斑马鱼的胚胎发育与影响因素
斑马鱼胚胎发育阶段相关基因的挖掘与分析
斑马鱼胚胎发育阶段相关基因的挖掘与分析近年来,斑马鱼成为一种常用的实验室模式生物,其胚胎发育过程十分规律和可控,是研究发育生物学和基因调控机制的重要模型。
随着基因挖掘技术的不断发展,越来越多的基因与斑马鱼胚胎发育阶段相关性得到了发现。
因此,分析斑马鱼胚胎发育阶段相关基因的功能和调控机制对于揭示生命活动的本质有着至关重要的意义。
一、斑马鱼胚胎发育阶段及其分子机制斑马鱼是一种小型热带鱼类,其胚胎发育阶段可分为十几个时期,分别对应着不同的形态和生理特征。
这些不同的发育阶段均是由基因表达的时空调控所驱动的,特定的基因激活和抑制导致了不同的胚胎形态和器官功能的发生。
在斑马鱼的早期发育过程中,主要涉及到卵母细胞的受精和初胚形成。
此阶段的发育主要由母源性基因调控,如 nop5、dead end、Vasa等。
随着器官的逐渐形成,受精卵将发展成为由脑、眼、肌肉等不同组织构成的多细胞胚胎。
这个过程中涉及到神经、视觉、肌肉等多种发育生物学特征,同时也是多个信号通路的交错调节,如 BMP、Wnt、Notch、Hedgehog等。
在胚胎发育的晚期,涉及到器官的成熟和功能细化等生理特征。
这个过程也是多种生化信号和调节因子交错作用下的结果,其主要涉及到细胞增殖、周期、分化等方面的调控,如 Cyclin D1、Nodal、Sox9等。
以上所述只是基础的胚胎发育阶段及其分子机制,实际上与胚胎发育相关的基因非常多且复杂。
因此,对斑马鱼胚胎发育相关基因的挖掘与分析显得尤为重要。
二、斑马鱼胚胎发育相关基因的挖掘通常,对基因的挖掘可以通过多种方式进行。
例如,可以通过对小分子化学物质的筛选和识别来验证潜在的胚胎发育相关基因,或者采用基于全反式PCR和转录组测序技术的方法进行基因调控因子的预测和鉴定。
另外,通过胚胎发育过程中的突变模式和形态,可获得一些具有生物学意义的候选基因,对其功能的研究也是非常重要的。
目前,已经有大量的胚胎发育相关基因在斑马鱼中被发现并得到了鉴定。
斑马鱼的胚胎发育和行为观察
观察
汇报人:XX
2024-01-11
• 斑马鱼基本概述 • 斑马鱼胚胎形态学观察 • 斑马鱼胚胎生理学观察 • 斑马鱼行为学观察方法与技术 • 斑马鱼行为学观察实例分析 • 总结与展望
01
斑马鱼基本概述
斑马鱼生物学特性
体型特征
食性
斑马鱼体型修长,侧扁,成鱼体长34厘米,呈纺锤形。体色为银蓝色或 银色,有数条黑色纵纹贯穿全身,形 似斑马线。
原肠胚期
原肠胚期是胚胎发育的重要阶段之一。在这个阶段,胚胎 内部细胞进一步分化形成中胚层,并开始形成消化管、神 经管等器官原基。
孵化期
孵化期是胚胎发育的最后阶段。在孵化前,胚胎内部器官 基本发育成形。随着孵化过程的进行,胚胎逐渐破膜而出 ,成为幼鱼。
02
斑马鱼胚胎形态学观察
受精卵形态与结构特点
受精卵呈圆球形,透 明度高,直径约 1mm。
受精卵表面有一层坚 韧的卵壳,保护胚胎 免受外界损伤。
卵黄囊较大,占据受 精卵的大部分体积, 为胚胎发育提供营养 。
卵裂期及囊胚期发育过程
卵裂期
受精卵经过连续多次快速分裂,形成多细胞胚胎。此阶段细胞数量增加,但胚 胎总体积基本不变。
囊胚期
细胞继续分裂并重新排列,形成囊胚。此时胚胎内部出现空腔,即囊胚腔,细 胞开始分化为内细胞团和外层细胞。
02
攻击性
在争夺领地、配偶或食物等资源时,斑马鱼可能会表现出攻击性。攻击
行为包括追逐、撕咬等,旨在将竞争对手赶出领地或获取所需资源。
03
行为影响因素
领域性和攻击性行为受到多种因素的影响,如个体大小、健康状况、环
境压力等。较大的个体通常更具攻击性,而环境压力可能导致斑马鱼的
研究斑马鱼的胚胎发育及其关键期发育
研究斑马鱼的胚胎发育及其关键期发育斑马鱼作为实验室中常用的模式生物之一,其相对简单的生殖和发育过程使得它成为了人们研究胚胎发育的重要对象之一。
斑马鱼的生殖过程非常规律,整个胚胎发育周期为24小时左右,孵化出的幼鱼期只有3天时间,因此研究斑马鱼胚胎发育的关键期是极为重要的。
1.斑马鱼的繁殖周期按照斑马鱼的繁殖周期,胚胎发育可分为四个阶段:受精卵期、原肠胚期、中胚层期和胚胎期。
在受精卵期,由于胚胎的细胞数量较少,细胞分化还未开始,因此对于实验研究比较有利。
而原肠胚期则是胚胎细胞分化的关键时期,不同类型的细胞开始出现,胚胎的体轴形成也在这一时期完成。
中胚层期则是各个器官的形成时期,器官原基逐渐形成并开始发育。
胚胎期则是细胞分化和器官形成的阶段,各种器官开始具备其特定的功能。
2.斑马鱼的胚胎发育与研究方法在研究斑马鱼的胚胎发育过程中,有两种经典的实验方法:一种是观察胚胎的形态,另一种则是分子遗传学方法。
观察胚胎形态的方法包括显微镜观察、形态学分析、各种染色法和微剖检查等。
分子遗传学方法则包括DNA微注射、利用Tol2系统进行基因转染、利用Morphant植入进行基因敲除和利用各种转录因子进行基因表达调控等。
这些方法能够全面深入地研究斑马鱼发育过程中的各个细节,为发育生物学研究提供了成熟的基础。
3.斑马鱼的胚胎发育关键期胚胎发育关键期即是指在这些时期,斑马鱼胚胎发育过程中出现了大量的关键分化事件,从而对胚胎发育产生了决定性的影响。
比如,在受精卵期,精卵和精子合并形成的原始受精卵很快分裂成数千个相同大小的细胞,进入囊胚阶段,随后囊胚开始对细胞进行分化。
在这个时期,实验研究可以利用形态和分子生物技术,来全面了解斑马鱼胚胎发育基本的细胞分化过程。
原肠胚期则是一个重要的发育关键期,这时各个器官开始发育,形成胃肠道和脊髓,并且产生了一些重要的基因表达调控。
中胚层期和胚胎期是一个比较综合和复杂的发育时期,不同器官之间紧密联系和相互影响,分化程度和细胞命运已经初步确定,此时的特定基因已经被表达并进入各个器官的形态调控中。
低氧对斑马鱼胚胎发育和红细胞生成的抑制作用
2021年2月第29卷㊀第1期中国实验动物学报ACTA LABORATORIUM ANIMALIS SCIENTIA SINICAFebruary 2021Vol.29㊀No.1楚璐萌,田子颖,崔蕊,等.低氧对斑马鱼胚胎发育和红细胞生成的抑制作用[J].中国实验动物学报,2021,29(1):1-8.Chu LM,Tian ZY,Cui R,et al.Inhibition effects of hypoxia on embryonic development and erythropoiesis in zebrafish [J].Acta Lab Anim Sci Sin,2021,29(1):1-8.Doi:10.3969/j.issn.1005-4847.2021.01.001[基金项目]国家自然科学基金(31301135),河南省高等学校重点科研项目资助计划(21A320018),河南省高校科技创新人才支持计划(17HASTIT047),河南省高等学校青年骨干教师资助计划(2016GGJS-103),新乡医学院精神神经医学学科群支持计划(2016PNKFKT-08),新乡医学院产学研合作项目(2017CXY-2-14),河南省生物精神病学重点实验室开放课题(ZDSYS2016001),研究生创新支持计划资助项目(YJSCX201811Z)㊂Funded by National Natural Science Foundation of China (31301135),Key Scientific Research Projects of Henan Province (21A320018),Innovative Talents in Science and Technology of Fund Program of Universities of Henan Province(17HASTIT047),the Young Backbone TeachersFellowship in Henan Province (2016GGJS-103),the Disciplinary Group of Psychology and Neuroscience,Xinxiang Medical University (2016PNKFKT-08),Production,Study and Research Project Funding of Xinxiang Medical University(2017CXY-2-14),Open Program of Henan Key Laboratory of Biological Psychiatry(ZDSYS2016001),Graduate Innovation Support Program Funded Projects(YJSCX201811Z).[作者简介]楚璐萌(1994 ),女,在读硕士研究生,研究方向:造血分化发育研究㊂Email:670381639@ [通信作者]于海川(1979 ),男,博士,副教授,研究方向:造血分化发育㊂Email:haichuan_yu@;吴娇(1978 ),女,博士,副教授,研究方向:神经分化发育研究㊂Email:wujiao@㊂∗共同通信作者低氧对斑马鱼胚胎发育和红细胞生成的抑制作用楚璐萌1,4,田子颖1,崔蕊1,吴娇2∗,于海川1,3∗(1.新乡医学院医学检验学院,河南省分子诊断与医学检验技术协同创新中心,河南新乡㊀453003;2.新乡医学院药学院,河南新乡㊀453003;3.新乡医学院第二附属医院,河南省生物精神病学重点实验室,河南新乡㊀453002;4.