人类未成熟卵子冷冻保存后体外成熟形成的纺锤体的形态研究

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卵母细胞成熟过程中微管成核机制研究的相关内容

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人类卵母细胞玻璃化冷冻的研究进展

人类卵母细胞玻璃化冷冻的研究进展
究进 展 。
【 关键词 】 玻璃化冷冻 ; 卵细胞 ; 辅助生殖技术
卵母细胞冻存是辅助生育领域 的研究热点 之一 , 冷冻技 术主要有程序化 冷冻及玻 璃化 冷冻 法。玻璃 化冷 冻是 一种
胞都有毒性 , 若浓度过 高 , 对保存 的细胞会 造成严重 的损伤 。 目前 , 多数学 者认 为 乙二醇 ( G) E 加上 大分 子糖 类是 比较 理 想 的玻璃化溶液 的良好候选材料 。
快速冷冻技术 , 冷冻 对象放 在冷 冻保护 剂 中 , 细胞 脱水 将 待
及渗透性冷冻保护剂进入细胞且两者 达到平衡 后 , 投入液 再 氮进行冷冻保存 。玻璃化冷冻可使细胞迅 速通过“ 险温度 危
2 卵细胞玻璃化冷冻 不 同时期 的卵 细胞 对外 界环境 的敏感性 不尽 一致 。低 温会造成卵细胞透 明带 发生变 性 , 降低 卵子 的受 精能力 , 因 此卵子的冷冻保存成功率较低 。研究 表 明, 卵子 的玻璃化 冷 冻较常规 的程序化冷冻有较高 的存 活率和受精 率 , 近年 来
变化小 , 胞 可 以耐 受 , 苏后 存 活率 及 妊 娠 率 均有 所 提 细 复
高_ l 。C e h n等¨ 研究发 现采 用平 衡 液 的复苏后 存 活率 可
达 9% , 3 明显 高于不使用平衡 液预处 理的 6 % 。同时采用单 5
精子胞浆显微注 射 (C I 可弥 补透 明带 硬化 带来 的受 精 困 IS ) 难_ l 。可见 , 玻璃化冷冻技术 的临 床应 用及 不断发 展 , M 使 Ⅱ卵细胞冷冻后妊娠率及活产 出生率得到 明显提高 。
胞内冰晶的形成 , 降低细胞损伤 , 在人类配子、 胚胎的冷冻保存 中取 得了不少进展 。近十几年 来 , 玻璃化冷冻技 术已 成功应用于成熟卵母细胞 、 未成熟卵母细胞等方面的冷冻保存并取得成功。该技术操作简单 、 迅速快捷 , 正逐渐成为

最新:卵胞质内单精子注射(ICSI)技术中国专家共识(2023年)

最新:卵胞质内单精子注射(ICSI)技术中国专家共识(2023年)

最新:卵胞质内单精子注射(ICS1)技术中国专家共识(2023年)摘要人类卵胞质内单精子注射(intracytop1asmicsperminjection,ICSI)技术开展至今已有30余年。

其最初主要应用于针对严重少、弱、畸形精子症导致的男性不育患者的治疗,但随着未成熟卵体外培养、卵子冷冻、胚胎植入前遗传学检测等辅助生殖技术的开展,ICSI使用比例已大幅提升。

虽然目前ICSI技术相对成熟,但仍有很多细节值得关注和完善。

为规范与优化人类辅助生殖技术从业者的ICS1操作,由中国医师协会生殖医学专业委员会发起,并联合全国多家生殖医学中心共同编撰了本共识。

20世纪90年代首例卵胞质内单精子注射(intracytop1asmicsperminjection,ICSI)婴儿的诞生[1],标志着对男性不育的治疗取得了突破性进展。

如今该技术已常规应用于全球各生殖中心,并且随着未成熟卵体外成熟培养(invitromaturation,IVM),卵子冷冻、胚胎植入前遗传学检测(preimp1antationgenetictesting,PGT)等辅助生殖技术(assistedreproductivetechno1ogy,ART)的广泛开展,ICSI的使用比例也大幅增加[2]。

因此,能够熟练、高效、安全地进行ICS1操作是每一个胚胎学家应具备的基本技能。

虽然ICSI技术比较成熟,基本流程也具有较高的标准化,但仍有部分细节值得关注或有待完善。

本共识将从ICSI的适应证、正常及常见异常形态卵子、卵子的显微注射、受精观察、ICS1特殊情况的应对及其他细节、ICS1技术的质控及培训等几个方面进行阐述并提出相应推荐意见,旨在为人类ART实验室从业者提供实用性参考,从而为广大不孕患者提供更高质量的服务。

-.ICSI的适应证虽然ICSI技术成功解决了一些严重男性因素导致的不孕问题,但在部分非男性因素不孕的治疗方面,其有效性和安全性仍不明确[3-4]o因此,ICS1技术的使用需更加谨慎。

细胞分裂中纺锤体的形成和功能

细胞分裂中纺锤体的形成和功能

细胞分裂中纺锤体的形成和功能细胞分裂是细胞自我复制过程中必不可少的环节。

而能够完成这一过程的纺锤体则是细胞内的关键部件。

纺锤体的形成和功能也是细胞生物学领域长期研究的问题之一。

一、纺锤体的形成纺锤体是由一系列特殊的细胞结构组成的,它是由胞质微管组成的具有纺锤形的结构。

纺锤体大致由两个部分组成:纺锤体极和纺锤体丝。

其中,纺锤体极即是被卵巢分为极体两端,极体是一种特殊的细胞器,没有核膜和核仁,并且不参与细胞分裂;而纺锤体丝则是结构上类似于中心体,由微管组成,以纺锤体极为中心分散成不同长度的丝状物,分为个数不等的八字形纤维。

纺锤体极的形成最早可以追溯到有丝分裂。

同时,许多生物化学和细胞遗传学的实验也证明,纺锤体的形成是受到许多分子、细胞器完成协同作用的结果。

单指一个细胞从非分裂阶段的合成到分裂开始的时期,这一时间段内的纺锤体大多数是不同阶段产生出的。

常规的观测纺锤体极情况是在分裂前期的时候,这个时候大多数的纺锤体极已经形成,并且纺锤体丝开始扩散。

在分子和生物化学上,纺锤体极的形成主要由几条重要的微管有序旋转、延伸和缩短而形成。

长时间的研究也证实,纺锤体微管的细胞原因素、MAD1、MAD2、BUB和AURKB等蛋白或多或少地参与了纺锤体部分的组件的形成过程中。

所以,微管关联的蛋白具有为“微管核线导向”所必需的功能。

平常,细胞中的微管网通常是由两种微管组成的,即α-和β-微管,同时各具有特殊的生化特性和结构。

α-微管是由纤维素合成并用于构建中心柱的一种蛋白,与其相似,β-微管则是由纤维素硫代酯小管合成而成,并用于构成纺锤体丝等。

因此,α-微管和β-微管各有特殊的分配及构成同时,它们的生物学性质和功能也有较大的不同。

二、纺锤体的功能纺锤体的主要功能是在细胞分裂起始时期组织起始体内的着丝粒进行居中分离。

着丝粒即是将染色体附着在纺锤体上的所在位置,多为蛋白结构,是细胞分裂时染色体纪律分离的重要组成部分。

一般来说,纺锤体所分离的染色体就像需要用到载体和轨道的火箭一样,染色体与着丝粒和纺锤体之间也存在着特殊的力。

人未成熟卵母细胞体外成熟培养的研究的开题报告

人未成熟卵母细胞体外成熟培养的研究的开题报告

人未成熟卵母细胞体外成熟培养的研究的开题报告一、研究背景随着生物科技的快速发展,人类对生殖问题的需求也不断增加。

在一些不孕不育患者中,卵子的成熟问题成为影响其怀孕能力的重要因素。

传统的卵子采集方式需要借助于体内激素调节和手术操作,效果并不理想,且存在一定的安全隐患。

因此,人类对于体外卵子成熟技术的研究越来越受到关注。

作为其中的一个分支,卵母细胞体外成熟培养技术已经得到了一定的进展,但尚存在许多问题亟待解决。

二、研究目的本研究旨在探究卵母细胞体外成熟培养的相关技术和方法,追踪卵母细胞在体外发育过程中的形态和结构变化,探究其成熟机制并寻找其发育中可能出现的问题及其解决方案。

三、研究内容本研究的主要内容包括:1. 卵母细胞体外成熟培养技术的概述:介绍卵母细胞体外成熟培养的基础理论和现有技术的发展历程。

2. 卵母细胞在生长发育过程中的形态和结构变化:对卵母细胞在体外发育过程中的形态和结构变化进行跟踪研究。

3. 卵母细胞体外成熟的机制探究:研究卵母细胞在体外成熟的各种相关生理生化过程,如减数分裂、染色体行为、受精前成熟等。

4. 可能出现问题及其解决方案:分析卵母细胞体外成熟过程中可能出现的问题,如卵母细胞生长和发生质变、染色体异常和减数分裂抵抗力等,寻找解决方案。

四、研究意义本研究对于促进人类生殖医学的发展具有重要意义:1. 对卵母细胞体外成熟技术的推广和应用提供参考依据。

2. 为深入了解卵母细胞生长和成熟过程提供了研究基础。

3. 为解决卵母细胞体外成熟过程中出现的问题提供了技术支持。

4. 推进人类生殖医学的发展,促进不孕不育患者的康复。

五、研究方法本研究采用文献综述和实验研究相结合的方法,通过对卵母细胞体外成熟技术的文献资料和相关实验研究结果进行深入分析,揭示卵母细胞体外成熟的机制和存在的问题,并提出解决方案。

六、预期结果本研究将得出卵母细胞体外成熟技术的研究现状及存在的问题,探究卵母细胞在生长发育过程中的形态和结构变化,研究其成熟机制并寻找其发育中可能出现的问题及其解决方案,生成相关研究报告,为卵母细胞体外成熟技术的推广应用、基础研究提供参考价值。

玻璃化冷冻对小鼠GV期卵母细胞发育能力的影响

玻璃化冷冻对小鼠GV期卵母细胞发育能力的影响
复合体 的冷冻 而进行 , 对无卵丘细胞包 围的 G V期裸 卵 的冷冻 , 尚少见研 究报 道 。 另外 ,卵巢组织冷冻也是保存 卵母细胞 的一种有
11 材料 ,
11 预处 理 液 .1 . 1%E ( hl e l o,i a 下 0 G e y n y lS m , t e gc g
伤较 大。
关键词 : 畜牧 学 ; V期 卵母细胞 ; G 卵巢; 玻璃化冷 冻 ; 小鼠 中图分类号 : 8 51 03 ¥6 . 3 . 文献标识码 : A 文章编号 : 2 8 7 3 ( 0 )3 0 0 0 5 — 0 32 62 0 1— 4 0 1
卵母细胞及卵巢组织 的冷冻保 存不仅 是家畜 品种
摘 要 : 首次采 用 OP 试验 S法玻 璃化冷 冻 小鼠 G V期 卵母 细胞 ( 不带 卵丘 细胞 , 同 )同时尝试 用 E F3 小 下 , D S0对 鼠 卵巢进行 细管法玻璃化冷 冻 , 究 G 以研 V期 卵母细胞冷 冻后 的发 育潜 力。首先 , 用 ME 培 养和 ME 利 M M一腔前
11 成熟培养 液 .3 . 含有 5 B %F S的 ME G B O基 M f IC )
础 液 中加 入 02 ห้องสมุดไป่ตู้o L丙 酮 酸 钠 (i a, gm . mm l 3 / Sg ) 0n/ L m 1 E FSg a, gm G (i )5t / L胰 岛素 ( sl e Sg a, gm m x i ui , i )5 ̄ / I n n m
收稿 [ :0 6 0 — 3 修 回日期 :0 6 0 — 8 - 20—4 1; t 期 2 0 — 4 2
S ma 和 O5 o L蔗糖 scoe S m ) P S 液 中 i 1 .m l g / urs , i a 于 B 溶 g 混匀 即为 F 液 然 后用 E D O和 F s G、 MS S液按 照体积 比 为 1 :5 的 比例混匀配制成 E F 3 玻璃化溶液。 .1 : 5 .7 D S0

