家兔呼吸运动的调节与呼吸机能不全教学内容
最新家兔呼吸运动的调节课件-药学医学精品资料
图5 气管插管术示意图-示固定插管
3/12/2019
（四）分离神经
• 由里向外翻出气管一侧组织——颈动脉鞘：
粗 — 迷走神经 中 — 交感神经
细 — 减压神经
3/12/2019
图6 神经分离示意图
3/12/2019
图7 神经分离示意图-示迷走神经
3/12/2019
（五）连接实验装置
（三）气管插管术 • 手术刀割开皮肤
一手绷紧皮肤， 另一手用力一次性割开皮肤
• 分离气管
用剪刀、镊子分离出气管 除净气管外表的结缔组织等 棉花条清除气管内的淤血、粘液等
3/12/2019
图3 气管插管术示意图
3/12/2019
图4 气管插管术示意图-示气管切口
3/12/2019
3/12/2019
（一）麻醉
• • • 兔耳缘静脉注射：3%戊巴比妥钠 1ml/kg体重； 抽吸麻醉液时先取下针头，多吸一部分；
（1）注射液剂量
（2）进针—注射姿势调整 • • • • 选择耳缘静脉 从远心端开始；左右耳 针头扎进1/3至1/2，并用拇指固定住 注射时推动液体慢一点 — 呼吸急促时可稍停 — 急救。
液，保持气管插管通畅。
• 实验观察中，在刺激开始、撤除时，应做好标记。
3/12/2019
六、结果和目标
• 观察、记录正常呼吸的曲线，了解其特性和规律； • 观察、记录各种影响因素所造成的呼吸曲线的变化。
3/12/2019
七、思考题
• • 分析增加吸入气中CO2浓度对呼吸运动的调节。 分析增加呼吸无效腔，呼吸运动改变的原因。
• BL—420生物机能实验系统、张力换能器。
• 哺乳动物手术器械：兔体手术台、圆头手术镊、手术 剪、手术刀、止血钳、弯剪、气管插管、橡皮管、玻
家兔呼吸运动的调节
[实验对象]
家兔,2~2.5kg,雌雄不拘
[实验器材和药品]
1.器材：兔手术台、哺乳动物手术器械一 套、Y型气管插管。 CO2球胆、盛有钠石 灰的气囊、张力换能器、BL-410实验系统、 水检压计。
2.试剂和药品：25％乌拉坦溶液（氨基甲 酸乙酯溶液） (1g／kg )
[ 实验方法 ]
1.称重
[观察项目]
表1 不同因素对呼吸功能的影响
观察项目
处 理 前 处 理 后 呼吸频率 幅度 胸内负压 呼吸频率 幅度 米水柱
次/分钟
克
毫米水柱
吸入气中CO2浓度增加
吸入气中O2浓度降低 增大无效腔 切断一侧迷走神经 切断双侧迷走神经
刺激一侧迷走神经中枢端
[ 注意事项 ]
1. 张力换能器上的连线松紧要适中，要与 胸廓皮肤垂直。 2. 每次给予一项处理前均要使呼吸运动恢 复平稳。 3. 胸膜腔穿刺时不要插得过深,以免刺破 肺组织.