河南省郑州市第七人民医院,郑州㊀450000)㊀㊀ʌ摘要ɔ㊀目的㊀本文以斑马鱼(Danio rerio )为研究对象,探讨了低氧对早期胚胎发育㊁造血分化和红系分化的影响㊂方法㊀选取受精后12h 的斑马鱼胚胎,随机分为两组,以常氧组为对照组,低氧组为实验组,实时观察斑马鱼胚胎发育形态学的变化;通过联苯胺染色㊁邻联茴香胺染色㊁AO 染色及瑞氏吉姆萨染色观察红细胞的生成及形态学变化;并通过Real time PCR 检测了斑马鱼胚胎造血相关基因的表达情况㊂结果㊀与常氧相比,低氧降低了斑马鱼胚胎卵黄囊的营养消耗,抑制了色素细胞的形成,减慢了心率,延缓了斑马鱼胚胎的孵化,观察和分析了低氧对红细胞产生和成熟的抑制作用㊂结论㊀低氧延缓了斑马鱼胚胎发育,抑制了红细胞的产生和成熟㊂ʌ关键词ɔ㊀斑马鱼;低氧;胚胎发育;造血分化;红细胞生成ʌ中图分类号ɔQ95-33㊀㊀ʌ文献标识码ɔA㊀㊀ʌ文章编号ɔ1005-4847(2021)01-0001-08Inhibition effects of hypoxia on embryonic development anderythropoiesis in zebrafishCHU Lumeng 1,4,TIAN Ziying 1,CUI Rui 1,WU Jiao 2∗,YU Haichuan 1,3∗(1.School of Laboratory Medicine,Henan Collaborative Innovation Center of Molecular Diagnosis and Laboratory Medicine,Xinxiang Medical University,Xinxiang 453003,China.2.School of Pharmacy,Xinxiang Medical University,Xinxiang 453003.3.the Second Affiliated Hospital of Xinxiang Medical University,Henan Key Laboratory of Biological Psychiatry,Xinxiang Medical University,Xinxiang 453002.4.Zhengzhou No.7People s Hospital of Henan Province,Zhengzhou 450000)Corresponding author:YU Haichuan.E-mail:haichuan_yu@;WU Jiao.E-mail:wujiao@ ʌAbstract ɔ㊀Objective ㊀The vertebrate model of zebrafish (Danio rerio )was employed to explore the effects ofhypoxia on early embryonic development,hematopoietic differentiation,and erythroid differentiation.Methods ㊀At 12hpost-fertilization,zebrafish embryos were randomly divided into two groups.The normoxic group was used as the control group,and the hypoxic group was used as the experimental group.The morphological changes of zebrafish embryos were observed in real-time.Erythropoiesis and morphological changes were observed by benzidine,O-dianisidine,acridine orange,and May-Grunwald Giemsa staining.Real time PCR was used to analyze hematopoietic gene expression in zebrafish embryos.Results㊀Hypoxia reduced nutritional consumption of the yolk sac,inhibited the formation of pigment cells, slowed down the heart rate,and delayed the hatching of zebrafish embryos.Inhibitive effects of hypoxia on the production and maturity of red blood cells were observed.Conclusions㊀Hypoxia delays zebrafish embryonic development and inhibits the production and maturity of red blood cells.ʌKeywordsɔ㊀zebrafish;hypoxia;embryonic development;hematopoietic differentiation;erythropoiesis Conflicts of Interest:The authors declare no conflict of interest.㊀㊀斑马鱼(Danio rerio)是研究发育㊁造血和遗传学的强大模型[1],其具有体外受精发育㊁产卵量大㊁胚胎透明等多种优势[2-4]㊂斑马鱼与人类之间的遗传同源性达87%[5],同时具有遗传操作和再生能力[6],这使得斑马鱼成为目前研究脊椎动物胚胎发育和造血分化的优秀动物模型[7]㊂低氧是影响水生系统的最重要的压力源之一[8-9],目前有关低氧对斑马鱼胚胎发育的影响机制研究报道非常少㊂斑马鱼胚胎发育是一个复杂的㊁高度协同的过程㊂斑马鱼与人的造血分化是保守一致的,已经发现并克隆了造血过程中的阶段特异性表达基因,包括EPO㊁Globin和GATA1等[3,10]㊂研究发现红细胞生成受到低氧环境的影响,其中一个或多个异常可能导致不同类型的红细胞生成障碍[10]㊂本文采用联苯胺染色㊁邻联茴香胺染色及瑞氏吉姆萨染色来显示红细胞的生成及形态学变化,观察了低氧下斑马鱼胚胎的整个发育过程,并对常氧和低氧下的基因表达水平进行了比较,从而加深了低氧对脊椎动物影响的认识㊂目前涉及低氧对斑马鱼影响的详细研究很少,本研究为揭示低氧影响斑马鱼胚胎发育和红细胞生成的具体过程提供了新数据㊂1㊀材料与方法1.1㊀材料1.1.1㊀实验动物本实验得到新乡医学院动物实验伦理委员会的审批(XYLL-2020163),于河南省免疫与靶向药物重点实验室中进行实验,实验动物实验使用许可证号ʌSYXK(豫)2018-0014ɔ㊂约100对状态良好的生育期的AB品系斑马鱼养殖于上海海圣斑马鱼实验养殖系统中,光照/黑暗14h/10h,水温为28ħ㊂受精卵在28.5ħ下孵育,并根据Kimmel等[2]方法进行分期㊂1.1.2㊀主要试剂与仪器3,3 ,5,5 -四甲基联苯胺(MACKLIN,中国);瑞氏吉姆萨染液(Baso,中国);AO染液(索莱宝,中国);邻联茴香胺(Sigma,美国);TRIzol试剂(ambion,美国);逆转录试剂盒(诺唯赞,中国)㊂斑马鱼养殖系统(上海海圣生物实验设备有限公司,中国);YCP系列三气培养箱(长沙华曦电子科技有限公司,中国);ZEISS Discovery.V8体式荧光显微镜(ZEISS,德国);BX51正置荧光显微镜(Olympus,日本);PikoReal TM实时荧光定量PCR检测仪(Thermo Fisher Scientific,美国);Tanon-3500凝胶成像系统(上海天能公司,中国)㊂1.2㊀方法1.2.1㊀斑马鱼的繁殖和胚胎处理斑马鱼是根据已有文献的标准条件饲养和繁殖[11],交配和胚胎培养方法由中国斑马鱼资源中心提供㊂12hpf(hours post fertilization)后收集高质量的胚胎进行实验㊂将胚胎分为低氧和常氧培养组,低氧组的胚胎暴露于5%O2浓度下㊂每12h收集1次斑马鱼胚胎,鉴定胚胎的发育阶段㊂在不同发育时期,从常氧和低氧组各随机选取10个胚胎,用ZEISS ZEN软件计算卵黄囊的比例;用Image J软件分析体表色素沉着的比例;在体视显微镜下观察并计算胚胎个体的心率㊂1.2.2㊀联苯胺染色和邻联茴香胺染色联苯胺染色按照本实验室的方法进行[12],邻联茴香胺染色参照文献方法进行[13]㊂使用体式显微镜对各发育阶段的胚胎进行观察并拍照,用Image J 软件分析整个斑马鱼中染色部分的占比㊂图像至少是从3个独立的实验中获得,每组至少有6个胚胎或幼鱼㊂1.2.3㊀瑞氏吉姆萨染色对胚胎进行断尾处理收集血细胞,制备血涂片㊂斑马鱼预处理及瑞氏吉姆萨染色方法参照文献进行,并稍作改进[14-15]㊂使用BX51正置荧光显微镜观察并鉴定红细胞类型,并依据统计学方法计算红细胞在所有血细胞中的比例㊂1.2.4㊀AO染色随机收集10个胚胎/幼鱼移至包含1mL ddH2O的EP管中,然后加入30μL10μg/mL的AO染液,避光染色1h[16-17]㊂立即使用体式荧光显微镜观察并拍摄胚胎中的荧光㊂1.2.5㊀RNA提取和Real time PCR每组随机取50个胚胎/幼鱼,溶于TRIzol试剂中提取总RNA㊂使用逆转录试剂盒将总RNA逆转录为cDNA㊂使用特异性基因引物(见表1)进行常规RT-PCR和Real time PCR㊂表1㊀实时荧光定量PCR引物名称及序列Table1㊀Primer names and sequences of Real time PCR引物名称Primer names引物序列(5 -3 )Primer sequences(5 -3 ) Z-Globin-F TTTCCGCAAAGGACAAAGCGZ-Globin-R AGGAGAGTTGGGGCTTAGGTZ-GATA1-F