卵子冷冻在女性生育力保存中的作用研究进展

卵子冷冻在女性生育力保存中的作用研究进展

细胞造成致命的伤害。然而玻璃化冷冻就可 以很好 地解决这一问题。玻璃化冷冻技术的基本原理是高
浓度( m l ) 4 o L 的冷冻保护剂溶液[ / 如乙二醇( G 、 E ) 二甲基亚砜( M O 、 D S )聚乙二醇 (E ) 经急速降 P G 等] 温后 ,由液 态转化 为外形 类似 玻璃 状 的非 晶体 化 固 体状态。由于玻璃化液在低温时黏稠度变得很高而 不结晶. 形成形态不规则的玻璃样固体 , 留了细 并保 胞内外液体正常的分子和离子分布 。避免产生冷冻 损伤。 目 前使用的玻璃化冷冻保护剂有渗透性保护 剂和非渗透性保护剂两种。渗透性保护剂通常是小
卵子 冷冻的 方法

B l 等[ ot d ] 改变传统的含钠保护剂而使用低钠保护 剂行 卵子慢 速冷 冻 ,获 得 了 7 .%复苏率 及 5%的 4 4 9 受精 率 , 接 受胚 胎 移植 (T 的 l 个 周期 中 , 4 在 E) 1 有 周期获得临床妊娠并分娩 5 个婴儿 ,而使用含钠保 护剂组 复苏 率仅 为 1.%, 未妊 娠 。 2 3 且 慢速 冷冻 法需 要严格控制冷冻和解冻过程中形成的冰晶数量 . 期 望在各因素间保持精细的平衡 。 减少冰晶造成的损 伤、 渗透压改变造成的损伤。ei ei 19— LvSt 等【 t ] 99 对 20 0 3年 IFE V —T周 期 中多余 的 290枚 卵 子 用慢 速 0 冷 冻一 快速 解 冻法 复 苏后 行显 微 注射 后受 精 ,结 果 获得 了 6 . 9 %的存活率 ,有 5 . 9 3 %的成活卵子受精 3
蔗糖溶液 .卵母细胞纺锤体与染色体正常排列受到
收稿 1期 : 0 -11 修 回1期 : 0 .7 9 3 2 80 — 0 0 3 2 8 . 0 02

山羊卵母细胞体外培养体系及冻存后体外培养的研究

山羊卵母细胞体外培养体系及冻存后体外培养的研究
庆 大霉素 的生理盐 水洗净后进行体外 培养 。 m O a 进行体外培养 , 用 S Fa
4 8 h记录卵裂数 ,~ 57 d记录囊胚发育情况 。
面的多余 组织 , 然后用 生理盐 水洗 净 , 用灭 菌纱 布擦 再
干。最后置于盛有抽卵液的培养皿 中。在培养皿 中用手 术 刀片切开卵巢表面 2 5 m 的卵泡 ,并用镊子将 卵泡 ~ m
o ce v g , ee3 . f la a e w r 56% a d5 . n 84% rs e t ey h dsg ic n iee c P OO ) ep ci l ,a inf a t f rn e( < .1 . v i df
K y r s g a ; o ye i i oc l r e wo d : o t o c t ; nvt ut e r u
72 7 , . . 用前置于 C ~4 O 培养箱 中预先平衡 2 。 h
13 卵母 细胞 的体外成 熟培养 .

研 究表 明 , 岛素 、 铁蛋 白、 硒酸钠 的混合 制剂 ( — 胰 转 亚 i n sl —rnf r g sl i IS ui t s r n—e n m, )具有提高胚胎发育率 的 n a ei eu T 作用 , 且具 有增 强 E F H ( S L 和 氨基 酸 的功 G 、 MG F H+ H)
表 1 IS T 对山羊 卵母细胞成熟的影响
熟及胚胎发育 的效率和质量。
由于哺乳动物胚胎工程的快速发展 ,在大 量的研 究
中需要卵母细胞 , G 而 V期卵母细胞来 源较 广 , 可随时在
卵裂率, %
培养液成分
C C 数, O s 枚 成熟率, %
取卵后进行冷冻 , 在需要时解 冻体外 培养 。此外 , 根据相

玻璃化冷冻对不同成熟阶段小鼠卵母细胞的影响

玻璃化冷冻对不同成熟阶段小鼠卵母细胞的影响

玻璃化冷冻对不同成熟阶段小鼠卵母细胞的影响(作者:___________单位: ___________邮编: ___________)【摘要】目的: 通过比较玻璃化冷冻对不同成熟阶段小鼠卵母细胞冷冻复苏、体外成熟、胚胎发育及细胞骨架的影响,寻求最佳的卵子冷冻方案。

方法:玻璃化冷冻生殖泡期卵(GV)、成熟中期卵(MⅡ)及体外成熟卵(IVM-MⅡ),解冻复苏后,分别作体外成熟、体外受精(IVF)、胚胎培养或固定作免疫荧光标记,统计复苏率、成熟率、受精率、囊胚率、细胞骨架正常率。

结果:GV冷冻组、MⅡ冷冻组及IVM-MⅡ冷冻组三组复苏率差异无显著性(65% vs 60.92% vs 69.93%,P0.05)。

GV冷冻组的成熟率显著低于对照组(79.6% vs 96.19%,P0.01)。

GV冷冻组、MII冷冻组及IVM-MⅡ冷冻组三组受精率均明显低于对照组(P0.01),且IVM-MⅡ冷冻组受精率显著低于MⅡ冷冻组(18.06% vs 31.34%,P0.01)。

IVM-MⅡ冷冻组囊胚率低于MⅡ冷冻组和对照组,差异均有显著性(28.57% vs 52.38%,P0.05;28.57% vs 57.14%,P0.01)。

GV冷冻组染色体和纺锤体均正常率均高于IVM-MⅡ冷冻组(53.85% vs 26.67%,P0.05)。

IVM-MⅡ冷冻组细胞骨架三项指标均显著低于对照组,差异均有显著性(P0.05,P0.01)。

结论:GV卵先玻璃化冷冻再体外成熟,其细胞骨架损伤较小,胚胎发育较好。

【关键词】玻璃化冷冻;卵;细胞骨架;小鼠Abstract: Objective: To evaluate the effects of vitrification on the rates of survival,in vitro maturation (IVM),development and cytoskeleton of mouse frozen-thawed oocytes at different stages in order to find the most suitable cryopreservation protocol. Methods: MⅡ,GV and IVM-MⅡwere vitrified. After thawed,they underwent in vitro maturation,in vitro fertilization,embryo cultivation or fixed for immunofluorescence. The rates of survival,maturation,fertilization,blastulation and cytoskeleton with normal configuration were calculated. Results: There were no significant differences of survival rates in GV,MⅡand IVM-MⅡgroup (65% vs 60.92% vs 69.93%,P0.05). The maturation rate of GV group was significantly lower than those of control group (79.6% vs 96.19%,P0.01). The fertilization rate of control group was obviously higher than GV,MⅡand IVM-MⅡgroup (P0.01),and that of IVM-MⅡgroup was significantly lower than MⅡgroup (18.06% vs 31.34%,P0.01). The blastulation rate of IVM-MⅡwas significantly lower than that of MⅡand control groups,respectively (28.57% vs 52.38%,P0.05 and 28.57% vs 57.14%,P0.01). There weresignificant differences in the rate of normal feature of spindles and chromosomes between GV group and IVM-MⅡgroup (53.85% vs 26.67%,respectively,P0.05). The rate of cytoskeleton indexe of IVM-MⅡgroup were much lower,comparing with control group (P0.05). Conclusion: There are less influences of vitrification on cytoskeleton and developmental capacity of GV ooctyes when they are vitrified before IVM.Key words: vitrification;oocyte;cytoskeleton;mouse卵子冷冻能避免胚胎冷冻带来的伦理问题,而且增加供卵来源,并为那些因疾病需要切除卵巢或推迟生育的妇女提供生殖保险。

冷冻保存对卵母细胞影响的研究进展

冷冻保存对卵母细胞影响的研究进展
发育 潜力 _。 i z 等 用数 字成像 及分 析系统 和偏 3 Re i ] n
振光 显微镜 观察 到 ,经传统 的慢速 冷冻方 法冷 冻的
卵母 细胞在 融解 过程 中纺锤体 消失 , 虽多数 可在 3h
生 的婴儿 仅三百 多例 。卵母 细胞体 积大 只是造成 卵
母 细胞 冷冻 困难 的重要 原 因之 一 。而 在冷 冻 、 冻 解
山 东省计 划 生育科研 所 生殖 医学中心 (5 0 2 董 云玲 刘永 洁 200 ) 综述 李 娟 审校
摘 要 随着 辅 助 生殖 技 术 的发 展 , 卵母 细胞 的冷 冻 技 术受 到 了广 泛 关 注并 被 广 泛 应用 。但 与 早 期 胚胎 的冷 人
冻保存相比 , 卵母 细胞 的冷 冻 保 存具 有 复 苏 后 成活 率 低 、 精 率 低 、 胎 发 育 潜力 差 、 受 胚 妊娠 率 低 、 产 率 高 等 特 点 。冷 流 冻 和解 冻 过 程 以及 冷 冻 保 护 剂等 均 会 对 卵母 细胞 造 成 一 系 列形 态 学 、 细胞 学 以及 生理 、 化方 面 的 影 响 。 如 : 冻 保 生 冷 护剂 、 冻融 过 程 等 可 对 卵母 细 胞 的 纺锤 体 、 细胞 骨 架 、 胞 内钙 离 子 、 白质组 、 胞代 谢 以及 卵母 细 胞 的活 性 和 发 育 细 蛋 细 潜 力 造 成 不 同 程度 的影 响 。研 究 卵 母 细 胞特 殊 的生 物 学特 性 以及 冷 冻 对其 造 成 的 影 响 , 助 于 改进 卵 母 细 胞 的 冷 冻 有
冻存 以避 免卵子 浪费 。该项 技术还 可为 卵子赠送 提 供方 便 。 自 18 9 6年 C e h n等首次报 道冻融 人卵母 细 胞 获成 功妊 娠 已二 十余 年 ,这 项技 术 进展 缓慢 , 出

