RNA的制备及纯度的鉴定ppt
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酵母RNA的提取、组分鉴定和含量测定幻灯片PPT

2.RNA的水解:取200mg提取的核酸,加入 1.5mol/L硫酸溶液10mL,在沸水浴中加热 10分钟。制成水解液并进行组分的鉴定。
3.RNA的组分鉴定 (1)嘌呤碱 取水解液1mL加入过量浓氨水,
然后加入约1 mL 0.1mol/L硝酸银溶液, 观察有无嘌呤碱的银化合物絮状沉淀生成。
3.RNA的组分鉴定
(2)核糖 取1支试管加人水解液1mL、三氯化铁 浓盐酸溶液2mL和苔黑酚乙醇溶液0.2mL。放沸 水浴中10分钟。注意溶液是否变成绿色,说明核 糖的存在。
(3)磷酸 取1支试管,加入1ml水解液,加入5滴 浓HNO3和1ml钼酸铵试剂后,在沸水浴中加热, 观察有无黄色磷钼酸铵沉淀产生,说明磷酸是否 存在。
酵母RNA的提取、组分鉴 定和含量测定幻灯片PPT
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【实验目的】
1.学习稀碱法提取RNA的原理和操作方法。 2.了解核酸的组分,并掌握鉴定核酸组分的
【酚操-铜作地离衣步子骤试】剂
1.RNA的提取:将5g酵母悬浮 30mL0.04mol/L氢氧化钠溶液中,并在乳钵 中研磨均匀。将悬浮液转移至100毫升锥形瓶 中。在沸水浴上加热30分钟后,冷却。离心 (3000r/min)15分钟,将上清液缓缓倾入15 mL酸性乙醇溶液中。注意要一边搅拌一边缓 缓倾入。待核糖核酸沉淀完全后,离心 (3000r/min)3分钟。弃去清液。用95%乙醇 洗涤沉淀两次,乙醚洗涤沉淀一次后,再用乙 醚将沉淀转移至布氏漏斗中抽滤。沉淀可在空 气中干燥。
RNA基本操作技术ppt课件

免 疫 磁 珠 法 原 理
为深入学习习近平新时代中国特色社 会主义 思想和 党的十 九大精 神,贯彻 全国教 育大会 精神,充 分发挥 中小学 图书室 育人功 能
2、RNA的浓度
OD260 值 =1 , 相 当 于 单 链 DNA 或 RNA 为 40μg/mL,寡核苷酸为20μg/mL。
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3、RNA的完整性
rRNA大小完整,而且28S rRNA和 18S rRNA亮度 接近2:1;mRNA分布均匀,则认为RNA质量较好。
3、取上层水相于一新的离心管,按每mlTrizol液加 0.5ml异丙醇的比例加入异丙醇,室温放置10分钟, 12000g离心10分钟
4、弃去上清液,按每ml Trizol液加入至少1ml的比例 加入75%乙醇,涡旋混匀,4℃下7500g离心5分钟
5、小心弃去上清液,然后室温或真空干燥5-10分钟, 注意不要干燥过分,否则会降低RNA的溶解度。然 后将RNA溶于水中,必要时可55℃-60℃水溶 10分 钟。RNA可进行mRNA分离,或贮存于70%乙醇并 保存于-70℃
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RNA的纯度、浓度与完整性
1、RNA的纯度
纯的RNA样品其OD260/OD280应介于1.8-2.0 之间。 1)若RNA样品OD260/OD280比值太小,说明有蛋 白质或酚的污染; 2)比值大于2.0时,可能被异硫氰酸胍等污染;
为深入学习习近平新时代中国特色社 会主义 思想和 党的十 九大精 神,贯彻 全国教 育大会 精神,充 分发挥 中小学 图书室 育人功 能
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2、RNA的浓度
OD260 值 =1 , 相 当 于 单 链 DNA 或 RNA 为 40μg/mL,寡核苷酸为20μg/mL。
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3、RNA的完整性
rRNA大小完整,而且28S rRNA和 18S rRNA亮度 接近2:1;mRNA分布均匀,则认为RNA质量较好。
3、取上层水相于一新的离心管,按每mlTrizol液加 0.5ml异丙醇的比例加入异丙醇,室温放置10分钟, 12000g离心10分钟
4、弃去上清液,按每ml Trizol液加入至少1ml的比例 加入75%乙醇,涡旋混匀,4℃下7500g离心5分钟