TTTACGGCCCTTCTCCACACZ-GATA1-R GGTGGCACCACAATTCACACZ-l-plastin-F GATGTGGATGGGAACGGTCAZ-l-plastin-R ATGAACCACCTTGGCGAACTZ-scl-F CGGGCTGACAACTAGCGTATZ-scl-R TACCTGATGAGGCGTGGGTAZ-c-myc-F TATGCTGCAAGTGACCGGAGZ-c-myc-R GCTGGATGGAGTCGTAGTCGZ-NFIL3-F TAGCCCGATGTCCTTCCAGAZ-NFIL3-R TGGTGAGTCTGGACATTGCCZ-GAPDH-F TCACATTAAGGGTGGTGCAAZ-GAPDH-R GTGATGGCATGAACAGTGCT 1.3㊀统计学分析使用GraphPad Prism7软件对实验数据进行分析㊂计量资料以平均值ʃ标准差( xʃs)表示,采用t检验比较两组样本的均值,多组间的样本采用单因素方差分析㊂P<0.05为差异有统计学意义㊂2㊀结果2.1㊀低氧延迟斑马鱼胚胎发育依据前期实验结果,最终选定5%O2浓度作为低氧条件㊂将12hpf的斑马鱼胚胎(图1A)随机分为两组,分别在常氧和低氧下培养㊂24hpf,咽囊期原基-5期视网膜色素沉着和皮肤黑色素沉积较早,卵黄囊内出现红细胞,此时出现早期心脏搏动(图1B);36hpf,原基-25期,绒毛膜中的斑马鱼胚胎出现早期运动㊁尾部色素沉着和血液循环(图1C); 48hpf,长胸鳍期,卵黄囊开始变薄,侧边带出现黑素细胞,视网膜上的虹膜色素细胞丰富,头部出现黄色(图1D);60hpf,高胸鳍期,血液循环明显,视网膜虹膜色素细胞环加深(图1E);72hpf,孵化期的突口阶段,虹膜色素细胞覆盖眼睛,背部与头部相同颜色(图1F);84hpf,斑马鱼胚胎已经发育到幼鱼期(图1G)㊂低氧下,胚胎在24hpf时发育到卵裂期的20-体节阶段,在胚胎背侧区域共观察到20个体节,相当于在常氧下19hpf时的发育阶段(图1H)㊂同样,低氧下,36㊁48㊁60㊁72㊁84hpf的胚胎发育阶段分别为原基-6期㊁原基-25期㊁高胸鳍期㊁长胸鳍期和胸鳍期,分别与常氧下的25㊁36㊁42㊁48㊁60 hpf一致(图1I㊁1J㊁1K㊁1L㊁1M),即低氧在一定程度上延迟了斑马鱼胚胎的整体发育㊂2.2㊀低氧对于斑马鱼卵黄囊㊁色素沉着㊁胚胎孵化和心率的影响在相同发育阶段,低氧组斑马鱼的卵黄囊体积明显大于常氧组(图2A㊁2B);低氧组斑马鱼眼睛㊁头部㊁躯干和卵黄囊中的色素沉着明显低于常氧组(图2A㊁2C);在相同的长胸鳍阶段,常氧组胚胎完成了孵化,低氧组胚胎仍然包裹在绒毛膜中(图2A)㊂常氧组斑马鱼在24hpf时胚胎开始出现早期的心脏搏动,而此时低氧组未发现心脏搏动㊂从24 hpf开始,无论是否低氧培养,胚胎早期心率随时间变化趋势一致,约60hpf后心率趋于稳定,而在相同发育时间,低氧组斑马鱼胚胎心率明显低于常氧组(图2D)㊂另外,相同发育阶段,低氧下的胚胎心率明显低于常氧(图2E)㊂2.3㊀低氧减少斑马鱼早期胚胎发育红细胞的生成邻联茴香胺染色结果显示,经低氧处理的斑马鱼胚胎的邻联茴香胺的着色面积显著降低,染色部位主要位于卵黄囊,而常氧组斑马鱼胚胎的染色部位则逐渐从卵黄囊转移到心脏和头部(图3A-a,c, e,g)㊂联苯胺染色结果与邻联茴香胺染色基本一致,常氧下胚胎的主要染色部位逐渐从卵黄囊和大血管转移到心脏㊁大血管和节间血管,低氧下的染色部位逐渐从卵黄囊转移到心脏和血管,节间血管染色不明显(图3B)㊂使用Image J软件对联苯胺染色结果进行分析,在同一发育阶段,低氧下胚胎的着色面积比例明显低于常氧(图3C)㊂AO染色结果显示,低氧下斑马鱼胚胎卵黄囊的前部和上部有大量的凋亡细胞(绿色荧光颗粒);但其会随着斑马图1㊀斑马鱼胚胎发育代表性图片(ˑ150)Figure 1㊀Representative images of zebrafish embryonic development(ˑ150)注:A:斑马鱼胚胎的代表性图片(ˑ150);B㊁C:斑马鱼卵黄囊体积占比和色素沉着占比;D:不同发育时间斑马鱼胚胎的心率变化;E:相同发育阶段下斑马鱼胚胎的心率的差异㊂与常氧相比,∗P <0.05,∗∗P <0.01,∗∗∗P <0.001㊂(下图同)图2㊀低氧对于斑马鱼胚胎卵黄囊㊁色素沉着和心率的影响Note.A.Representative images of zebrafish embryos(ˑ150).B,C.The proportion of yolk sac volume and the proportion of pigmentation.D.The heart rate of zebrafish embryos under normoxic and hypoxic conditions at different developmental time.E.The heart rate of zebrafishembryos under normoxic and hypoxic conditions at the same developmental pared with normal oxygen,∗P <0.05,∗∗P <0.01,∗∗∗P <0.001.(The same in the following figures)Figure 2㊀Effects of hypoxia on yolk sac,pigmentation and heart rate of zebrafish embryos鱼胚胎的发育逐渐减少(图3A-b,d,f,h)㊂2.4㊀低氧抑制红细胞成熟瑞氏吉姆萨染色结果显示,同一发育时期,低氧下斑马鱼的总红细胞(包括幼稚红细胞和成熟红细胞)比例低于常氧(图4A㊁4B)㊂图4A 中,蓝色箭头处为未成熟红细胞,胞体呈圆形,胞质丰富,细胞核呈圆形或类圆形,蓝色,多居中;红色箭头处为成熟的红细胞,胞体比未成熟红细胞小,呈椭圆形,胞质丰富,细胞核呈椭圆形,深紫色㊂低氧下84hpf 的斑马鱼血液中只有未成熟的红细胞存在㊂但是同一发育阶段下常氧和低氧相比较,红细胞总数的比例没有统计学意义(图4C)㊂以往的研究表明,斑马鱼血液中的红细胞呈连续性年龄分布,成熟的红细胞血红蛋白含量较高[18]㊂这些结果表明低氧在一定程度上抑制了红细胞的成熟㊂2.5㊀低氧对于斑马鱼胚胎发育过程中造血相关基因表达的影响通过绘制斑马鱼胚胎发育早期的造血细胞分化发育图谱,我们选定了部分重要的造血相关基因进行表达检测㊂首先使用RT-PCR 的方法观察了在正常培养过程中斑马鱼胚胎发育6㊁12㊁24㊁48㊁72hpf 时一些重要造血相关基因的表达情况(图5A),在24hpf 之后,红系特异性造血因子GATA1和Globin 随着发育时间的增加其表达强度逐渐增加;注:A:斑马鱼胚胎的邻联茴香胺染色图片和AO 染色图片(ˑ150);B:斑马鱼胚胎的代表性联苯胺染色图片(ˑ100);C:联苯胺染色量化图㊂图3㊀低氧对斑马鱼胚胎血红蛋白的生成和细胞凋亡的影响Note.A.O-dianisidine staining pictures and Acridine orange staining pictures of zebrafish embryos(ˑ150).B.Representative benzidine staining of zebrafish embryos(ˑ100).C.Quantitative line chart of Benzidine staining.Figure 3㊀Effects of hypoxia on hemoglobin production and cell apoptosis of zebrafishembryos注:A:斑马鱼胚胎血细胞的瑞氏吉姆萨染色(ˑ1000);B:不同发育时期斑马鱼胚胎中红细胞的比例;C:在相同的发育阶段,斑马鱼胚胎中红细胞的比例㊂图4㊀低氧抑制红细胞成熟Note.A.May-Grunwald Giemsa staining of zebrafish embryonic blood cells(ˑ1000).B.The proportion of red blood cells in blood of zebrafish embryos at different developmental time.C.At the same developmental stage,the proportion of red blood cells in blood of zebrafish embryos.Figure 4㊀Hypoxia inhibits red blood cell maturity同时其他的与造血相关的基因c-myc㊁scl㊁GATA2和NFIL3等在斑马鱼胚胎发育早期,也随着发育时间呈逐渐升高的趋势,而l-plastin 在早期的表达更加明显㊂另外,Real time PCR 结果显示了常氧和低氧下一些红系相关基因的表达差异㊂Globin 在相同的发育时期低氧下的表达强度要明显低于常氧下的表达强度,与之相反Epo 基因在低氧下则显示较高,同时其他相关造血基因在某些发育阶段也显示出低氧下表达强度低于常氧下(图5B)㊂这些基因表达的变化情况证实并解释了先前观察到的低氧抑制斑马鱼胚胎早期红系分化的结果㊂注:A:RT-PCR 分析常氧条件下斑马鱼胚胎发育过程中的mRNA 表达水平;B:Real time PCR 分析比较常氧和低氧条件下造血相关mRNA 的表达差异㊂图5㊀低氧对于斑马鱼胚胎发育中基因表达的影响Note.A.Some mRNA level was analyzed by RT-PCR during embryonic development of