家兔动脉血压的神经体液调节实验报告
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告(一)实验项目:家兔动脉血压的神经体液调节(二)实验目的:1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。
2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。
3、掌握家兔实验的基本方法和技术(静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等)。
4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。
(三)基本原理:动脉血压是心血管功能活动的综合指标。
正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定，动脉血压相对恒定。
动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。
通过实验改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。
实验仪器与试剂:BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器(5mL、1mL)等;3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品1、夹闭颈总动脉血压升高，心跳加快。
这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。
这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。
夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。
信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。
使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。
从而血压恢复性升高。
若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。
2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素:去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。
家兔血压调节实验报告范文.doc
家兔血压调节实验报告范文（一）实验项目：家兔动脉血压调节（二）实验目的：1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。
2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。
3、掌握家兔实验的基本方法和技术（静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等）。
4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。
（三）基本原理：（要求对写出关键点）动脉血压是心血管功能活动的综合指标。
正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定，动脉血压相对恒定。
动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。
通过实验改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。
实验仪器与试剂：BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器（5mL、1mL）等；3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品1、夹闭颈总动脉血压升高，心跳加快。
这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。
这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。
夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。
信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。
使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。
从而血压恢复性升高。
若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。
2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素：去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。
家兔血压的神经及体液调节
家兔动脉血压的神经及体液调节实验目的：1．学习动脉血压的直接测定方法2．加深对动脉压力感受反射的理解3. 观察迷走神经和某些体液因素对动脉血压的影响实验方法：家兔行麻醉, 气管插管后，分离一侧迷走神经和减压神经及双侧颈总动脉和一侧股静脉，分别于未分离神经侧进行颈总动脉插管，并联压力传感换能器测压以及股静脉置管。
观察正常血压曲线后，首先夹闭未插管侧颈总动脉5-10s, 观察血压变化。
戴血压稳定后，静脉注射去甲肾上腺素1:10000(g/ml)0.3ml, 观察血压，待血压稳定后，静脉注射1:10000(g/ml) 肾上腺素0.3ml, 观察血压，待血压稳定后，静脉注射乙酰胆碱1:10000(g/ml)0.3ml, 观察血压和心率变化，静脉注射阿托品0.5ml,1-2min后再静脉注射同量的乙酰胆碱观察血压和心率的变化，血压正常后，结扎一侧迷走神经并剪断，观察血压变化，然后连续电刺激迷走神经外周端,观察血压和心率的变化，血压恢复正常后，分别连续电刺激减压神经中枢端和外周端,观察血压变化。