正确捉拿家兔
2.麻醉并固定
３．颈部正中手术
(1)分离气管,做一“ ”形切口，气管插 管 (2)分离左右两侧迷走神经（穿线备用）
4. 呼吸描记
5.胸内负压的测量(直接法）
在右侧第5肋骨 上缘进针，插入至 有落空感，水检压 计液面有波动。
6.连接电脑
张力换能器 实验项目 BL－410机能实验系统的 第一通道 呼吸实验 呼吸运动调节
[ 实验目的 ]
1.掌握哺乳动物呼吸运动的描记方法。
2.初步分析呼吸运动的调节及其影响因素。
3.学习胸内负压的测量方法。
4.观察胸内负压的存在及其变化对呼吸功能 的影响。
[ 实验原理 ]
1. 呼吸运动(respiratory movement)是呼 吸中枢节律性活动的反映。 2. 呼吸(respiration)的反射性调节：化 学感受性呼吸反射，肺牵张反射 3. 胸膜腔内压(intrapleural pressure) 即胸内负压
机能学实验家兔呼吸运动的调节及其影响因素ppt课件
外周化学感受器
颈动脉体和自动脉体〔调理呼吸和循环〕 PaO2↓、PaCO2 ↑ 或 [H+] ↑：激动经窦神经和迷 走神经传入延髓，反射性地引起呼吸加深加快； 反之 ，呼吸浅慢。
中枢化学感受器
• 延髓腹外侧浅表部位，左右对称，可以分为头、 中、尾三个区，仅头端和尾端区有化学感受性反 射
• 中枢化学感受器不感受缺O2的刺激，但对CO2的 敏感性比外周的强
④ 先结扎一侧迷走N并将其切断 ⑤ 再结扎另一侧迷走N并将其切断 ⑥ 电刺激一侧迷走N中枢端
本卷须知
• 每一项察看要素完成后，都应等动物呼吸 根本恢复正常后再做后续察看要素
结果预测及分析
(1)吸入N2: PaO2↓ 呼吸加深、加快，肺通气添加
(2)吸入CO2 : PaCO2↑ 呼吸加深加快，肺通气量添加
家兔呼吸运动的调理及其影响要素
实验报告
• 实验标题 • 实验目的 • 实验对象 • 实验步骤与察看工程 • 实验结果 • 实验讨论 • 实验结论
呼吸
呼吸：机体与外界环境之间的气体交换过程
机体经过肺通气实现外界空气与肺之间的气 体交换，完成这一交换的原动力是呼吸运 动。
呼吸运动的调理主要是经过化学感受性呼吸 反射、肺牵张反射等来调理
气管旁血管〕，在其下穿一线备用。 9. 两侧迷走N分别：穿2根线备用
⑥插管
⑦衔接BL-420生物信息采集与处置系统，翻开“呼吸 实验〞内模块，监测正常呼吸曲线。
察看工程
① 吸入N2: PiO2↓, PaO2 ↓ ② 吸入CO2 : PaCO2↑ ③ 添加无效腔：长约0.5m橡皮管连于气管
插管的一个侧管上，用止血钳夹闭另一侧 管， 使无效腔添加
(3)增大无效腔
PaCO2↑+ PaO2↓ 呼吸加深、加快，肺通气添加
实验26 呼吸运动的调节以及呼吸功能不全和实验性肺水肿
实验26 呼吸运动的调节以及呼吸功能不全
和实验性肺水肿
一、实验目的
1.观察体内外有关因素的改变对呼吸运动的影响。
复制不同病因引起的呼吸功能不全模型，分析其发生机制。
复制实验性肺水肿模型，观察急性肺水肿的表现并探讨其发生机制和治疗方案。
二、实验原理
机体内外的各种刺激，包括神经因素或理化因素通过直接作用于呼吸中枢和（或）外周感受器，反射性影响呼吸运动，肺牵张反射以及血液中的O2使分压、CO2分压、H+浓度改变，均可以通过不同途径是呼吸运动产生反射性调节。
从而保证血液中气体分压的相对稳定。
呼吸功能不全的失代偿期也称呼吸衰竭，是由于肺通气或换气功能严重受损，致使动脉血氧分压低于60mmHg，同时伴有或不伴有PaCO2大于50mmHg的临床综合征。
