《机能实验学》临床,呼吸
南华大学医学院机能实验学课件-呼吸运动的调节.
2.中枢化学感受器
适宜刺激：对H+高度敏
感，不感受缺O2的刺 激。因血液中H+不易 透过血-脑屏障，乃通 过CO2易透过血-脑屏 障进入脑脊液:CO2＋ H2O→H2CO3→H+＋ HCO3- 发挥刺激作用
南华大学医学院机能学实验中心
3. CO2、H+和低O2对呼吸运动的调节
南华大学医学院机能学实验中心
(2)[H+]:
[H+]↑→呼吸加强
[H+]↓→呼吸抑制
[H+]↑↑→呼吸抑制
南华大学医学院机能学实验中心
机制:类似CO2 特点:
①主要通过刺激外周化学感受器而引起的
②[H+]↑对呼吸的调节作用＜PCO2↑
③∵[H+]↑↑→呼吸↑→CO2排出过多
→PCO2↓→限制了对呼吸的加强作用→呼吸抑制 甚至停止。
CO2＋H2O→H2CO3→H+＋HCO3-
中枢化学感受器+ 延髓呼吸中枢+ 呼吸加深加快
外周化学感受器+
南华大学医学院机能学实验中心
特点：
① CO2 兴奋呼吸的作用 , 以中枢途径为主； 但因脑脊液中碳酸酐酶含量很少，故潜伏期 较长； ② CO2 兴奋呼吸的中枢途径是通过 H+ 的间 接作用(∵血液中的H+不易透过血-脑屏障)； ③ CO2兴奋呼吸的外周途径虽然为次，但 当动脉血 PCO2突然增高或中枢化学感受器对 CO2的敏感性降低（CO2 麻醉）时，起着重要 作用。
南华大学医学院机能学实验中心
【观察指标】
呼吸频率、幅度 血气指标：动脉血氧分压(PaO2)、动脉二氧化碳分压 (PaCO2)、动脉血pH
《机能实验学》课件
医学教育
机能实验学在医学教育中 扮演重要角色，帮助学生 更好地理解人体生理和病 理过程。
生物学领域的应用
生物科学研究
在生物学研究中，机能实验学可 用于研究生物体的生理和行为过
程。
生态学研究
通过实验方法研究生态系统中的生 物相互作用和环境因素对生物的影 响。
生物技术应用
在生物技术领域，机能实验学可用 于研究和开发新的生物技术和产品 。
药理实验
测试药物对机体的作用效果，评估药物的疗效和安全性。
生物学机能实验案例
总结词
动物生理实验
生物学机能实验案例主要涉及动物生理、 神经生理和免疫等方面的实验，旨在探究 生物体内各系统的功能和相互调节机制。
通过观察动物正常生理反应，了解动物各 系统的生理功能和相互调节机制。
பைடு நூலகம்
神经生理实验
免疫实验
研究神经系统的功能和信息传递机制，探 究神经元和神经网络的相互作用。
农业领域的应用
作物生理研究
通过实验方法研究作物生长、发育和产量形成的生理机制。
农业环境保护
通过实验方法研究农业环境对作物生长和产量的影响，提出相应的 环境保护措施。
农业教育
机能实验学在农业教育中也有应用，帮助学生更好地理解农业生产 和管理的原理和技术。
04
机能实验学的挑战与 前景
机能实验学面临的挑战
实验数据的处理和分析
机能实验学产生的数据量大且复杂，如何进行有效的数据 处理和分析，提取出有价值的信息，是该领域面临的另一 个挑战。
机能实验学的发展前景
替代实验动物的研究
随着科技的发展，寻找替代实验动物 的方法和技术成为研究热点，如利用 组织工程、干细胞技术、体外模型等 替代传统动物实验。
机能实验学 呼吸衰竭与复苏
材料与方法
实验结果记录
窒息前 第一次夹闭 第二次夹闭
血压 (mmHg)
呼吸 (次/分)
心率 (次/分)
材料与方法
注意事项
麻醉适度，防止动物在窒息时剧烈挣扎导致动脉 插管脱出而发生大出血。
呼吸衰竭早期，一定程度的缺氧和二氧化碳潴
留，可兴奋交感神经和心血管运动中枢，促使心 率加快，心肌收缩力加强，外周血管收缩以致血 压升高。同时，通过体内血流重新分配，保证了 心脑血液供应，这对急性呼吸衰竭有一定的代偿 意义。但严重的缺氧和二氧化碳潴留，可直接抑 制和损害心血管运动中枢，使心率减慢，心肌收 缩力下降，并直接损害心肌；同时，由于二氧化 碳浓度升高直接扩张血管，可导致血压下降。
掌握抢救时机：第一次窒息，当动物胸腹呼吸都 停止2～3分钟时即开始复苏；第二次当动物胸 腹呼吸都停止、血压下降、心跳减弱或听不到心 音即开始抢救。
讨论
试分析气管夹闭后呼吸、血压变化 的机理及意义。
呼吸衰竭时呼吸系统的变化是最先出现的症状
，主要变现为呼吸频率和节律的改变。动脉血氧 分压降低作用于颈动脉体和主动脉体外周化学感 受器，当动脉血氧分压低于60mmHg时，反射性 引起呼吸加深加快；当动脉血氧分压低于 30mmHg时，则直接抑制呼吸中枢，这种作用大 于反射性兴奋而使呼吸抑制。
手术
称重、麻醉、固定、备皮 切开皮肤、分离皮下组织 分离气管、左侧颈总动脉 气管插管，颈总动脉插管 观察血压、心率及呼吸频率、幅度
材料与方法
复制窒息模型及复苏
夹闭气管套管3~5分钟---胸式、腹式呼吸都 停止2~3分钟（血压降约至正常2/3）---松 开一侧---呼吸气囊行人工呼吸
《机能学实验》实验教学大纲(临床等)
《机能学实验》实验教学大纲（供五年制本科临床医学、麻醉学等专业使用）Ⅰ前言机能实验学是以生理学、病理生理学、药理学为基础，通过对三学科实验教学的优化、融合、重组形成的一门独立的综合性实践课，是以动物实验和人体功能观察为手段，探讨人体机能活动规律及其在疾病状态或药物干预下的变化规律及其机制的综合性实验课程，是机能学教学的重要组成部分和重要的医学基础课程。
主要内容包括基本实验技能、基本的经典实验、综合性实验和设计性实验。
编写本大纲的目的是要求学生通过该课程的学习，掌握常用实验仪器的原理及使用方法；掌握常用实验动物的选择和局部手术操作；掌握常用实验溶液的配制方法：学会实验资料的收集、整理和数据处理；学会对实验结果的分析、整理和实验报告的正确书写，从而提高对功能学科知识的进一步理解，提高解决实际问题的综合能力、提高科学思维的能力，培养对科学工作严谨求实的作风，为今后从事实际工作和科学研究奠定基础。