zebrafish.B.Real time PCR was employed to analyze the differential expression of hematopoietic related mRNA.Figure 5㊀Effects of hypoxia on gene expression in embryonic development of zebrafish3㊀讨论为了探讨低氧对斑马鱼胚胎发育和造血作用的影响,我们使用了不同的低氧浓度和低氧处理时间㊂前期的实验结果表明当受精后的胚胎直接暴露于1%O 2浓度下超过24h,死亡率几乎是100%㊂我们最终选定了5%O 2浓度作为最适低氧浓度,而12hpf 作为最佳低氧处置时间㊂斑马鱼胚胎是一个 封闭系统 ,且发育早期不能合成血红蛋白来供应自身氧气的需求,只能通过外界氧气的被动扩散才能满足斑马鱼胚胎的正常生长发育,所以绒毛膜上的孔洞是氧气和营养物质从外部水环境运输到胚胎和清除废物所必需的[19],通过独特的绒毛膜结构,未孵化的胚胎感受到低氧并影响其发育,本研究发现低氧延缓了斑马鱼的孵化时间㊂卵黄囊的主要作用是为斑马鱼早期发育提供所需的营养物质,使发育不受外界干扰[20]㊂但有研究发现抵抗动物缺氧的最重要的防御机制之一是能量消耗的下调[21],本实验结果显示:低氧下斑马鱼胚胎卵黄囊的体积占比大于常氧,即实验证实低氧抑制卵黄囊的消耗㊂同时低氧减少了胚胎的体外色素沉着,这可能是由于低氧降低细胞色素P450的表达[22],或者因为低氧影响了酪氨酸酶的活性从而延迟了胚胎色素细胞的发育[23]㊂总之,低氧从整体上抑制了斑马鱼胚胎的发育过程,而持续的低氧不利于胚胎发育和生物学进化,在某些情况下甚至可能导致严重的疾病或死亡㊂鱼类心脏对多种环境因素敏感,其中之一就是低氧㊂在低氧状态下,由于外部氧气浓度较低,通过绒毛膜被动扩散进入斑马鱼胚胎的氧气含量无法满足斑马鱼胚胎心脏形成和发挥功能的需求,从而导致其出现持续性心动过缓,通过降低心率和能量消耗从而提高成活率[24]㊂与文献报道相一致,本研究发现低氧会导致斑马鱼心率发生复杂的变化,其确切的变化取决于发育阶段,并且在较小的程度上取决于饲养温度[25]㊂同时,以往文献显示,低氧导致斑马鱼胚胎出现一定程度的心包水肿,伴有卵黄囊水肿,胚胎血管系统发育不良,血液流速变缓[26-28]㊂我们的研究结果再一次证实了这一结果,心包水肿影响血液循环㊁心率,并很可能对血细胞生成有一定影响㊂低氧不仅影响斑马鱼胚胎的形态和心脏功能,造血分化和红细胞生成也受到了影响㊂斑马鱼是研究胚胎红细胞生成的理想系统[29]㊂红细胞的产生在许多水平上受到调节,包括基因表达的控制,环境条件的改变㊂本研究结果显示胚胎发育早期低氧对红细胞产生和成熟具有抑制作用㊂这可能是由于在胚胎发育的早期,低氧下卵黄囊前部和上部的血供不足引起的细胞凋亡,但在发育后期斑马鱼胚胎出现低氧耐受,凋亡模式发生改变,细胞凋亡数量减少㊂为了揭示低氧对红细胞生成过程中基因表达可能存在的调控机制,我们检测了一些重要的造血相关基因㊂有研究表明斑马鱼胚胎发育后期,12hpf胚胎血红蛋白的表达水平开始增加,并在孵化前后达到高峰,且胚胎血红蛋白基因水平一直保持在高水平,直到成年[30]㊂本实验的初步结果表明,常氧下12hpf,红系特异性造血因子Globin开始表达,随着发育时间的增加其表达强度逐渐增加,这与已有的研究报道结果是一致的;但是低氧下Globin的表达水平降低,及HiF1α的表达水平升高,提示在斑马鱼胚胎发育早期,低氧确实影响基因表达,但其分子机制尚不清楚㊂据报道,低氧可以通过调节斑马鱼胚胎的HIF通路,影响斑马鱼胚胎造血干细胞的产生和造血末期红细胞的终末分化[31-33]㊂综上所述,低氧延缓了斑马鱼胚胎的发育,抑制了红细胞的产生和成熟㊂我们的结果加深了人们对低氧诱导脊椎动物产生影响的认识,同时也提供了低氧对斑马鱼胚胎发育和红细胞生成的最新认识㊂由于斑马鱼相对于小鼠模型具有许多优势,斑马鱼疾病模型的进一步发展将加速我们对疾病各种病理㊁生理过程的了解㊂随着斑马鱼疾病模型的可用性和日益增加的多样性,该动物系统将为疾病诊断,有效治疗和预后提供强大的基础㊂在高海拔地区,低氧与中风或癌症等疾病相关[34]㊂所以此项研究在一定程度上为探索临床上低氧性疾病提供了新的认识和见解,但低氧究竟如何影响斑马鱼的胚胎发育和造血分化,还有待进一步研究㊂参㊀考㊀文㊀献(References)[1]㊀王小琦,孙岩,张洋,等.斑马鱼模型在常见骨疾病研究中的应用[J].中国比较医学杂志,2017,27(6):86-91.Wang 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模式动物发育生物学实验报告——斑马鱼胚发育背轴节调节因子
山东大学模式动物发育生物学实验报告
斑马鱼体节发育调节因子对胚胎发育的影响
姜政 2012/10/4 实验目的:
练习用显微注射法向斑马鱼受精卵中注射体节发育调节因子的mRNA,观察两种体节调节因子过表达作 用下斑马鱼胚胎发育的形态特点和规律,了解两种调节因子作用于斑马鱼体节发育的机理。 实验方法:
3
Antivin(Lefty)是TGF-β(Transforming Growth Factor-β)超家族中的一个子家族,Antivin的过表达会阻 碍斑马鱼头部和躯干中胚层的发育。Activin的表达与体节调节过程并存,主要作用是减弱原肠期体节信号通 路,是体节调节通路中Cyc和Sqt的拮抗剂,因此Antivin与Sqt等组成了原肠期体节发生的正、负反馈调节因子。 Antivin过表达使斑马鱼体节调节控件Cyc、Sqt作用降低,反过来,Antivin的影响也可以被Cyc和Sqt的过表达 消除。体节分化过程中反馈调节的大致过程是:上游的调节因子启动Sqt、Cyc等的表达,并形成正反馈循环, 同时起始Antivin在中胚层的表达形成体节调节的负反馈循环(图3,右)。Antivin作为拮抗剂可能的机理是阻 断了体节调节受体与Sqt等配体的结合,使受体无法被激活[7]。通常,Antivin过表达的胚胎仅仅由前脑和眼 睛构成[6],而实验观察发现,多数胚胎最终并没有发育出完整的眼睛,而且Nodal通路的受阻也彻底破坏了 胚胎的血液循环系统(图2)。在胚胎发育的体节期晚期,Lefty家族蛋白(Lefty1、Lefty2等)分别在胚胎左 侧的中脑和基板不对称表达,这显示了Lefty家族蛋白在胚胎左右轴决定(图4)中的作用[8]。
体节信号通路(Nodal Signaling)是斑马鱼中内胚层分化的最初步骤。Squint(Sqt)是一种在中胚层形成 和分化过程中与体节调节相关的生长因子[1]。通常,Sqt与其同系物cyclops(Cyc)共同在体节通路上发挥作 用(图3,左)。Cyc和Sqt都在囊胚期末期的中内胚层胚盘边缘处表达,其中Sqt在卵黄合胞体层(YSL)表达, 两者都是中胚层分化的诱导信号。Cyc和Sqt的同时缺失会导致原肠期中胚层的退化并进一步导致大部分中胚 层和内胚层的缺失,表现为头部、躯干缺失以及胚环不能形成[2, 3, 4]。
斑马鱼模型以及其在遗传学实验研究中的应用
斑马鱼模型以及其在遗传学实验研究中的应用斑马鱼(Danio rerio)是一种小型热带淡水鱼类,广泛应用于生物医学研究领域。
它的快速发育、高繁殖能力和透明胚胎等特点,使得斑马鱼成为研究人类疾病和遗传学的理想模型生物。
在遗传学实验研究中,斑马鱼被广泛用于探索基因功能、疾病模拟、药物筛选、发育生物学等诸多方面。
斑马鱼模型的优势主要体现在以下几个方面。
首先,斑马鱼的特征使其成为遗传学研究的理想模型。
斑马鱼的基因组在许多方面与人类的基因组高度保守,大约70%的人类基因具有斑马鱼的同源基因。
这意味着,通过研究斑马鱼的基因功能,我们可以更好地理解人类基因以及与之相关的疾病。
其次,斑马鱼的胚胎发育速度极快。
斑马鱼的胚胎在受精后仅需24小时便可以孵化。
另外,斑马鱼胚胎的发育过程可以在显微镜下清晰可见,这意味着我们可以轻松观察到发育过程中的变化,并进行更加精确的实验观察。
此外,斑马鱼的胚胎透明,这一特点使得研究人员能够直接观察到内脏器官和神经系统的发育。
通过应用各类荧光探针或特定标记物,我们可以在斑马鱼胚胎中对特定基因或基因产物进行定位和可视化,从而更深入地研究其功能和作用机制。
斑马鱼模型在遗传学实验研究中有着广泛的应用。
首先,斑马鱼模型可以用于探索基因功能。
在遗传学研究中,研究人员可以使用各种基于遗传学、分子生物学和转基因技术的方法来扰乱或改变斑马鱼基因的功能,从而了解特定基因对发育和疾病的影响。
其次,斑马鱼模型可以用于疾病模拟。
斑马鱼的遗传相似性和发育过程相似性使其成为研究人类疾病的理想模型。
通过模拟人类遗传病或疾病相关基因突变,我们可以研究这些疾病的发病机制、生理学变化和潜在治疗策略。
此外,斑马鱼模型还可以用于药物筛选。
研究人员可以将药物添加到斑马鱼培养液或胚胎中,然后观察斑马鱼的发育、行为和生理特征,以评估药物的毒副作用和药效。
这种药物筛选方法可以加速药物开发和筛选过程。
最后,斑马鱼模型在发育生物学领域也有广泛应用。
斑马鱼的胚胎发育与影响因素
斑马鱼的胚胎发育与影响因素鲁东⼤学⽣命科学学院学院20 10 -20 11 学年第⼆学期学院______________ 专业_____________ 年级________ 班________ 学号_____________姓名______________密封线学⽣须将⽂字写在此线以下《发育⽣物学》课程论⽂课程号:2522080.关键词:斑马鱼;发育;葡萄糖;溶液浓度;温度;TCDD⼀、斑马鱼简介斑马鱼(zebra fish),⼜名蓝条鱼、花条鱼、斑马担尼鱼。
斑马鱼是⼀种常见的热带鱼。
斑马鱼体型纤细,成体长3-4cm,对⽔质要求不⾼。