5、小心弃去上清液,然后室温或真空干燥5-10分钟, 注意不要干燥过分,否则会降低RNA的溶解度。然 后将RNA溶于水中,必要时可55℃-60℃水溶 10分 钟。RNA可进行mRNA分离,或贮存于70%乙醇并 保存于-70℃
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RNA的纯度、浓度与完整性
1、RNA的纯度
纯的RNA样品其OD260/OD280应介于1.8-2.0 之间。 1)若RNA样品OD260/OD280比值太小,说明有蛋 白质或酚的污染; 2)比值大于2.0时,可能被异硫氰酸胍等污染;
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基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技术 ppt课件

OD260/OD280在1.8~2.0之间 ,比值越低,混有蛋白质污染。 OD260/OD230在2.0~2.5之间 ,若比值小于2,说明有残余的盐存在; OD230/OD260在0.4-0.5之间,若比值较高说明有残余的盐存在 。
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
• 乙醇:主要目的是:沉淀+除盐;洗涤异丙醇,也可以溶解一部分
蛋白,痕量的乙醇很容易挥发掉。
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
RNA浓度和纯度的测定
DNA/RNA在260nm处有最大的吸收峰, 蛋白质在280nm处有最大的吸收峰,因为酪氨酸和色氨酸的最大吸收峰在 280nm附近,而大多数蛋白含有酪氨酸和色氨酸残基,且含量相对恒定。 盐和小分子则集中在230nm处, 320nm或340nm为检测溶液样品的浊度,该值应该接近0。
“Measure”
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
RNA提取常见问题及分析
得率
A.样品裂解或匀浆处理不彻底 B.最后得到的RNA沉淀未完全溶解
A260/A280<1.65
A.检测吸光度时,RNA样品不是溶于TE,而是溶于水。 B.样品匀浆时加的试剂量太少。 C.匀浆后样品未在室温放置5分钟。 D.水相中混有有机相。 E.最后得到的RNA沉淀未完全溶解。
RNA的琼脂糖凝胶电泳
• 28S的亮度是18S的2倍左右 • rRNA占总RNA80%以上。
5lRNA+1ul loading buffer,100V电泳10分钟
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
• 乙醇:主要目的是:沉淀+除盐;洗涤异丙醇,也可以溶解一部分
蛋白,痕量的乙醇很容易挥发掉。
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
RNA浓度和纯度的测定
DNA/RNA在260nm处有最大的吸收峰, 蛋白质在280nm处有最大的吸收峰,因为酪氨酸和色氨酸的最大吸收峰在 280nm附近,而大多数蛋白含有酪氨酸和色氨酸残基,且含量相对恒定。 盐和小分子则集中在230nm处, 320nm或340nm为检测溶液样品的浊度,该值应该接近0。
“Measure”
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
RNA提取常见问题及分析
得率
A.样品裂解或匀浆处理不彻底 B.最后得到的RNA沉淀未完全溶解
A260/A280<1.65
A.检测吸光度时,RNA样品不是溶于TE,而是溶于水。 B.样品匀浆时加的试剂量太少。 C.匀浆后样品未在室温放置5分钟。 D.水相中混有有机相。 E.最后得到的RNA沉淀未完全溶解。
RNA的琼脂糖凝胶电泳
• 28S的亮度是18S的2倍左右 • rRNA占总RNA80%以上。
5lRNA+1ul loading buffer,100V电泳10分钟
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
《RNA的提取》课件
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解决方案
可以采用离心、过滤、沉淀等方法去 除杂质,或者使用特定的吸附剂将杂 质吸附后一起去除。
提取效率低下的问题及解决方案
问题
在提取过程中,有时会出现提取效率低下的 问题,即提取出的RNA量较少或质量较差 。
解决方案