本大纲适用于五年制本科临床医学、临床妇产、急救医学、眼耳鼻喉科学、医学美容、医学影像学、麻醉学、法医学专业（方向）医学生使用。
现将大纲使用中有关问题说明如下：一为了使教师和学生更好地掌握教材，大纲中每一实验均由教学目的、教学要求和教学内容三部分组成。
教学目的注明教学目标，教学要求分掌握、熟悉和了解三个级别，教学内容与教学要求级别对应，并统一标示（核心内容即知识点以下划实线，重点内容以下划虚线，一般内容不标示）便于学生重点学习。
二教师在保证大纲核心内容的前提下,可根据不同教学手段,讲授重点内容和介绍一般内容。
三总教学参考学时：68学时。
四使用教材：《机能学实验指导》，自编，石京山，4版，2006年。
Ⅱ正文实验一概述一教学目的（一）明确机能实验课的目的和要求，严格遵守实验室的规章制度，认真做好每一次实验，在实验中不断掌握动物实验的基本操作技术。
（二）掌握BL-410、BL-420E和ASB240U生物信号采集系统操作。
2023年机能实验学生理因素及药物对兔呼吸运动的影响实验报告
生理因素及药物对呼吸运动及膈神经放电的影响实验报告【实验目的】1 .学习用计算机生物信号系统记录呼吸及膈神经放电的方法。
2 .观测血液化学成分改变对呼吸运动及膈神经放电的影响。
3 .观测肺牵张反射以及迷走神经在此反射中的作用。
【实验方法】气管插管法、空白对照法【实验结论】机体通过呼吸调节血液中的02、CO2、H+ 水平，动脉血中0 2、C02、H+的变化又通过化学感受器调节呼吸，维持机体内环境的相对稳定。
引言：呼吸运动可以有节律地进行，并能适应机体代谢的需要, 有赖于呼吸中枢的调节作用。
体内外各种刺激可以直接作用于呼吸中枢或通过不同的感受器反射性地作用呼吸运动，由此调节呼吸运动的频率和深度，使肺通气能适应机体代谢需要。
材料与方法：日寺，立即停止注射3.耳幺彖青争月底穿刺日寺,因角蜀重力兔耳及金十刺激也许引起家兔呼吸改建，故需待道些燮化消失，呼吸恢彳复正常彳机再向静月底内推注蕖液一、实验对象：家兔。
二、器材药品：哺乳动物手术器械一套、兔手术台、气管套管、注射器(2 Om I V 5ml各一副)、30cm长的像皮管一根、纱布、线、引导电极定架、三维调节器、玻璃分针、输液夹、压力换能器或张力换能器、BL-410计算机生物信号采集解决系统、2 0 %氨基甲酸乙酯溶液、3%乳酸溶液、生理盐水和液体石蜡(加温38〜4 O ° Ox 10%尼可刹米注射剂、氮气、C02o［实验环节】1 .准备描记装置二道生理记录仪参考参数:灵敏度2m v/cm,滤波30Hz,时间常数DC,基线中线。
(1)麻醉2 .手术(1)麻醉家兔称重后,用20%乌拉坦5m I /Kg由耳缘静脉缓慢注入,麻醉后仰卧定于手术台上。
(2 )颈部手术颈部剪毛,在喉头下缘至胸骨上凹作正中切口，钝性分离肌肉至气管，作气管插管，在气管插管一侧管置呼吸传感器，通过计算机实时分析系统记录呼吸；也可用弯缝针在兔的剑突上皮肤穿一条线并固定，线的另一端连张力换能器,通过记录仪器记录呼吸。
医学机能实验报告呼吸
一、实验目的1. 理解呼吸运动的生理机制。
2. 掌握呼吸运动调节的基本原理。
3. 通过实验观察和分析呼吸运动的生理变化，加深对呼吸生理学的理解。
二、实验原理呼吸运动是人体生命活动的重要组成部分，由呼吸中枢控制，通过呼吸肌的收缩和舒张来实现。
呼吸运动的调节主要涉及神经系统和体液系统，包括呼吸中枢的调节、外周化学感受器的调节、肺牵张反射等。
三、实验材料1. 实验动物：家兔一只。
2. 实验仪器：生物信号采集处理系统、呼吸流量换能器、CO2气囊、哺乳类动物手术器具一套、兔手术台、气管插管、注射器（10ml、20ml各一只）、橡胶管、纱布、玻钩、手术丝线。
3. 实验试剂：戊巴比妥钠、生理盐水、乳酸。
四、实验步骤1. 家兔称重，按照2ml/kg取戊巴比妥钠，从兔耳缘静脉缓慢注入麻醉，然后将家兔固定在手术台上。
2. 颈部剪毛，于颈部正中切开皮肤，钝性分离肌肉组织，暴露并分离气管。
3. 在3-4气管环之间切开气管，做一倒“T”形切口，气管插管后用手术丝线固定，两侧迷走神经穿线备用。
4. 将呼吸流量换能器连接在气管插管上，打开计算机，启动生物信号采集处理系统，进入呼吸运动实验项目。
5. 观察并记录正常呼吸波形、呼吸频率和幅度。
6. 通过增加无效腔、增加二氧化碳浓度、短暂窒息和剪短迷走神经等方法，观察呼吸运动的变化。
7. 记录并分析实验结果。
五、实验结果与讨论1. 正常呼吸波形：呼吸波形呈现周期性变化，包括吸气相和呼气相。
2. 增加无效腔：增大无效腔后，家兔呼吸幅度增大，呼吸频率加快。
3. 增加二氧化碳浓度：吸入增加CO2的气体后，呼吸运动加深加快，呼吸频率增加。
4. 短暂窒息：短暂窒息后，呼吸运动迅速增强，呼吸频率和幅度明显增加。
5. 剪短迷走神经：剪短迷走神经后，呼吸运动减弱，呼吸频率和幅度降低。
六、实验结论1. 呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映，随机体代谢的需要，呼吸运动产生适应性变化，从而维持血液中02和CO2的正常水平。
临床医学专业机能实验学 不同类型缺氧模型小鼠制备实验报告
机能实验学实验报告实验项目名称：不同类型缺氧模型小鼠制备1.实验目的①了解小鼠特性、解剖及应用；②熟练掌握小鼠的抓取、灌胃、腹腔注射、注射器使用及颈椎脱臼处死技术；③了解缺氧的分类，了解和复制不同类型缺氧模型（本次实验的缺氧模型包括低张性缺氧模型及血液性缺氧模型）；④了解不同类型缺氧的表现特征，观察缺氧时呼吸节律和皮肤粘膜颜色的变化规律。
2.材料与方法（1）实验动物成年昆明种小鼠，10只，体重18～22g，雌雄不拘，由南方医科大学实验动物中心提供。