孵出后约3个⽉达到性成熟,成熟鱼每隔⼏天可产卵⼀次。
卵⼦体外受精,体外发育,胚胎发育同步且速度快,胚体透明。
发育温度要求在25-31℃之间。
斑马鱼由于个体⼩,养殖花费少,能⼤规模繁育,且具许多优点,吸引了众多研究者的注意。
经过30多年的研究应⽤和系统发展,已有约20个斑马鱼品系,斑马鱼基因数据库⾥有相关斑马鱼的资料可供查询和下载,⽅便了研究。
斑马鱼的细胞标记技术、组织移植技术、突变技术、单倍体育种技术、转基因技术、基因活性抑制技术等已经成熟,且有数以千计的斑马鱼胚胎突变体,是研究胚胎发育分⼦机制的优良资源,有的还可做为⼈类疾病模型。
斑马鱼已经成为最受重视的脊椎动物发育⽣物学模式之⼀,在其它学科上的利⽤也显⽰很⼤的潜⼒.⼆、斑马鱼的发育过程1〕卵⼦的发⽣斑马鱼卵⼦发⽣过程中乱母细胞的发育是不同步的。
在卵⼦发⽣早期,核内许多⼩核仁开始富集,其数⽬在接下来的时期中可以达到1500个,他们分布在和的外围和靠近内部核膜。
斑马鱼卵⼦发⽣过程⼀般分为5个时期,即StageⅠ-Ⅴ;有时也将StageⅡ和Ⅲ作为⼀个时期将卵⼦发⽣分为4个时期。
各个时期的基本特征是:StageⅠ是原始滤泡⽣长阶段,乱母细胞没有卵黄,是⼀个有细胞质包围着升值滤泡的圆形球体。
其染⾊体去浓缩并出现灯刷装状表型,此时DNA⾼度延伸,形成⼀个具有典型形态学上的包含RNA和蛋⽩质的恻环。
斑马鱼在发育生物学中的研究进展
斑马鱼在发育生物学中的研究进展斑马鱼(Danio rerio)是一种常见的小型热带淡水鱼类,也是一种重要的生物模型,因为它们易于繁殖和维护,具有透明胚胎,容易观察和操纵发育过程的特点。
在过去的几十年里,许多生物学家使用斑马鱼进行发育生物学研究,探寻分子机制、细胞过程、组织发生、器官形成和行为等方面的问题。
本文将介绍斑马鱼在发育生物学中的研究进展及其应用。
1. 斑马鱼的发育过程斑马鱼的发育过程可分为四个主要阶段:受精、分裂、胚胎发育和幼鱼期。
受精后,卵细胞形成受精卵,随后通过有丝分裂发育成为多个细胞,其中包括前期胚胎、球胚和盘胚。
在这些早期阶段,斑马鱼的胚胎透明,发育过程可以通过显微镜直接观察。
在幼鱼期,斑马鱼游泳、摄食和生长,逐渐成为成年鱼。
2. 斑马鱼的发育成因对于斑马鱼的发育成因的研究可以通过突变体筛选、遗传分析、基因克隆等方法进行。
许多突变体显示了不同的发育缺陷,例如胃肠道畸形、神经系统缺陷、鳍/肢体畸形等。
通过对这些突变体的遗传分析和基因克隆,科学家发现了很多与斑马鱼发育相关的基因,如sonic hedgehog、hox等。
另外,近年来,利用CRISPR/Cas9基因编辑技术,科学家可以精确地改变斑马鱼基因组中的某些位点,以研究特定基因功能或疾病模型等方面的问题。
这种方法加速了斑马鱼发育生物学的研究和应用。
3. 斑马鱼的组织和器官形成斑马鱼的器官发生过程是发育生物学的热点研究之一。
在胚胎发育过程中,骨骼、肌肉、心脏、肝脏、胰腺等组织和器官的形成令人印象深刻。
例如,斑马鱼心脏的发育非常相似于人类的心脏发育过程。
斑马鱼心脏发育的详细解剖和功能特征使得我们可以更好地理解人类心脏疾病,包括先天性心脏缺陷和心肌病等。
在肌肉结构和功能方面,斑马鱼是一种适应游泳的生物模型。
它们的鱼体非常透明,我们可以观察和操纵它们的鱼肌和鱼晶体肌的发育和生理功能。
研究斑马鱼肌肉发育和运动调节机制有助于解决人类运动性疾病诊断和治疗的问题。
斑马鱼实验报告
斑马鱼胚胎发育实验报告斑马鱼(zebra fish),体长约4公分,具暗蓝与银色纵条纹,由于其基因与人类87%相似,因此广泛应用与生命科学的研究。
对水质要求不高,孵出后约3个月达到性成熟,成熟鱼每隔几天可产卵一次。
卵子体外受精,体外发育,胚胎发育同步且速度快,胚体透明。
发育温度要求在25-31℃之间。
斑马鱼的繁殖周期约7天左右,受精卵经2-3天可孵出仔鱼,一年可连续繁殖6-7次,而且产卵量高。
斑马鱼的胚胎发育分为7个阶段:1.合子期;2。
分裂期;3.囊胚期;4.原肠胚期;5.体节期;6.咽囊期;7.孵化期。
1.合子期:合子是一个包括卵黄和细胞质的半透明混合物,在动物极存在一个小的清晰的细胞质断层,即细胞泡的残余。
2.卵裂期:该时期的特点是细胞分裂间期短;细胞变小;不等裂。
斑马鱼的受精卵为端黄卵,卵裂局限于胚盘部分,为不完全卵裂。
斑马鱼受精后40分左右卵裂开始,平均约每隔15分卵裂一次。
3.囊胚期:从第八次卵裂开始,就进入囊胚期,与其他真骨鱼不同的是,斑马鱼的囊胚期不形成囊胚期腔,只在胚盘的下层细胞的一些小的细胞形成一些细胞外间隙;同时细胞分裂周期开始延长,标志着中胚囊转换开始。
4.原肠胚期:原肠作用是指囊胚细胞有规则的移动,在此时期斑马鱼的生殖层开始形成,斑马鱼的原肠运动主要为外包。
5.体节期:最显著的特征是近轴中胚层节律性分节形成体节。
此外,还有眼原基和耳原基开始出现:脑神经外胚层变厚;脊索细胞开始延展到胚胎尾部6.咽囊期:体轴从原来的弯曲变为伸直;鳍条开始发育7.孵化期:完成基本器官系统的快速形态发生。
以下是对各时期鱼卵的观察记录:左上和左下示未分裂情况合子期右下示1细胞时期示1细胞时期示64至1000细胞时期示。
斑马鱼在生物学研究中的应用
斑马鱼在生物学研究中的应用斑马鱼是一种小型的热带淡水鱼类,因其身体上黑白相间的斑纹被称为斑马鱼。
在近年来,由于斑马鱼的短生命周期、大量繁殖和易于处理的特点,使其成为了生物学研究中非常重要的模式动物。
在本文中,我们将会探讨斑马鱼在生物学研究中的应用。
一、胚胎发育研究胚胎发育研究一直是重要的生物学研究领域,该领域的研究主要是探究胚胎形态生成及内部生理学过程。
斑马鱼在胚胎发育研究中是一种非常有用的动物模型,其从受精卵发展到成鱼只需要3-4个月的时间,相比其他脊椎动物更加迅速。
事实上,斑马鱼的受精卵在5小时内即可发育成胚胎,并在约24小时后发育出心脏、神经系统和胰腺等重要器官。
如此快速的发育周期为研究人员提供了充足的时间进行研究,并使得斑马鱼在胚胎发育研究中成为了最具有活力和便捷操作的动物模型之一。
二、遗传学研究遗传学是研究遗传物质传递和变异规律的科学,也是当今生物学研究的重要领域。
在遗传学研究中,斑马鱼被广泛用于研究基因功能以及基因突变等。
斑马鱼虽然拥有大量不同的基因序列,但与人类基因相似度高达70%,这意味着斑马鱼和人类拥有许多相同的基因。
由于斑马鱼在发育早期就能够进行带标签的基因转移,而且护理要求比其他动物低,所以斑马鱼被广泛用于研究基因突变所产生的变异表型。
三、药物筛选药物筛选是一个非常庞大而且繁难的过程,以确保所开发的药物在体内能够很好的发挥其治疗功能。
斑马鱼在药物筛选中起到了重要的作用。
由于斑马鱼有很高的代谢活性和药代动力学,可以帮助人们更好地理解药物的代谢途径以及药物的毒性,而这些信息对药物的开发和安全性非常重要。
此外,斑马鱼对于各种化学物质的反应能力也非常高,因此能够对潜在毒性进行全面、高效、廉价的筛选。
这使得斑马鱼成为了药物筛选中非常重要的模式生物之一。
四、神经科学研究神经科学是研究神经系统结构和功能的学科,斑马鱼也被应用到神经科学研究中。
斑马鱼在神经系统结构方面非常相似于人类,可以通过神经细胞的透明度进行实时的观察。
斑马鱼遗传和发育生物学
斑马鱼遗传和发育生物学斑马鱼是一种常见的实验动物,在遗传和发育生物学研究中被广泛使用。
它们的透明胚胎和易于培养的特点使得科学家们可以轻松地观察胚胎发育过程并进行基因操作。
本文将介绍斑马鱼的遗传和发育生物学方面的研究进展。
一、斑马鱼基因组斑马鱼基因组已经被完整测序,包括四组染色体,共有约2.7亿个碱基对。
与人类基因组相比,斑马鱼有很多基因是双倍体,这使得它们成为研究基因功能和基因互作的理想实验动物。
另外,斑马鱼的基因序列也为研究同源基因在不同物种之间的保守性提供了便利。
在斑马鱼基因组中,有很多基因与人类疾病相关。
例如,斑马鱼中的缺氧诱导因子1α基因与心脏病相关。
通过研究这些基因,我们可以更好地理解这些疾病的发病机制和猝死风险等问题。
二、斑马鱼的发育过程斑马鱼的发育过程可以分为四个阶段:受精、卵裂、胚胎形态发生和器官发育。
斑马鱼的卵精细胞很大,并且在受精后会形成球形胚胎。
在接下来的几天里,胚胎会不断分裂,最终形成一个长约2毫米的斑马鱼幼虫。
斑马鱼的发育速度非常快,只需要两天就可以从受精卵变成成熟的斑马鱼。
这使得科学家们可以在短时间内观察多代斑马鱼的发育过程,从而更好地理解发育中的生物学问题,例如细胞分裂、组织形态、器官发育等。
三、斑马鱼的基因操作技术基因编辑技术是现代生命科学的核心工具之一。
通过基因编辑技术,科学家们可以精准地改变一个或多个基因,从而研究基因在发育和疾病中的功能。
斑马鱼是一个理想的基因编辑模型,因为它们的受精卵非常透明,可以轻松地将DNA和RNA注入卵细胞内,或通过转基因方法将外源基因导入受精卵。
目前,常用的斑马鱼基因编辑技术包括CRISPR/Cas9系统和锌指核酸技术。
这些技术已经成功地用于改变斑马鱼基因,包括使其发生突变、生成新的融合蛋白和标记蛋白等。
四、斑马鱼的疾病模型斑马鱼可以被用作人类疾病的研究模型,例如癌症、心脏病、神经疾病等。
斑马鱼和人类之间有很多相似之处,例如生命早期阶段的肌肉和神经系统的形成、免疫系统的发育等。
刘永飞--斑马鱼的胚胎发育
Three: Blastula Period (2.25-5.25h)
We use the term blastula to refer to the period when the blastodisc begins to look ball-like, at the 128-cell stage, or eighth zygotic cell cycle, and until the time of onset of gastrulation,ca. cycle 14.
