最新植物器官培养
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叶鞘、叶片、子叶)
繁殖器 官培养
花培养 (包括花托、花瓣、花丝、 花柄、子房、花药)
种子培养(包括成熟与未成熟) 胚胎培养(包括幼胚、成熟胚、 胚珠、
子房、胚乳培养 )
3
外植体形态发生形成完整植株的途径
(一)外植体-愈伤组织-完整植株。 具体又可分为三种:
1、愈伤组织-同时长芽和根-植株。 2、愈伤组织-茎-根-植株。 3、愈伤组织-根-芽-植株。 4、愈伤组织-体细胞胚-植株
2020/11/12
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4、培养的方法和程序
(1)培养基 ① 基本培养基 MS、White、 B5、 Heller培养基。 ② 蔗糖作碳源效果好,浓度2-3%。 ③ 激素( 2,4-D,IAA, NAA )和有机添加物有明显影 响。但激素浓度以0.1mg/L为宜,不要太高。
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上,根依靠培养基中的养分和生长物质而不断生长。 第二种是液体培养法,把根尖接种在无琼脂的液
体培养基中,经常振荡使根获得充足的氧气。 第三种是固体-液体培养法,就是把根基部插入固
体琼脂培养基中,根尖浸在液体培养基中,根尖生长 而根不断的伸长和分枝。
二、茎尖的培养*
(一)茎尖培养概念及类型 (二)病毒在植物体内的分布 (三)茎尖培养方法及步骤
植物器官培养
第一节 概述
植物器官培养(Organ Culture)是指对植物某一器官 的全部、部分或器官原基进行离体培养的技术。分为 营养器官(根、茎、叶)和繁殖器官(胚胎、种子、 花器官)培养。
2020/11/12
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植物 器官 培养
2020/11/12
营养器 官培养
根培养 茎培养( 包括茎尖、茎段) 叶培养(包括叶原基、叶柄、
2、氮源 氮源有铵态氮、硝态氮和可溶性有机 氮如氨基酸或酰胺等,其中以硝态氮的效果最好。 加入含各种氨基酸的水解酪蛋白,能促进离体根 的生长。
3、碳源 以蔗糖的效果最佳,几乎为葡萄糖的10 倍。蔗糖的浓度为2—3%。
4、维生素 维生素以B1和B6最为重要,缺少它根 的生长受到阻碍,而加入它可使根的生长成倍的加 快。B1的使用浓度为0.1-1.0mg/L为宜。
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(一)茎尖培养概念及类型
茎尖培养:切取茎的先端部分或茎尖分生组织部分,进行 无菌培养。
茎尖培养根据培养目的和取材大小可分为: ①微茎尖培养: 带有1-2个叶原基的生长点, 其长度不超 过 0.5mm。
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②普通茎尖培养:较大的茎尖(如几mm到几十mm)、芽尖及侧 芽。 这里主要讲普通茎尖培养。这种培养技术简单,操作方便, 茎尖容易成活,成苗所需时间短 。
White培养基;2/3或1/2 MS 和 B5培养基 注:离体根生长要求提供全部必需元素,蔗糖、硝态氮效 果好,加入VB1、VB6最重要,生长素对离体根影响不一致。 培养温度25-27℃,暗光培养。
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离体根生长的营养要求
1、无机成分 要求培养基中有全部必要元素, 因为它是离体生长所需要的,一般的为MS、B5培 养基。
3. 培养条件
暗光和温度25-27℃。
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一、离体根的培养
4、根的间接增殖 第一步在脱分化培养基上诱导形成愈伤组织,如胡杨
的根段培养,可诱导形成白色愈伤组织。 第二步在再分化培养基上诱导形成芽的分化,如胡杨
从绿色愈伤组织分化出小植株。
胡 萝 卜 根 培 养
5、培养方式
离体根的培养方式有三种类型。 第一种固体培养法,即将根尖接种在固体培养基
茎尖生长状态
生长太慢:茎尖不增大→→变绿→→细胞逐渐老化→→休眠 原因: 生长素浓度太低;温度过低或过高;
第二节 营养器官培养
一、离体根的培养 二、茎尖的培养* 三、茎段的培养 四、离体叶的培养*
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一、离体根的培养
(一) 意义: ①生理代谢研究的优良实验体系 ②研究器官分化形态建成的良好体系 ③建立快速生长的根无性系 ④进行诱变育种
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(二) 培养方法
1. 培养基选择