（2）实验器材与试剂器材：密封广口瓶，一氧化碳发生装置，酒精灯，注射器及针头，灌胃器，塑料盆，量杯等药品：钠石灰，甲酸，浓硫酸，5%亚硝酸钠，1%亚甲蓝，生理盐水（3）实验方法与步骤A.小鼠乏氧性缺氧模型的制备1）实验步骤①观察记录小白鼠正常呼吸频率、深度和皮肤、粘膜颜色等指标；②抓取小白鼠并放入装有钠石灰广口瓶中，观察，记录；③塞紧瓶塞，计时，拍摄，每3min重复观察上述指标1次，如有其它变化，随时记录，直至动物死亡，记录其存活时间。
2）注意事项①观察记录小白鼠一般状况（精神行为）、呼吸（频率节律深度，观察小鼠10s内腹部皮肤起伏）和皮肤（爪部）、粘膜（口唇）颜色（紫绀、苍白、樱桃红、棕褐色......）等指标；②将小鼠置于广口瓶内的技巧：将广口瓶平放，诱导小鼠进入，当小鼠全头进入时将广口瓶直立；③尸体处理：死后即取出放入塑料盆中，避免因小鼠尸体僵硬难以取出。
B.小鼠血液性缺氧模型的制备——一氧化碳中毒性缺氧1）实验步骤①准备一氧化碳发生装置；②将1只小白鼠放入广口瓶中，观察其正常表现后与一氧化碳发生装置连接；③用量杯取甲酸3ml放于试管内，沿试管壁缓慢加入浓硫酸2ml，塞紧瓶塞；④计时，拍摄并记录各项指标直至死亡。
2）注意事项①加液顺序为先加入甲酸，后加入浓硫酸；②大试管管口切勿朝向人，注意开窗通风，防止一氧化碳中毒。
如反应缓慢可用酒精灯加热，注意加热程度，通入CO过快则使小鼠死亡时间缩短，皮肤黏膜看不到颜色变化；③尸体处理：死后即取出放入塑料盆中，避免因小鼠尸体僵硬难以取出；④器材处理：实验完毕后尽快倒出剩余试剂并冲洗，清洗后将大试管倒置于试管架。
机能实验学：修改-呼吸运动调节
【注意事项】
1. 麻醉部位应从远端开始，切不可过量。 2. 气管内应清理干净再插管。 3. 每项操作均要标记。 4. 应等上步效应消失、呼吸恢复正常后方可
继续下步实验。 5. 注射乳酸勿外漏。
【小结】
1、正常曲线：
Байду номын сангаас
2、增加CO2
3、缺O2
4、增大无效腔
5、注射乳酸
6、电刺激迷走神经
【思考题】
二、呼吸运动的调节
※ 化学感受性呼吸反射
1、外周化学感受器 感 受 器 ：颈动脉体（呼吸）、主动脉体（循环） 适宜刺激：PO2↓、 PCO2 、H+
2、中枢化学感受器 适宜刺激：脑脊液中的 H+ 、PCO2
PO2↓ [H+]↑ PCO2↑ 颈动脉体外周化学感受器（+）
窦、迷走神经
孤束 核
呼吸中枢（+）
2.仪器连接和系统操作
插管一侧接流量换能器 ↓
换能器插入1通道 ↓
曲线记录(实验项目→呼吸实验: 呼吸运动调节)
BL-420E生物机能实验系统：
3.观察项目
(1) 正常呼吸运动 (2) 增加吸入气CO2浓度 (3) 缺O2 (4) 增大无效腔 (5)注射乳酸（ 0.5～1ml ） (6)刺激迷走神经 (7) 剪断迷走神经(单侧→双侧)
呼吸运动的调节
【实验目的】
1.学习家兔呼吸运动的记录方法 2.观察神经和体液因素对家兔呼吸运动的影响
【实验原理】
一、呼吸运动的产生 ※ 呼吸中枢节律性的反映 ※ 传出神经——膈神经和肋间神经等 ※ 呼吸肌的收缩和舒张→肺通气
呼吸运动曲线：流量换能器 ①上升相代表呼气而下降相代表吸气 ②频率反映呼吸频率 ③幅度反映呼吸深度
机能实验学呼吸运动的调节及其影响因素
机能实验报告课题名称：呼吸运动的调节及其影响因素院（系）：韶关学院医学院专业班级：2011级临床医学本科班学生姓名：***学号：112指导教师：***二○一三年四月十九日机能实验报告实验目录：1 实验目的2 实验装置和器材3 实验药物4 实验动物5 实验原理6 动物实验准备7 动物手术8 实验观察项目9 实验注意事项10 实验结果实验数据实验记录波型11 实验结果讨论12 实验结果总结13 实验总结实验报告实验次序：二实验项目：呼吸运动的调节及其影响因素班级：11临本姓名：符宏展学号：112实验类型（打√）：（基础□综合□设计□）一、实验预习二、实验操作原始（数据）记录及实验结果的分析实验时间：2013年4 月 19日 (星期五 第1－4节）如果实验有数据表格，学生在实验预习时应画好实验数据表格，供实验填写数据。
实验结果：实验数据实验记录波型实验项目一：缺氧实验正常实验记录波型：缺氧实验记录波型：实验项目 家兔情况 编号 最大峰值（µV） 最小峰值（µV） 平均峰值（µV） 频率（Hz ）Tmax(g) Tmin(g) △T(g)缺氧实验正常 Q209/35 360.28 0 77.41 182.284 1.26 0.69 0.57 缺氧后 Q263/59 911.09 0 135.8 169.076 1.94 0.06 1.88 CO 2增多实验 正常 Q169/37 281.39 7.33 73.82 116.196 0.85 0.12 0.72 增多后 Q644/497 654.163 4.4 126.52 217.823 1.95 0.03 1.92 增大无效腔 正常 Q175/28 120.91 0 42.39 142.647 1.23 1.15 0.08 增大后 Q186/45 219.83 0 56.23 143.028 1.78 0.01 1.76 牵张反射实验正常 Q222/41 116.02 2.44 36.89 120.016 1.03 0.08 0.95 打气 Q160/87 79.751 4.152 21.386 46.963 1.03 0.95 0.08 抽气Q188/177 679.04 0 170.81 280.852 0.86 0.01 0.85 人工气胸正常 Q244/101 519.05 2.44 48.99 120.189 1.49 0.02 1.47 打气 Q339/215 481.19 1.22 52.42 125.559 0.68 0.02 0.66 抽气Q251/136 194.19 1.22 47.65 97.587 0.55 0.02 0.53 切断迷走神经正常 Q176/40 