根据血气分析分别称为Ⅰ型呼衰和Ⅱ型呼衰。
三、实验材料
1.实验动物家兔（体重2kg以上）。
四、实验步骤
五、实验结果
六、讨论
七、思考题。
家兔呼吸功能不全及治疗
实验三家兔呼吸功能不全及治疗一、实验目的1．观察血液中化学因素（PCO2、PO2、H+）的改变对家兔呼吸运动（频率、节律、幅度）的影响，探讨其作用机制。
2.通过造成动物窒息、气胸和肺水肿，以复制通气功能障碍、气体弥散障碍及肺泡通气与血流比例失调所引起的Ⅰ型或Ⅱ型呼吸功能不全模型。
3.借助于血气指标分析判断窒息、气胸及肺水肿所引起的呼吸功能不全的类型，分析不同的情况下的治疗方法。
二、实验动物药品及器材家兔，体重2.0-2.5kg，性别不拘。
三、实验药品及器材药品：20%乌拉坦，1%普鲁卡因，125U/ml肝素溶液，0.5%肝素，油酸器材：手术器械，注射器（1ml、5ml、10ml、20ml），动脉导管，压力换能器，Y型玻璃气管插管，HX200型呼吸流量换能器，RM6240多道生物信号采集处理系统，头皮针，动脉夹，兔手术台，听诊器，血气分析仪四、实验方法1.抓取成年家兔一只，称重（2.009kg），于耳缘静脉缓慢注入20%乌拉坦10ml （0.5ml/100g*2.009kg=10.045ml)，作全身麻醉。
家兔未完全麻醉，后补注4ml 乌拉坦，2min后家兔耳朵下垂，角膜反射明显消失，四肢瘫软，止血钳夹紧无疼痛反射,视为麻醉完全。
用棉绳将家兔仰卧位固定在手术台上。
2.将呼吸换能器固定在铁支架上，输出线连接生物信号采集系统的通道。
将压力换能器固定于铁架上，其位置应与仰卧家兔心脏在同一平面，输出线连接生物信号采集系统。
在电脑的软件系统中找到呼吸运动及心电图记录，调节仪器参数。
3.经耳缘静脉注射125U/ml肝素3ml进行全身肝素化。
4．剪去颈前部兔毛，喉头部正中切开皮肤，逐层钝性分离家兔颈前组织，暴露气管及颈总动脉。
用止血钳分离气管，在气管下穿两根结扎线备用。
皮下注射局麻药0.8ml。
动脉插管用细线结扎远心端，做颈动脉插管，结扎固定导管，推注少许肝素以防凝血，接上三通管记录血压。
气管插管剥离气管表面毛细血管，在环状软骨下1cm处做倒T型剪口，用棉签将气管切口及气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺部插入。
机能实验家兔呼吸运动的调节实验报告
机能实验家兔呼吸运动的调节实验报告一、实验目的1、学习和掌握哺乳动物呼吸运动的记录方法。
2、观察并分析各种因素对呼吸运动的影响。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌节律性收缩和舒张的结果，呼吸肌的活动受神经和体液因素的调节。
肺牵张反射、化学感受性反射等在呼吸运动的调节中起着重要作用。
通过改变外界条件，如增加或减少二氧化碳浓度、缺氧、增大无效腔、注射药物等，可以观察到呼吸运动的相应变化。
三、实验材料1、实验动物：健康家兔 1 只，体重 20 25kg。
2、实验器材：BL-420 生物机能实验系统、呼吸换能器、哺乳动物手术器械一套、气管插管、50cm 长橡皮管、20ml 和 5ml 注射器、5%CO₂气囊、钠石灰瓶、装有空气的气囊、20%乌拉坦溶液。
四、实验步骤1、麻醉与固定称取家兔体重，按 5ml/kg 的剂量于耳缘静脉缓慢注射 20%乌拉坦溶液进行麻醉。
将麻醉后的家兔仰卧位固定于手术台上。
2、手术操作剪去颈部手术部位的被毛，作颈部正中切口，分离气管并插入气管插管。