玻璃化冷冻卵母细胞及卵巢组织研究进展

玻璃化冷冻卵母细胞及卵巢组织研究进展
词】卵母细胞;卵巢组织;玻璃化冷冻;冷冻保护剂;冻存
Progress
Affiliated
GA 0 Jing,CA,Xia.Reproductive Center,the First Medical University(GA 0 Jing);Department矿Gynaecology and Obstetrics,the Hospital ofXinji犹g
细胞[2J的生存率和胚泡形成率。玻璃化冷冻前预平
但不影响卵子冷冻过程中的脱水,也不影响卵子的 再水化.包被的颗粒细胞对MⅡ期卵子的冷冻起一 定的保护作用。
卵巢组织玻璃化冷冻
衡时间及温度及膜渗透性会影响冷冻效果.寻求各 参数的平衡点对获得好的预平衡效果十分必要。
二、玻璃化冷冻保护剂的应用及改进
常用细胞内冷冻保护剂有:DMSO、甘油、丙二 醇(PROH)、EG等,细胞外冷冻保护剂有蔗糖、海藻 糖等。多数学者认为,EG+DMSO和大分子糖类是比
冻样本的体积。可更容易玻璃化。近期Fujihira等[s] 研究发现.去除卵丘细胞的冷冻并不影响卵母细胞 复苏后的存活率。但可降低其胚胎的发育能力。
Puppen.Lingham等对卵丘颗粒细胞研究表明,其不
寻找最适平衡时间也有助于改善冷冻效果。有研究 发现,采用逐步平衡法或洗脱法有助于改善冻融后 鼠GV期卵细胞、人MⅡ期卵细胞及人3一原核期卵
细胞骨架、膜完整性等的损伤。自玻璃化冷冻鼠胚
胎首次成功后,该技术已广泛应用于卵母细胞和卵 巢组织的冷冻。 玻璃化冷冻人卵母细胞 Yoon等将体外受精一胚胎移植(IVF.ET)患者
早在1973年。Luyet就证实液体的凝同可分为 两种形式:一种是晶体化,液体中的分子呈有序排 列;另一种为非晶体化即玻璃化,液体中的分子呈 无序排列.保持未凝同前的状态。玻璃态介于液体

颗粒细胞在卵母细胞体外成熟过程中的作用-细胞生物学论文-生物学论文

颗粒细胞在卵母细胞体外成熟过程中的作用-细胞生物学论文-生物学论文

颗粒细胞在卵母细胞体外成熟过程中的作用-细胞生物学论文-生物学论文——文章均为WORD文档,下载后可直接编辑使用亦可打印——卵母细胞体外成熟(IVM)是指将不成熟的卵母细胞,在体外模拟体内成熟的微环境,培养至成熟卵子(MⅡ)的过程。

此项技术开始于动物实验,早在1935年Pincus发现兔子的不成熟卵可以在体外成熟,并且这个成熟过程是自发的。

30年后,Edwars提出人类的不成熟卵母细胞可以体外发育成熟,并且通过实验证实其成熟过程需要至少24h.在卵母细胞的成熟过程中颗粒细胞通过缝隙连接传递多种信号,参与卵母细胞减数的启动以及卵胞浆的成熟。

有研究表明,对颗粒细胞卵母细胞复合体(Cumulus-oocyte comeplexes,COCs)行IVM时,体外成熟率与受精率显着提高[1].不过,也有试验证明,颗粒细胞存在与否,并不能影响IVM的结局,甚至对卵母细胞的成熟与受精有负面影响[2].本文以颗粒细胞与卵母细胞的联系及信号传递为切入点,探讨在不同培养条件下的DOs能否达到和COCs相近的效果,更深层次研究颗粒细胞在IVM过程中的影响及作用,从而为DOs体外成熟创造更适合的培养环境。

1资料与方法1.1实验动物8~12周龄体重25g健康CD-1小鼠(雌性40只,雄性10只)购自维通利华实验动物技术有限公司,饲养在控温控湿及人工光照的条件下,自由饮水、采食。

1.2 IVM培养基IVM基础培养液购自瑞典vitrolife公司的卵裂期培养液(G1);促卵泡生成素由瑞士Serono公司生产,剂量为75IU/支;HCG由瑞士Serono公司生产,剂量为5 000IU/支。

将上述试剂配置成含FSH75IU/L 和HCG150IU/L的IVM培养液[3],并用配好的培养液制备四孔皿,每孔放0.5~0.8ml覆盖矿物油,放在37Ⅱ、CO2浓度为6%培养箱中温浴不少于6h备用。

1.3卵母细胞收集雌鼠腹腔注射HMG10IU,48h后颈椎脱臼并取出卵巢。

影响人卵母细胞体外成熟因素的研究进展

影响人卵母细胞体外成熟因素的研究进展

影响人卵母细胞体外成熟因素的研究进展高佩安;王飞;王庆果【摘要】@@ 卵母细胞体外成熟培养(In Vitro Maturation,IVM)是指将GV期或GV前期的卵母细胞在体外培养,达到次级卵母细胞(MII),能够正常发育、受精和着床,包括完整的卵泡培养[1]和单纯的卵丘复合体培养.在现代生殖领域中,IVM为降低患者促排卵并发症、降低治疗费用提供了解决途径,利用该技术可为一些高龄、卵巢早衰、卵巢切除和遗传病患者提供生殖机会,同时也有助于深入了解卵巢内不同发育阶段卵泡的发育机制和特点,但目前IVM的成功率还很低.【期刊名称】《泰山医学院学报》【年(卷),期】2009(030)007【总页数】4页(P552-555)【关键词】卵母细胞;体外成熟;影响因素【作者】高佩安;王飞;王庆果【作者单位】泰山医学院;泰山医学院;泰山医学院【正文语种】中文【中图分类】R321.1卵母细胞体外成熟培养(In Vitro Maturation,IVM)是指将GV期或GV前期的卵母细胞在体外培养,达到次级卵母细胞(MII),能够正常发育、受精和着床,包括完整的卵泡培养[1]和单纯的卵丘复合体培养。

在现代生殖领域中,IVM为降低患者促排卵并发症、降低治疗费用提供了解决途径,利用该技术可为一些高龄、卵巢早衰、卵巢切除和遗传病患者提供生殖机会,同时也有助于深入了解卵巢内不同发育阶段卵泡的发育机制和特点,但目前IVM的成功率还很低,要从根本上提高其成功率,必须对卵母细胞发育的相关影响因素进行研究和探讨。

1 体外因素1.1 促性腺激素促性腺激素(Gn)是参与卵泡发育调节的主要蛋白质激素。

研究显示Gn能通过诱导c-fos、c-myc、c-myb、c-erbB-2等癌基因的表达而调控颗粒细胞的分化和甾体激素分泌[2]。

Gn能通过cAMP途径促进颗粒细胞增生,卵丘细胞膨散。

卵泡刺激素(FSH)对卵母细胞的作用可能是通过刺激卵丘细胞分泌促卵母细胞成熟因子,该因子的产生就有赖于cAMP水平的变化[3] 。

人卵巢组织程序化冷冻及体外培养对卵泡活性和雌二醇分泌的影响

人卵巢组织程序化冷冻及体外培养对卵泡活性和雌二醇分泌的影响

人卵巢组织程序化冷冻及体外培养对卵泡活性和雌二醇分泌的影响田玄玄;阮祥燕;Montag Markus;Liebenthron Jana;Alfred O.Mueck【摘要】目的探讨程序化冷冻保存及组织体外培养对人卵巢皮质内卵泡活性和雌二醇分泌的影响.方法取手术切除的人卵巢皮质组织,修剪成1 cm3大小组织块,采用抽签法随机分为新鲜组、程序冷冻组、新鲜培养组、冻融后培养组.应用程序化冷冻法冻存卵巢组织,冷冻前后分别对卵巢组织进行体外培养,电化学发光免疫分析法检测上清液中雌二醇水平.冷冻前后及培养前后分别用Clacein AM进行卵泡荧光染色,各级卵泡计数.结果①冷冻前后各级卵泡数量及构成比差异无统计学意义(P>0.05);②新鲜组织和冻融组织体外培养都具有持续分泌E2的功能,开始培养阶段冻融组织分泌的雌二醇水平偏低(P<0.05),之后组间上清液雌二醇水平差异无统计学意义(P>0.05);③体外培养前后始基卵泡和初级卵泡数量及其构成比差异无统计学意义(P>0.05);体外培养后次级卵泡数量及构成比增加,差异有统计学意义(P<0.05).结论程序冷冻法可以较好地保存人卵巢皮质内的窦前卵泡,不影响体外培养的卵巢组织的雌二醇分泌.卵巢组织体外培养情况下,次级卵泡的生长优于始基卵泡和初级卵泡的生长.【期刊名称】《首都医科大学学报》【年(卷),期】2013(034)004【总页数】6页(P506-511)【关键词】卵巢组织;程序冷冻;体外培养【作者】田玄玄;阮祥燕;Montag Markus;Liebenthron Jana;Alfred O.Mueck【作者单位】首都医科大学附属北京妇产医院内分泌科,北京,100026;首都医科大学附属北京妇产医院内分泌科,北京,100026;海德堡大学妇产医院生殖医学研究中心,海德堡,69115;波恩大学妇产医院卵巢组织冻存中心,波恩,53012;德国图宾根大学妇产医院内分泌与绝经研究中心,图宾根,D-72076【正文语种】中文【中图分类】R339.2随着癌症治疗学的进步,年轻女性放化疗后卵巢功能减退及丧失成为妇产学界面临的重大问题。

女性肿瘤患者卵母细胞冻存的研究进展

女性肿瘤患者卵母细胞冻存的研究进展

窦 前 卵泡期 出现 卵泡 生 长 必备 的3 特 异性 受 种 体 , 泡刺激 素 、 卵 雌二醇 ( 、 E)睾酮 受体 , 卵泡 期颗 窦
粒细胞获得黄体生成激素(H) L 受体 。 卵泡 的这种发 育特点决定在未成熟卵的培养液 中添加卵泡刺激 素(S 、H E是必需的。 F H)L 、 此外 , 卵泡的成熟与颗粒 细胞(r u s cl , C ) g n l a es G s的发育 同步 , a o l 在卵母细胞 发育过程 中, C提供其必需营养及 调节因子 以保 Gs 证 其发 育 、 熟 的顺 利进 行 。反 过来 , 成 卵母 细胞 的发
面临放化疗 的未生育女性生育能力的保存 成为学 者们关注的焦点。精液及精子冻存对于男性肿瘤患 者是一种成熟有效 的保存生育能力的方法 , 但至今 对 于大部分女性肿瘤患者 尚无一种 明确的技术应 用 于临床。 目前 , 肿瘤患者为保存 自身生育能力闭 , 可选择 的方式有胚胎冷冻 、 卵母细胞冷冻 、 卵巢组 织冷冻一 移植 。 胚胎冻存技术较成熟 , 但受限于无精 子来 源 的患者 。卵 巢组织 冻存 适用 于各 年龄段 且 移 植后可以恢复 自身生殖 内分泌功能 , 但移植需要二
作者单位 :50 2 山东大学齐鲁 医院不孕不育诊疗中心 201

7 6.
垦 堕堡室 型生 堕生 宣叠查 至 旦笙 鲞笙 n ! 塑 t
!ha a, nr21 V1 1 o1 a /mPnJuy02 o3, . hF l a a , . N
卵7 5 枚 , ,和7 此种方式 获卵数有 限 , 但在不延误治 疗的情况下可以多周期取卵以增加冻卵数。妇科肿 瘤 及 盆 腹 腔 其 他 肿 瘤 患 者 可 在 经腹 或腹 腔 镜 手 术 过程中在在体或离体卵巢中取卵 , 非盆腹腔肿瘤患 者 及 全 身 免 疫 性 疾 病 患 者 可 经 阴道 超 声 引导 下 及 腹腔镜下穿刺取卵。 值得强调的一点是, 取卵前3 6 注 h 射^ 绒毛膜促I腺激素( G 1 0 U 生 h )0 0 可增加获卯数 C 0 I 及成 熟率 。