5、生长物质 对离体根的生长而言,生长素的效 应最为明显,在一般情况,加入适量的生长素能促 进根的生长,其反应和需要量因植物种而异:
6、温度和光照 黑暗有利于根的形成,温度一般 在16-25℃
7、PH 根发生和生长所需的PH范围一般为5.0-6.0
2. 无性繁殖系的建立
种子消毒 →→ 接种→→待根伸长后从根尖一端切取长 1.2cm的根尖→→接种于培养基→→发育出侧根→→待侧 根生长约1周后切取侧根的根尖进行扩大培养→→又迅速 生长并长出侧根→→切下进行培养,如此反复→→得到 从单个根尖衍生而来的离体根的无性系。
茎尖培养的意义: 普通茎尖培养技术来自百度文库单,操作方便,易成活,成苗 时间短,加快繁殖。 微茎尖培养可获得脱毒苗;
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(二)病毒在植物体内的分布
❖ 病毒侵染植株的叶片后,经过一段时间,即向附近的 细胞增殖转移。转移速度很慢,每小时只有几微米。 当叶片内病毒浓度增大到一定量时,就转移到韧皮部, 随后通过维管束转移到其它部分。由于病毒转移速度 慢,加上茎尖分生组织无维管束,病毒只能通过胞间 连丝传递,赶不上细胞分裂和生长的速度,所以生长 点的病毒数量极少,几乎检测不出。茎尖培养时,切 取的茎尖越小,带病毒的可能性就越小。
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2、材料处理及消毒
将采集到的茎尖切成0.5-1.0cm长→→去叶(休眠 芽预先剥除鳞片) →→流水冲洗2-4h →→ 75%的酒 精中处理30s →→稀释20倍的次氯酸钠中浸5-8min(取 自老枝条上的可适当延长时间)→→用无菌水冲洗数次, 准备接种。
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3、接种
接种前再剥掉一些叶片,使茎尖0.5cm →→接种 要求:随切随接,动作迅速。 亦可将切下茎尖材 料在1-5% VC液中浸一下。
——茎尖脱毒的基本原理
(三)茎尖培养方法及步骤
及材
取
消料
材
毒处
理
接
培
驯
化
种
养
移 栽
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1、 取材
①直接取材:在生长旺盛、枝 条健壮、无病的母株上选生 长不久、杂菌污染少的顶梢 (1-2cm)(取前可喷杀菌 药,可顶芽或侧芽)。
②从试管苗获取。
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取1-2㎝顶梢
繁殖器 官培养
花培养 (包括花托、花瓣、花丝、 花柄、子房、花药)
种子培养(包括成熟与未成熟) 胚胎培养(包括幼胚、成熟胚、 胚珠、
子房、胚乳培养 )
3
外植体形态发生形成完整植株的途径
(一)外植体-愈伤组织-完整植株。 具体又可分为三种:
1、愈伤组织-同时长芽和根-植株。 2、愈伤组织-茎-根-植株。 3、愈伤组织-根-芽-植株。 4、愈伤组织-体细胞胚-植株
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4、培养的方法和程序
(1)培养基 ① 基本培养基 MS、White、 B5、 Heller培养基。 ② 蔗糖作碳源效果好,浓度2-3%。 ③ 激素( 2,4-D,IAA, NAA )和有机添加物有明显影 响。但激素浓度以0.1mg/L为宜,不要太高。
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上,根依靠培养基中的养分和生长物质而不断生长。 第二种是液体培养法,把根尖接种在无琼脂的液
体培养基中,经常振荡使根获得充足的氧气。 第三种是固体-液体培养法,就是把根基部插入固
体琼脂培养基中,根尖浸在液体培养基中,根尖生长 而根不断的伸长和分枝。
二、茎尖的培养*
(一)茎尖培养概念及类型 (二)病毒在植物体内的分布 (三)茎尖培养方法及步骤
植物器官培养
第一节 概述
植物器官培养(Organ Culture)是指对植物某一器官 的全部、部分或器官原基进行离体培养的技术。分为 营养器官(根、茎、叶)和繁殖器官(胚胎、种子、 花器官)培养。
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植物 器官 培养
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营养器 官培养
根培养 茎培养( 包括茎尖、茎段) 叶培养(包括叶原基、叶柄、
2、氮源 氮源有铵态氮、硝态氮和可溶性有机 氮如氨基酸或酰胺等,其中以硝态氮的效果最好。 加入含各种氨基酸的水解酪蛋白,能促进离体根 的生长。
3、碳源 以蔗糖的效果最佳,几乎为葡萄糖的10 倍。蔗糖的浓度为2—3%。