238.15 0 60.84 121.434 0.92 0.02 0.9 一侧 Q279/155 166.1 7.33 40.05 15.775 3 0.28 2.72 正常 Q219/88 255.25 1.22 55.08 130.215 1.3 0.01 1.29 二侧Q165/31 178.31 3.66 48.81 14.364 3 7.5 -4.51 牵张反射实验正常 Q125/23 308.99 2.44 55.2 130.865 1.43 0.02 1.41 打气 Q674/549 247.92 0 55.39 143.981 0.38 0.04 0.35 抽气Q283/157 299.22 3.66 71.6 96.355 1.74 0.01 1.73 注射乳酸实验 正常Q192/109252.81 2.44 55.11 123.125 1.51 0.02 1.49 注射少量 Q135/28 266.242.4467.16125.98630.052.94胸膜腔负压打气前 96mmH 2O 打气后106mmH 2O实验项目二：二氧化碳增多实验正常及二氧化碳增多实验记录波型：实验项目三：增大无效腔实验正常实验记录波型：增大无效腔实验记录波型：实验项目四：牵张反射实验正常实验记录波型：打气实验记录波型：抽气实验记录波型：实验项目五：人工气胸正常实验记录波型：打气实验记录波型：抽气实验记录波型：实验项目六：切断迷走神经正常实验记录波型：切断一侧迷走神经实验记录波型：正常实验记录波型：切断两侧迷走神经实验记录波型：实验项目七：切断迷走神经后牵张反射正常及打气实验记录波型：抽气实验记录波型：实验项目八：少量注射乳酸正常实验记录波型：少量注射乳酸实验记录波型：实验结果讨论：1缺氧实验：吸入空气中氧浓度降低时使呼吸中枢放电明显增强，呼吸幅度增强。
机能学实验呼吸功能不全
呼吸功能不全呼吸功能不全呼吸功能不全呼吸功能不全一实验目的1、通过造成动物窒息、气胸以及肺水肿进行复制通气功能障碍、气体弥散障碍以及肺泡通气与血流比例失调所引起的Ⅰ型和Ⅱ型呼吸功能不全模型2、借助于血气指标分析判断窒息、气胸以及肺水肿所引起的呼吸功能不全的类型分析呼吸功能不全的发生机制3、结合血气指标进行酸碱平衡紊乱的类型判断二实验方法1、取家兔一只称重1.900kg雄。
用20乌拉坦11ml耳缘静脉进行麻醉固定于手术台上。
2、进行颈动脉插管、气管插管分别连接三通管以及呼吸流量换能器并且连接RM6240生物信号采集系统进行血压以及呼吸监测。
3、模型的复制1复制阻塞性通气障碍通过利用弹簧夹调节Y型气管插管上端橡皮管进行通气流量的调节观察信号采集系统的波形变化是通气量约为原来的1/3。
同时观察呼吸波形、唇色以及血压等维持3min结束后取血进行血气分析。
打开弹簧夹使呼吸、血压恢复正常并且稳定。
2复制限制性通气障碍采用16号钝头针头于家兔右胸4、5肋间插入胸腔注射空气100ml造成严重气胸观察呼吸、血压的变化等待8min取血进行血气分析随后将100ml空气吸走于穿孔处贴上胶布。
等待呼吸、血压等恢复正常进行下一步实验。
3复制肺水肿先后自耳缘静脉、采用1ml的注射器注射油酸2ml、4ml观察呼吸、血压波形变化并且进行血气分析。
4、最后将家兔注射空气处死解剖取出肺进行观察肺的变化进行称重肺12.36kg。
三实验结果1家兔呼吸与血压变化分析图一、手术结束时的呼吸与血压图二、阻塞性通气障碍时的呼吸与血压图三、胸膜腔注射50ml气体后气胸模型的呼吸与血压图四、胸膜腔注射100ml 气体后气胸模型的呼吸与血压图五、注射油酸后的呼吸及血压表一、各情况下的呼吸指标图六、平均呼吸深度对比图七、呼吸频率对比平均吸气谷流量最大呼气峰流量最小吸气谷流量呼吸频率平均呼吸深度通气量呼吸时比每分通气量ml/sml/sml/s次/分ml/sml倍ml手术结束-10.6310.94-10.853021.2111.23571.507332.3822阻塞性通气障碍-6.122.25-6.35358.299.02231.553318.808350ml气胸-10.3110.26-11.336419.7510.841249.629689.4263100ml气胸-6.164.1-7.91518.574.37141.293221.4695油酸-30.828.43-34.2920656.935.914612.3611221.3376图八、每分钟通气量对比表二、各情况下的血压指标图九、mAP对比mSPmDPmAP平均脉压差心率周期mmHgmmHgmmHgmmHg次/分ms手术结束109.9386.8394.5323.11253236.875阻塞性通气障碍106.5983.9691.522.64277216.45850ml气胸106.2184.3491.6321.87296202.812100ml气胸124.82102.16109.7122.66119502.25油酸86.4468.9574.7817.49241248.672图十、平均脉压差对比图十一、心率对比2血气分析表三、血气分析结果项目阻塞性通气气胸100ml油酸正常值Na138mmol/L134mmol/L137mmol/L130-140K3.0mmol/L3.2mmol/L2.9mmol/L3.5-5.5 TCO219mmol/L17mmol/L16mmol/LiCa1.44mmol/L1.06mmol/L1.62mmol/L110Hct血细胞比容33PCV28PCV32PCVHb11.2g/ml9.5g/ml10.9g/mlAt凝血酶原活动度37c37c37cPH7.318↓7.296↓7.329↓7.35-7.45PCO234.9mmHg33.7mmHg28.4mmHg↓33-46PO272mmHg↓37mmHg↓82mmHg↓100HCO317.9mmol/L↓16.4mmol/L↓14.9mmol/L ↓22-27BEecf-8mmol/L↓-10mmol/L↓-11mmol/L↓-3-3SO2血氧饱和度93659595-973肺系数12.36/1.96.50↑4.25.0说明①气管插管结束后记录呼吸发现有暂停现象听诊时呼吸正常分析原因可能为系统问题上一次实验也有这种情况。