可以尝试优化提取条件,如改变缓冲液成分 、调整pH值、增加样本量等;同时,也可 以采用一些先进的提取方法和技术,如磁珠 法、亲和层析法等,以提高提取效率。
《RNA的提取》 PPT课件
目录
• RNA提取概述 • 实验材料准备 • RNA提取的方法 • RNA的质量检测 • RNA提取的常见问题及解决方案 • 实验结果分析
01 RNA提取概述
RNA的简介
总结词
RNA的基本信息
详细描述
RNA,全称为核糖核酸,是一种重要的生物分子,参与遗传信息的转录和翻译过程。它由核糖核苷酸通过磷酸二 酯键连接而成,分为mRNA、tRNA和rRNA三种类型,分别在蛋白质合成中起信使、转运和结构作用。
在提取过程中,应尽量保持低温,避免长时间暴露在高温 环境中;同时,控制好pH值,避免过酸或过碱环境对RNA 的破坏;此外,使用RNA酶抑制剂可以有效防止RNA被酶 降解。
提取过程中杂质的去除问题及解决方案
问题
在提取过程中,常常会伴随一些杂质 如蛋白质、多糖、色素等,这些杂质 会影响后续的实验结果。
谢谢聆听
酚-氯仿提取法
原理
利用酚和氯仿的混合液抽提细胞破碎后的上清液,使 RNA进入水相,而DNA和蛋白质则进入有机相。
01
步骤
样品匀浆→加酚-氯仿→离心取水相→ 加乙醇沉淀RNA→洗涤→溶解。
02
03
特点
酚-氯仿提取法是一种比较经典的方法 ,操作简便,但可能会损失部分RNA 。
可以采用离心、过滤、沉淀等方法去 除杂质,或者使用特定的吸附剂将杂 质吸附后一起去除。
提取效率低下的问题及解决方案
问题
在提取过程中,有时会出现提取效率低下的 问题,即提取出的RNA量较少或质量较差 。
解决方案
可以尝试优化提取条件,如改变缓冲液成分 、调整pH值、增加样本量等;同时,也可 以采用一些先进的提取方法和技术,如磁珠 法、亲和层析法等,以提高提取效率。
《RNA的提取》 PPT课件
目录
• RNA提取概述 • 实验材料准备 • RNA提取的方法 • RNA的质量检测 • RNA提取的常见问题及解决方案 • 实验结果分析
01 RNA提取概述
RNA的简介
总结词
RNA的基本信息
详细描述
RNA,全称为核糖核酸,是一种重要的生物分子,参与遗传信息的转录和翻译过程。它由核糖核苷酸通过磷酸二 酯键连接而成,分为mRNA、tRNA和rRNA三种类型,分别在蛋白质合成中起信使、转运和结构作用。
在提取过程中,应尽量保持低温,避免长时间暴露在高温 环境中;同时,控制好pH值,避免过酸或过碱环境对RNA 的破坏;此外,使用RNA酶抑制剂可以有效防止RNA被酶 降解。
提取过程中杂质的去除问题及解决方案
问题
在提取过程中,常常会伴随一些杂质 如蛋白质、多糖、色素等,这些杂质 会影响后续的实验结果。
谢谢聆听
酚-氯仿提取法
原理
利用酚和氯仿的混合液抽提细胞破碎后的上清液,使 RNA进入水相,而DNA和蛋白质则进入有机相。
01
步骤
样品匀浆→加酚-氯仿→离心取水相→ 加乙醇沉淀RNA→洗涤→溶解。
02
03
特点
酚-氯仿提取法是一种比较经典的方法 ,操作简便,但可能会损失部分RNA 。
chap05 RNA的分离纯化.ppt
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盐酸胍法也可用于DNA的提取,但 具体例子不多。总的来说,盐酸胍 是提取分离RNA的一种方法,但不 如酚法和去污剂法效果好,故应用 不广。
硫氰酸胍
用硫氰酸胍提取RNA的方法是首先 在1977年由Ullrich等提出,而在 1978、1979年由Han和Chirgwin等 正式发表的文章得到详述。
有两种情况是一步法所不适用的。一 种情况是该方法不适合从含有丰富甘 油三酯的脂肪组织中提取RNA。
另一种情况是提取RNA的胍基盐被细胞内 的多糖和蛋白多糖所不同程度的污染。
有报道说这种污染阻止了乙醇共沉淀后RNA 的溶解,影响RT-PCR的结果,而且在RNA 印迹过程中与膜结合。所以,如果出现了多 糖和蛋白多糖污染的问题,应该使用其他的 方法和改变RNA沉淀条件。
第5章 RNA的分离纯化
本章主要内容
5.1 RNA的分离纯化原理 5.2 特殊类型的RNA的分离纯化
5.1 总RNA的分离纯化原理
一个典型的哺乳动物细胞中含有约10-5 μgRNA,其中80%一85%是rRNA,10%~ 15%为tRNA,mRNA占1 ~ 5%,其他的 各类RNA不到1%。
这些高丰度的rRNA和tRNA的大小和 序列确定,可通过凝胶电泳、密度梯 度离心、阴离子交换层析和高压液相 层析(HPLC)等进行。
皂土-酚法和去垢剂-酚法,有利 于抑制RNase的作用及解离蛋 白质与核酸的结合,使蛋白质变 性而除去。