分离出两侧迷走神经，穿线备用。
3、仪器连接将呼吸换能器与 BL-420 生物机能实验系统相连，通过气管插管与家兔相连，记录呼吸运动曲线。
4、观察项目正常呼吸曲线：观察并记录家兔在正常状态下的呼吸运动曲线。
增加吸入气中二氧化碳浓度：将 5%CO₂气囊与气管插管的侧管相连，使家兔吸入含较高浓度二氧化碳的气体，观察呼吸运动的变化。
缺氧：将装有空气的气囊换成装有氮气的气囊，使家兔吸入氮气造成缺氧，观察呼吸运动的变化。
增大无效腔：将 50cm 长橡皮管连接在气管插管的侧管上，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。
切断一侧迷走神经：在保持呼吸平稳后，结扎并切断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
切断双侧迷走神经：在切断一侧迷走神经呼吸平稳后，结扎并切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
五、实验结果1、正常呼吸曲线家兔在正常状态下，呼吸运动平稳，呈现一定的节律性。
2、增加吸入气中二氧化碳浓度当家兔吸入含较高浓度二氧化碳的气体后，呼吸运动明显加深加快。
家兔呼吸运动调节解读
家兔呼吸运动调节解读家兔呼吸运动的调节实验目的：1.用气管插管描记呼吸流量间接反映家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的方法，研究吸入二氧化碳、静脉注射乳酸溶液、增大解剖无效腔以改变血液中二氧化碳浓度、氧气浓度、[H+]和气道阻力、切断颈部迷走神经、电刺激迷走神经中枢端对呼吸运动的影响并初步探讨其作用部位，并分析机制。
2.掌握气管插管术和神经血管分离术。
实验材料：对象：家兔；试剂：20g/L 乳酸溶液，氨基甲酸乙酯；仪器：RM6240生物信号采集系统，手术器械一套，兔手术台，T 型气管插管，注射器，50cm长橡皮管一条，CO2气袋，丝线，铁架台，婴儿秤，呼吸换能器，电刺激连线。
实验方法：1.麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入，注意观察家兔的反应。
待麻醉后，将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头。
2．手术：剪去家兔颈部的被毛，沿颈部正中线作一长6～7cm的切口，用止血钳钝性分离皮下组织，暴露并游离气管，并于气管下穿线备用。
在气管两侧肌肉深面颈动脉鞘内分离迷走神经，并在其下穿线备用。
在甲状软骨下第4～5个气管软骨处作一“⊥”形切口。
将T 型气管插管向肺的方向插入气管内，用预留备用线线结扎固定。
手术完毕后用纸巾擦拭手术伤口部位。
3．观察准备：用皮管连接气管插管和呼吸换能器。
打开呼吸换能器，启动计算机RM6240生物信号采集系统，点击“实验”菜单，选择“呼吸运动调节”，双击一通道，调节增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕中央，便于观察。
4．观察项目（1）记录正常呼吸曲线作为对照，辨认曲线上呼气、吸气的波形方向。
（2）在气管插管一个侧管上接一根长50cm胶管（流量法：接通气口），观察和记录呼吸运动的变化。
（3）增加吸入气中CO2浓度：待呼吸曲线恢复正常，将装有CO2气袋的皮管口移近气管插管的侧管，打开皮管夹子，使吸入气中含有较多的CO2。
记录并观察吸入高浓度的CO2对呼吸运动的影响。