斑马鱼的特点
• • • • • • 成年鱼个体小,易于饲养 发育快速、性成熟期短、繁殖力强 胚胎体外发育,易于观察和操作 较完善的胚胎和遗传学操作技术 基因组序列的注释已经完成 品系资源丰富
Stages of Embryonic Development of the Zebrafish
Seven Broad Zygote Cleavage Blastula Gastrula Segmentation Pharyngula Hatching
Stages During the Cleavage Period
Two-cell stage (0.75h) Four-cell stage (1 h) Eight-cell stage (1.25h) Sixteen-cell stage (1.5h) Thirty two-cell stage (1.75h) Sixty four-cell stage (2 h)
Stages During the Zygote Period
One-cell stage
The zygote period. A:a few minutes after fertilization. B:about 10 min after fertil-i zation.
斑马鱼的分子遗传学和发展生物学
斑马鱼的分子遗传学和发展生物学斑马鱼是一种广泛应用于生命科学研究的实验动物,其分子遗传学和发展生物学方面的研究也在近年来得到了越来越多的关注。
本文将就斑马鱼的分子遗传学和发展生物学展开探讨,并介绍一些与斑马鱼的遗传和发展相关的最新研究成果。
一、斑马鱼在分子遗传学研究中的应用斑马鱼的优良性状和易于养殖的特性使其成为一种广泛应用于遗传学研究的实验动物。
通过对斑马鱼的遗传变异进行研究,科学家们可以更好地理解遗传基因在生命过程中所起的作用,探究出疾病及先天性缺陷等相关的遗传机制。
斑马鱼的遗传学研究主要集中在以下几个方面:1. 遗传突变的筛选:通过人工诱导斑马鱼体内的遗传突变,科学家们可以发现和分离出突变体。
这些突变体可用于研究特定性状的遗传基础,例如生长、光感、发育等。
2. 基因敲除:科学家们可以利用基因敲除技术将目标基因在斑马鱼体内完全或部分剔除,观察这种变化对斑马鱼的发育和行为的影响。
这些敲除技术对生物医学领域的疾病基因的研究有着重要的作用。
3. 突变基因的研究:对突变基因的研究,不仅有助于探究突变基因对于斑马鱼的发育和特定性状的影响,也能为相关人类疾病的基因治疗提供理论依据。
二、斑马鱼在发展生物学研究中的应用斑马鱼发育速度快,上气道较为完善,幼体易于人工控制和操作,因此成为了发展生物学及遗传学研究中广泛应用的试验模型。
通过对斑马鱼的发育过程进行研究,我们可以更好地理解生命过程中的分子信号转导和细胞发育及分化的机制。
目前斑马鱼在发展生物学研究中主要应用于以下几个方面:1. 胚胎发育轨迹的研究:通过对斑马鱼的胚胎发育轨迹进行研究,科学家们可以更好地探究胚胎的发育过程,发现一些新的分子信号、基因调控等。
2. 器官发生和功能的研究:斑马鱼在发育初期各个器官的生长、发育过程十分显著,可供研究者更好地探究器官形态和功能发生的相关机制,比如对心血管系统、神经系统的研究。
3. 模式生物的病因学研究:通过对斑马鱼的转基因研究,科学家们可以发现这些基因对于发育和生殖的作用,还可以发掘相关基因和疾病之间的相关性。
温度对斑马鱼胚胎发育的影响
温度对斑马鱼胚胎发育的影响李忻林;董洪坪;王婷;黄四洲;蔡佩玲【摘要】目的探讨温度对斑马鱼胚胎发育速度及器官分化的影响.方法将带绿色荧光的转基因斑马鱼胚胎分配至3个培养皿中,各放160个胚胎,分别放置于28.5℃(标准发育温度)、31℃(高温)和25℃(低温)3个不同温度中进行孵育,孵育至3h、6h、10 h、24h和48 h时进行观察拍照,并在36 h、48 h和72 h时用荧光显微镜观察胚胎的心脏和血管,比较不同温度对胚胎发育进程及各器官发育的影响.结果3种温度下,胚胎存活率分别为92.5%、89.4%和91.25%,没有显著性差异.相同发育时间内,与标准温度中发育的胚胎相比,31℃中的胚胎发育较快,而25℃的胚胎发育所处的时期较早.发育到相同分期,31℃所需时间比标准温度短,而25℃所需时间长.3个不同温度下,胚胎心脏和血管的发育均不受影响.结论高温促进胚胎发育,低温延迟发育,但高温或低温均不影响胚胎器官正常发育.结合实际科研需要,可通过调控温度来调节斑马鱼胚胎的发育进程.【期刊名称】《四川动物》【年(卷),期】2014(033)006【总页数】7页(P829-835)【关键词】温度;斑马鱼;胚胎;发育【作者】李忻林;董洪坪;王婷;黄四洲;蔡佩玲【作者单位】成都大学医护学院,成都610106;成都医学院基础医学院,发育与再生四川省重点实验室,成都610500;成都医学院基础医学院,发育与再生四川省重点实验室,成都610500;成都大学医护学院,成都610106;成都医学院基础医学院,发育与再生四川省重点实验室,成都610500;成都大学医护学院,成都610106【正文语种】中文【中图分类】Q132.4斑马鱼(zebrafish, Danio rerio)有诸多优点,1)有近似人类的各种器官系统,如心血管系统、神经系统(Schmidt et al., 2013)等,适合研究胚胎及器官发育;2)体外受精且早期胚胎透明,利于观察发育中完整的形态变化;3)养殖设备简单且成本低;4)性成熟周期短,繁殖能力强,3~4个月即发育成熟,每周可交配一次,每次产卵100~300枚;5)易进行诱发突变及转基因操作来研究基因功能。
环境对斑马鱼胚胎发育的影响
环境对斑马鱼胚胎发育的干扰XXX,YYY,ZZZ一、实验目的及原理:1、通过斑马鱼早期发育过程的观察,巩固对硬骨鱼胚胎发生的认识。
2、通过设置环境因子(锌离子)来研究其对斑马鱼胚胎发育的影响程度。
3、通过对比对照组和实验组,进一步巩固对硬骨鱼胚胎发育模式的认识。
4、锻炼独立开展科学实验、分析和解决实际问题的能力。
5、加深环境对动物受精及早期发育影响的理解。
二、实验材料与方法:1、实验材料:所需胚胎:发育良好的、健康的斑马鱼胚胎(原肠胚早期)36枚。
试剂:硫酸锌(分析纯),器材:培养容器12孔板,恒温培养箱,显微镜,解剖镜,载玻片,塑料滴管,手表,移液枪100uL、1000uL,量筒100mL*2。
2、实验方法:(1)在本实验中,使用硫酸锌作为实验用环境因子,共设三个梯度,分别为:0,0.1mg/L,1mg/L。
每个梯度设4个平行组,每个平行组3个胚胎,共需36个胚胎。
(2)实验处理起始时间:原肠胚早期:实验处理终止时间:孵化期。
(3)实验操作:A.挑选胚胎:由于斑马鱼卵受精及发育的不均匀性,要对斑马鱼卵进行挑选。
挑选时要挑透明、无白色斑点、卵膜完整的。
之后的实验中还要不断将败育卵挑出。
用滴管(塑料滴管口部要剪短且一定要圆滑,并且直径要大于卵径)将选择好的卵依次吸出,然后放入12孔板中进行孵化。
【注意剔除异物眼观有白色小斑点、畸形异常卵。
】B.实验体系:12孔板培养胚胎,每孔放入3个胚胎,共使用12个孔,36个胚胎。
12个孔分别标上A1~A4,B1~B4,C1~C4。
A1~A4组作为对照组的三个平行组,B1~B4作为0.1mg/L组的三个平行组,C1~C4作为1mg/L组的三个平行组。
C.实验期间的培养管理:1.孵化用水:孵化水温一般要25~28℃,在这个温度范围内,温度越低,孵化所需时间相应越长。
水温25℃时,受精卵经48~72h孵出仔鱼,水温28℃时,经36h孵出仔鱼。
水温太高或太低,会造成受精卵死亡。
斑马鱼实验报告
斑马鱼实验报告
斑马鱼实验预习报告
一、实验目的
1、介绍斑马鱼形态结构特点
2、掌握斑马鱼的分类地位
3、掌控斑马鱼胚胎发育过程并探究其胚胎发育的影响因素
二、实验内容
1、斑马鱼的外部形态观测
2、写下斑马鱼的分类地位
3、设计实验探究斑马鱼胚胎发育的影响因素
三、实验操作方式
1、观察斑马鱼的形态
斑马鱼(zebrafish),又名蓝条鱼、花掉条鱼、斑马担尼鱼(brachydaniorerio),原产于印度、孟加拉国。
斑马鱼(b.rerio),就是淡水水族箱观赏鱼,原产於亚洲,体长约4公分(1.5),具暗绿与银色纵条纹。
体长4~6厘米。
体呈纺锤形。
背部橄榄色,体侧从鳃盖后直伸到尾未有数条银蓝色纵纹,臀鳍部也有与体色相似的纵纹,尾鳍长而呈叉形。
雄鱼柠檬色纵纹;雌鱼的蓝色纵纹加银灰色纵纹。
2、斑马鱼的分类地位
动物界
脊索动物门脊椎动物亚门
硬骨鱼纲