女性生殖功能保存的研究进展

女性生殖功能保存的研究进展

伤、 精神心理因素等也影响着女性生殖功能。这使 得越来 越多的女性 希望 可以保存生育功能或 内分 泌功能 J 。近些年 , 冷冻技术 的发展和各类辅助生 殖技术的开展让这类人群看到 了希望 , 现今, 女性
生殖 功 能 的保 存 方法 有 卵母 细胞 冻存 、 卵母 细胞 体 外 成熟 培 养 ( i n v i t r o ma t u r a t i o n , I V M) 、 卵巢 组织 冻 存、 胚胎 冻存 、 子宫移植 等。本篇综述将对这 些技术 进行 寸论。
慢速程序化冷冻 和玻璃化冷冻 2 种。慢速程序化 冷冻是在低 浓度冷冻剂 的保护下 以及程序化冷冻 仪的控制下 , 缓慢地程序性降低温度使卵母细胞冻
存, 由于所 需仪 器 设 备 昂贵 、 程 序复 杂 , 且存 在 冷冻 时间长 、 易形成冰 晶、 保 护 剂 与 卵母 细 胞 接 触 时 间
通讯作者 :李文 ( E ma i l :l y y l i we n @s i n a . c o m)
发育医学电子杂志 2 0 1 6 年7 月 第 4卷第 3期
J De v e l o p me n t Me d ,J u l y 2 0 1 6 ,V o 1 . 4 ,No - 3
李文 审校 ( 第二军 医大学 附属长征 医院 生殖 医学 中心 ,上海
随着 人 们生 活 方 式 、 工 作 环境 、 社 会发 展 等 因 素 的改 变 , 女 性 生育 年 龄 明显 推 迟 ;随着 医疗 水平
随着 一 些 国 家 法 律 禁 止 胚 胎 冷 冻 , 卵 子 捐 赠
和卵子银行的发展让人们对 卵母细胞冻存又有了
有 研 究将 纳 米微 粒 应 用 到 卵母 细 胞 冻存 中 , 李 维杰等 ¨ 认 为 , 加 入 一 定 浓 度 的纳 米 颗 粒 到低 温 保 护剂 中 , 能 有 效 降低 复温 过 程 中 出现 的重 结 晶现 象; 郝 保 同和刘 宝 林 ¨ 认 为 , 纳米 颗 粒 能够 改 变 低