4、维生素 维生素以B1和B6最为重要,缺少它根 的生长受到阻碍,而加入它可使根的生长成倍的加 快。B1的使用浓度为0.1-1.0mg/L为宜。
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(一)茎尖培养概念及类型
茎尖培养:切取茎的先端部分或茎尖分生组织部分,进行 无菌培养。
茎尖培养根据培养目的和取材大小可分为: ①微茎尖培养: 带有1-2个叶原基的生长点, 其长度不超 过 0.5mm。
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16
②普通茎尖培养:较大的茎尖(如几mm到几十mm)、芽尖及侧 芽。 这里主要讲普通茎尖培养。这种培养技术简单,操作方便, 茎尖容易成活,成苗所需时间短 。
White培养基;2/3或1/2 MS 和 B5培养基 注:离体根生长要求提供全部必需元素,蔗糖、硝态氮效 果好,加入VB1、VB6最重要,生长素对离体根影响不一致。 培养温度25-27℃,暗光培养。
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离体根生长的营养要求
1、无机成分 要求培养基中有全部必要元素, 因为它是离体生长所需要的,一般的为MS、B5培 养基。
3. 培养条件
暗光和温度25-27℃。
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一、离体根的培养
4、根的间接增殖 第一步在脱分化培养基上诱导形成愈伤组织,如胡杨
的根段培养,可诱导形成白色愈伤组织。 第二步在再分化培养基上诱导形成芽的分化,如胡杨
从绿色愈伤组织分化出小植株。
胡 萝 卜 根 培 养
5、培养方式
离体根的培养方式有三种类型。 第一种固体培养法,即将根尖接种在固体培养基
茎尖生长状态
生长太慢:茎尖不增大→→变绿→→细胞逐渐老化→→休眠 原因: 生长素浓度太低;温度过低或过高;
第二节 营养器官培养
一、离体根的培养 二、茎尖的培养* 三、茎段的培养 四、离体叶的培养*
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一、离体根的培养
(一) 意义: ①生理代谢研究的优良实验体系 ②研究器官分化形态建成的良好体系 ③建立快速生长的根无性系 ④进行诱变育种
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(二) 培养方法
1. 培养基选择
5、生长物质 对离体根的生长而言,生长素的效 应最为明显,在一般情况,加入适量的生长素能促 进根的生长,其反应和需要量因植物种而异:
6、温度和光照 黑暗有利于根的形成,温度一般 在16-25℃
7、PH 根发生和生长所需的PH范围一般为5.0-6.0
2. 无性繁殖系的建立
种子消毒 →→ 接种→→待根伸长后从根尖一端切取长 1.2cm的根尖→→接种于培养基→→发育出侧根→→待侧 根生长约1周后切取侧根的根尖进行扩大培养→→又迅速 生长并长出侧根→→切下进行培养,如此反复→→得到 从单个根尖衍生而来的离体根的无性系。
茎尖培养的意义: 普通茎尖培养技术来自百度文库单,操作方便,易成活,成苗 时间短,加快繁殖。 微茎尖培养可获得脱毒苗;
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(二)病毒在植物体内的分布
❖ 病毒侵染植株的叶片后,经过一段时间,即向附近的 细胞增殖转移。转移速度很慢,每小时只有几微米。 当叶片内病毒浓度增大到一定量时,就转移到韧皮部, 随后通过维管束转移到其它部分。由于病毒转移速度 慢,加上茎尖分生组织无维管束,病毒只能通过胞间 连丝传递,赶不上细胞分裂和生长的速度,所以生长 点的病毒数量极少,几乎检测不出。茎尖培养时,切 取的茎尖越小,带病毒的可能性就越小。
21
2、材料处理及消毒
将采集到的茎尖切成0.5-1.0cm长→→去叶(休眠 芽预先剥除鳞片) →→流水冲洗2-4h →→ 75%的酒 精中处理30s →→稀释20倍的次氯酸钠中浸5-8min(取 自老枝条上的可适当延长时间)→→用无菌水冲洗数次, 准备接种。
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3、接种
接种前再剥掉一些叶片,使茎尖0.5cm →→接种 要求:随切随接,动作迅速。 亦可将切下茎尖材 料在1-5% VC液中浸一下。
——茎尖脱毒的基本原理
(三)茎尖培养方法及步骤
及材
取
消料
材
毒处
理
接
培
驯
化
种
养
移 栽
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1、 取材
①直接取材:在生长旺盛、枝 条健壮、无病的母株上选生 长不久、杂菌污染少的顶梢 (1-2cm)(取前可喷杀菌 药,可顶芽或侧芽)。
②从试管苗获取。
2020/11/12
取1-2㎝顶梢