各种方法的综合使用是目前提取核酸最常 用和最有效手段,其原理通常是相互取长 补短,以便获得更纯更完整的核酸分子, 满足分子生物学对核酸分子结构和功能方 面研究越来越高的要求。由于RNA酚法提 取的应用十分广泛,资料甚多。
由于Han的方法中要用连续少量的5 M硫 氰酸胍溶解RNA,较为繁琐。而在 Chirgwin的方法中,培养好的组织或细 胞用4M硫氰酸胍溶解,将所得的匀浆铺 在氯化铯浓溶液上。
实验二 植物总RNA的提取 ppt课件

实验二 植物总RNA的提取
8
8、小心弃去上清液,然后室温或真空干 燥5-10分钟,注意不要干燥过分,否则会降 低RNA的溶解度。然后将RNA溶于20微升 TE或DEPC处理过的水中,必要时可55℃60℃水溶 10分钟。
RNA可进行mRNA分离,或贮存于70%乙 醇并保存于-70℃
实验二 植物总RNA的提取
15
13
补充: DNA检测方法
1. 此外分光光度计检测
OD260值=1时,相当于含50μg/mL DNA OD260/OD280=1.8~1.9时,DNA较纯
小于1.8时,蛋白含量较高,大于2.0则含有RN A或有断裂DNA
实验二 植物总RNA的提取
14
1. 琼脂糖电泳检测
实验二 植物总RNA的提取
带手套,别用手碰任何与样品接触的物品。 使用新的已灭活RNase的塑料器皿与用具。 (3)爱护仪器设备,安全操作
实验二 植物总RNA的提取
12
作业:
1、RNA酶的变性或失活剂有那些?其中 在总RNA的抽提中主要可用哪几种? 2、怎样从总RNA中进行mRNA的分离和 纯化。
实验二 植物总RNA的提取
3、氯仿:异戊醇 [24 : 1 (v/v)] 、氯仿。 4、异丙醇、无水乙醇、70%乙醇。 5、Trizol试剂。
实验二 植物总RNA的提取
6
六、操作步骤
1、取植物嫩叶,液氮研磨,每1.5ml tube
分装0.1克样品; 2. 每管加入0.5ml Trizol液,迅速混匀, 注意样品总体积不能超过所用Trizol体积的 10%。 3、室温下静置5分钟以利于核酸蛋白质复 合体的解离
实验二 植物总RNA的提取
3
Trizol试剂配制
RNA的制备及纯度的鉴定

rna技术的挑战与展望
技术瓶颈
目前rna提取和纯化仍存在技术瓶颈,需要进一步优化和改进。
数据解读
随着测序数据的爆炸式增长,如何准确解读和分析rna数据成为一 大挑战。
伦理与法律问题
随着rna技术的广泛应用,涉及伦理、隐私和法律等方面的问题也 日益突出,需要引起重视和解决。
THANKS
感谢观看
通过rna测序技术,可以全面检测生物体在不同生理或病理条件下基因的表达水平,揭示基因表达的 差异和规律。
转录组学研究
rna测序可用于转录组学研究,分析特定组织或细胞类型中所有基因的表达情况,有助于深入了解生 命活动的调控机制。
蛋白质合成研究
翻译调控
rna是蛋白质翻译的直接模板,通过研究rna的结构和修饰,可以了解蛋白质合成的调 控机制,进一步探索生命活动的奥秘。
详细描述
在紫外光谱分析中,rna在260nm处有最大 吸收峰,而蛋白质在280nm处有最大吸收峰 。通过比较两个波长下的吸光度值,可以计 算出rna的浓度和纯度泳分析法
总结词
通过电泳分离rna片段,可以观察rna的完整性。
详细描述
纯度评估可以帮助排除其他杂质 对实验的影响,提高实验的准确 性。
02
紫外光谱分析
03
高效液相色谱
通过测量RNA在260nm和 280nm处的吸光度比值,可以评 估RNA的纯度。
高效液相色谱可以分离和检测 RNA中的各种杂质,从而评估 RNA的纯度。
04
CATALOGUE
rna的应用
基因表达分析
基因表达谱
沉淀方法
加入适量的乙醇或异丙醇,使rna从溶液中沉淀下 来。
洗涤目的
用洗涤剂和盐溶液洗涤沉淀,去除残留在rna上的 杂质和盐离子。
第32章RNA的生物合成与加工ppt课件

病毒引起癌症和艾滋病
绝大多数逆转录病毒侵入宿主细胞后,并不杀死宿主细 胞,它们整合到宿主DNA 分子上并随之一起复制,但有些 病毒有一额外的基因,可使细胞癌变,这类病毒叫RNA肿 瘤病毒.肿瘤病毒中导致肿瘤的基因叫致癌基因.
人类获得性免疫缺陷病毒(HIV)也是逆转录病毒,HIV病 毒不引起肿瘤,但它能杀死宿主细胞,主要是效应T细胞。 HIV病毒中的某些基因,以极快的速度发生突变,使得疫 苗制造起来特别困难.这种病毒的逆转录酶比其他病毒 中的逆转录酶的错误倾向大10倍以上.这是这类病毒突 变率高的主要原因.所以临床上治疗艾滋病的药物是逆 转录酶抑制剂.