实验结果：夹闭一侧颈总动脉后，血压上升。
注入去甲肾上腺素后，血压上升心律减慢。
注入肾上腺素后血压上升，心律加快。
注入乙酰胆碱后，血压下降，注入阿托品后，血压上升。
实验目的1．学习动脉血压的直接测定方法2．加深对动脉压力感受反射的理解3. 观察迷走神经和某些体液因素对动脉血压的影响试剂与器材BL-420生物信号处理系统、手术镊、手术剪、手术刀、止血钳、眼科剪、气管插管、玻璃勾针、压力换能器、注射器、动脉夹、肾上腺素（1:10,000）、乙酰胆碱（1:10,000）、去甲肾上腺素（1:10,000）实验方法1. BL-420生物机能实验系统的准备选择“实验项目”菜单中的“循环实验”子菜单, 再选择“兔动脉血压调节”实验模块2．动物的准备麻醉, 气管插管颈部分离一侧迷走神经和减压神经分离双侧颈总动脉备用股部分离股静脉用于药物注射3．测压系统准备将动脉插管一端插入未分离神经侧的颈总动脉，另一端连接压力换能器，血压信号通过1通道输入接口输入计算机实验步骤(1)观察正常血压曲线主要观察血压幅度变化,从中还可观察心率变化(2)夹闭未插管侧颈总动脉5-10s, 观察血压(3)静脉注射去甲肾上腺素1:10000(g/ml)0.3ml, 观察血压(4)静脉注射肾上腺素1:10000(g/ml)0.3ml, 观察血压(5)静脉注射乙酰胆碱1:10000(g/ml)0.3ml, 观察血压和心率变化，静脉注射阿托品0.5ml,1-2min后再静脉注射同量的乙酰胆碱观察血压和心率的变化(6)结扎一侧迷走神经并剪断，观察血压变化，然后连续电刺激迷走神经外周端, 5-10V,20Hz，0.5ms,观察血压和心率的变化(7)分别连续电刺激减压神经中枢端和外周端,观察血压变化，刺激参数均为3-5V, 20Hz, 0.5ms1、每项处理要同时做实验标记,一项处理后，须待血压基本恢复后再进行下一项处理2、动脉套管要扎紧，与血管平行，防止其脱离或戳穿血管3、测压系统内不能有气泡，防止血凝块堵塞测压系统4、打开颈动脉鞘之前先确认减压神经并穿线备用5、不要过度牵拉神经，特别是减压神经，注意滴加石蜡油保护神经，防止其干燥6、刺激神经时刺激电极不要触及其它组织。
实验十一 家兔动脉血压的神经、体液调节
实验十一家兔动脉血压的神经、体液调节➢介绍一、实验目的1.学习家兔颈部手术与分离主动脉神经的方法。
2.学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法。
3.观察神经、体液因素对心血管活动的影响。
二、背景资料动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。
正常情况下，人和高等动物的心血管活动在神经、体液因素的调节控制下，保持相对稳定，动脉血压相对恒定。
改变神经、体液因素的影响，则可观察到动脉血压的相应变化。
在动物实验中，可利用动脉插管直接测量动脉血压，通过液体导联系统和压力传感器，将动脉血压的变化在计算机采集系统中描记下来。
三、相关观察资料1.家兔正常动脉血压曲线2.分别刺激迷走、交感、减压神经，观察血压、心率等参数的变化3.分别注射去甲肾上腺素、乙酰胆碱溶液，观察血压、心率等参数的变化四、实验假说1.正常家兔曲线呈现出两级波。
2.刺激迷走神经，平均动脉降低，脉压差升高，心率减慢。
3.刺激减压神经，平均动脉压降低，脉压差升高，心率变化不明显。
4.刺激交感神经，平均动脉压升高，脉压差升高，心率加快。
5.注射去甲肾上腺素，平均动脉压升高，脉压升高，心率加快。
6.注射乙酰胆碱，平均动脉压降低，脉压升高，心率减慢。
➢实验材料和方法一、实验材料1.实验对象健康家兔1只2.实验试剂25%氨基甲酸乙酯溶液，生理盐水，肝素（300 U/mL），去甲肾上腺素溶液（1:10000），乙酰胆碱溶液(1:10000)、石蜡油3.手术器械兔箱，手术台，绳子，常用手术器械，止血钳，剪毛剪，眼科剪，支架，双凹夹，动脉插管，三通管，动脉夹，玻璃分针，手术灯，纱布，棉球，棉线，注射器（1 mL, 20 mL）4.记录仪器RM6240多道生理参数记录仪，计算机采集系统，YP100血压换能器支架，三通管，保护电极二、实验步骤1.实验仪器的准备打开计算机采集系统RM6240，接通血压换能器从RM6240系统的“实验”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”，使显示器显示压力读数。
血压综合实验报告家兔(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解家兔动脉血压的生理调节机制。
2. 掌握血压测量的基本方法和技术。
3. 分析神经体液因素对家兔动脉血压的影响。
4. 研究不同药物对家兔动脉血压的调节作用。
二、实验原理动脉血压是心血管功能活动的综合指标，其稳定依赖于神经和体液等调节机制。
正常情况下，动脉血压在神经体液因素的调节下保持相对恒定，这对于维持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢至关重要。
三、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器（5mL、1mL）等3. 实验试剂：3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品四、实验方法1. 家兔的麻醉与固定：采用3%戊巴比妥钠进行静脉麻醉，将家兔固定于兔手术台上。
2. 颈部手术：分离颈部血管与神经，暴露两侧颈总动脉和迷走神经并穿线备用，左侧颈动脉穿双线，远心端打死结。
3. 气管插管术：进行气管插管，确保家兔呼吸通畅。
4. 颈总动脉插管术：将充满肝素生理盐水的动脉导管从切口向心脏方向插入颈总动脉直至动脉夹处。
用手术丝线将动脉导管连同颈总动脉一起扎紧。
移除动脉导管近心端的动脉夹，观察显示器波形变化。
5. 观察基础血压：记录家兔的基础血压。
6. 观察颈动脉窦反射：夹闭右侧颈总动脉，观察血压变化。
7. 观察迷走神经反射：电刺激向心端迷走神经15秒，观察血压和心率变化。
8. 观察药物作用：分别注射1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品，观察血压变化。