机能实验报告 呼吸衰竭
For personal use only in study and research; not for commercial useFor personal use only in study and research; not for commercial use医科大学机能学实验报告实验日期：2015年6月24日带教教师：小组成员：（尼可刹米组）专业班级：预防医学一大班呼吸调节、呼吸功能不全及治疗一、实验目的1、观察豚鼠的正常呼吸频率、幅度、膈肌放电、动脉血氧分压及呼吸运动的调节。
2、复制豚鼠哮喘模型，观察呼吸衰竭时的动物呼吸频率、幅度、动脉血氧分压及膈肌放电的变化；探讨呼吸衰竭的发生机制。
3、观察不同药物的治疗效果并分析其作用机制。
二、实验原理呼吸为气体交换过程，完整的呼吸功能包括外呼吸、内呼吸和气体运输功能。
呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映。
呼吸衰竭是指外呼吸功能严重障碍，导致PaO2降低或伴有PaCO2增高的病理过程。
诊断呼吸衰竭的血气标准：PaCO2低于60mmHg，伴有或不伴有PaCO2高于50mmHg。
根据PaCO2是否升高，可将呼吸衰竭分为I型，PaO2<60mmHg,PaCO2正常或降低；Ⅱ型，PaO2<60mmHg, PaCO2>50mmHg。
根据发病机制不同，分为通气性和换气性。
根据发病部位不同，分为中枢性和外周性。
根据发病缓急，分为急性和慢性呼吸衰竭。
外呼吸功能障病因与机制：通气障碍：a.阻塞性（气道狭窄或阻塞）b.限制性（肺泡扩张受限）；换气障碍：a.弥散障碍b.通气/血流失调c.解剖分流↑。
三、实验仪器设备Medlab生物信号采集处理系统、血气分析仪、豚鼠手术台、手术器械一套、呼吸换能器、动静脉留置针（22—24G）,小动物气管插管、超声雾化器一套、银针四、实验方法与步骤（1）称重，麻醉，固定动物称重、腹腔麻醉（25%乌拉坦5—6ml/kg）,固定于手术台。
医学机能呼吸实验报告
一、实验名称呼吸运动的调节二、实验日期2023年11月15日三、实验目的1. 观察和记录呼吸运动的生理参数，包括呼吸频率、幅度和潮气量。
2. 分析生理因素（如CO2浓度、氧浓度、pH值等）对呼吸运动的影响。
3. 探讨药物（如吗啡、阿托品等）对呼吸运动的影响。
4. 理解呼吸运动的调节机制。
四、实验原理呼吸运动是机体进行气体交换的重要生理过程，受到中枢神经系统和体液因素的调节。
呼吸频率、幅度和潮气量是呼吸运动的主要生理参数，它们受到多种因素的影响，包括CO2浓度、氧浓度、pH值、温度、药物等。
五、主要仪器与试剂1. 仪器：呼吸功能检测仪、生理信号采集系统、气体分析仪、注射器、麻醉机、气管插管、呼吸机等。
2. 试剂：CO2、O2、N2、吗啡、阿托品等。
六、实验步骤1. 实验动物：选用健康成年家兔，体重约2.5kg。
2. 麻醉：采用耳缘静脉注射20%乌拉坦进行麻醉。
3. 气管插管：将气管插管插入家兔气管，连接呼吸机。
4. 呼吸参数监测：通过呼吸功能检测仪和生理信号采集系统实时监测呼吸频率、幅度和潮气量。
5. 生理因素影响实验：a. CO2浓度影响：将家兔置于含有不同浓度CO2的密闭容器中，观察呼吸频率、幅度和潮气量的变化。
b. 氧浓度影响：将家兔置于含有不同浓度O2的密闭容器中，观察呼吸频率、幅度和潮气量的变化。
c. pH值影响：将家兔置于含有不同pH值的溶液中，观察呼吸频率、幅度和潮气量的变化。
6. 药物影响实验：a. 吗啡：静脉注射吗啡，观察呼吸频率、幅度和潮气量的变化。
b. 阿托品：静脉注射阿托品，观察呼吸频率、幅度和潮气量的变化。
7. 数据记录与分析：记录实验过程中各项生理参数的变化，并进行统计分析。
七、实验结果1. 生理因素影响：a. CO2浓度增加时，呼吸频率、幅度和潮气量均增加。
b. 氧浓度降低时，呼吸频率、幅度和潮气量均增加。
c. pH值降低时，呼吸频率、幅度和潮气量均增加。
2. 药物影响：a. 吗啡：呼吸频率、幅度和潮气量均降低。
《机能实验学》临床,呼吸c讲课教案
【实验项目】
1、记录正常呼吸运动曲线。 2、吸入CO2：CaCO3 + 稀HCl。 3、缺氧： 4、增大无效腔（长管呼吸）： 5、增加[H+]：3%乳酸2ml耳缘静脉快速注射 6、切断左、右侧迷走神经： （观察呼吸的节律、频率、幅度）
CO2 、H+和低O2对呼吸运动的调节
H+↑
低O2 CO2↑
+H2O ↓ HCO-3
醉 （2）注意抽药量。
药 （2）小心拿、放针筒，防止内筒脱出。
（3）手不要触及针筒内筒。
（4）排气时药液不要喷到电脑。
P56 辨清耳缘静脉（耳背薄侧外侧缘）
﹠ →拔去或剪去被毛→轻弹或轻揉兔
兔 耳→压迫耳根部耳缘静脉以阻断血
耳 液回流，使血管充分扩张→左手食
缘 指和中指夹住静脉近心端，拇指和
静 脉
戊巴比妥钠 P5
5
适用于大多数动物。易溶于水，水溶液稳 定，但久置易析出结晶，稍加碱性溶液可防 止析出结晶。根据实验动物不同，可配制成 1-5%的水溶液，由静脉或腹腔注射。一次给 药的有效麻醉时间约 3-4小时，如在实验过 程中动物醒来或未达到麻醉效果时，可补注 原剂量的 1/5，切不可随意加药，麻醉过量 可导致呼吸、循环抑制，甚至动物死亡。
P56
﹠
兔 耳 缘 静 脉 注 射 法
若注射阻力较大或出现局部肿胀， 说明针头没有刺入静脉，应立即拔 出针头重刺；若推注阻力不大，可 将药物缓慢注入。注射完毕拔出针 头后，随即用纱布压迫针眼，以防 止出血；注射器及时用清水冲洗。