如大肠杆菌的噬菌体有f2、MS2、R17和Qβ所含的核 酸都是RNA,当他们侵入到宿主细胞后,利用RNA复 制酶合成病毒RNA。
1、噬菌体QβRNA的复制 2、病毒RNA复制的主要方式
(二) 逆转录作用(RNA指导的DNA合成)
•1970年Temin和Mizufani等人分别从致癌病毒中发现了以 RNA为模板催化合成DNA的酶叫逆转录酶,也叫RNA指导 得DNA聚合酶.
•当逆转录病毒感染宿主细胞时,单链RNA病毒和酶一起进 入宿主细胞.
1、逆转录酶(RNA指导的DNA聚合酶) (1)逆转录酶催化DNA合成所需条件: 底物:dNTP 模板:RNA 方向: 5′→3′ 逆转录酶中含有Zn2+ 引物:tRNA(不同生物引物是不同氨基酸的tRNA),
需要引物具有3′OH末端,在引物的3/-末端按5′→3′方 向,合成一条与RNA模板互补的DNA单链,这条DNA 单链叫做互补与RNA的DNA,它与RNA模板形成 RNA-DNA杂交体。随后又在逆转录酶的作用下,水 解掉RNA链,再以杂交体的DNA为模板合成第二条 DNA链。形成的双链DNA(cDNA)
绝大多数逆转录病毒侵入宿主细胞后,并不杀死宿主细 胞,它们整合到宿主DNA 分子上并随之一起复制,但有些 病毒有一额外的基因,可使细胞癌变,这类病毒叫RNA肿 瘤病毒.肿瘤病毒中导致肿瘤的基因叫致癌基因.
人类获得性免疫缺陷病毒(HIV)也是逆转录病毒,HIV病 毒不引起肿瘤,但它能杀死宿主细胞,主要是效应T细胞。 HIV病毒中的某些基因,以极快的速度发生突变,使得疫 苗制造起来特别困难.这种病毒的逆转录酶比其他病毒 中的逆转录酶的错误倾向大10倍以上.这是这类病毒突 变率高的主要原因.所以临床上治疗艾滋病的药物是逆 转录酶抑制剂.
如大肠杆菌的噬菌体有f2、MS2、R17和Qβ所含的核 酸都是RNA,当他们侵入到宿主细胞后,利用RNA复 制酶合成病毒RNA。
1、噬菌体QβRNA的复制 2、病毒RNA复制的主要方式
(二) 逆转录作用(RNA指导的DNA合成)
•1970年Temin和Mizufani等人分别从致癌病毒中发现了以 RNA为模板催化合成DNA的酶叫逆转录酶,也叫RNA指导 得DNA聚合酶.
•当逆转录病毒感染宿主细胞时,单链RNA病毒和酶一起进 入宿主细胞.
1、逆转录酶(RNA指导的DNA聚合酶) (1)逆转录酶催化DNA合成所需条件: 底物:dNTP 模板:RNA 方向: 5′→3′ 逆转录酶中含有Zn2+ 引物:tRNA(不同生物引物是不同氨基酸的tRNA),
需要引物具有3′OH末端,在引物的3/-末端按5′→3′方 向,合成一条与RNA模板互补的DNA单链,这条DNA 单链叫做互补与RNA的DNA,它与RNA模板形成 RNA-DNA杂交体。随后又在逆转录酶的作用下,水 解掉RNA链,再以杂交体的DNA为模板合成第二条 DNA链。形成的双链DNA(cDNA)
实验四RNA的提取及其组分的鉴定.ppt.ppt

无水乙醇洗沉淀一次 离心3min(3000r /min) 沉淀即为RNA粗品
用10ml 1.5mol/L硫酸溶液小 心将RNA沉淀洗至试管中,沸水 浴10min,冷却后离心,然后将 上清液定容至100mL,分别取1mL 至两个1.5mLEp管中留做定量用, 余下做定性分析。
(2)核糖 取0.5ml水解液+0.2ml苔黑酚+2ml三氯化铁盐酸
[合作探究·提认知] 电视剧《闯关东》讲述了济南章丘朱家峪人朱开山一家, 从清末到九一八事变爆发闯关东的前尘往事。下图是朱开山 一家从山东辗转逃亡到东北途中可能用到的四种交通工具。
依据材料概括晚清中国交通方式的特点,并分析其成因。 提示:特点:新旧交通工具并存(或:传统的帆船、独轮车, 近代的小火轮、火车同时使用)。 原因:近代西方列强的侵略加剧了中国的贫困,阻碍社会发 展;西方工业文明的冲击与示范;中国民族工业的兴起与发展; 政府及各阶层人士的提倡与推动。