五、实验结果1. 基础血压：家兔的基础血压为XX mmHg。
2. 颈动脉窦反射：夹闭右侧颈总动脉后，血压升高至XX mmHg。
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告[目的与要求]1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法2观察神经,体液因素对心血管活动的影响[基本原理]在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称。
[动物与器材]家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000)【方法与步骤】1、实验仪器的准备打开计算机采集系统，接通压力传感器。
从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。
2、连通液导系统并制压将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。
上侧管供制压时排除管内空气使用。
先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。
然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。
继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。
当加压到120mmHg时既可关闭三通管。
观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。
调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显的反映出来。
将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。
3、动物的准备（1）按照实验4-9方法，麻醉家兔并进行颈部手术，插入气管插管、分离主动脉神经。
同时分离迷走神经并穿线备用。
血压动脉调节实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握血压动脉调节的基本原理和机制。
2. 了解神经体液因素对血压动脉调节的影响。
3. 学习使用血压测量仪器和数据分析方法。
4. 提高实验操作技能和科学思维。
二、实验原理血压动脉调节是指人体通过神经和体液机制维持动脉血压相对稳定的过程。
在生理状态下，动脉血压受到多种因素的影响，如心脏搏出量、血管阻力、血容量等。
神经调节主要通过交感神经和副交感神经的作用，而体液调节主要通过激素的调节。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 仪器设备：血压计、动脉夹、手术器械、生理盐水、注射器、记录仪等3. 试剂：肾上腺素、去甲肾上腺素、酚妥拉明、阿托品等四、实验方法1. 动物准备：将家兔麻醉后固定在手术台上，暴露颈动脉。
2. 动脉插管：在颈动脉处插入动脉导管，连接血压计，记录血压。
3. 神经刺激：分别刺激家兔的交感神经和副交感神经，观察血压变化。
4. 激素注射：注射肾上腺素、去甲肾上腺素、酚妥拉明、阿托品等，观察血压变化。
5. 数据分析：对实验数据进行统计分析，得出结论。
五、实验结果1. 交感神经刺激：交感神经刺激后，家兔血压升高，心跳加快。
2. 副交感神经刺激：副交感神经刺激后，家兔血压降低，心跳减慢。
3. 肾上腺素注射：肾上腺素注射后，家兔血压升高，心跳加快。
4. 去甲肾上腺素注射：去甲肾上腺素注射后，家兔血压升高，心跳加快。
5. 酚妥拉明注射：酚妥拉明注射后，家兔血压降低，心跳减慢。
6. 阿托品注射：阿托品注射后，家兔血压无明显变化，心跳无明显变化。
六、实验结论1. 交感神经和副交感神经对血压动脉调节具有重要作用。
2. 肾上腺素、去甲肾上腺素等激素对血压动脉调节具有显著影响。
3. 酚妥拉明、阿托品等药物对血压动脉调节具有调节作用。
七、实验讨论1. 交感神经和副交感神经对血压动脉调节的调节机制：交感神经兴奋时，心脏搏出量增加，血管收缩，导致血压升高；副交感神经兴奋时，心脏搏出量减少，血管扩张，导致血压降低。
实验报告家兔动脉血压的神经体液调节影响尿生成的因素
实验报告家兔动脉血压的神经体液调节影响尿生成的因素实验目的：研究神经体液调节对家兔动脉血压的影响，进而探讨其对尿生成因素的调节作用。
实验原理：1.神经调节：交感神经系统通过释放去甲肾上腺素使血管收缩，增加血压；副交感神经系统通过释放乙酰胆碱使血管舒张，降低血压。
2.基础体液调节：对于维持水平衡和血压稳定至关重要的体液激素包括抗利尿激素ADH（抗利尿激素抗利尿激素是一类性质相似的多肽和蛋白质，主要起着催化性质，即提供酶活性），肾素-血管紧张素-醛固酮系统等。
实验步骤：1.适量家兔静脉注射心脏强心剂，将其置于无菌条件下，全麻状态下开腹。
2.暴露家兔肾上腺，切割交感神经以及副交感神经。
3.将家兔肾上腺泡灌注盐水，刺激副交感神经，观察其对血压的影响，并记录。
4.暴露尿路，测量家兔的尿液分泌量。
5.注射抗利尿激素ADH，继续记录家兔的尿液分泌量。
6.切割家兔肾上腺，观察其对血压的影响，并记录。
实验结果：1.切割副交感神经后，家兔动脉血压上升。
2.注射抗利尿激素ADH后，家兔尿液分泌减少。
3.切割肾上腺后，家兔动脉血压下降。
实验讨论：1.切割副交感神经导致家兔动脉血压升高，说明副交感神经对血管的舒张起到了抑制作用。
2.注射抗利尿激素ADH导致家兔尿液分泌减少，说明ADH对尿生成起到了抑制作用。
3.切割肾上腺导致家兔动脉血压下降，说明交感神经通过释放去甲肾上腺素使血管收缩，增加血压。
实验结论：神经体液调节对家兔动脉血压有重要的影响，并进而影响尿生成。
副交感神经通过释放乙酰胆碱使血管舒张，降低血压；抗利尿激素ADH对尿生成起到抑制作用；交感神经通过释放去甲肾上腺素使血管收缩，增加血压。
这些调节机制相互作用，维持了家兔体内的水平衡和血压稳定。
实验意义：通过研究神经体液调节对家兔动脉血压的影响，可以更深入地理解生物体内尿生成的调节机制。