兔呼吸运动的调节讲稿
兔呼吸运动的调节讲稿兔呼吸运动的调节观看本次实验内容模拟实验，示范操作过程。
介绍和强调注意事项，特别是麻醉和静脉注射时的注意事项。
介绍MedLab生物信号采集处理系统的使用。
实验目的观察各种因素对呼吸运动的影响,结合理论,分析其作运用途径,了解呼吸运动的调节机制。
实验原理呼吸运动是一种节律性活动,其深度和频率能随机体活动水平而改变.正常情况下的节律性活动是呼吸中枢节律性活动的反映,肺牵张反射是保证呼吸节律的机制之一。
随生理状态的不同,其呼吸所发生的适应性变化,是由于各种剌激直接作用于呼吸中枢,或间接地通过各种化学感受器而引起.最终由呼吸中枢通过支配呼吸肌的传出神经,引起呼吸肌产生不同水平的收缩,使呼吸运动随之而改变,以维持血液中正常的O2和CO2的含量。
实验对象家兔,雌雄不拘。
实验器材和药品见《机能实验学》114页。
实验步骤1、动物麻醉与固定:以3%戍巴比妥钠(剂量为每公斤体重1m1)为麻醉剂.由兔耳缘静脉缓慢注入，待兔麻醉后,腹部朝上固定于手术台上。
2、手术沿兔颈部正中切4-5cm长的切口，用止血钳向下钝性分离,暴露气管,把甲状软骨以下的气管与周围组织分离。
在气管上做一倒“T“形切口,然后插入"Y"形气管套管,并用棉线将气管套管结扎固定。
分离出两侧迷走神经,在神经下穿一细丝备用.手术完毕后,用温热的生理盐水纱布盖于伤口。
3、固定呼吸换能器。
4、启动MedLab生物信号采集处理系统,点击菜单“实验/常用生理学实验”，选择“呼吸运动的调节”，调用己设置好仪器参数的文件，开始采样观察。
5.观察项目首先观察正常呼吸曲线。
(l)增加吸入气中的C02浓度:将装有C02的球胆通过一细塑料管插入气管套管一侧管中.打开球胆的夹子.使一部分C02随着吸气进入气管注意，一旦呼吸有所变化应迅速停止CO2的吸入,吸入过量的CO2会造成兔的死亡。
观察吸入高浓度的C02对呼吸运动的影响,及去掉CO2球胆后呼吸运动的恢复过程.(2)缺02对呼吸运动的影响:将气管插管一侧管通过钠石灰瓶与盛在一定容量空气的气囊相连，另一侧管夹闭;使兔在-段时间内只能吸入气囊中的空气.此时,动物呼出CO2可被瓶内的钠石灰吸收.随着呼吸的进行,气囊中的02越来越少,使兔处于缺02的状况后,再观察呼吸运动的变化.(3)血液酸碱度对呼吸运动的影响:用5m1注射器,由耳缘静脉注入3%的乳酸溶液2m1,使血液的pH值降低后,观察呼吸运动的变化.(4)增大无效腔后对呼吸运动的影响:将气管套管开口端连接一长约50cm的橡皮管,使无效腔增大后,观察对呼吸运动的影响。
家兔呼吸运动的调节PPT课件
七、观察项目（注意标记）
（1）增加吸入气中CO2浓度（二氧化碳发生装置 ） （2）缺氧：简易缺02装置 （3）增大无效腔：连接橡皮管 （4）窒息：堵塞气管插管口 （5）切断一侧迷走神经 （6）切断另一侧迷走神经
每次做完一个项目后应待呼吸恢复正常平稳 后做下一个项目
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八、测定胸膜腔内压
在右侧腋前线第6、7肋间用边接水检压 计的针头穿刺激胸腔，注意落空感，即穿 入胸膜腔，可见水检压计U形管液面在负压 水平下随呼吸而波动，即可测定正常胸腔 腔内压，记录其数值
呼吸运动的调节、胸膜 腔内压的测定
1
肺牵张反射（pulmonary strech reflex）
1868年,Breuer和Hering,在麻醉动物发现:由肺扩张或肺萎陷引起 的吸气抑制或吸气兴奋的反射称为肺牵张反射.