研究表明,RNA不仅仅是遗传信息的中间传递体 (from DNA to protein)。RNA的功能总结起来可以分为 以下几类:控制蛋白质的合成;作用于RNA转录后加工与 修饰;基因表达与细胞功能的调节;生物催化与其他细胞 持家功能;遗传信息的加工与进化。
RNA的分离
RNA和DNA分别存在于细胞质和细胞核中,分离提 出核酸,首先要将破碎制成匀浆、使核酸充分提取出来。
溶液,沸水浴10min,观察颜色变化(亮绿色) (3)磷酸
取0.2ml水解液+0.8ml水 +1ml定磷试剂 ,沸水 浴10min ,观察颜色变化(蓝色)
历史ⅱ岳麓版第13课交通与通讯 的变化资料
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[自读教材·填要点]
一、铁路,更多的铁路 1.地位 铁路是 交通建运设输的重点,便于国计民生,成为国民经济 发展的动脉。 2.出现 1881年,中国自建的第一条铁路——唐山 至开胥平各庄铁 路建成通车。 1888年,宫廷专用铁路落成。
最新实验一RNA提取及检测PPT课件

❖RNA提取得率低 1. 该组织或者细胞中RNA含量偏低:
不同细胞和组织中RNA的丰度不同,如肝脏,胰腺,心脏等 是高丰度组织(总RNA含量2-4μg/mg),脑,胚胎,肾脏,肺, 胸腺,卵巢等是中丰度组织(总RNA含量0.05-2μg/mg),膀胱, 骨,脂肪等是低丰度组织(总RNA含量<0.05μg/mg)。 2. 组织起始量太少或者太多:
一、实验目的
掌握植物RNA RNA提取及检测方法
二、实验试剂及材料
水稻叶片、液氮、Trizol试剂、氯仿、异丙醇、DEPC 水
三、实验器材
恒温水浴锅、PCR仪、台式低温离心机、移液枪、研钵、紫外分 光光度计,一次性手套。
五、总RNA提取常见问题分析
❖RNA降解
1、外源RNA酶的污染:试剂,器械及实验环境的RNA酶 进入实验系统。
样品量过少,则细胞组织中RNA含量较低;样品量过多则可 能超过裂解液的裂解能力,裂解将不完全,从而导致RNA得率低。
六、注意事项:
1.所有实验过程均须避免Rnase的污染。 2.要避免沉淀完全干燥,否则RNA难以溶解。3.样品量和 Trizol的加入量一定要按步骤(1)的比例,不能随意增加样品 量或减少Trizol量,否则会使内源性RNase的抑制不完全,导致 RNA降解。
2、内源RNA酶的污染:抑制剂失效或者用量不够,实验 样品过多;匀浆时温度过高。
3、外源性污染也可以排除,那么降解几乎都来自裂解 液的用量不足。如果将裂解液直接加入培养皿中裂解 细胞,一定要使裂解液能覆盖住细胞。在液氮条件下 将组织研碎,并且匀浆时使用更多裂解液。样品取材 后应立即置于液氮中速冻,然后移至-70℃冰箱保存。 样品决不能未经液氮速冻而直接保存于-70℃冰箱中。 样品在与裂解液充分接触前决不能出现融化,所以研 磨用具必须预冷。
实验七植物总RNA的提取PPT课件

分析实验结果,讨论可能影响RNA提取质 量的因素,如植物组织的新鲜程度、提取 方法的选择等。
实验结论
未来研究方向
根据实验结果得出结论,总结本实验在植 物总RNA提取方面的经验和教训。
提出改进实验的建议和未来研究的方向, 如优化提取方法、探索更多植物材料的 RNA提取等。
05
注意事项与实验改进
实验过程中的安全注意事项
RNA分为mRNA、tRNA和rRNA三种 类型,分别承担蛋白质合成中的模板、 氨基酸转运和蛋白质合成场所的功能。
植物细胞中RNA的种类和分布
植物细胞中的RNA主要包括mRNA、 tRNA和rRNA,它们在细胞质和细胞 核中均有分布。
mRNA主要分布在细胞质中,负责蛋 白质合成的指导;tRNA和rRNA主要 分布在细胞核中,分别参与氨基酸转 运和蛋白质合成场所的构建。
了解RNA提取在植物生理生化研究中的应用,如蛋白质合成、代谢组学和转录组学 等。
了解RNA提取在植物育种和品种改良中的应用,如基因型鉴定、分子标记辅助育种 和基因编辑育种等。
02
实验原理
RNA的基本结构和性质
RNA由核糖核苷酸组成,是遗传信息 的传递者。
RNA的理化性质不稳定,容易受到环 境因素如温度、pH值和酶的影响。
规范性。