这对于揭示机体水平衡和血压稳定的生理学机制，以及相关疾病的发生与治疗具有重要的理论和实践意义。
兔血压生理实验报告
1. 了解兔血压的生理调节机制。
2. 掌握兔血压测定的方法和技术。
3. 分析兔血压在不同生理状态下的变化规律。
二、实验原理兔血压是指兔心脏泵血时，血液对动脉血管壁产生的压力。
血压的生理调节机制主要包括神经调节和体液调节。
神经调节主要是通过交感神经和副交感神经的调节作用，体液调节主要是通过肾上腺素、去甲肾上腺素等激素的调节作用。
三、实验材料1. 实验动物：成年家兔2只。
2. 实验仪器：血压计、动脉夹、手术器械、注射器、生理盐水、麻醉剂等。
3. 实验试剂：肾上腺素、去甲肾上腺素、酚妥拉明等。
四、实验方法1. 麻醉：将家兔用麻醉剂进行全身麻醉。
2. 暴露：将家兔仰卧固定于手术台上，剪开颈部皮肤，暴露颈总动脉。
3. 动脉插管：在颈总动脉上插入动脉导管，连接血压计，测定兔血压。
4. 观察血压变化：在正常状态下，观察兔血压的变化。
5. 药物干预：分别给予兔肾上腺素、去甲肾上腺素、酚妥拉明等药物，观察血压的变化。
五、实验结果1. 正常状态下，兔血压波动范围在100-150mmHg之间。
2. 给予肾上腺素后，兔血压明显升高，波动范围在160-200mmHg之间。
3. 给予去甲肾上腺素后，兔血压明显升高，波动范围在180-220mmHg之间。
4. 给予酚妥拉明后，兔血压明显降低，波动范围在90-120mmHg之间。
1. 兔血压的正常波动范围在100-150mmHg之间，说明兔血压具有一定的调节能力。
2. 给予肾上腺素和去甲肾上腺素后，兔血压明显升高，说明这两种药物可以兴奋肾上腺素能受体，导致血压升高。
3. 给予酚妥拉明后，兔血压明显降低，说明酚妥拉明可以阻断α受体，导致血压降低。
七、实验结论1. 兔血压具有一定的调节能力，其生理调节机制主要包括神经调节和体液调节。
2. 肾上腺素、去甲肾上腺素等药物可以兴奋肾上腺素能受体，导致血压升高；酚妥拉明可以阻断α受体，导致血压降低。
八、实验注意事项1. 实验过程中要确保家兔处于麻醉状态，避免疼痛引起不良反应。
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告(最新编写)
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告（最新编写）一、实验介绍动脉血压调节是机体维持内环境稳定的重要机制之一。
神经体液是动脉血压调节的主要调控方式。
在家兔的神经体液调节的实验中，一般使用颈动脉夹闭法作为刺激，测量动脉血压、心率、交感神经活性等指标的变化情况来观察神经体液调节的效应。
本次实验将通过颈动脉夹闭来模拟家兔在生活中遭遇短暂外界刺激，观察神经体液调节对家兔动脉血压的影响，并分析神经体液调节机制。
二、实验原理1. 首先需测定家兔基础血压和心率；2. 颈动脉夹闭10秒钟，观察家兔的反应，测量家兔动脉血压和心率；3. 严密掌握家兔夹颈时间，避免对家兔安全带来影响；4. 预备几只家兔，更换不同家兔保证每个家兔之间的夹颈间隔时常不得低于5分钟。
三、实验材料1. 实验动物：家兔；2. 实验仪器：生命体征监测仪（如RM6240A），家兔夹颈器；3. 实验用品：婴儿毛细管管和胶头，25G针头，生理生化盐水，杀兔针；4. 实验环境：消毒柜，实验室动物养护设备。
四、实验步骤1. 用氯仿麻醉针对实验动物进行麻醉；2. 固定实验动物的颈部，在股动脉或耳动脉或肱动脉处插入婴儿毛细管管，并连接到血压计；3. 为采血做准备，用25G针头对动脉进行取血，取血完毕后需要关闭切口；4. 观察和记录实验动物的基础血压和心率；5. 在实验动物恢复到麻醉深度下夹关闭实验动物的颈部并计时10秒钟，然后放松夹紧的夹子，记录血压和心率的变化情况；6. 在两次夹颈之间，需要进行5分钟以上的恢复缓冲期；7. 实验完毕后需要使用杀兔针快速将实验动物处决，然后进行解剖学研究。
五、实验结果1. 基础血压：将实验动物放置10-15分钟，并进行数据记录和稳定，获得其基础血压和心率。
样本量为5只实验动物，数据如下：|序号|1|2|3|4|5||---|---|---|---|---|---||基础血压（mmHg）|90.5|81.5|87.5|91.3|83.7||基础心率（次/min）|254|266|246|261|273|2. 夹闭颈动脉后，测量家兔动脉血压和心率。
家兔动脉血压的神经与体液调节实验数据处理与分析报告
注射肾上腺素
100.95
注射乙酰胆碱
138.94
闭塞气管插管
132.06
2.兔血压实验图及分析
步骤一：轻轻提起对侧完好颈总动脉上的备用线，用动脉夹夹闭10-15s，观察并记录血压变化。
加入试剂
无
心率（次/分）
260
平均血压（mmHg）
148.95
表现
兔动脉血压升高
现象分析
颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。
步骤三：刺激减压神经：
（1）刺激完整减压神经
（2）刺激减压神经中枢端
（3）刺激减压神经外周端。
加入试剂
无
心率（次/分）
260
平均血压（mmHg）
121.67
表现
刺激完整减压神经及其中枢端均可引起血压下降，而刺激该神经外周端基本不变
现象分析
兔减压神经是传入神经，其作用是将主动脉弓感受器发出的冲动传入延髓心血管中枢，反射性引起血压降低。因此，刺激完整的减压神经或其中枢端，使传入中枢的冲动增加，致血压明显下降，而刺激其外周端虽又冲动传向外周，但不会引起血压变化。
步骤五：静脉注射肾上腺素
加入试剂
肾上腺素
心率（次/分）
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告-
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告-
实验目的：
1. 掌握兔动脉血压的基本实验方法。
实验原理：
动物的血压需要靠神经和体液调节来保持相对稳定。
在正常情况下，兔的血压较为平稳，能够维持生物体正常的生理活动。
神经调节机制包括交感神经和副交感神经。
交感神经兴奋时，会使心率和收缩力增加，提高心输出量和组织灌注。
同时，交感神经还会使体表血管收缩，增加外周阻力，提高动
脉压。
副交感神经则对心脏和血管功能有抑制作用，使心率、收缩力和外周阻力下降，降
低动脉压。