辐鳍亚纲真骨鱼总目
斑马鱼鲤科
长担风险尼鱼属于3、设计实验
斑马鱼的胚胎发育经过受精卵、卵裂、囊胚、原肠胚、神经胚、胚层分化及出膜几个时期。
实验悖论:影响斑马鱼胚胎发育的因素存有水温、营养成分、氧气等实验方法:控制变量法(探究其他条件相同时,相同温度对斑马鱼胚胎发育的影响)
培养液编号水温/摄氏度发育速度。
斑马鱼在发育生物学中的应用
斑马鱼在发育生物学中的应用作为一种小型、容易繁殖和生命周期短的鱼类,斑马鱼越来越被广泛应用于不同领域的研究中,尤其是在发育生物学中的应用越来越受到重视。
本文将从斑马鱼的发育特点、基因篡改技术以及在生物医学和药物研究中的应用等方面进行探讨。
一、斑马鱼的发育特点斑马鱼在人类疾病模型建立、药物筛选等研究中被广泛使用,其主要原因是该种鱼对外界环境的敏感性高,且其胚胎发育过程与人类相似。
斑马鱼的生长速度较快,从受精卵到成年仅需3个月左右。
同时,斑马鱼的生殖能力也很强,每对成年斑马鱼每天能产生1000个卵子以上。
这使得研究人员在斑马鱼身上进行大量实验成为可能。
此外,斑马鱼也具有一些特殊的发育特点,如胚胎的透明度和快速发育过程,使得观察其发育过程更加容易。
此外,在分子生物学技术方面,斑马鱼的基因组已经被完整测序,且其基因组大小与人类相似,这意味着斑马鱼可以作为人类基因的模型研究。
二、基因篡改技术在斑马鱼的研究中,基因篡改技术是一项必不可少的技术,这些技术能够使研究人员将特定的基因进行特定的修改,从而调控其在斑马鱼生长发育过程中的表达。
基因转录研究中,两个特定的基因一旦发生拼接错误,往往会导致人类疾病的发生。
通过基因篡改技术可以模拟这些基因的突变,并进一步了解其发育过程的细节。
同时,基因篡改技术也能够将人类基因表达到斑马鱼体内,使得斑马鱼成为人类基因表达的一个模型。
目前,有两种主要的基因篡改技术被广泛使用。
一种技术是利用ZOETI 或CRISPR-Cas9系统进行基因修饰,另一种则是通过转基因鱼、或者利用微注射等技术来实现基因篡改。
三、斑马鱼在生物医学和药物研究中的应用1. 斑马鱼在药物研究中的应用斑马鱼在药物研究中可以扮演重要角色。
其快速发育和繁殖的特点,使得微观变化较容易观察,更重要的是,斑马鱼的发育过程在各方面与人体极其相似,因此用斑马鱼进行动物实验相对于小鼠等动物而言更加便捷。
例如,研究者可以利用斑马鱼从多个维度验证某一特定类药物的有效性和安全性。
全氟磺酸对斑马鱼胚胎发育及成鱼的毒性效应研究
全氟磺酸对斑马鱼胚胎发育及成鱼的毒性效应研究一、简述全氟磺酸(Perfluorooctanoic acid,PFOA)是一种广泛存在于环境中的非离子型全氟化合物,主要来源于工业生产过程中的冷却水、溶剂和塑料等。
自20世纪90年代以来,PFOA在水中的浓度逐渐增加,对生态系统产生了潜在的环境风险。
近年来关于PFOA对人体健康的影响也引起了广泛关注。
斑马鱼作为一种常用的实验动物模型,其胚胎发育及成鱼毒性效应研究具有重要意义。
本文旨在探讨全氟磺酸对斑马鱼胚胎发育及成鱼的毒性效应,首先通过体外实验研究了不同浓度的PFOA对斑马鱼胚胎发育的影响。
结果表明随着PFOA浓度的升高,胚胎发育受到明显抑制,表现为细胞数量减少、畸形率增加等现象。
此外还发现PFOA能够干扰胚胎发育过程中的信号传导途径,如影响钙离子信号通路、蛋白激酶C通路等,进一步影响胚胎形态的正常发育。
其次本文考察了PFOA对斑马鱼成鱼生长和生殖功能的影响。
结果显示高浓度PFOA处理组的大鼠出现生长迟缓、性腺发育异常等现象。
这些毒性效应可能与PFOA干扰神经内分泌系统的正常功能有关。
此外还发现PFOA能够诱导斑马鱼肝脏中一些关键酶的活性降低,影响脂肪代谢和抗氧化能力。
全氟磺酸对斑马鱼胚胎发育及成鱼存在明显的毒性效应,这些研究结果为揭示PFOA环境暴露对人体健康的潜在危害提供了重要依据。
然而目前关于PFOA毒性的研究尚处于初步阶段,仍需进一步深入研究以全面了解其对人体健康的影响机制。
1.1 研究背景和意义全氟磺酸(PFOS)是一种广泛使用的有机污染物,主要来源于工业生产过程中的氟化物排放、农业施用过程中的氟化物渗入以及家庭清洁剂等产品的使用。
由于其生物积累性和难以降解性,全氟磺酸已经对全球生态环境和人类健康产生了严重影响。
在鱼类中全氟磺酸被认为是一种潜在的内分泌干扰物,可能对人体健康造成潜在风险。
斑马鱼作为一种常见的实验动物模型,具有繁殖周期短、胚胎发育透明、基因组简单等特点,因此被广泛应用于环境毒理学研究。
hand2基因对斑马鱼胚胎发育影响的实验研究
(Dea t e t fC r ilg C i rn S s i l Fu a nvri S a g a 0 0 2 C ia p rm n o a doo y, hl e ’ Hopt , d nU ies y, h n h i 0 3 , hn ; d a t 2 Ke a oaoyo lclr dc e M ii r fE uainDea m n f Moeua yL br t fMoeua ii , ns yo d ct - p r e t l lr r M ̄ n t o t o c
h n 2 e p e so n b e v h b o ma h n t p s i d c d b n 2 n c - o . Th r s n a d x r s in a d o s r e t e a n r lp e o y e n u e y ha d k o k d wn e pe e t su y i x e td t r vd h l ef rt ef n t na t d nh n 2. M eh d W ho emo n ns— t d se p c e O p o i et ecu o h u c i lsu y o a d o to s l- u ti i t y rd z to sp ro me O d t c h x r s i n p te n o a c u h b iia in wa e f r d t ee tt ee p e so a t r fh n l 2.Z b aih f ri z d e gswe e e r fs e tl e g r i
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鲁东大学生命科学学院学院20 10 -20 11 学年第二学期学院______________ 专业_____________ 年级________ 班________ 学号_____________姓名______________密封线 学生须将文字写在此线以下《发育生物学》课程论文课程号:2522080.关键词:斑马鱼;发育;葡萄糖;溶液浓度;温度;TCDD一、斑马鱼简介斑马鱼(zebra fish),又名蓝条鱼、花条鱼、斑马担尼鱼。
斑马鱼是一种常见的热带鱼。
斑马鱼体型纤细,成体长3-4cm,对水质要求不高。
孵出后约3个月达到性成熟,成熟鱼每隔几天可产卵一次。
卵子体外受精,体外发育,胚胎发育同步且速度快,胚体透明。
发育温度要求在25-31℃之间。
斑马鱼由于个体小,养殖花费少,能大规模繁育,且具许多优点,吸引了众多研究者的注意。
经过30多年的研究应用和系统发展,已有约20个斑马鱼品系,斑马鱼基因数据库里有相关 斑马鱼的资料可供查询和下载,方便了研究。
斑马鱼的细胞标记技术、组织移植技术、突变技术、单倍体育种技术、转基因技术、基因活性抑制技术等已经成熟,且有数以千计的斑马鱼胚胎突变体,是研究胚胎发育分子机制的优良资源,有的还可做为人类疾病模型。
斑马鱼已经成为最受重视的脊椎动物发育生物学模式之一,在其它学科上的利用也显示很大的潜力.二、斑马鱼的发育过程1〕卵子的发生斑马鱼卵子发生过程中乱母细胞的发育是不同步的。
在卵子发生早期,核内许多小核仁开始富集,其数目在接下来的时期中可以达到1500个,他们分布在和的外围和靠近内部核膜。
斑马鱼卵子发生过程一般分为5个时期,即StageⅠ-Ⅴ;有时也将StageⅡ和Ⅲ作为一个时期将卵子发生分为4个时期。
各个时期的基本特征是:StageⅠ是原始滤泡生长阶段,乱母细胞没有卵黄,是一个有细胞质包围着升值滤泡的圆形球体。
其染色体去浓缩并出现灯刷装状表型,此时DNA高度延伸,形成一个具有典型形态学上的包含RNA和蛋白质的恻环。
染色体的这一构型被认为有利于母源性基因的转录激活,其出现与斑马鱼卵母细胞中RNA合成的高速率是一致的。
在这时期,卵母细胞和滤泡细胞的微小突起(microvilli)开始伸展并延伸到彼此的区域。