哺乳动物小卵泡卵母细胞体外成熟的研究进展

哺乳动物小卵泡卵母细胞体外成熟的研究进展

中国畜牧兽医 2024,51(3):1171-1182C h i n aA n i m a lH u s b a n dr y &V e t e r i n a r y Me d i c i n e 哺乳动物小卵泡卵母细胞体外成熟的研究进展李有为1,程亚倬2,商继勇2,张廷龙1,孙铭菊2(1.青岛农业大学海都学院,莱阳265200;2.青岛农业大学动物医学院,青岛266109)摘 要:体外成熟是哺乳动物胚胎工程获得成熟卵母细胞的主要途径,卵母细胞质量直接影响早期胚胎发育,妊娠的建立及维持,胎儿的发育等㊂哺乳动物卵巢表面数量众多的小卵泡可以作为胚胎工程卵母细胞的来源,但从哺乳动物卵巢获取的卵母细胞成熟差异较大,存在处于发育各个时期的卵母细胞,小卵泡卵母细胞体外成熟质量差,发育能力不足㊂如何提高小卵泡卵母细胞体外成熟的发育能力以充分挖掘优良母畜的遗传资源,提高胚胎工程效率成为研究热点㊂基于此,文章概述哺乳动物小卵泡卵母细胞体外成熟的研究进展,比较大㊁小卵泡卵母细胞物质积累差异㊁卵泡的卵泡液成分及含量差异以及卵泡颗粒细胞和卵丘细胞的差异,分析哺乳动物小卵泡卵母细胞体外成熟质量差的原因,分析总结提高哺乳动物小卵泡体外成熟卵母细胞发育能力的措施,包括抑制核成熟㊁成熟前培养㊁颗粒细胞及卵丘细胞与卵母细胞共培养,期望能够为小卵泡卵母细胞发育调控机制的研究及发育能力的提高提供理论指导㊂关键词:哺乳动物;小卵泡;卵母细胞;体外成熟中图分类号:S 814.6文献标识码:AD o i :10.16431/j .c n k i .1671-7236.2024.03.029 开放科学(资源服务)标识码(O S I D ):收稿日期:2023-08-12基金项目:山东省自然科学基金项目(Z R 2020Q C 193);重庆市妇幼保健院开放课题(2020K F K T 005);青岛农业大学高层次人才科研基金(663/1120012)联系方式:李有为,E -m a i l :l i yo u w e i 008@163.c o m ㊂通信作者孙铭菊,E -m a i l :s u n 8911@163.c o m R e s e a r c hP r o gr e s s o n i n v i t r o M a t u r a t i o no f S m a l l F o l l i c l e -d e r i v e dO o c yt e s i n M a m m a l i a n L IY o u w e i 1,C H E N G Y a z h u o2,S H A N GJ i y o n g 2,Z H A N G T i n g l o n g 1,S U N M i n g ju 2(1.H a i d uC o l l e g e ,Q i n g d a oA g r i c u l t u r a lU n i v e r s i t y ,L a i y a n g 265200,C h i n a ;2.C o l l e g e o fV e t e r i n a r y M e d i c i n e ,Q i n g d a oA g r i c u l t u r a lU n i v e r s i t y ,Q i n g d a o 266109,C h i n a )A b s t r a c t :I nv i t r o m a t u r a t i o ni st h e m a i n w a y f o r m a m m a l i a ne m b r y oe n g i n e e r i n g too b t a i n m a t u r e o o c y t e s .T h e q u a l i t y o f o o c y t e s d i r e c t l y a f f e c t s e a r l y e m b r y o n i c d e v e l o pm e n t ,e s t a b l i s h m e n t a n dm a i n t e n a n c eo f p r e g n a n c y ,a n df e t a ld e v e l o p m e n t .T h e l a r gen u m b e ro f s m a l l f o l l i c l e so n t h e s u r f a c e o f m a m m a l i a n o v a r i e s c a n p r o v i d e o o c y t e s t h a t a p p l y t o e m b r y o e n g i n e e r i n g ,b u t t h eo o c y t e so b t a i nf r o mt h eo v a r y a r ea td i f f e r e n ts t a g e st h a ts h o w sd i f f e r e n t m a t u r e c a p a c i t y ,a n d t h e q u a l i t y o f i n v i t r o m a t u r a t i o n o f o o c yt e s f r o ms m a l l f o l l i c l e s a r e p o o r a n d d e f i c i e n t i nd e v e l o p m e n t a l a b i l i t y .H o wt o i m p r o v e t h e i n v i t r o m a t u r a t i o n a b i l i t y o f s m a l l f o l l i c l e o o c y t e s t of u l l y t a p i n t ot h e g e n e t i cr e s o u r c e so fe x c e l l e n tf e m a l ea n i m a l sa n di m pr o v et h e e f f i c i e n c y o fe m b r y o e n g i n e e r i n g h a s b e c o m e ar e s e a r c h h o t s p o t .B a s e d o n t h i s ,t h er e v i e w s u m m a r i z e s t h e r e s e a r c h p r o g r e s so f i n v i t r o m a t u r a t i o no f s m a l l f o l l i c l eo o c yt e s i n m a m m a l i a n ,c o m p a r e s t h e d i f f e r e n c e s i n a c c u m u l a t i o n o f o o c y t em a t e r i a l ,t h e d i f f e r e n c e s i n t h e c o m po s i t i o n a n d c o n t e n t o f f o l l i c u l a r f l u i d ,a n d t h e d i f f e r e n c e s b e t w e e n f o l l i c u l a r g r a n u l o s a c e l l s a n d c u m u l u s c e l l si n l a r g e a n d s m a l l f o l l i c l e s ,a n a l y z e s t h e r e a s o n s f o r t h e p o o r q u a l i t y ofm a m m a l i a ns m a l l f o l l i c l e中国畜牧兽医51卷o o c y t e s i n v i t r o m a t u r a t i o n,a n a l y z e s a n d s u m m a r i z e s t h em e a s u r e s t o i m p r o v e t h ed e v e l o p m e n t a l a b i l i t y o f m a m m a l i a ns m a l l f o l l i c l eo o c y t e s i nv i t r o m a t u r a t i o n,i n c l u d i n g i n h i b i t i o no fn u c l e a r m a t u r a t i o n,p r e-m a t u r a t i o n c u l t u r e o f o o c y t e a n d c o-c u l t u r e o f o o c y t e s w i t h g r a n u l o s a a n d c u m u l u s c e l l s,w h i c ha i m e s a t p r o v i d i n g t h e o r e t i c a l g u i d a n c e f o r t h e r e s e a r c ho f t h ed e v e l o p m e n t r e g u l a t i o nm e c h a n i s mo f s m a l l f o l l i c l e o o c y t e s a n d t h e i m p r o v e m e n t o f d e v e l o p m e n t a l c a p a c i t y. K e y w o r d s:m a m m a l s;s m a l l f o l l i c l e s;o o c y t e s;i n v i t r o m a t u r a t i o n家畜卵母细胞随着卵泡长大而生长成熟,获得发育能力,卵母细胞良好的生长成熟是决定雌性生产及繁殖能力的重要指征㊂卵母细胞体外成熟培养(I VM)是利用体外培养体系模拟体内卵母细胞成熟环境,将未成熟的卵母细胞培养至第二次减数分裂中期(MⅡ)的过程㊂卵母细胞体外成熟是研究哺乳动物卵母细胞成熟和胚胎发育的基础,是辅助生殖的关键,是保护和扩繁优良家畜的重要前提㊂进行体外成熟培养的卵母细胞取自卵巢表面卵泡,但卵巢表面大腔卵泡数量非常有限,不能满足科研和临床需求,数量众多的小卵泡作为卵母细胞来源受到更多学者关注㊂但小卵泡卵母细胞的体外成熟质量差,发育能力显著低于大卵泡卵母细胞[1-3]㊂研究者们试图探究小卵泡卵母细胞体外成熟质量差的原因及提高小卵泡卵母细胞体外成熟质量的措施,但这些问题仍未被完全阐明,也未见系统的论述㊂因此,作者系统论述哺乳动物小卵泡卵母细胞的利用现状及研究意义,从卵母细胞生长的卵泡微环境方面分析小卵泡卵母细胞体外成熟质量及发育能力差的原因,概述提高小卵泡卵母细胞体外成熟质量的措施,为改善哺乳动物小卵泡卵母细胞体外成熟培养系统提供新思路,继而提升优良家畜繁殖利用效率,促进胚胎工程技术的发展和应用㊂1哺乳动物小卵泡卵母细胞的利用现状及研究意义哺乳动物小卵泡卵母细胞体外成熟质量及发育能力显著低于大卵泡卵母细胞㊂研究表明,直径2.5~4.0m m的猪卵泡卵母细胞体外成熟质量及发育能力低于4.5~6.0m m卵泡卵母细胞[1];山羊卵巢上直径<3m m卵泡卵母细胞体外成熟质量及发育能力低于直径>3m m卵泡卵母细胞[2],且只有来自直径1.5m m以上山羊卵泡的卵母细胞才具有完成减数分裂的能力[4];在牛的研究中发现卵巢上直径<3m m卵泡卵母细胞体外成熟质量及发育能力低于直径>8m m卵泡卵母细胞[3,5]㊂人小卵泡(直径<10m m)卵母细胞体外成熟和发育能力显著低于大卵泡卵母细胞[6]㊂因此,哺乳动物胚胎工程利用的卵母细胞大都取自大卵泡进行体外成熟培养,如在猪上选取卵巢表面卵泡直径3~6m m的卵母细胞[7]㊂哺乳动物卵泡的生长经历原始卵泡㊁初级卵泡㊁次级卵泡㊁三级卵泡和成熟卵泡阶段,随着卵泡生长,卵母细胞生长成熟㊂胎儿期哺乳动物卵巢中存在数百万卵泡,但仅有少数卵泡能够发育成熟并排出成熟卵母细胞,其余大部分小卵泡在不同生长时期发生闭锁或退化㊂胚胎工程技术的研究和推广应用需要大量廉价和高质量的卵母细胞,卵巢表面大卵泡数量有限,因此需要高效利用数量众多的小卵泡㊂探究小卵泡卵母细胞体外成熟质量差的原因,提高小卵泡卵母细胞体外成熟的发育能力和利用率,能够充分挖掘优良母畜的繁殖潜能,为动物繁育技术的发展提供理论指导,促进畜牧业健康㊁稳定㊁持续发展;改良卵母细胞体外成熟培养体系,为相关科学研究提供大量廉价的试验材料,促进胚胎工程技术的发展;同时在指导人类辅助生殖小卵泡的利用,减少激素刺激的副作用,提高辅助生殖成功率方面有重要意义㊂2小卵泡卵母细胞体外成熟质量差的原因哺乳动物卵母细胞生长成熟依赖卵泡形成的微环境,卵泡外包卵泡膜,生长至有腔卵泡阶段,卵泡内形成卵泡腔,卵泡腔内含卵泡液,卵母细胞外包卵丘细胞位于卵泡腔中,卵丘细胞连接卵泡腔周围的颗粒细胞,卵泡内的卵泡液㊁卵丘细胞和颗粒细胞维持卵母细胞的生长成熟㊂因此,下文从卵母细胞自身生长程度㊁卵泡液成分和含量㊁卵丘及颗粒细胞功能三方面比较大小卵泡的差异,探究小卵泡卵母细胞体外成熟质量差的原因㊂2.1大、小卵泡的卵母细胞物质积累差异卵母细胞随着卵泡长大而生长,染色质逐渐凝集,转录活性逐渐减低,完成胞质物质的积累以获得成熟和发育能力,小鼠染色质凝集型卵母细胞无转录活性[8],直径>3m m猪卵泡中的卵母细胞转录27113期李有为等:哺乳动物小卵泡卵母细胞体外成熟的研究进展逐渐沉默[9-10]㊂转录逐渐沉默过程中,卵母细胞完成转录物的积累,支持后期的成熟和胚胎发育,这是大㊁小卵泡卵母细胞体外发育能力差异的重要因素㊂高通量测序技术为卵母细胞生长成熟机制的研究提供技术支持,利用转录组测序分析不同大小卵泡的牛卵母细胞,发现在卵泡发生过程中重要差异表达基因,如调节转录的转录因子2(T A F2)㊁染色质重塑相关的蛋白磷酸酶1的催化亚基-β同工酶(P P P1C B)㊁能量代谢相关的溶质载体家族25-腺嘌呤核苷酸转运子成员31(S L C25A31),细胞内分子运输相关的N-乙酰葡糖胺-1-磷酸二酯酶(N A G P A)㊁半胱氨酸/组氨酸富含1(C Y H R1)和溶质载体家族39-锌转运子成员12(S L C3A12)[3]㊂来自人类原始卵泡和初级卵泡的卵母细胞在参与调节卵母细胞休眠和激活途径的基因表达上存在差异[11]㊂在小鼠中,染色质凝集的卵母细胞与弥散性染色质构型卵母细胞相比有380个差异表达基因,且大多数基因下调[12]㊂猪卵母细胞转录组数据分析差异表达基因显示,与小卵泡组相比,大卵泡卵母细胞中有60个基因上调,262个基因下调[13]㊂因此,大小卵泡卵母细胞基因表达的差异与卵母细胞成熟和发育能力的获得密切相关,但具体关系及起决定性作用的因子仍需要进一步探究㊂卵母细胞内成熟及发育相关因子的研究尚不充分,仅局限于特定因子的比较和分析㊂卵母细胞成熟促进因子(M P F)介导多种信号调控卵母细胞成熟㊂在猪小卵泡中M P F活性以及参与卵母细胞成熟的细胞周期依赖性激酶1(C D K1)㊁增殖细胞核抗原(P C N A)㊁细胞外信号调节激酶2(E R K2)的表达量显著低于大卵泡卵母细胞[14]㊂卵母细胞中原癌基因丝氨酸/苏氨酸激酶(c-MO S)参与维持减数分裂阻滞并具有调节M P F活性的作用[15-16],猪小卵泡生发泡(G V)期卵母细胞中c-M O S基因转录水平低[17]㊂猪小卵泡卵母细胞中调控卵丘扩展的基因(如骨形态发生蛋白(B M P15)㊁生长分化因子9 (G D F9)㊁透明质酸合成酶2(H A