此外，髓上皮素、雷诺二氏素、血管紧张素等血管紧缩素也参与了血压的调
节。
实验步骤：
1. 取好兔，先给其进行适应训练，使其心情稳定，减少干扰。
2. 用适当的器材测定兔的基础血压值。
3. 用肌肉注射机将肌肉注射液注射到兔身上。
4. 检测注射后的兔的血压和脉搏，观察神经体内物质对兔的影响。
实验结果：
在肌肉注射后，兔的血压和脉搏被明显影响。
注射高剂量肌肉注射液后，兔的血压和
脉搏迅速上升，表明高剂量肌肉注射液会通过神经调节机制提高兔的动脉压。
而注射低剂
量肌肉注射液后，兔的血压和脉搏出现下降，则说明低剂量的肌肉注射液会通过体液调节
机制将兔的动脉压降低。
兔动脉血压的神经和体液调节是非常重要的，这些机制会对兔的血压和生理活动产生
很大的影响。
神经和体液调节机制是维持兔生命活动的重要手段，对于维持动物生命健康
有着至关重要的作用。
优质《家兔动脉血压的神经体液调节》实验报告
优质《家兔动脉血压的神经体液调节》实验报告实验目的：探讨神经和体液因素对动脉血压的调节作用。
实验方法：采用液压传递系统直接测量和记录动脉血压的急性实验方法。
结果夹闭右颈总动脉，血压升高（P<0.01），电刺激减压神经，血压降低（P>0.05），电刺激迷走神经，血压降低（P<0.05），注射去甲肾上腺素，血压升高（P<0.01）。
结论夹闭右颈总动脉和静脉注射去甲肾上腺素使血压升高，刺激减压神经和迷走神经使血压下降。
动脉血压是心血管功能活动的综合指标。
正常情况下，人和高等动物的动脉血压在神经和体液因素的调节下保持相对稳定，因此可以通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反应各种因素对心血管功能活动的调节及影响。
本实验即是探讨神经和体液因素对动脉血压的调节作用。
1、实验材料：家兔，哺乳动物手术器械；血压换能器，生物信号采集处理系统，输液装置；氨基甲酸乙酯，生理盐水，去甲肾上腺素，乙酰胆碱2、实验方法：2.1 实验数据连接及参数设置动脉插管固定于血压换能器上，血压换能器固定于铁支柱上，高度与心脏处于同一水平面。
压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。
参数如下：开启RM6240系统，在“实验”菜单中选择“兔动脉血压调节”，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度12kPa，采样频率800Hz，扫描速度2s/div。
连续单刺激方式，刺激强度5-10V，刺激波宽2ms，刺激频率30Hz。
2.2 手术准备2.2.1 家兔称重后，按1g/kg体重的剂量于耳缘静脉注射200g/L的氨基甲酸乙酯麻醉。
动物麻醉后仰卧于手术台上，固定四肢，前肢交叉固定，用棉绳勾住兔门齿，将绳拉紧并缚于兔台铁架上。
2.2.2 减去颈部被毛，切开颈部皮肤5-7cm，钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘，用玻璃分针仔细分离右侧减压神经、右侧迷走神经和右侧颈总动脉，穿线备用，分离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉，各穿两根线备用。
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告引言：动脉血压是维持机体正常生理功能的重要指标之一，它受到神经和体液调节的影响。
为了深入了解家兔动脉血压的调节机制，我们进行了一系列实验。
本报告将详细介绍实验设计、方法、结果和讨论。
实验设计：我们选取了10只健康的家兔作为实验对象，随机分为两组。
一组为神经调节组，通过切断交感神经和迷走神经来观察其对家兔动脉血压的影响；另一组为体液调节组，通过注射不同浓度的盐水来模拟不同的体液调节状态，观察其对家兔动脉血压的影响。
方法：1. 神经调节组：在麻醉状态下，我们进行了交感神经和迷走神经的切断手术。
手术后，我们记录了家兔动脉血压的变化，并与术前进行对照。
2. 体液调节组：我们分别注射了低浓度盐水和高浓度盐水，模拟低血容量和高血容量状态。
在注射后，我们记录了家兔动脉血压的变化，并与注射前进行对照。
结果：1. 神经调节组：切断交感神经后，家兔动脉血压明显下降；切断迷走神经后，家兔动脉血压明显升高。
这表明交感神经和迷走神经对动脉血压有相反的调节作用。
2. 体液调节组：注射低浓度盐水后，家兔动脉血压下降；注射高浓度盐水后，家兔动脉血压上升。
这说明体液调节对动脉血压具有重要的调节作用。
讨论：1. 神经调节机制：交感神经的切断导致家兔动脉血压下降，这是因为交感神经释放的去甲肾上腺素能促使血管收缩，增加血压。
而迷走神经的切断导致家兔动脉血压升高，这是因为迷走神经能抑制心率和收缩力，从而降低血压。
2. 体液调节机制：低血容量状态下，体液调节机制会使血管收缩，增加血压；高血容量状态下，体液调节机制会使血管扩张，降低血压。
结论：家兔动脉血压的调节机制主要涉及神经和体液两个方面。
神经调节中，交感神经和迷走神经具有相反的作用；体液调节中，低血容量状态下血管收缩，高血容量状态下血管扩张。
这些调节机制的平衡对于维持动脉血压的稳定至关重要。
结语：通过本次实验，我们深入了解了家兔动脉血压的神经和体液调节机制。
家兔动脉血压的调节实验报告
家兔动脉血压的调节实验报告一、实验目的本实验旨在通过对家兔动脉血压的测量和观察，探究各种因素对动脉血压的调节作用，加深对心血管生理功能的理解。
二、实验原理动脉血压是心血管系统的重要生理指标，受到多种因素的调节。
心输出量、外周阻力、大动脉弹性以及循环血量与血管系统容量的匹配情况等都会影响动脉血压。
神经和体液因素可以通过调节心脏的收缩和舒张功能、改变血管的舒缩状态来实现对动脉血压的调节。
三、实验材料1、实验动物：健康家兔一只，体重约 25 30 千克。
2、实验器材：哺乳动物手术器械一套、压力换能器、生物信号采集处理系统、动脉插管、静脉插管、注射器、丝线、纱布等。
3、药品：20%氨基甲酸乙酯（乌拉坦）、肝素生理盐水、去甲肾上腺素、肾上腺素、乙酰胆碱等。
四、实验步骤1、麻醉与固定家兔称重后，于耳缘静脉缓慢注射 20%氨基甲酸乙酯（5ml/kg）进行麻醉。
注射过程中注意观察家兔的反应，如角膜反射、肌肉松弛程度等，确保麻醉效果。
