

事实上,若供试品符合无菌检查法的规定,仅表明了供试品在该检验条件下未发现细菌和真菌污染。

无菌检查法有薄膜过滤法、直接接种法两种方式。

细菌培养温度32.5℃±2.5℃,真菌培养温度25.5℃±2.5℃。

1 无菌检查的环境无菌检查的所有操作均需在严格控制微生物污染的环境下进行,操作环境的无菌保证程度将直接影响无菌检查用洁净室(区)环境的稳定性,确保检查结果的可考性,对洁净室(区)的环境质量采取合理的控制措施和评价方法是必要的。

无菌检查应在环境洁净度10000级和局部洁净度100级的单向留空气区域内或隔离系统中进行,其全过程笔削严格遵守无菌操作,防止微生物污染。

单向流空气区、工作台面及环境应定期按《医药工业洁净室(区)悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法》的现行国家标准进行洁净度验证。

隔离系统按相关的要求进行验证,其内部环境的洁净度须符合无菌检查的要求。

无菌室应采光良好、避免潮湿、远离厕所及污染区。

面积一般不超过10m2,不小于5m2;高度不超过2.4m。

由1~2个缓冲间、操作间组成(操作间和缓冲间的门不应直对),操作间与缓冲间之间应具备灭菌功能的样品传递箱。

在缓冲间内应有洗手盆、毛巾、无菌衣裤放置架及挂钩、拖鞋等,不应放置培养箱和其他杂物;无菌室内应六面光滑平整,能耐受清洗消毒。

墙壁与地面、天花板连接处应呈凹弧形,无缝隙,不留死角。

操作间内不应安装下水道。

无菌操作室应具有空气除菌过滤的单向流空气装置,操作区洁净度100级或放置同等级别的超净工作台,室内温度控制18~26℃,相对湿度45%~65%。

缓冲间及操作室内均应设置能达到空气消毒效果的紫外灯或其他适宜的消毒装置,空气洁净级别不同的相邻房间之间的静压差应大于5Pa,洁净室(区)与室外大气的静压差大于10Pa。

无菌室内的照明灯应嵌装在天花板内,室内光照应分布均匀,光照度不低于300lx。

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起草人:起草日期:
审核人:审核日期:
批准人:批准日期:
武汉仝干生物科技有限公司
Wuhan Togo Biotechnology Co.,Ltd
1、目的
建立无菌检测的基本操作,为无菌检测人员提供正确的操作规程。

通过无菌检验后,确保产品能够达到无菌的要求。

2、适用范围
适用于我公司进行细胞质量检验的技术人员。

3、内容
3.1 简述:无菌检测系用于检查细胞是否无菌的一种方法。

检查项目包括需氧菌、厌氧菌及真菌检查。

若供试品符合该项检查方法的有关规定,仅表明在该检验
条件下未发现微生物污染。

3.2 环境要求:该项检查应在环境洁净度万级背景下的局部百级的单向流区域内或隔离系统中进行。

其过程必须严格遵守无菌操作,日常检验需对试验环境进
行监控。

3.3人员要求:无菌检测人员应具备微生物及检验专业知识,并经过无菌检验培训。

4、无菌检验前的准备
4.1器具灭菌、消毒
试验过程中与供试品接触的所有器具必须采用可靠方法灭菌,可置高压灭
菌锅内121℃蒸汽灭菌30分钟后使用(根据灭菌效果验证决定灭菌参数)。


有的灭菌物品不应超过2周即用毕,否则应重新灭菌。

凡检验中使用的器材无
法灭菌处理的,使用前必须经消毒处理,如无菌检验室的电子天平,工作台面等,可采用消毒剂浸泡或擦拭。

器具的灭菌、消毒后必须做好标识,标明灭菌、消毒时间和使用有效期。

4.2人员、物料进入无菌检验室
开启紫外灯或臭氧发生器进行空间灭菌处理,消毒时间不得少于30分钟。

人员进入无菌检验室需在一更区脱去一般区工作鞋,换无菌检验室工作鞋,并在二更区穿戴无菌服、口罩和手套,口罩掩住口鼻,帽子包裹所有头发。

进入无菌检验室的所有培养基、供试品等需将外包装在传递窗拆除后,查看所有进入无菌检验室的器具上的灭菌、消毒标识,是否在有效期内,符合要求的于传递窗进行表面紫外消毒,传入无菌检验室。