一旦形成,这些连接包含粘附连接、细胞桥粒和间隙连接,它们可能与滤泡细胞和卵母细胞间的交流和卵母细胞附近小分子的吸收有关。
同时,卵黄膜组分开始在滤泡细胞和卵母细胞之间富集;其他结构,如线粒体、高尔基体和内质网等富集,反映了产生大量产物的需要。
StageⅡ卵母细胞的特点是富集了大量蛋白质和油脂,对于卵子激活和胚胎发育很重要。
皮层小跑时期的标志是皮层小泡(包含有蛋白质和糖类的滤泡)的出现,推测可能由卵母细胞本身产生。
这些结构在卵母细胞皮层逐渐富集,最后在卵子激活之前通过保外分泌释放出来。
StageⅢ即卵黄生成期的卵母细胞,卵黄前体蛋白和油脂继续富集。
卵黄蛋白的主要组分,卵黄蛋白原,由肝脏产生后通过卵母细胞的内吞作用获得,然后进行蛋白水解分离,最后保存在卵母细胞中,在这里将成为发育中的胚胎必须的营养补充。
卵母细胞的生长结束于StageⅣ即将成熟,其特征是卵母细胞核或GV迁移到未来动物极、核膜最后破裂以及第二次减数分裂中期的减数分裂阻滞。
成熟的卵母细胞被排除并运送到输卵管,成为能够受惊的StageⅤ卵母细胞。
2〕精子的发生精子的发生开始于雄性生殖干细胞即精原细胞的有丝分裂,雄性中的精原细胞的有丝分裂在成年后的生命过程中是持续发生的,因而能够不断产生大量的精细胞。
斑马鱼中同一个精小叶中,精子发生是同步的,因此一个精小叶中仅仅包含精原细胞或精母细胞或精子细胞。
随着精子细胞的成熟,精小叶相连的组织边缘破裂,形成大面积的与输精管相连的成熟精子。
3)斑马鱼的受精作用受精时两性生殖细胞融合并创造出具备源自双亲遗传潜能的新个体的过程。
受惊的第一个功能是将父母的基因传递给后代,第二个功能是在卵细胞质中激发一些确保发育正常进展的系列反应。
斑马鱼的成熟卵子处于第二次减数分裂中期,精子通过受精孔进入卵内,精子入卵后,卵子被激活。
受精后,斑马鱼卵子发生了以下几个变化:(1) 卵膜膨胀举起并远离卵子;(2) 分泌皮层颗粒,受精圆锥体形成并作为精子进入卵子的结构;(3) 细胞质开始流向动物极,起始核质分离,之一过程在早期卵裂中继续进行。
4)斑马鱼的胚胎发育胚胎发育是从一个单细胞受精卵开始,到最终具有数以万计的细胞分化并分化为神经、运动、消化、排泄、生殖、内分泌等多个系统的能行使复杂功能的完整生物体。
在这个漫长的胚胎发育过程中,有两各方面至关重要。
一方面是通过细胞周期完成从一个单细胞受精卵到多细胞成体的过程;另一方面是通过细胞分化过程中完成多种不同功能的器官和系统形成。
这两个方面对于同一个细胞来说是相互竞争的,一个细胞一旦分化,它的分裂能力将大大降低;这两个方面在胚胎发育过程中又是相互对话、相互偶联并受到严格调控的,如果这两方面相互对话的途径受到影响,就会刀子一些早期遗传疾病的发生甚至胚胎死亡。
斑马鱼的胚胎发育可分为7个阶段,分别是:(1)合子期;(2)分裂期;(3)囊胚期;(4)原肠胚期;(5)体节期;(6)咽囊期;(7)孵化期。
1) 合子期合子是一个包含卵黄和细胞质的半透明混合物,在动物极存在一个小的清晰的细胞质断层,即生殖泡的残余。
2) 卵裂期卵裂类型包括经线lie和纬线裂,该时期的特点为细胞分裂间期短;细胞变小;转录不活跃;不等裂等。
斑马鱼的受精卵为端黄卵,卵裂局限于胚盘部分,其卵裂方式为不完全卵裂。
斑马鱼受精后40分左右卵裂开始,平均大约每隔15分卵裂一次。
钱5次卵裂均为经裂,产生单细胞层。
从第6次卵裂开始,经裂与纬裂交替进行。
在第12次分裂之前,不同细胞的分裂是同步的。
3) 囊胚期从第八次卵裂开始,就进入囊胚期形成盘状卵裂。
与其他真骨鱼类不同的是,斑马鱼的囊胚期不形成囊胚腔,只在胚盘的下层细胞中形成一些小的细胞外间隙;同时,细胞分裂周期开始延长,这标志着中胚囊转换开始4) 原肠期原肠作用指囊胚细胞有规则的移动,是未来的内胚层的和中胚层细胞潜入胚胎内部而未来的外胚层细胞铺展在胚胎的便面从而形成原肠胚。
在原肠胚时期,斑马鱼的生殖层开始形成。
斑马鱼的原肠运动主要包括外包‘内卷和汇聚伸展。
外包始于囊胚期末,1\2外包标志着原肠期的开始期。
5) 体节期体节期发育完成时,胚胎包括8000-10000个细胞。
最显著的特征是近轴中胚层节律性分节从而形成体节。
此外,还具有许多特性:眼原基和耳原基开始出现;闹神经外胚层变厚;脊索细胞开始扩展并延伸到胚胎尾部;随着肌膈膜的形成,体节呈现出交叉缝式。
6) 咽囊期咽囊期体轴从早期的弯曲变为伸直;循环、色素细胞开始分化,同时鰭条开始发育。
7) 孵化期孵化期胚胎与以前具有相同的生长速率,完成了基本器官系统的快速形态发生;脑和胸鳍的了软骨发育;表现出孵化不同步性;在72hpf,鱼鳔膨胀;开始觅食,具有主动避敌行为。
三、斑马鱼发育的影响因素1〕葡萄糖溶液浓度聊城大学农学院的李俊霞等人通过用不同浓度的葡萄糖溶液处理孵育48h后的胚胎后发现:1.5%、2.0%葡萄糖处理与对照组之间的水平差异在0.05水平显著,其余组与对照组无显著差异。
孵育60h 后,浓度1%~2%葡萄糖溶液中大部分胚胎已经孵化,与对照组相比,差异达0.01显著水平。
这说明浓度1%~2%葡萄糖或蔗糖可以大大促进斑马鱼胚胎发育的速度。
孵育72h后,对照组中只有不到1\3的胚胎幅画,而在加有葡萄糖的溶液中,孵化率均超过85%,几乎都在90%以上,接近100%。
由此可知,葡萄糖对斑马鱼胚胎发育有明显的促进作用。
2〕TCDDt etrachlorodibenzo-p-dioxin四氯二苯并-p-二恶英( 除草剂中一种剧毒的杂质) TCDD氯化氧撑萘类化合物也是一类重要的除草剂,其中最重要的化合物是四氯二苯-p-二恶英(Tetrachlorodibenzo-p-dioxin TCDD).TCDD有22种不同的异构体,在环境中通常以混合物形式出现.TCDD的化学性质相当稳定,在超过700℃的温度下才发生化学分解.TCDD具有亲脂性,与土壤中的固体及其他物质紧密结合.致死性 董武、魏强等报道24hpf (受精后24h)染毒至180hpf,摄食对照群,0.1μg/L,0.3μg/L,0.5μg/L,1μg/L,10μg/L 染毒群的死亡率分别是0,0,5%,60.2%,61.8%,100%。
10μg/L 染毒群在144 hpf 已全部死亡。
这种试验条件下180 hpf的LC50约为0.3~0.5μg/L。
Henry等测定240hpf的LC50为2.5ng TCDD/g egg。
下颌发育短小 斑马鱼下颌发育短小已成为TCDD引起的典型毒性之一[10~14]。
24hpf开始对斑马鱼胚胎持续静态染毒至观察结束,1ppb染毒群在60hpf引发下颌生长的显著(P<0.05)抑制,且作用强度与TCDD浓度正相关的[10]。
对下颌与身长的比值进行研究,证明TCDD的对下颌的抑制作用是特异的,不是继发于对胚胎发育的抑制。
软骨染色观察显示TCDD能显著抑制头部软骨的生长,特别是Meckel’s 软骨,但并不影响软骨的形成。
为了确定TCDD对胚胎的作用时间,分别在0,12,24,36,48,60,72,84hpf开始染毒,96hpf观察对下颌发育的影响。
0~24hpf染毒对下颌抑制的程度无明显区别,随后24~84hpf染毒对下颌的抑制作用逐渐降低。
可见于24hpf完成的神经嵴细胞的分化过程[15]不是TCDD产生下颌短小毒性的关键时期(critical period)。
神经系统 Adrian等发现TCDD(2hpf)染毒可减小胚胎脑容量,且相同身长的鱼,脑容量的减小程度随TCDD浓度增加而加剧。
各组内胚胎脑容量与身体大小线性相关(r2 values:丙酮对照组=0.7014, 100ppt 染毒组=0.6336, 120ppt 染毒组=0.6364)。
测定神经元密度后与脑容量相乘,进而分析神经元总量的变化。
100,120ppt染毒组168hpf表现出神经元显著的缺失。
眼部杆锥层和脑部(松果体,midbrain-hindbrain boundary,端脑,间脑)的解剖学检查表明TCDD染毒对神经系统的结构发育没有影响心脏 受精后斑马鱼胚胎静态染毒TCDD 1h,显示出对心脏的一系列毒性:48hpf心肌细胞的数量的减少,随后出现心脏成环(altered looping)和形态学改变,72hpf心脏容量全面缩小。
这些变化伴随着心脏功能的损伤,120hpf血液倒流和心输出量减少多发,最终出现心室停顿血液循环 受精后立即接触TCDD的斑马鱼胚胎全胚循环(overallc irculation)48hpf出现[7,9],接下来的两天血流速度下降,直到96hpf血流停止[7~9],伴随多血管红细胞灌注率的减少。