待家兔麻醉后，将其仰卧固定于手术台上，四肢用绑带固定。
2、颈部手术剪去颈部的被毛，在颈部正中作一长约 6 8 厘米的切口，钝性分离皮下组织和肌肉，暴露气管。
在气管两侧找到颈动脉鞘，小心分离出左侧颈总动脉，在其下穿两根丝线备用。
用动脉夹夹闭颈总动脉近心端，在远心端用眼科剪剪一斜口，将充满肝素生理盐水的动脉插管向心脏方向插入动脉内，用丝线结扎固定，以连接压力换能器。
3、腹部手术在耻骨联合上方作一长约 3 4 厘米的切口，打开腹腔，找到一侧的股静脉，分离后插入静脉插管，用于注射药物。
4、实验观察打开生物信号采集处理系统，记录正常情况下家兔的动脉血压曲线。
观察并记录夹闭右侧颈总动脉 15 秒后家兔动脉血压的变化。
经股静脉注射 01%去甲肾上腺素 03ml，观察动脉血压的变化。
经股静脉注射 01%肾上腺素 03ml，观察动脉血压的变化。
经股静脉注射 001%乙酰胆碱 03ml，观察动脉血压的变化。
优质《家兔动脉血压的神经体液调节》实验报告
优质《家兔动脉血压的神经体液调节》实验报告实验目的：探讨神经和体液因素对动脉血压的调节作用。
实验方法：采用液压传递系统直接测量和记录动脉血压的急性实验方法。
结果夹闭右颈总动脉，血压升高（P<0.01），电刺激减压神经，血压降低（P>0.05），电刺激迷走神经，血压降低（P<0.05），注射去甲肾上腺素，血压升高（P<0.01）。
结论夹闭右颈总动脉和静脉注射去甲肾上腺素使血压升高，刺激减压神经和迷走神经使血压下降。
动脉血压是心血管功能活动的综合指标。
正常情况下，人和高等动物的动脉血压在神经和体液因素的调节下保持相对稳定，因此可以通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反应各种因素对心血管功能活动的调节及影响。
本实验即是探讨神经和体液因素对动脉血压的调节作用。
1、实验材料：家兔，哺乳动物手术器械；血压换能器，生物信号采集处理系统，输液装置；氨基甲酸乙酯，生理盐水，去甲肾上腺素，乙酰胆碱2、实验方法：2.1 实验数据连接及参数设置动脉插管固定于血压换能器上，血压换能器固定于铁支柱上，高度与心脏处于同一水平面。
压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。
参数如下：开启RM6240系统，在“实验”菜单中选择“兔动脉血压调节”，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度12kPa，采样频率800Hz，扫描速度2s/div。
连续单刺激方式，刺激强度5-10V，刺激波宽2ms，刺激频率30Hz。
2.2 手术准备2.2.1 家兔称重后，按1g/kg体重的剂量于耳缘静脉注射200g/L的氨基甲酸乙酯麻醉。
动物麻醉后仰卧于手术台上，固定四肢，前肢交叉固定，用棉绳勾住兔门齿，将绳拉紧并缚于兔台铁架上。
2.2.2 减去颈部被毛，切开颈部皮肤5-7cm，钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘，用玻璃分针仔细分离右侧减压神经、右侧迷走神经和右侧颈总动脉，穿线备用，分离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉，各穿两根线备用。
家兔动脉血压实验报告
一、实验目的1. 了解家兔动脉血压的测量方法；2. 掌握神经和体液因素对家兔动脉血压的影响；3. 探讨家兔动脉血压的调节机制。
二、实验原理家兔动脉血压是反映心血管功能的重要指标，受神经和体液因素的影响。
通过实验，我们可以观察和分析神经和体液因素对家兔动脉血压的影响，从而深入了解家兔动脉血压的调节机制。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：家兔、戊巴比妥钠、肝素、生理盐水、肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素、多巴胺、酚妥拉明、阿托品等；2. 实验仪器：血压计、手术显微镜、手术器械、动脉夹、动脉导管、注射器、试管等。
四、实验步骤1. 麻醉家兔，采用戊巴比妥钠进行静脉麻醉；2. 固定家兔，采用手术台固定；3. 暴露家兔的颈动脉，进行颈动脉插管；4. 测量家兔的动脉血压，记录正常血压值；5. 分别给予肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素、多巴胺、酚妥拉明、阿托品等药物，观察动脉血压的变化；6. 分别给予颈动脉窦刺激、主动脉弓刺激等神经刺激，观察动脉血压的变化；7. 分析实验结果，得出结论。
五、实验结果1. 家兔的正常动脉血压为（X±Y）mmHg；2. 给予肾上腺素后，家兔动脉血压升高至（A±B）mmHg；3. 给予去甲肾上腺素后，家兔动脉血压升高至（C±D）mmHg；4. 给予异丙肾上腺素后，家兔动脉血压升高至（E±F）mmHg；5. 给予多巴胺后，家兔动脉血压升高至（G±H）mmHg；6. 给予酚妥拉明后，家兔动脉血压降低至（I±J）mmHg；7. 给予阿托品后，家兔动脉血压无明显变化；8. 给予颈动脉窦刺激后，家兔动脉血压降低至（K±L）mmHg；9. 给予主动脉弓刺激后，家兔动脉血压升高至（M±N）mmHg。
六、实验结论1. 肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素、多巴胺等药物可升高家兔动脉血压；2. 酚妥拉明等药物可降低家兔动脉血压；3. 颈动脉窦刺激可降低家兔动脉血压；4. 主动脉弓刺激可升高家兔动脉血压；5. 家兔动脉血压的调节受神经和体液因素的影响，神经和体液因素对家兔动脉血压的调节具有协同作用。
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告一、实验目的1、学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法。
2、观察神经与体液因素对家兔动脉血压的调节作用。
二、实验原理正常情况下，动脉血压保持相对稳定，这种相对稳定是通过神经和体液因素的调节实现的。
神经调节主要通过交感神经和副交感神经对心血管活动进行调节。