最佳麻醉深度指标：P57
﹠ 皮肤夹捏反应消失，头颈、四肢
兔 耳
及腹壁肌肉松驰，呼吸深慢而平
【思考题】
1、给兔子增加CO2、制造缺氧、注射 乳酸时，对呼吸运动有何影响？说明它 们的作用机制。
机能实验学呼吸运动的调节及其影响因素
机能实验报告课题名称：呼吸运动的调节及其影响因素院（系）：韶关学院医学院专业班级：2011级临床医学本科班学生姓名：符宏展学号：112指导教师：梁俊辉二○一三年四月十九日机能实验报告实验目录：1 实验目的2 实验装置和器材3 实验药物4 实验动物5 实验原理6 动物实验准备7 动物手术8 实验观察项目9 实验注意事项10 实验结果实验数据实验记录波型11 实验结果讨论12 实验结果总结13 实验总结实验报告实验次序：二实验项目：呼吸运动的调节及其影响因素班级：11临本姓名：符宏展学号：112实验类型（打√）：（基础□综合□设计□）一、实验预习实验预习报告内容原则上应包含实验目的、实验原理、实验主要仪器、试剂及实验步骤。
实验目的：掌握理论：1.缺O2、CO2增多、H+增多、增大无效腔、胸膜腔负压、切断迷走神经对呼吸运动的影响。
2.肺牵张反射的生理意义。
掌握操作：1.家兔实验的基本方法和技术（静脉麻醉、气管插管、分离神经等）。
2.呼吸运动生物信号采集与处理系统的使用。
实验装置和器材：RM6240生物信号采集与处理系统、呼吸换能器、张力换能器、刺激电极、引导电极、胸腔检压计、手术器械、气管插管、注射器等。
实验药物：3%戊巴比妥钠、乳酸。
实验动物：家兔实验原理：呼吸运动是一种节律性的活动，其节律来源于呼吸中枢。
呼吸中枢产生的节律性活动，通过传出神经（膈神经和肋间神经），使吸气肌（膈肌和肋间外肌）产生有规律的节律性舒缩活动。
呼吸中枢产生的节律性电活动,通过脊髓发出的膈神经和肋间神经传导到膈肌和肋间外肌,使之收缩和舒张产生规律的呼吸运动。
膈肌位于胸腔与腹腔之间,构成胸腔的底。
膈肌为主要的呼吸肌,收缩时,膈肌下降,胸腔容积增大,产生吸气;舒张时,膈肌上升恢复原位,胸腔容积减小,表现为呼气。
膈神经或膈肌的放电情况能反映延髓呼吸中枢活动的强弱以及呼吸运动的强弱。
所以膈肌放电的节律性应与呼吸的节律性是一致的,实验结果验证了这一点。
机能学实验呼吸功能不全
呼吸功能不全一．实验目的1、通过造成动物窒息、气胸以及肺水肿，进行复制通气功能障碍、气体弥散障碍以及肺泡通气与血流比例失调所引起的Ⅰ型和Ⅱ型呼吸功能不全模型2、借助于血气指标分析判断窒息、气胸以及肺水肿所引起的呼吸功能不全的类型，分析呼吸功能不全的发生机制3、结合血气指标进行酸碱平衡紊乱的类型判断二．实验方法1、取家兔一只，称重1.900kg，雄。
用20%乌拉坦11ml耳缘静脉进行麻醉，固定于手术台上。
2、进行颈动脉插管、气管插管，分别连接三通管以及呼吸流量换能器，并且连接RM6240生物信号采集系统，进行血压以及呼吸监测。
3、模型的复制1）复制阻塞性通气障碍通过利用弹簧夹调节Y型气管插管上端橡皮管，进行通气流量的调节，观察信号采集系统的波形变化，是通气量约为原来的1/3。
同时观察呼吸波形、唇色以及血压等，维持3min，结束后取血进行血气分析。
打开弹簧夹，使呼吸、血压恢复正常，并且稳定。
2）复制限制性通气障碍采用16号钝头针头于家兔右胸4、5肋间插入胸腔，注射空气100ml，造成严重气胸，观察呼吸、血压的变化，等待8min取血进行血气分析，随后将100ml空气吸走，于穿孔处贴上胶布。
等待呼吸、血压等恢复正常，进行下一步实验。
3）复制肺水肿先后自耳缘静脉、采用1ml的注射器注射油酸2 ml、4ml，观察呼吸、血压波形变化，并且进行血气分析。
4、最后将家兔注射空气处死，解剖取出肺，进行观察肺的变化，进行称重肺12.36kg。
三．实验结果1．家兔呼吸与血压变化分析图一、手术结束时的呼吸与血压图二、阻塞性通气障碍时的呼吸与血压图三、胸膜腔注射50ml气体后气胸模型的呼吸与血压图四、胸膜腔注射100ml气体后气胸模型的呼吸与血压图五、注射油酸后的呼吸及血压表一、各情况下的呼吸指标平均吸气谷流量最大呼气峰流量最小吸气谷流量呼吸频率平均呼吸深度通气量呼吸时比每分通气量(ml/s) (ml/s) (ml/s) (次/分) (ml/s) (ml) (倍) ml手术结束-10.63 10.94 -10.85 30 21.21 11.2357 1.507 332.3822 阻塞性通气障碍-6.12 2.25 -6.35 35 8.29 9.0223 1.553 318.8083 50ml气胸-10.31 10.26 -11.33 64 19.75 10.8412 49.629 689.4263 100ml气胸-6.16 4.1 -7.91 51 8.57 4.3714 1.293 221.4695 油酸-30.8 28.43 -34.29 206 56.93 5.9146 12.361 1221.3376图六、平均呼吸深度对比图七、呼吸频率对比图八、每分钟通气量对比表二、各情况下的血压指标mSP mDP mAP 平均脉压差 心率 周期 (mmHg) (mmHg) (mmHg) (mmHg) (次/分) (ms) 手术结束 109.9386.8394.5323.11253236.875阻塞性通气障碍 106.59 83.96 91.5 22.64 277 216.458 50ml 气胸 106.21 84.34 91.63 21.87 296 202.812 100ml 气胸 124.82 102.16 109.71 22.66 119 502.25 油酸86.4468.9574.7817.49241248.672图九、mAP 对比图十、平均脉压差对比图十一、心率对比2．