S2)㊁肿瘤坏死因子α诱导蛋白6(T N F I P6)等)表达量低,使卵丘扩展能力不足,同时引起表皮生长因子受体(E G F R)信号通路下调,卵母细胞发育能力低[18]㊂环磷酸腺苷(c AM P)是哺乳动物中保守且普遍存在的第二信使,在卵泡发育及卵母细胞成熟过程中发挥重要作用,卵母细胞减数分裂的阻滞和恢复依赖于c AM P㊂小卵泡卵母细胞c AM P含量低于大卵泡卵母细胞[19],小卵泡卵母细胞对c AM P的感应不如大卵泡,在体外成熟培养过程中添加c AM P 的类似物d i b u t y r y l c AM P(d b-c AM P),培养11h 时大卵泡c AM P含量是小卵泡卵母细胞的3倍[20]㊂卵母细胞旁分泌因子G D F9和B M P15具有调控卵泡生长[21],促进卵丘细胞和颗粒细胞的生长㊁分化,阻止卵丘细胞凋亡,促进卵母细胞成熟㊁排卵㊁受精和胚胎发育的作用[22-23]㊂G D F9和B M P15的表达模式在不同物种之间存在差异,绵羊㊁牛㊁负鼠和仓鼠在原始卵泡卵母细胞中开始表达,而大鼠㊁小鼠和人类在初级卵泡开始表达,发育至次级卵泡开始激增[24-25]㊂猪小卵泡卵母细胞中G D F9水平低于大卵泡卵母细胞,在经过体外成熟培养后大卵泡卵母细胞G D F9表达量仍显著高于小卵泡卵母细胞[26]㊂G D F9基因敲除后,卵泡生长阻滞在初级卵泡阶段,小鼠雌性不育[27],B MP15基因敲除(B MP15-/-)的小鼠生殖能力降低,排卵减少, G D F9+/-和B MP15-/-的小鼠卵泡发生㊁卵丘细胞和受精能力均出现异常[28-29]㊂另外,细胞内谷胱甘肽(G S H)是预测猪卵母细胞细胞质成熟的分子标志物,猪大卵泡卵母细胞内G S H含量显著高于小卵泡卵母细胞[30]㊂卵母细胞内脂滴等代谢物含量㊁表观遗传修饰的差异等都是导致大㊁小卵泡卵母细胞体外成熟发育能力差异的可能原因,需要更为系统的研究和阐述㊂以上研究揭示了大㊁小卵泡卵母细胞转录物㊁活性因子及调控成熟信号等的差异,表明卵母细胞内物质积累对卵泡卵母细胞生长㊁卵母细胞成熟及发育能力的获得㊁生殖的重要性,小卵泡卵母细胞物质积累不足是导致发育能力低的重要原因㊂2.2大、小卵泡的卵泡液成分及含量差异卵泡液是血清的超滤液,是穿过血滤泡屏障的血浆成分转移以及颗粒和卵母细胞分泌活动的产物,卵泡液成分包括激素㊁生长因子㊁活性氧㊁蛋白质㊁肽和氨基酸等㊂卵泡液中含有多种激素,在卵泡及卵母细胞的生长发育过程中起着关键调控作用,大㊁小卵泡内激素含量不同,卵泡对激素水平的感应不同是导致卵母细胞发育能力不同的重要因素之一㊂研究比较不同物种发现小卵泡内促卵泡激素(F S H)含量高[8,19,31],同时小卵泡颗粒细胞高表达促卵泡激素受体(F S H R),促进小卵泡进一步生长[32]㊂F S H能够激活磷脂酰肌醇-3激酶/蛋白激酶B/叉头转录因子O亚族1(P I3K/A k t/F O X O1)信号通路,引起固醇元件结合转录因子2(S R E B P2)上调,促进3-羟3711中国畜牧兽医51卷基-3甲基戊二酸单酰辅酶A还原酶(HMG C R)表达调控卵泡内颗粒细胞合成胆固醇[33-35],F S H还具有增强表皮生长因子(E G F)诱导E G F R酪氨酸磷酸化的作用[36],F S H-E G F R能激活S MA D2/3信号通路,调控卵丘扩展和类固醇生成[37]㊂因此,F S H 在小卵泡中含量高,可促进小卵泡的进一步生长,在大卵泡内F S H主要是促进卵母细胞核成熟㊂抗缪勒氏激素(AMH)的表达仅局限于腔前和小腔卵泡颗粒细胞,通常在小腔前卵泡中出现表达高峰,伴随着腔前卵泡直径的增加,颗粒细胞和卵泡液中AMH水平降低,优势卵泡不再产生AMH[38-39]㊂AMH在调控卵母细胞发育中的作用是增加腔前卵泡中雄烯二酮的含量,抑制颗粒细胞增殖[40-41],另外通过抑制F S H诱导的芳香酶活性共同抑制雌二醇(E2)合成[42],表明AMH对优势卵泡的选择是必需的㊂大卵泡孕酮(P4)和E2含量均高于小卵泡,促黄体生成素受体(L H R)和雌激素,及类固醇合成酶,主要是细胞色素P450酶(芳香化酶和17α羟化酶)表达量高,其作用是为激素应答做准备[30,43]㊂E2可与卵母细胞分泌因子共同作用,通过调控钠肽通路促进卵丘细胞环磷酸鸟苷(c GM P)产生[44-45],高水平c GM P维持减数分裂的阻滞,促进卵母细胞胞质充分成熟㊂卵泡液中重要成分还包括卵母细胞及颗粒细胞分泌的重要生物活性因子,B i j t t e b i e r等[46]利用蛋白组学鉴定猪卵泡液和血清中与卵丘细胞扩展相关的蛋白因子,但因技术的限制仅鉴定了13种差异表达蛋白,精确度也较低㊂因此,仍需利用转录组及蛋白组学等技术系统研究猪卵泡液关键因子及相互作用,揭示卵泡因子之间的互作以及揭示卵母细胞成熟分子调控机制㊂2.3大、小卵泡颗粒细胞和卵丘细胞的差异卵泡生长过程的重要变化包括颗粒细胞数量的增加以及颗粒细胞和卵丘细胞的分化,猪小腔卵母细胞周围的卵丘细胞数量显著低于中等卵泡卵母细胞[47],小卵泡内颗粒细胞和卵丘细胞数量不足,发挥功能受限,必定会影响卵母细胞发育能力㊂卵丘细胞分泌因子包括过氧化氢酶㊁超氧化物歧化酶㊁血管内皮生长因子㊁G S H㊁特异性转录因子和环核苷酸(c AM P㊁c GM P)等,分泌因子在维持氧化稳态,抑制凋亡,调控细胞增殖和凋亡,以及卵母细胞减数分裂恢复中发挥关键作用,能够促进卵母细胞成熟发育[48]㊂常见的颗粒细胞分泌因子包括利钠肽(N P s)㊁类表皮生长因子(E G F-l i k ef a c t o r s)㊁前列腺素(P G E)等[49]㊂其中利钠肽家族成员C-型利钠肽(C N P)由卵泡壁粒细胞分泌,结合卵丘细胞表面的利钠肽受体2(N P R2)[50],诱导c GM P的表达,具有维持卵母细胞减数分裂阻滞的作用[51],利钠肽受体系统对卵巢生长和卵母细胞减数分裂的有序发生起重要作用,决定雌性生殖能力[52-53]㊂直径1~2m m 猪卵泡卵丘细胞内N p r2m R N A水平显著低于直径3~6m m卵泡卵丘细胞[19]㊂促黄体生成素(L H)和F S H作用的重要通路是通过转活化E G F信号通路在调控卵丘细胞增殖分化中发挥作用㊂已经在啮齿类动物[54-56]㊁人[57]㊁灵长类[58]㊁牛[59]和猪[60]颗粒细胞中证实类表皮生长因子的表达,如双调蛋白(A R E G)㊁上皮调节蛋白(E R E G)和β-细胞素(B T C)㊂这些类E G F生长因子以自分泌或旁分泌形式通过E G F R作用于壁颗粒细胞和卵丘颗粒细胞[55-56,60-61],在卵母细胞减数分裂恢复中发挥关键作用㊂E G F及类表皮生长因子能够提高体外成熟卵母细胞成熟率㊁受精和早期胚胎发育能力[8,62]㊂直径<3m m的山羊卵泡卵丘卵母细胞复合体(C O C s)中E G Fm R N A水平低于直径>3m m的卵泡[63],而缺少E G F类生长因子C O C s不会发生扩展[64-65],猪小腔卵泡卵母细胞对E G F类生长因子的反应能力及结合能力低[18,65]㊂P G E2水平的升高是调控卵丘扩展和卵母细胞成熟及排卵的关键㊂抑制P G E2的合成,卵丘细胞扩展㊁卵母细胞成熟和排卵率降低,缺少P G E2或P G E2受体表达的小鼠不能排卵[66-68]㊂利用前列腺素合成抑制剂也能阻断兔㊁奶牛和灵长类动物的排卵,将前列腺素合成抑制剂直接注射到猕猴的优势卵泡中,卵泡则不能应答L H的刺激进而不能排卵,注射抑制剂的同时注射P G E2会恢复排卵[69]㊂综上,大㊁小卵泡卵母细胞㊁卵泡液㊁颗粒与卵丘细胞存在显著差异(图1):①小卵泡内卵母细胞转录活性强;基因表达与大卵泡卵母细胞有差异;c AM P含量低;c-MO S㊁M P F活性低;旁分泌因子G D F9/B M P15少;G S H含量少;②小卵泡卵泡腔内卵泡液含量及成分与大卵泡卵泡液差异显著;F S H㊁AMH含量高;P4㊁E2含量低;③小卵泡内颗粒细胞和卵丘细胞数量少;N P㊁PG E2㊁E G F家族生长因子少;N P R2表达少㊂此外,大㊁小卵泡颗粒细胞㊁卵丘细胞㊁卵泡液以及卵母细胞之间的信息交流,促进支持卵泡和卵母细胞的生长成熟,它们之间47113期李有为等:哺乳动物小卵泡卵母细胞体外成熟的研究进展的相互联系及结合程度不同都可能造成卵母细胞发育能力差异㊂卵泡和卵母细胞生长成熟极其复杂,人们对其认识极其有限,卵泡内生命活动及其调控机制仍需要进一步阐明㊂与大卵泡相比,ʏ表示小卵泡内物质含量多;ˌ表示小卵泡内相应物质含量少C o m p a r e dw i t hl a r g ef o l l i c l e s ,ʏi n d i c a t e da h i gh e rc o n t e n to fs u b s t a n c e si ns m a l lf o l l i c l e s ;ˌi n d i c a t e dl o w c o n t e n to f c o r r e s p o n d i n g s u b s t a n c e s i n s m a l l f o l l i c l e s 图1 哺乳动物大、小卵泡内物质差异F i g .1 D i f f e r e n c e s i n s u b s t a n c e s b e t w e e n l a r ge a n d s m a l lf o l l i c l e s i nm a m m a l s 3 提高小卵泡卵母细胞体外成熟发育能力的措施在体内卵泡环境,卵母细胞长时间停滞在第一次减数分裂前期,一旦置于体外成熟培养环境,卵母细胞很快自发恢复减数分裂,完成核成熟㊂哺乳动物卵泡长至大腔卵泡时期卵母细胞才生长完全,胞质完全成熟,体外成熟培养导致小卵泡卵母细胞在胞质未成熟之前提前恢复减数分裂,使得卵母细胞发育能力低㊂基于上述小腔卵泡卵母细胞发育能力不足的原因分析,体外成熟培养过程中,提高小腔卵泡卵母细胞发育能力的举措主要是在支持生长的培养基中进行前培养或者抑制卵母细胞的核成熟,保证卵母细胞足够的胞质成熟时间,以及卵母细胞与卵丘细胞或颗粒细胞共培养,弥补小腔卵泡卵母细胞生长的不足,以提高小卵泡卵母细胞质量㊂3.1 抑制核成熟提高小卵泡卵母细胞体外成熟发育能力很多研究在卵母细胞体外成熟培养的早期阶段利用抑制剂抑制生发泡破裂(G V B D )的发生,以提高猪卵母细胞胞质的成熟,但对卵母细胞发育能力的提高非常有限㊂抑制核成熟研究最多的是卵母细胞内c AM P -蛋白激酶A (P K A )-M P F 通路的调控,在猪和小鼠卵母细胞成熟过程中使用d b -c AM P ㊁利用抑制剂3-异丁基-1-甲基黄嘌呤(I B M X )㊁西洛酰胺抑制磷酸二酯酶(P D E )进而抑制c AM P 的降解,添加毛喉素(F S K )激活腺苷酸活化酶,这些都能够维持卵母细胞内高水平的c AM P ,抑制细胞核过早发生成熟,提高猪小卵泡(1~2m m )卵母细胞发育能力[70-71]㊂添加C D K 抑制剂r o s c o v i t i n e 抑制M P F 的活化,能显著提高猪[72]㊁山羊[73]㊁水牛[74]小卵泡卵母细胞体外成熟的发育能力㊂相似的,添加b u t yr o l a c t o n eⅠ抑制C D K 1也能够提高牛卵母细胞成熟[75]㊂颗粒细胞产生的C N P 被用作天然的卵母细胞核成熟抑制剂㊂在小鼠㊁山羊㊁猪和牛的研究中证实5711中国畜牧兽医51卷C N P能够抑制卵母细胞减数分裂的恢复,体外成熟培养过程添加C N P可提高小卵泡卵母细胞体外成熟的发育能力[76-78]㊂添加C N P能够维持卵丘细胞间的通讯;诱导卵母细胞染色质结构的改变;增加卵母细胞直径㊁线粒体D N A拷贝数㊁线粒体活性和活性氧水平;降低G S H水平;增加卵丘细胞功能[44,79]㊂另外,在体外延迟减数分裂自发恢复的安全有效方法是培养体系中加入卵泡液或添加卵泡液因子,利用卵泡液成分抑制核成熟,同时支持卵母细胞胞质成熟和核成熟,猪的体外成熟培养体系大都添加卵泡液㊂添加卵泡液因子也是提高卵母细胞体外成熟质量的重要方法,体外培养直径2~4m m猪卵泡卵母细胞添加c AM P㊁B M P15和G D F9的同时添加A R E G可提高卵母细胞体外成熟发育能力[18], B M P15㊁G D F9及E G F㊁胶质细胞衍生神经营养因子(G D N F)的组合均能提高卵母细胞发育能力[64,80-81]㊂除此,在培养恒河猴小卵泡(直径0.5㊁0.5~2.0m m)卵母细胞过程中发现添加人绒毛膜促性腺激素(h C G)[82]㊁A R E G[83]能够提高核成熟㊂3.2成熟前培养提高小卵泡卵母细胞发育能力成熟前培养是利用支持生长的培养基促进卵母细胞进一步生长,包括卵泡的培养和卵母细胞的前培养㊂卵泡培养能够实现早期初级卵泡甚至原始卵泡的生长,进一步完成体外卵母细胞的成熟培养,但成熟率不能达到要求㊁培养体系复杂㊁时间长㊁成本较高,并不适合于服务胚胎工程生产,在这里不做赘述㊂卵母细胞的成熟前培养常用的方法是低浓度的激素,如猪小卵泡卵母细胞在体外成熟的1/250浓度的F S H和L H的生长培养基中培养24h,随后在成熟培养基中培养20h可提高猪卵母细胞发育能力[84]㊂与抑制核成熟相似的是成熟前培养也是给予胞质充分的时间以促进其成熟,所以在前培养过程中一般在调控激素水平的基础上结合使用抑制核成熟因子㊂如在培养的前10h添加F S H㊁E2和I B M X,后10h添加P4㊁F S H㊁E2和I B M X,在随后的22h 培养过程中更换为L H㊁E G F和P4可提高猪小卵泡(3~5m m)卵母细胞发育能力[60]㊂前培养过程添加垂体腺苷酸环化酶激活多肽(P A C A P)刺激细胞产生c AM P,能够提高1~3m m猪卵泡卵母细胞发育能力[85]㊂绵羊小卵泡(2~4m m)卵母细胞添加C N P的培养基进行6h前培养,在添加A R E G和P G E2的培养基培养18h,能够提高卵裂率和囊胚率[49]㊂在临床上,将多囊卵巢综合征患者小卵泡(直径<6m m)添加C N P进行前培养,然后再利用体外成熟培养系统能够显著提高小卵泡卵母细胞成熟率和发育能力[77,86-87],同时避免了激素对患者的副作用㊂在此培养系统基础上添加A R E G则能够进一步提高多囊卵巢综合征患者小卵泡卵母细胞发育能力[88]㊂3.3颗粒细胞及卵丘细胞与卵母细胞共培养提高小卵泡卵母细胞发育能力为弥补小卵泡内颗粒及卵丘细胞数量及所分泌因子不足导致的卵母细胞发育能力降低㊂研究者通过共培养及添加相应分泌因子的方式或者改善培养方式来提高卵母细胞体外成熟的发育能力㊂用3~6m m卵泡卵母细胞颗粒细胞团与1~ 2m m卵泡卵母细胞共培养,能够提高猪小卵泡卵母细胞直径,同时促进卵母细胞的成熟[47]㊂在绵羊中研究发现,如果将来自小卵泡(0.5~1.0m m)的卵母细胞与直径3.0~4.0m m卵泡卵母细胞卵丘细胞共培养,则近48%的小卵泡卵母细胞能够恢复减数分裂并能够发育到MⅡ阶段[89]㊂山羊小卵泡(直径<3m m)卵母细胞与裸卵共培养也能够提高卵裂率和囊胚率[90]㊂这些研究表明,卵泡颗粒细胞㊁卵丘细胞以及卵母细胞自身对卵母细胞成熟和发育能力的获得都是有利的,同时,在共培养的基础上再添加其他因子也能提高卵母细胞体外成熟和发育能力㊂除上述措施外,提高小卵泡卵母细胞体外成熟的发育能力的措施还有很多,包括添加抗氧化㊁抗凋亡㊁增强线粒体功能㊁增强表观遗传修饰㊁促进卵丘扩展㊁自噬等作用的物质㊂褪黑素[91]㊁辅酶Q10[92]㊁血管内皮生长因子[93]能够提高卵母细胞体外成熟的发育能力,特别是质量差的小卵泡卵母细胞㊂亚麻酸能够提高山羊小卵泡(<2m m)卵母细胞减数分裂能力和发育至囊胚的能力[94]㊂培养猪小卵泡(1~3m m)卵母细胞时添加烟酸或烟酰胺,可改善卵母细胞体外成熟和发育能力[95]㊂促进胞质成熟,弥补小卵泡的不足能够部分提高小卵泡卵母细胞发育能力,但并不能达到大卵泡卵母细胞发育成熟的程度,还有很大的提升空间㊂4总结与展望卵母细胞生长成熟是一个异常复杂的生物过程,需要卵母细胞与邻近的颗粒细胞㊁卵丘细胞及卵6711。