交感神经兴奋时，会使心率加快、心肌收缩力增强、血管收缩，从而导致血压升高；副交感神经兴奋时，则会使心率减慢、心肌收缩力减弱、血管舒张，血压降低。
体液调节主要通过肾上腺素、去甲肾上腺素、血管紧张素等激素来调节血压。
肾上腺素和去甲肾上腺素能使心脏兴奋、血管收缩，导致血压升高；血管紧张素则通过收缩血管升高血压。
三、实验材料1、实验动物：健康家兔 1 只。
2、实验器材：哺乳动物手术器械一套、压力换能器、生物信号采集处理系统、动脉插管、注射器、丝线、纱布等。
3、药品：20%氨基甲酸乙酯溶液、肝素生理盐水溶液、1:10000 肾上腺素溶液、1:10000 去甲肾上腺素溶液、生理盐水等。
四、实验步骤1、麻醉与固定家兔称重后，由耳缘静脉缓慢注射20%氨基甲酸乙酯溶液（5ml/kg）进行麻醉。
待家兔麻醉后，仰卧固定于手术台上。
2、手术操作（1）颈部正中切口：剪去颈部的毛，在颈部正中切开皮肤，分离皮下组织和肌肉，暴露气管。
（2）分离颈部血管和神经：在气管两侧，分别分离出右侧颈总动脉、迷走神经、减压神经和交感神经。
用玻璃分针小心分离神经和血管，避免过度牵拉和损伤。
在各神经和血管下穿线备用。
（3）动脉插管：在右侧颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住。
在结扎线下方用眼科剪在动脉上作一“V”形切口，将充满肝素生理盐水的动脉插管向心脏方向插入动脉内，并用丝线固定。
3、仪器连接将压力换能器与生物信号采集处理系统相连，调整好参数，使系统能准确记录动脉血压的变化。
4、观察项目（1）正常血压曲线：打开动脉夹，记录家兔正常的动脉血压曲线。
观察血压的波动情况，包括收缩压、舒张压和平均动脉压。
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[目的与要求]1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法2观察神经,体液因素对心血管活动的影响[基本原理]在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器,由计算机采集系统记录下来[动物与器材]家兔,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000)【方法与步骤】1、实验仪器的准备打开计算机采集系统，接通压力传感器。
从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。
2、连通液导系统并制压将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。
上侧管供制压时排除管内空气使用。
先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。
然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。
继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。
当加压到120mmHg 时既可关闭三通管。
观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。
调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显的反映出来。
将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。
3、动物的准备（1）按照实验4-9方法，麻醉家兔并进行颈部手术，插入气管插管、分离主动脉神经。
同时分离迷走神经并穿线备用。
再将止血钳从颈总动脉下方穿过，轻轻张开止血钳，分离出2~3cm长的颈总动脉。
分离出的颈总动脉外壁应该十分光洁，外面并无结缔组织及脂肪等物。
在动脉上穿两条备用棉线，分别打上活结。
将两线分别拉至分离出的动脉两端备用。
同样方法分离另一侧血管与神经（一侧动脉用于插管侧压，另侧动脉实验用）。
由于家兔的品种不同，个体之间也有差异，常发现3条神经的解剖位置有些变异。
主动脉神经的最后确认，蓄意对血压的影响为准。
（2）动脉插管首先用5ml注射器从耳缘静脉注入肝素（200U？kg体重）以防凝血。
然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。
其方法如下：将动脉头端的备用线尽可能靠头端结扎（务必扎紧，以防渗血），然后在另一备用线的向心侧（尽可能近心端），用动脉夹夹闭。
轻轻提起动脉头端的结扎线，用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方，沿向心方向斜向剪开动脉上壁（注意：不可只剪开血管外膜，也切勿剪断整个动脉，剪口大小约为管径的一半）。
一手持弯头眼科镊，将其一个弯头从剪口处插进动脉少许，轻轻挑起剪开的动脉上壁，另一手将准备好的动脉插管由开口处插入动脉管内。
如果插入较浅，可用一手轻轻捏住进入插管的动脉管壁，另一手拿住动脉插管，顺势轻轻推进至6~8mm左右（如果手感滞涩，说明插管并未进入动脉，必须退出插管，重新剪口再插），用备用线将动脉连同进入的插管扎紧（插管不可因扎线松动而滑出，亦不可漏液），并将余线系在插管的固定侧支上，以免滑脱。
注意：插管应与动脉血管的方向一致，以防插管尖端扎破动脉管壁。
轻轻取下向心端动脉夹，可见动脉血与插管内液体混合。
再取下通向压力传感器的止血钳，此时显示器上出现血压的波动曲线。
4、实验观察（1）观察正常血压曲线调节扫描速度与增益，可以明显地观察到心室射血与主动脉回缩形成的压力变化与收缩压、舒张压的读数。
有时可以观察到血压曲线随呼吸变化，心搏为一级波，呼吸波为二级波。
然后将扫描速度调慢，观察正常血压曲线。
（2）轻轻提起对侧完好颈总动脉上的备用线，用动脉夹夹闭30s（于夹闭前记录动脉通畅时的血压曲线），观察并记录血压变化。
出现变化后即取下动脉夹，记录血压的恢复过程。
（3）记录对照血压曲线后，用手指按压颈动脉窦（下颌下方内侧），观察并记录血压变化。
当血压明显下降时，则停止按压，待血压恢复（如果血压反而升高，说明按压的是血管，需重新寻找按压位置）。
（4）刺激主动脉神经使刺激输出端连接保护电极，轻轻提起主动脉神经上的备用线，小心地将神经置于保护电极之上。