仪器误差
仪器设备精度不足或维护不当导 致的误差,控制方法包括定期校 准仪器设备,确保其精度和准确
性。
试剂误差
试剂不纯或质量不稳定导致的误 差,控制方法包括选择质量可靠 的试剂,并对试剂进行质量检测
和控制。
实验改进与拓展应用
优化实验条件
01
通过调整实验条件,如温度、pH值、反应时间等,提高实验效
了解RNA在植物中的功能和重要性
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生物制药09303 第七组 指导老师:陈芬
(一) 操 作 方 法
1.背景知识
6.思考问题
2.基本原理
RNA的制备及 纯度的鉴定
5.注意事项
3.仪器试剂
4.工艺过程
背景知识
核糖核酸,简称RNA,主要以单链的形式存在于生物体
内,其高级结构很复杂,它们既担负着储藏及转移遗传信
息的功能,又能作为核酶在细胞内发挥代谢功能。生物体
RNA质量分数 样品液RNA 含量(g/mL) 总体积(mL ) 100 % 6 新鲜肝重(g) 10
操作参照表
管号
0
1 0.2 1.8 2
2 0.4 1.6 2
3 0.8 1.2 2
4 1.0 1.0 2
5 1.2 0.8 2
6 1.6 0.4 2
7 2.0 0 2
RNA标 0 准液/ml 蒸馏水 2 /ml 地衣酚 2 试剂/ml
RNA提取流程
2克动物肝脏组织
研碎
加氯仿异戊醇震荡 离心取上清液
加20mlSDS缓冲盐溶液
加2%乙酸钾乙醇溶液
倒入磨口具塞锥形瓶
放置沉淀离心
加同体积含水酚溶液
洗涤沉淀离心干燥
室温剧烈震荡10分钟
将RNA溶于蒸馏水
水浴分层并离心
得上清液
离心得粗品
• 二.实验过程
• 1.取2g动物肝脏组织,剪成小块,在乳钵种研碎,加 20mLSDS-缓冲盐溶液(见试剂1.)使成均浆,倒入磨口 具塞锥形瓶内,再加同样体积的含水酚溶液,室温下剧烈 振荡10分钟。 • 2.置冰浴中分层,在0-4℃下,以4000rpmn离心15分钟。 吸出上清液,加等体积氯仿-异戊醇,室温下剧烈振荡10 分钟,以4000rpm离心5分钟,或在室温下放置10分钟使 分层。吸出上清液(若有必要,该操作可反复多次),加 2倍体积2% 乙酸钾的乙醇溶液,在冰浴中放置1小时使 RNA沉淀,此沉淀液可在冰箱内较长期存放。
• 3.若要得到干燥制品,可将沉淀液以4000rpm离心10分钟 ,倾去上清液。沉淀用少许75%乙醇、95%乙醇、无水乙 醇各洗1次,同上法离心,倾去乙醇后,空气干燥。 • 4.将RNA(准确称取30mg左右RNA干燥制品)溶于5~10mL 蒸馏水中,离心除去不溶性杂质,得RNA粗品。 • 5.RNA纯度的鉴定 • 一、RNA标准曲线的制定 取8支试管,编号,按表加入试剂。加毕,摇匀,置沸水 浴中加热15min,冷却,测OD670值。以OD670值为纵 坐标,RNA含量(ug/ml)为横坐标绘制标准曲线。
实验器材与试剂
器材:乳钵 、磨口 具塞锥形瓶 (500ml) 天平 、 离心 机(4000rpm)动物肝脏 、紫外可 见分光度计、恒温水浴锅
试剂:
1.SDS-缓冲盐溶液[0.3%SDS-0.1mol/L氯化钠 -0.05mol/L, pH5.0乙酸盐缓冲液]称取1.5gSDS,2.92g氯化钠,2.05g乙酸钠 溶于水中,用乙酸调至pH5.0,最后定容至 500ml。 2.含水酚液:使用前将苯酚重蒸(酚的沸点为181.8℃)并用SDS-缓 冲盐溶液使其饱和。 3.氯仿-异戊醇液:氯仿:异戊醇=24:1(V/V)。 4.含2%乙酸钾的95%乙醇溶液。 5.75%乙醇,95%乙醇、无水乙醇。 6.乙醚 7.RNA标准溶液(须经定磷确定其纯度):取酵母RNA配成200 g/mL的溶液。 8.地衣酚试剂:先配制0.1%三氯化铁的浓盐酸(分析纯)溶液,实 验前用此溶液作为溶剂配成 0.1%地衣酚溶液。
• 2 掌握RNA纯度鉴定的原理和基本操作 • 3 进一步熟悉可见分光光度计的使用
实验原理