生命科学导论论文

生命科学导论论文

生命科学导论论文学院:班级:学号:姓名:生命的契机--干细胞的研究与发展前景摘要:二十世纪是生命科学发展最为迅猛的时代,它已成为自然科学中最为引人注目的领域。

科学界现已广泛地认为干细胞研究是当前生命科学的最热点之一,是生命科学的最大成就之一。

科学家成功分离人体胚胎干细胞的新闻轰动了世界。

在1999年末的年度世界十大科学成果评选中,世界最权威的美国《科学》杂志将“干细胞研究的新发现”评为“1999年世界十大科学成就”之榜首,人类基因组测序和克隆技术“屈尊让贤”名列第二;2000年再度入选《科学》评选的当年10大科技成就。

如果说基因研究正全力构筑生命科学基石的话,那么干细胞应用则将打开疾病治疗的“突破口”。

干细胞研究具有不可估量的医学价值,将促使科学家们重新认识细胞生长、分化的基本生命原理。

关键词:干细胞调控细胞分化干细胞医学应用正文:一:什么是干细胞胚胎干细胞是在人胚胎发育早期——囊胚(受精后约5—7天)中未分化的细胞。

囊胚含有约140个细胞,外表是一层扁平细胞,称滋养层,可发育成胚胎的支持组织如胎盘等。

中心的腔称囊胚腔,腔内一侧的细胞群,称内细胞群,这些未分化的细胞可进一步分裂、分化,发育成个体。

内细胞群在形成内、中、外三个胚层时开始分化。

每个胚层将分别分化形成人体的各种组织和器官。

如外胚层将分化为皮肤、眼睛和神经系统等,中胚层将形成骨骼、血液和肌肉等组织,内胚层将分化为肝、肺和肠等。

由于内细胞群可以发育成完整的个体,因而这些细胞被认为具有全能性。

当内细胞群在培养皿中培养时,我们称之为胚胎干细胞。

在细胞的分化过程中,细胞往往由于高度分化而完全失去了再分裂的能力,最终衰老死亡。

机体在发展适应过程中为了祢补这一不足,保留了一部分未分化的原始细胞,称之为干细胞(stem cell)。

干细胞是人体内最原始的细胞。

它具有较强的再生能力,在干细胞因子(SCF)和多种白细胞介素(IL)的联合作用下可扩增出各类的细胞。

卵母细胞体外成熟技术的临床应用进展

卵母细胞体外成熟技术的临床应用进展

卵母细胞体外成熟技术的临床应用进展李涵;杨志勇【摘要】In vitro maturation (IVM) refers to the maturation of immature oocytes at different stages.Immature oocytes obtained in different origins have different subsequent embryonic development capacity and pregnancy rates as well health live births rates.IVM as an efficient treatment has been used in those patients with polycystic ovary syndrome,ovary high response or low response,and fertility preservation.Several thousands of healthy IVM babies have been born in the world.The improvement of clinical IVM technology focuses on IVM medium,the optimization of the culture environment and operation process.With the improvement of IVF efficiency and IVM culture system,the new treatment option was proposed that the combination of natural cycle/ mild stimulation IVF treatment with immature oocyte retrieval and the followed IVM.This IVF combined with IVM may represent a viable alternative to the present standard treatment,or as a potential first-line treatment in future.%卵母细胞体外成熟(in vitro maturation,IVM)是将处于不同时期的未成熟卵母细胞体外培养成熟的技术,临床不同来源的未成熟卵母细胞在胚胎发育潜能、妊娠率和活产率等方面存在差异.IVM作为一种有效治疗手段可应用于治疗多囊卵巢综合征、卵巢高反应及低反应患者、癌症患者生育力保存等,该技术已在全世界应用并有数千名健康婴儿出生.临床IVM技术的改进主要包括IVM培养基的改良、培养环境及操作流程的优化.目前,随着体外受精(IVF)效率的提高和培养体系的改进,自然周期或温和刺激可能更适合于进行IVF治疗的女性.新的治疗方案提出将自然周期/温和刺激IVF与IVM结合,温和刺激IVF联合IVM治疗方案不仅有望成为目前标准治疗的可行替代方案,而且可能是潜在的一线治疗选择.【期刊名称】《国际生殖健康/计划生育杂志》【年(卷),期】2017(036)005【总页数】5页(P412-416)【关键词】卵母细胞;细胞培养技术;生殖技术,辅助;受精,体外【作者】李涵;杨志勇【作者单位】200032上海,同济大学附属第十人民医院生殖医学中心;200032上海,同济大学附属第十人民医院生殖医学中心【正文语种】中文20世纪60年代人类卵母细胞体外成熟技术(in vitro maturation,IVM)取得里程碑式进展,人卵母细胞体外受精(in vitro fertilization,IVF)也由IVM卵母细胞建立。

核抑制剂(Roscovitine)对促排周期人未成熟卵母细胞体外成熟安全性的初步研究

核抑制剂(Roscovitine)对促排周期人未成熟卵母细胞体外成熟安全性的初步研究

核抑制剂(Roscovitine)对促排周期人未成熟卵母细胞体外成熟安全性的初步研究李豫峰;田红帅;李舟;刘群;章汉旺;任新玲;魏玉兰;胡娟;朱桂金【期刊名称】《华中科技大学学报(医学版)》【年(卷),期】2009(38)6【摘要】目的观察核抑制剂(Roscovitine)对人未成熟卵母细胞体外成熟(in vitro maturation,IVM)安全性的影响.方法获取促排周期的GV期未成熟卵随机分为两组,实验组(经二步法):未成熟卵母细胞先用含有200 vmol/LRoseovitine的培养液培养6 h,然后转入IVM成熟培养液培养24~36 h;对照组:直接用IVM成熟培养液培养24~36h.观察两组卵母细胞成熟情况并应用激光扫描共聚焦显微镜观察培养成熟后MⅡ期卵母细胞纺锤体和染色体的形态.结果实验组共获未成熟卵母细胞61个,经体外成熟培养后50个卵成熟,其中39个卵可观察到纺锤体与染色体,纺锤体的形态异常者为15个,染色体异常者11个;对照组共获未成熟卵母细胞60个,经体外成熟培养后43个卵成熟,其中32个卵可观察到染色体与纺锤体,纺锤体形态异常者14个,染色体异常者11个.结论 Roscovitine能可逆性抑制体外培养的人卵母细胞的核成熟,但未对纺锤体及染色体形态产生不良影响.【总页数】4页(P768-770,774)【作者】李豫峰;田红帅;李舟;刘群;章汉旺;任新玲;魏玉兰;胡娟;朱桂金【作者单位】华中科技大学同济医学院附属同济医院生殖医学中心,武汉,430030;华中科技大学同济医学院附属同济医院生殖医学中心,武汉,430030;华中科技大学同济医学院附属同济医院生殖医学中心,武汉,430030;华中科技大学同济医学院附属同济医院生殖医学中心,武汉,430030;华中科技大学同济医学院附属同济医院生殖医学中心,武汉,430030;华中科技大学同济医学院附属同济医院生殖医学中心,武汉,430030;华中科技大学同济医学院附属同济医院生殖医学中心,武汉,430030;华中科技大学同济医学院附属同济医院生殖医学中心,武汉,430030;华中科技大学同济医学院附属同济医院生殖医学中心,武汉,430030【正文语种】中文【中图分类】R321-33【相关文献】1.磷酸二酯酶亚型抑制剂与细胞周期蛋白抑制剂对绵羊卵母细胞体外成熟的影响[J], 周波;洪海燕;旭日干;夏国良2.褪黑素对ICSI周期中人未成熟卵母细胞体外成熟结果的影响 [J], 高明;郝燕;陈大蔚;纪冬梅;陈蓓丽;邹薇薇;章志国;曹云霞3.冻融体外受精-胚胎移植周期人未成熟卵母细胞的体外成熟及纺锤体结局 [J], 宋文妍;孙莹璞;金海霞;辛志敏;苏迎春;郭艺红4.未成熟卵母细胞评分系统对人类未成熟卵体外成熟及发育潜能的评价 [J], 李媛;姜晶晶;马水英;李梅;胡京美;杨惠军;陈子江5.冷冻环冷冻促排周期未成熟卵母细胞效果的研究 [J], 李豫峰;何巧花;章汉旺;朱桂金;胡娟;刘群;任新玲;魏玉兰因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