5、无菌检验室操作要求
1)人员进入后,首先进一步消毒擦拭工作台面。

2)全过程必须严格执行无菌操作,防止微生物污染。

3)使用玻璃器皿应轻取轻放,避免破损,以防培养物扩散。

4)所有操作均应在近火焰区进行,且不得有大幅度或快速动作,以免搅动空气中的尘埃微粒。

5)使用金属接种器具时,用前、用后均需灼烧灭菌。

6)在接种培养物时,动作应轻、准,防止培养物溅出,产生汽溶胶,造成污染。

7)操作过程中所有的带菌物品,用后均应作消毒、灭菌处理。

可在检验过程中随用随时放入消毒液缸内浸泡或消毒桶内,或在检验完成后经传递窗传至一般区,立即用压力蒸汽灭菌锅121℃灭菌30分钟。

6、培养基制备
6.1需氧菌、厌氧菌培养基(硫乙醇酸盐流体培养基)的制备
所用试剂:
酪胨(胰酶水解) 15.0g
葡萄糖 5.0g
L-胱氨酸 0.5g
硫乙醇酸钠 0.5g (或硫乙醇酸)(0.3ml)
酵母浸出粉 5.0g
氯化钠 2.5g
新配制的0.1%刃天青溶液 1.0ml
琼脂 0.75g
水 1000ml
制备:
除葡萄糖和刃天青溶液外,取上述成分混合,微温溶解,调节pH为弱碱性,煮沸,滤清,加入葡萄糖和刃天青溶液,摇匀,调节pH为7.1±0.2。

硫乙醇酸盐流体培养基氧化层的颜色要求:
在供试品接种前,培养基氧化层的高度不得超过培养基深度的1/5,否刚需经100℃水浴加热到粉红色消失(不超过20分钟)迅速冷却,只限加热一次,并应防止被污染。

6.2 霉菌培养基(改良马丁培养基)的制备
所用试剂:
胨 5.0g
酵母浸出粉 2.0g
葡萄糖 20.0g
磷酸二氢钾 1.0g
硫酸镁 0.5g
水 1000 ml
制备:
除葡萄糖外,取上述成分混和,微温溶解,调节pH值约为6.8,煮沸,加葡萄糖溶解后,摇匀,滤清,调节pH为6.4±0.2。

还可使用按处方生产的符合规定的脱水培养基,按照使用说明书配制。

培养基配制后应尽快灭菌,避免微生物繁殖。

一般采用高压蒸汽121℃灭菌30分钟。

制备好的培养基应在2~25℃保存,在3周内使用。

6.3 培养基的无菌性检查
每批配制的培养基均应进行无菌性检查(可与产品无菌检验同步进行)。

检查时,每批培养基随机取不少于5支(瓶)培养14天,应无菌生长。

7、稀释液、冲洗液的制备
0.1%蛋白胨水溶液:
取蛋白胨1.0g,加水1000ml,微温溶解,滤清,分装后置入高压蒸汽灭菌锅内,121℃灭菌30分钟后,于4℃保存备用。

pH7.0氯化钠-蛋白胨缓冲液:
取磷酸二氢钾3.56g、磷酸氢二钾7.23g、氯化钠4.30g、蛋白胨1.0g,加水1000ml。

微温溶解,滤清,分装后置入高压蒸汽灭菌锅内,121℃灭菌30分钟后,于4℃保存备用。

浸提介质:9g/L无菌氯化钠溶液。

8、对照菌液制备
无菌检验所用的菌株传代次数不得超过5代。

取金黄色葡萄球菌的普通琼脂斜面培养物,接种至营养琼脂培养基内,在30~35℃培养18~24h 后备用,同时制备0.9%氯化钠溶液加入6支小试管内,每支试管内加9.0ml的0.9%氯化钠溶液,在高压灭菌锅内经121℃灭菌30分钟备用。

将已配好的金黄色葡萄球菌培养菌液取1.0ml加入第一支小试管内,稀释成浓度1:10的菌液;取第一支试管内1.0ml菌液加入第二支小试管内,稀释成浓度1:100的菌液,同法稀释成浓度1:106(每ml含菌量≤100CFU)即可。

采用平皿计数法测定活菌数。

9、无菌检验培养温度
硫乙醇酸盐流体培养基,置30~35℃培养。

改良马丁培养基,置23~28℃培养。

10 、无菌检验
灭菌前、后菌片应按菌片说明书规定条件保存。

10.1 接种
开启单向层流,分别将灭菌后的菌片成对放入已灭菌的硫乙醇酸盐流体培养基中,同时以金黄色葡萄球菌作阳性对照,以未接种的硫乙醇酸盐流体培养基和未接种的改良马丁培养基作为阴性对照。

10.2 培养
阳性对照管于30~35℃细菌培养箱培养48~72小时,其余硫乙醇酸盐流体培养基于30~35℃细菌培养箱培养7天。

10.3 结果判定
培养后,阳性对照应有菌生长,阴性对照和被检样品未见需氧菌、厌氧菌和霉菌生长的即为合格。

11、质量记录
《无菌检验原始记录》
《菌种外购、转种记录》
《培养基制备记录》
《实验中废弃的带菌物品灭菌处理记录》
《实验用稀释液、冲洗液、缓冲液制备记录》。

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