记录对照血压曲线后，再用中等强度的连续电脉冲信号，通过保护电极，刺激神经10~20s。
血压出现明显下降后即可停止刺激，并待血压恢复。
如果血压并不下降，可调整刺激强度或刺激频率再行刺激。
任何刺激都无效时，则表示此神经并非主动脉神经。
需要重新辨认神经后再行实验。
（5）分别刺激主动脉神经中枢端和外周端双结扎主动脉神经后（务必结扎），从两扎线结之间剪断神经。
记录对照血压后，同法分别刺激神经的中枢端和外周端，观察并记录血压变化。
（6）刺激迷走神经记录对照血压后，用同样的方法刺激迷走神经，观察血压下降曲线与（4）有何不同（如果血压下降很快、很低，应立即停止刺激）。
（7）结扎并剪断迷走神经同时结扎双侧迷走神经后剪断，观察血压有何变化。
（8）刺激迷走神经外周端分别刺激两侧迷走神经外周端，观察并记录血压变化有何不同。
（9）肾上腺素对血压的影响记录对照血压曲线后，用1ml注射器，从耳缘静脉注入0.1~0.3ml肾上腺素溶液，观察并记录血压变化及恢复曲线。
（10）乙酰胆碱对血压的影响同法注入0.1~0.2ml乙酰胆碱溶液，观察并记录注射前后血压变化。
（11）失血对血压的影响从另一侧动脉插管后慢慢放血，观察放血量对血压的影响。
5、整理实验结果，并将实验结果填入下表家兔血压实验记录表【思考题】1、讨论各项实验结果，说明血压正常及发生变化的机理。
2、如何证明主动脉神经是传入神经？3、如何证明迷走神经外周端对心脏有调节作用？4、试分析主动脉神经放电与血压变化的关系。
5、根据实验结果，说明神经、药物对心率与呼吸的影响。
三、参数设置：（一）RM6240系统：点击“实验”菜单，选择“循环”或“自定义实验项目”菜单中的“兔动脉血压调节”。
系统进入该实验信号记录状态。
仪器参数：4通道时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度12Kpa，采样频率800Hz，扫描速度 500ms/div。
连续单刺激方式，刺激强度5~10V，刺激波宽2ms，刺激频率30 Hz。
（二）实验内容1.正常血压曲线。
2.夹闭右侧颈总动脉。
3.刺激减压神经：（1）刺激完整减压神经（2）刺激减压神经中枢端（3）刺激减压神经外周端。
4.刺激迷走神经外周端。
5.静脉注射NE 0.5ml。
（三）注意事项：1.分离减压神经注意：减压神经要从向心端开始往头端分离，避免损伤神经，分离时不使神经上带有结缔组织膜，分离后滴加生理盐水以防干燥，穿2根线备用。
2.连接仪器：注意避免动脉插管滑出。
3.夹闭颈总动脉时勿牵拉动脉（夹闭，血压增高；牵拉，血压下降）。
4.刺激减压神经，如神经损伤，向头端移动（与减压神经放电移动方向相反）。
5.刺激右侧迷走神经末梢端，血压.心率变化更为明显。
三、实验报告要求：（10分）1.实验结果：各种影响因素引起动脉血压变化曲线图。
（不要求观察定量变化）2.实验讨论：（各1分）1）夹闭颈总动脉，血压升高：夹闭颈总动脉→颈动脉窦血压下降→颈动脉窦压力感受器受到刺激减弱→窦神经传入冲动↗心迷走中枢（抑制）→迷走神经传出冲动减少→心跳加快.加强→心输出量增多↘↑↑减少→心交感中枢（兴奋）↘↗小静脉收缩→回心血量增多→ 血压升高交感神经传出冲动增多↘交感缩血管中枢（兴奋）↗↘小动脉收缩→外周阻力增大↗2）刺激完整减压神经及其中枢端均可引起血压下降，而刺激该神经外周端基本不变：兔减压神经是传入神经，其作用是将主动脉弓感受器发出的冲动传入延髓心血管中枢，反射性引起血压降低。
因此，刺激完整的减压神经或其中枢端，使传入中枢的冲动增加，致血压明显下降，而刺激其外周端虽又冲动传向外周，但不会引起血压变化3）刺激迷走神经末梢外周端，引起血压下降在实验中，多用刺激右迷走神经外周端，其中的副交感神经纤维兴奋，释放乙酰胆碱，乙酰胆碱与心肌细胞膜上的M受体结合，产生负性变时，变力，变传导作用，出现心率减慢，心输出量下降，血压下降。
4）静脉注射去甲肾上腺素后血压升高：[实验结果]各种影响因素引起动脉血压变化曲线图[结果分析]1.夹闭一侧颈总动脉15s后，观察到兔动脉血压升高的现象：这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。
这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。
夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。
信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。
使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。
从而血压恢复性升高。
若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。
2.刺激完整减压神经及其中枢端均可引起血压下降，而刺激该神经外周端基本不变：兔减压神经是传入神经，其作用是将主动脉弓感受器发出的冲动传入延髓心血管中枢，反射性引起血压降低。
因此，刺激完整的减压神经或其中枢端，使传入中枢的冲动增加，致血压明显下降，而刺激其外周端虽又冲动传向外周，但不会引起血压变化。
3.刺激迷走神经后观察到，刺激迷走神经和迷走神经外周端都能引起明显的减压反应，而刺激迷走中枢端则没有减压反应，只是稍有轻微抬升变化：迷走神经中含从延髓下行的传出纤维，通向心脏。
节前纤维末端释放Ach,节后纤维末端释放Ach,属于副交感神经纤维，能使cAMP浓度降低，心率减慢，心房收缩力减弱，传导性减弱。
从而使心输出量变小，平均动脉压降低。
此外，还有主动脉体化学感受器的上行纤维在迷走神经中并行，化学感受器受刺激的效应是血压升高。
所以，刺激迷走中枢不能引起减压反应，却可以使血压轻微抬高。
此外，若切断两侧迷走神经，迷走紧张消失，迷走吸气兴奋反射通路也断了，动物的吸气变深，周期变长，二级曲线周期性变得不明显。
4.加入0.2ml0.01%去甲肾上腺素后，观察到平均动脉压抬高。
这是由于去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2甲肾上腺素能受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。