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2.4 固定及免疫荧光染色、激光共聚焦显微镜对纺锤体的观察:
卵移入 2%甲醛中,置于 37℃培养箱中固定 10 分钟,5%HAS 的 PBS 洗卵三次。0.1% 的 Triton X-100 透化 45 分钟后将卵移入预热到 37℃的 1:250 的一抗(抗-α-微管单克隆抗 体,Sigma T9026),37℃培养箱中孵化一小时;1:5000 的二抗(生物素结合的抗鼠 IgG 抗 体,Sigma B7264)37℃培养箱中孵化一小时;1:50 的三抗(FITC 结合的特异性抗生物素 蛋白,Sigma E2761)37℃培养箱中避光孵化 30 分钟。每次抗体孵化后均用 5%HAS 的 PBS 洗卵三次。10μg/ml PI(碘化溴乙锭 Sigma P4170)37℃培养箱中避光孵化 10 分钟进行反染。 最后将卵置于 5%HAS 的 PBS 中孵化 30 分钟后将卵子固定于玻片上加 10μl 荧光保护剂于标 本区,盖上盖玻片。最后用激光扫描共聚焦显微镜观察、拍照。结果输入计算机中保存以供 分析。
2.1.2.卵子分型:对于穿刺获得的卵子,去除粘液团和颗粒细胞后在体视镜或倒置镜下 观察,根据成熟程度的不同分为生发小泡期,即 GV 期,第一次减数分裂中期(metaphase I, MI)即 MI 期。GV 期卵子即减数第一次分裂的双线期的初级卵母细胞,内含 46 条染色体, 遗传物质已经复制,女性的生殖细胞多停留在此期,镜下见卵母细胞中含有一个生发泡,折 光与周围胞浆不同。在促性腺激素的刺激下,停滞的减数分裂开始启动,GV 期卵子的生发 小泡移向细胞边缘,发生生发小泡的破裂(germinal versicle breakdown,GVBD),向 MI 期 转化,意味着成熟分裂的开始,MI 期卵胞浆均匀,无生发小泡,无极体。
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常规的冷冻成熟卵子方案是否可以保存冷冻未成熟卵子较好的发育潜能。
2. 材料和方法
2.1 卵子来源及分组
2.1.1 卵子来源:主要收集常规胞浆内单精子显微注射-胚胎移植(intracytoplasmic sperm injection- embryo transfer, ICSI-ET)周期中不成熟的卵子。在我们的未成熟卵的体外成熟培 养的研究中,发现在行促性腺激素超促排卵以后,直径小于 1cm 的卵泡中获得的卵子大多 数为未成熟卵。自 2005 年 5 月开始,收集进行 ICSI 之前卵母细胞-卵冠丘复合物(oocyte corona cumulus complex,OCCC)经消化后发现的发育未成熟的卵子。患者不孕原因有输卵管 因素,排卵异常和男性因素等,均接受常规的促性腺激素控制性超促排卵方案。根据患者的 年龄、内分泌状况等条件分别给予长方案或短方案治疗,长方案是在刺激周期的月经来潮前 7 天,给予促性腺激素释放激素激动剂(GnRH-α)对垂体进行降调节,抑制自身的 LH 峰, 一直用到注射 hCG 日,在月经的第 2 天或第 3 天开始给予促性腺激素(FSH 和 hMG)刺激 卵泡生长;短方案是在月经的第 2 天同时给予 GnRH-α 和促性腺激素,一直到注射 hCG 日, 利用的是 GnRH-α 对垂体的先刺激和后抑制的作用原理。取卵是在注射 hCG 后 32-36 小时 进行。
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后迅速投入液氮罐中(-196℃),在液氮中储存。 2.2.4.卵子融解液的配制:S4a:1.0M PROH+0.3M sucrose+ 5mg/mLHSA 的 DPBS;S4b:
0.5M PROH+0.3M sucrose+ 5mg/mLHSA 的 DPBS;S4:0.3M sucrose+ 5mg/mLHSA 的 DPBS 2.2.5.卵子融解方法:本实验所用的卵子冷冻保存的时间为 2-4 个月不等。融解卵子采
1.正常减数分裂的纺锤体形态类似圆桶状,形状对称,两侧为无中心体的极点,并轻微向 两极突出,指向质膜的一端较指向胞浆中心的一端略小,正常纺锤体结构一般位于接近极体 的外围区且方向垂直于细胞膜。正常染色体规整的排列在赤道板上,与两侧对称分布的纺锤 体相连。
2.轻微异常的纺锤体构型:两侧无突出的极点,呈圆形,纺锤体长轴长度缩短,轻微异 常染色体可表现为个别或少数染色体远离赤道板,染色体过度松散或过度凝集。

人类未成熟卵子冷冻保存后体外成熟形成的纺锤体 的形态研究1
高姗姗,李媛,陈子江,李梅,胡京美,马水英
山东大学山东省立医院生殖医学中心(250021)
E-mail:shanshan4913@
摘 要:目前冷冻未成熟卵子成为研究焦点,但未成熟卵子冷冻融解后经体外成熟后是否可 以获得正常形态的纺锤体和染色体构型却未得到肯定的结论。方法:收集常规胞浆内单精子 显微注射-胚胎移植(intracytoplasmic sperm injection- embryo transfer, ICSI-ET)术中不成熟 的卵子并根据形态分为GV期卵子、MⅠ期卵子,获得的卵子随机分为两组,GV1组即GV期 卵子体外培养36小时后成熟至MⅡ期卵子者固定并进行纺锤体和染色体的免疫荧光染色。 GV2组经慢速冷冻-快速融解后培养36小时成熟至MⅡ期卵子者固定并进行纺锤体和染色体 的免疫荧光染色。MⅠ期卵子分组同GV。结果:68个GV卵子冷冻融解后成活55个,存活率 80.88%,38个卵子成熟至MⅡ期,成熟率为69.09%。对照组GV卵子35个,26个卵子成熟至 MⅡ期,成熟率74.29%。40个MⅠ期卵子冷冻融解后35个存活,存活率87.5%,24个成熟至 MⅡ期,成熟率为68.57%。对照组MⅠ卵子25个,22个卵子成熟至MⅡ期,成熟率88%。GV1 和GV2组之间体外成熟率无统计学差异(卡方检验,P>0.05);GV1和GV2组之间纺锤体形 态和染色体形态正常率的比较有统计学差异(卡方检验,P<0.05)。同样MⅠ1和MⅠ2组之 间体外成熟率无统计学差异(卡方检验,P>0.05);MⅠ1和MⅠ2组之间纺锤体形态和染色 体形态正常率的比较有统计学差异(卡方检验,P<0.05)。结论:卵子冷冻由于未成熟卵子 没有纺锤体结构并且其膜结构具有不同的通透性等特点,所以被认为会较少受到冷冻的损 害,但是冷冻后未成熟卵子必须要经过体外成熟这一关键过程,很大程度上降低了其优势。 冷冻后未成熟卵母细胞形成正常减数分裂纺锤体的能力减弱,从而染色体的分布亦多异常。 因此,应用常规慢冻-速融方案并不能很好的保存未成熟卵子的体外成熟后的纺锤体形成能 力。 关键词:卵母细胞,冷冻,纺锤体,染色体
1. 研究背景
生殖能力的保存一直以来都是生殖领域的一个难题。继精子冷冻后,胚胎冷冻技术的成熟从 一定意义上保存了生育能力。但胚胎冷冻面临着许多自身无法解决的难题。如患者无法接受 冷冻胚胎,或多余的冷冻胚胎的去向等伦理和法律问题。而卵子冷冻则可以避免这一情况。 而且卵子冷冻能为各种原因造成的卵巢功能衰竭的妇女提供一条储备生育能力的途径,或者 在取卵当日无法得到可用精子的情况下冷冻卵子,且卵子冷冻可使供卵库成为可能。 目前成熟卵子冷冻技术却因为受精障碍和胚胎发育障碍难以广泛应用临床。一方面,在成熟 卵子冷冻存在着皮质颗粒提前释放和微管微丝结构的损伤问题;另一方获取未成熟卵避免了 超促排卵带来的一系列医源性并发症和费用等的问题,如促性腺激素的大量应用,卵巢过度 刺激综合症,连续监测卵泡以及相关的较高的费用。于是,冷冻未成熟卵子成为另一焦点, 未成熟卵子中没有纺锤体形成,GV期染色体仍然被包裹于核膜内。而且未成熟卵子细胞膜 通透性亦与成熟卵子不同,理论上较能耐受冷冻的损伤,但是冷冻后的未成熟卵子必须要经 过体外成熟这一关键过程,很大程度上降低了其优势。
(irvine)中进行消化去除颗粒细胞,选择已排出第一极体的MⅡ期卵子进行冷冻。
2.2.2 卵子冷冻液的配制:配制冷冻液需要的试剂:人血白蛋白(HSA,Sigma),磷酸 盐缓冲液(DPBS,Sigma),1,2-丙二醇(PROH,Sigma),蔗糖(sucrose,Sigma)。
冷冻液为:S1:5mg/mL HSA 的 DPBS;S2:1.5M PROH+ 5mg/mLHSA 的 DPBS;S3: 1.5M PROH+0.3M sucrose + 5mg/mLHSA 的 DPBS。
2.2.3.卵子冷冻的方法:本研究采用 Planer 程序冷冻仪进行慢冷冻法降温,即室温下
(20℃),经 S1 洗涤 2 遍,S2 中平衡 10 分钟,最后在 S3 中停留 15 分钟,装入冷冻麦管, 从 20℃开始以-2℃/min 降至-7℃,平衡 5 分钟,然后人工植冰(seeding),再等待 10 分钟 (holding),之后以-0.3℃/min 的速度降温至-30℃,继续以-30℃/min 的速度降至-120℃,然
用快速复温法,即将胚胎从液氮罐中取出后,置室温下 40 秒,30℃水浴 40 秒,再入室温下 的融解液 S4a 中,然后 S4b,S4,S1 依次换液,分别停留 5 分钟,当卵子进入 S1 中后即将 温度升至 37℃,此时可以在倒置镜下观察评价卵子存活情况。将成活卵子置入 HTF 中,在 37℃,5% CO2 培养箱内。
2.1.3.卵子分组:获得的卵子随机分为两组,GV1组即GV期卵子体外培养36小时后成熟 至MⅡ期卵子者固定并进行纺锤体和染色体的免疫荧光染色。GV2组经慢速冷冻-快速融解 后培养36小时成熟至MⅡ期卵子者固定并进行纺锤体和染色体的免疫荧光染色。MⅠ期卵子 分组同GV。
2.2.卵子冷冻复苏方法:
2.2.1卵子的消化:穿刺取出的卵置于放有MHTF培养液的35 mm培养皿中,在37%, 5%CO2的培养箱中饱和湿度培养1—2小时后在含有透明质酸酶(Sigma)80IU/ml的MHTF
3.异常的纺锤体构型:纺锤体部分和全部的瓦解或缺失。异常染色体表现为无序杂乱的 分布于纺锤丝之间,无赤道板的形成。
如下表所示,68 个 GV 卵子冷冻融解后成活 55 个,存活率 80.88%,38 个卵子体外培
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养成熟至 MⅡ期,成熟率为 69.09%,纺锤体和染色体正常率分别为 21.05%和 23.68%。对 照组 GV 卵子 35 个,26 个卵子体外成熟至 MⅡ期,成熟率 74.29%,纺锤体和染色体正常 率分别为 53.58%和 50%。40 个 MⅠ期卵子冷冻融解后 35 个存活,存活率 87.5%,24 个体 外成熟至 MⅡ期,成熟率为 68.57%,纺锤体和染色体正常率分别为 20.83%和 23.68%。对 照组 MⅠ卵子 25 个,22 个卵子成熟至 MⅡ期,成熟率 88%,纺锤体和染色体正常率分别 为 54.55%和 63.64%。GV1 和 GV2 组之间体外成熟率无显著性差异;两组纺锤体形态和染 色体形态正常率的比较有统计学差异,同样,MⅠ1 和 MⅠ2 组之间体外成熟率无显著性差 异;而两组间纺锤体形态和染色体形态正常率的比较也有统计学差异。而 GV1 和 MⅠ1 组 及 GV2 和 MⅠ2 组之间纺锤体形态和染色体形态正常率的比较分别无统计学差异。
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