• 细胞内大部分RNA 均与蛋白质结合在一起,以核蛋白的 形式存在。因此分离RNA时必须使RNA 与蛋白质解离, 并除去蛋白质。 • 最常用含水的酚溶液除去蛋白质,去污剂和酚均能抑制 RNA酶活力,有利于制备核酸大分子,以酚水两相系统 分离RNA是将细胞或细胞器置于含有SDS的缓冲盐溶液 中,加等体积水饱和的酚,通过剧烈振荡,然后离心形成 上层水相和下层酚相。 • 实验所用的0.15mol/L缓冲盐溶液系统可使大部分核糖核 蛋白解离,在用酚处理时脱氧核糖核蛋白变性;在低温条 件下,从水相中除去,这样得到的RNA 制品中混杂的 DNA量极低
污染更为有效。
• 3:在提取核酸时,如样品浓度低,则应增加有机溶
剂沉淀时间,-70℃下>30min;-20℃过夜将有助于
增加核酸的沉淀量。 • 4: RNA通常用分光光度计定量,测量在260 nm处的 吸收值(A260)。通常分光光度计A260的读数要介 于0.15-1.0之间才是可靠的,因此RNA提取结束后,
实验步骤
• 一.实验前的准备 • mRNA的分子结构容易受到RNA 酶的攻击反应而 降解,加上RNA 酶极为稳定而且广泛存在,因此在 提取过程中应严格防止RNA 酶的污染并设法抑制 其活性。 • 所用的玻璃器皿需要置于干燥烘箱中 200.0° C烘 烤两小时以上,凡是不能用高温烘烤的材料如塑料 容器等可用0.1%的焦碳酸二乙酯(DEPC)水溶 液处理,再用蒸馏水冲净。
注意事项
• 1:在操作中当加入变性剂氯仿后,为了保证核酸样
品的完整性,操作要轻,尤其在提DNA时,更要避
免剧烈操作
• 2:在沉淀核酸时可用乙醇与异丙醇,乙醇的极性要 强于异丙醇,所以一般用2V乙醇沉淀,但在多糖、 蛋白含量高时,用异丙醇沉淀可部分克服这种污染 ,尤其用异丙醇在室温下沉淀对摆脱多糖、杂蛋白
内共有三种RNA,即编码特定蛋白质序列的信使RNA;
能特异性解读mRNA中的遗传信息、将其转化成相应氨
基酸后加入多肽链中的转运RNA;直接参与核糖体中蛋
白质合成的核糖体RNA。
• mRNA的选择性拼接
合成类RNA
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
RNA的生物合成
RNA/DNA诊断仪
实验目的
• 1 掌握从动物组织中提取RNA的基本原理和操作
二、制品的测定 取0.2~0.5ml制品液于试管中,加蒸馏水稀释至2ml,然后加 2ml地衣酚试剂摇匀,于沸水中煮沸15分钟,冷却,测OD670 。根据测得的吸光度,从标准曲线上查出相当该吸光度的RNA 的含量。 三、 RNA含量的计算 根据测得的光吸收值,从标准曲线上查出相当该光吸收值的 RNA含量。按下式计算出制品中RNA的百分含量: 样品液RNA含量(ug/ml)=标准曲线查到的值× 稀释倍数
要根据大概产量稀释到适当浓度范围,再用分光光度
计测量。A260为1相当于RNA的浓度为40 µg/ml。
问题及答案
• 一、提取制备RNA常用的方法有那几种?
主要有苯酚、异硫氰酸胍、CTAB、LiCl密度梯度、Trizol 等方法。
• 二、制备RNA应注意哪些问题.
1.整个过程应注意预防RNA酶的污染 2.匀浆后加氯仿之前样品可以在-60至-70℃保存至少一 个月。
•
RNA制品继续用氯仿-异戊醇处理,可以进一步除去其 中含有的少量蛋白质。最后用乙醇使RNA自水溶液中沉 淀下来。
• 实验所得制品的核酸含量可用地衣酚显色法测定RNA含 量 。RNA与浓盐酸共热时,即发生降解,形成的核糖继 而转变为糠醛,后者与3,5-二羟基甲苯(地衣酚)反应 呈鲜绿色,该反应需用三氯化铁或氯化铜作催化剂,反应 产物在670nm处有最大吸收。RNA在20~250 g范围内, 光吸收与RNA的浓度成正比。
• 三、地衣酚反应中,干扰RNA的测定因素有哪些 ?如何能减少他们的影响?
1.DNA,地衣酚反应特异性较差,凡戊糖均有此反应, DNA及其他杂质也有影响。故一般测定RNA时,可先测定样 品中DNA含量,再算出RNA含量。 2.蛋白质,本法较灵敏。样品中蛋白质含量高时,应先 用5%三氯醋酸溶液将蛋白质沉淀后再测定,否则将发生干 扰。