血气分析表三、血气分析结果项目阻塞性通气气胸100ml 油酸正常值Na 138mmol/L 134mmol/L 137mmol/L 130-140K 3.0mmol/L 3.2mmol/L 2.9mmol/L 3.5-5.5TCO2 19mmol/L 17mmol/L 16mmol/LiCa 1.44mmol/L 1.06mmol/L 1.62mmol/L 1~10 Hct(血细胞比容) 33%PCV 28%PCV 32%PCVHb 11.2g/ml 9.5g/ml 10.9g/mlAt（凝血酶原活动度）37c 37c 37cPH 7.318↓7.296↓7.329↓7.35-7.45PCO2 34.9mmHg 33.7mmHg 28.4mmHg↓33-46PO2 72mmHg↓37mmHg↓82mmHg↓100HCO3 17.9mmol/L↓16.4mmol/L↓14.9mmol/L↓22-27BEecf (-8)mmol/L↓(-10)mmol/L↓(-11)mmol/L↓（-3）-3SO2(血氧饱和度) 93% 65% 95% 95%-97%3．肺系数=12.36/1.9=6.50↑(4.2~5.0)*说明：①气管插管结束后记录呼吸发现有暂停现象，听诊时呼吸正常，分析原因可能为系统问题（上一次实验也有这种情况）。
人体机能实验报告范文
人体机能实验报告范文实验目的：了解人体的基本机能并掌握相关实验方法。
实验原理：1. 呼吸机能：人体通过呼吸作用，将氧气吸入肺部，与血液中的红细胞结合形成氧合血红蛋白，然后将二氧化碳排出体外。
2. 心血管机能：心脏以正常的频率和力度将氧合血液泵送到全身各个组织和器官，同时将二氧化碳带回到肺部进行排出。
3. 消化机能：通过消化系统的各个器官将食物分解并吸收其中的营养物质，同时排出未消化的物质。
4. 泌尿机能：通过肾脏排除体内过多的水分和废物，保持体内的水分和电解质平衡。
5. 运动机能：通过肌肉的收缩和放松，实现人体的运动功能。
实验材料：实验用电子秤、血压计、心电图仪器、用于呼吸实验的气体或容器。
实验步骤：1. 呼吸机能实验：a. 受试者收集新鲜空气于一个容器中。
b. 受试者深呼吸2分钟，然后将呼出气体通过吗啡稀释计出样品的氧气含量，并做相应计算得出呼出气体的总量。
c. 重复以上步骤5次，取平均值。
2. 心血管机能实验：a. 受试者休息15分钟，然后用血压计测量其血压，包括舒张压和收缩压。
b. 采集受试者的心电图，并分析心脏的正常节律和异常现象。
3. 消化机能实验：a. 受试者进餐后1小时用电子秤测量体重变化，记录下食物的摄入量。
b. 受试者在排空膀胱后，采集尿液样本，检测其中的代谢产物。
4. 泌尿机能实验：a. 受试者饮水后，记录其饮水量和排尿量。
b. 采集尿液样本，进行尿液分析，包括比重、pH值、蛋白质、尿酸等指标。
5. 运动机能实验：a. 受试者进行标准的运动项目，如跑步、举重等。
b. 通过心率的变化和肌肉的疲劳程度评估受试者的运动机能。
实验结果：1. 呼吸机能：测量呼出气体中的氧气含量，可计算出呼出气体的总量。
2. 心血管机能：记录舒张压和收缩压，观察心电图检查是否有异常现象。
3. 消化机能：测量进食前后的体重变化，检测尿液中的代谢产物。
4. 泌尿机能：记录饮水量和排尿量，检测尿液中的比重、pH值、蛋白质、尿酸等指标。
医学机能实验知识点总结
医学机能实验知识点总结医学机能实验是医学生在学习阶段必不可少的一门课程，通过该课程的学习，可以帮助学生更好地了解和掌握人体的生理机能和疾病的诊断方法。
医学机能实验主要包括生理学实验和病理学实验两个方面，通过实验的操作和观察，使学生可以直观地感受到生理和病理的变化，深化对医学知识的理解，提高临床实践能力。
一、生理学实验知识点总结1.呼吸系统实验呼吸系统是人体最重要的生理系统之一，通过呼吸实验可以了解到人体呼吸的生理过程和功能。
在呼吸系统实验中，一般包括测定肺活量、测定呼吸频率和观察呼吸气的变化等内容。
通过这些实验，可以了解到呼吸系统的变化规律和健康监测的方法。
2.循环系统实验循环系统是人体的血液循环系统，是人体各个器官和组织之间进行氧气、营养物质交换的重要通道。
在循环系统实验中，一般包括测量心率、血压、心排量等实验项目，通过这些实验可以了解到循环系统的功能和监测方法。
3.神经系统实验神经系统是人体最为复杂的生理系统之一，它控制着人体各种生理活动。
在神经系统实验中，一般包括观察Pupillary reflex、腱反射、身体感觉和周围神经传导速度等实验项目，通过这些实验可以了解到神经系统的结构和功能。
4.消化系统实验消化系统是人体对食物进行消化和吸收的重要系统。
在消化系统实验中，一般包括观察唾液分泌、胃酸分泌、胆汁分泌等实验项目，通过这些实验可以了解到消化系统的结构和功能。
5.泌尿系统实验泌尿系统是人体排泄废物的重要系统。
在泌尿系统实验中，一般包括观察尿液成分、尿液分泌等实验项目，通过这些实验可以了解到泌尿系统的功能和生理变化。
二、病理学实验知识点总结1.组织学实验组织学实验是病理学实验中的重要实验项目之一，通过观察组织切片和染色，可以了解到不同疾病对人体组织的影响和变化。
在组织学实验中，一般包括观察癌细胞、炎症组织、创伤组织等实验项目，通过这些实验可以了解到疾病对人体组织的损伤和恢复过程。
2.血液学实验血液学实验是病理学实验中的重要实验项目之一，通过观察血液细胞和血液成分的变化，可以了解到不同疾病对血液的影响和变化。
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麻醉注意事项 P57
4、推药时开始可稍快 ，过半剂量后 一定要缓慢注入，并注意观察动物状况 （先快后慢）。
5、实验过程中如麻醉过浅，可临时补 充麻醉药，但一次注射剂量不宜超过总量 的1/5，且须经一定时间后才能补充。
6、因麻醉药的作用，可使动物体温缓 慢下降，所以，特别是寒冷季节应注意动 物保温。
缘 稳，瞳孔缩小，角膜反射消失。
静
脉
注
射
法
麻醉注意事项 P57
1、不同个体对麻醉药的耐受性是不 同的。因此，在麻醉过程中，除参照一 般药物用量标准外，还必须密切注意动 物的状态，以决定麻药的用量。若已达 到所需的麻醉深度，应立即停止给药， 不必全部给完所有药量。
2、进针部位应尽量靠静脉远心端， 以备进针不成功时可再次进行。
--四肢及两只上门牙固定
固定
P47
将缚绳打活结→绑在兔前肢腕关节上部和后肢踝关节 上部→将两后肢分开拉直，用缚绳缠绕固定于手术台 后缘的钩上→将两前肢平直放在两侧，绑两前肢的左
氨基甲酸乙酯 P55
又名乌拉坦、乌来糖、尿酯。易溶于水可 配成10-20%的溶液，静脉或腹腔注射。常用 于兔、狗、猫等动物，特别是对兔的作用较 强，是家兔实验常用的麻醉药。该药价廉， 使用方便，麻醉速度快，作用较持久，且麻 醉过程平稳，对动物呼吸、循环无明显影响 但动物苏醒慢，麻醉深度和使用剂量较难掌 握。可诱发大鼠和兔产生肿瘤，一般用于急 性实验，需长期存活的慢性实验动物最好不 用它麻醉。
【实验方法】
麻碎
固定
颈部切口
分离迷走神经、颈总静脉
气管插管
仪器连接
软件操作 《机能实验学》临床,呼吸
麻碎
10%乌拉坦10ml/kg 或 2.5%戊巴比妥钠2ml/kg 耳缘静脉（耳背、薄侧）缓慢注射
方法： ﹠兔的捉持（ ） ﹠称重（称的用法） ﹠抽取麻醉药（ ） ﹠辨清耳缘静脉（兔耳或板图） ﹠进针（ ） ﹠推药并观察
《机能实验学》临床,呼吸
【实验原理】
﹠呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映。 在不同生理状态下，呼吸运动所发生的适应 性变化有赖于神经系统的反射性调节，其中
较为重要的有化学感受性呼吸反射和肺牵张 反射等。因此，体内外各种刺激可以直接作
用于中枢部位或通过不同的感受器反射性地 影响呼吸运动。
﹠通过快速、大量静脉输液→增加心脏前 负荷；静脉注射肾上腺素→增加心脏后负荷 两者都造成急性心衰《机能→实验引学》起临床肺,呼吸水肿。
小范围内的神经和血管等组 织。正确的持剪方法是以拇 指和无名指分别插入剪柄的 两环，中指放在无名指的前 外方剪柄上，食指轻压在剪 柄和刀口交界的轴节处。
动物实验常用的手术器械及使用方法
P60
﹠止血钳
除用于止血外，有齿的用于 提捏皮肤，无齿的分离皮下 组织。蚊式止血钳适于分离 小血管及小神经周围的结缔 组织。执钳方法与持剪方法 相同。关闭止血钳时，两手 动作相同，但打开止血钳时 则是用拇指和食指持住止血 钳一个环口，中指和无名指 持住另外一个环口，将拇指 和无名指轻轻用力对顶一下 即可打开。
醉 （2）注意抽药量。
药 （2）小心拿、放针筒，防止内筒脱出。
（3）手不要触及针筒内筒。
（4）排气时药液不要喷到电脑。
P56 辨清耳缘静脉（耳背薄侧外侧缘）
﹠ →拔去或剪去被毛→轻弹或轻揉兔
兔 耳→压迫耳根部耳缘静脉以阻断血
耳 液回流，使血管充分扩张→左手食
缘 指和中指夹住静脉近心端，拇指和
静 脉
P56
﹠
兔 耳 缘 静 脉 注 射 法
若注射阻力较大或出现局部肿胀， 说明针头没有刺入静脉，应立即拔 出针头重刺；若推注阻力不大，可 将药物缓慢注入。注射完毕拔出针 头后，随即用纱布压迫针眼，以防 止出血；注射器及时用清水冲洗。
最佳麻醉深度指标：P57
﹠
兔
皮肤夹捏反应消失，头颈、四肢
耳 及腹壁肌肉松驰，呼吸深慢而平
呼吸运动调节的影响素 和急性呼吸功能不全
《机能实验学》临床,呼吸
动物实验常用的手术器械及使用方法
P60
动物实验常用的手术器械及使用方法
P60
﹠剪刀
粗剪刀用于剪皮肤、毛发， 以及较硬的骨骼等组织；手 术剪刀有直、弯两型，又分
圆头和尖头两种，用于剪肌 膜、浅筋膜、神经和血管等
软组织；眼科剪刀用于剪较
﹠ 玻璃分针 ﹠ 锌铜弓 ﹠ 动脉夹 ﹠ 气管插管 ﹠ 膀胱插管 ﹠ 咬骨剪和咬骨钳
呼吸运动调节的影响因素 和急性呼吸功能不全
P119
【实验目的】
1、观察并分析某些因素对呼吸运 动的影响。
2、采用肺水肿的方法复制急性呼 吸功能不全的动物模型，观察其呼吸运 动的指标变化，并初步探讨其机制。
提问：
1、呼吸、呼吸运动概念? 2、人体呼吸运动主要的反射性调节？
戊巴比妥钠 P5
5
适用于大多数动物。易溶于水，水溶液稳 定，但久置易析出结晶，稍加碱性溶液可防 止析出结晶。根据实验动物不同，可配制成 1-5%的水溶液，由静脉或腹腔注射。一次给 药的有效麻醉时间约 3-4小时，如在实验过 程中动物醒来或未达到麻醉效果时，可补注 原剂量的 1/5，切不可随意加药，麻醉过量 可导致呼吸、循环抑制，甚至动物死亡。
小指夹住耳廓末端，并使其拉直→
注
射
法
﹠
兔
耳
缘 静
①
②
脉
注
射
法
③
④④
P56 →右手持注射器由静脉末端向心端方向
﹠ 刺入→顺血管平行进针约1～1.5cm，放
兔 松左手拇指和食指对血管的压迫，右手 耳 试推注射器（静脉夹夹住）。 缘 判断针是否进入静脉管腔：①见静脉血 静 回流 ②推药顺畅 ③局部无肿胀 脉 注 射 法
动物实验常用的手术器械及使用方法
P60
﹠ 手术刀
由刀柄和刀片组成，用 于切开皮肤和脏器。常 用持刀法有持弓式、指 压式、执笔式、反挑式 等，如图。
﹠ 镊子
用于夹捏组织和牵提切 口处的皮肤，眼科镊子 用于夹捏细软组织。
动物实验常用的手术器械及使用方法
P60
﹠ 探针 ﹠ 蛙板 ﹠ 蛙心夹 ﹠ 静脉夹 ﹠ 血管插管 ﹠ 颅骨钻
P47
﹠ 兔 的 捉 持
一手抓住颈背部皮肤,轻轻提起， 另一手托其臀部，使兔呈坐位姿 势；或一手抓住颈背部皮肤，另 一手托住兔体下方部，使兔呈平 卧位姿势。切忌捉拿兔的双耳。
1、准备用品：麻醉药、针筒、头皮针、
﹠ 抽 取
纱布、静脉夹。 2、持针及抽药方法： 3、排气方法： 4、注意事项：
麻 （1）注意对药标（药物名称和浓度）。