2
肺扩张反射
吸气 肺扩张 气管、支气管SM的牵张感受器 迷走N传入 延髓吸气切断机制 吸气转入呼气 加快呼吸频率（特点： 是牵张感受器，适应慢，阈值低；平静呼吸并不参与调节,仅在肺 顺应性降低时才参与调节呼吸运动；）
颈动脉体 主动脉体
适宜刺激： PO2↓ PCO2↑ [H+]↑
5
2.中枢化学感受器
Ⅵ
Ⅶ Ⅷ
Ⅸ Ⅹ
ⅪⅫ
影响呼吸的 化学敏感区
呼吸有 关核团
H+ HCO3H2CO3
H2O+CO2
中枢化学感受器位于延髓腹外侧浅表部位,左右对称,可分为头、中、尾三个区
6
中枢化学感受器: 延髓腹外侧区域 适宜刺激： H+高度敏感， 对缺O2不敏感 脑脊液中AC量少 CO2的间接作用慢
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6.插气管插管并固定 7.检查呼吸道是否通畅
家兔呼吸运动PPT课件
(6)剪开并剪断右侧肋骨，造成人工开放性气胸，观察并记 录家兔的运动呼吸曲线，计算呼吸频率并测量及强度，分 析该因素引起呼吸运动变化的机制。
13
观察过程中的注意事项
用生理盐水湿润过的纱布盖住颈部手术部位； 连接张力传感器时确定家兔以完全麻醉，否则家兔的剧烈挣扎易 损坏张力传感器； 每一项实验前，要待家兔已经恢复正常呼吸后才能开始，并且描 记一段正常的呼吸曲线作为对照。每项实验观察时间不宜过长， 出现效应后应立即去掉刺激因素；
家兔呼吸运动的调节1ppt课件实验目的掌握家兔耳缘静脉注射法家兔颈部手术操作神经血管分离气管插管技术记录家兔呼吸曲线观察增加无效腔气道阻力肺牵张反射开放性气胸等因素对呼吸运动的影响了解各种因素影响呼吸运动的机制2ppt课件实验原理?人体及高等动物的呼吸运动能持续有节律的进行是由于体内调节机制的存在
家兔呼吸运动的调节
呼吸运动受神经以及血液中O2，CO2，[H+]等物质浓度调 节。
肺的牵张反射通过迷走神经传导调节信号，通过这个反射 弧来参与呼吸节律的调节。
3
实验材料
1、动 物：家兔 2、器 械：动物手术器材（手术刀、手术剪、止血钳、
玻璃分针, 丝线，注射器，兔台），气管插 管，体重秤，张力换能器，生理信号采集系 统，医用橡皮管，纱布，20 ml 注射器， 玻璃分针。
10
③ 气道阻力对呼吸运动的影响：待呼吸运动恢复 正常后，将气管插管的两个侧管同时夹闭数秒。 观察并记录家兔的运动呼吸曲线，计算呼吸频 率并测量强度，分析该因素引起呼吸运动变化 的机制；
11
④ 肺牵张反射对呼吸运动的影响：待呼吸运动平稳后，夹闭气 管插管的一侧管，用20 ml 注射器吸入20 ml 空气，在吸气 末期通过另一侧管徐徐向肺内注入，观察并记录家兔的运动 呼吸曲线，计算呼吸频率并测量及强度。实验后立即打开夹 闭的侧管，使呼吸恢复正常。同法，于呼气末期用注射器抽 取肺内气体，观察并记录家兔的运动呼吸曲线，计算呼吸频 率并测量强度，分析该因素引起呼吸运动变化的机制（注气 与抽气的时间仅限于三个呼吸节律的时间，然后立即打开夹 闭的侧管）；
机能学实验家兔呼吸运动的调节
实验家兔呼吸运动的调节【目的】1、观察血液中化学因素（PCO2、PO2、和〔H+〕）改变对家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的影响，初步探讨其作用部位，并分析机制。
观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用，初步探讨其机制。
2、掌握气管插管术和神经血管分离术。
【材料和方法】1、材料家兔；手术台，手术器械；20ml和1ml注射器，橡皮胶管；装有CO2的气袋；生理盐水，氨基甲酸乙酯，乳酸；呼吸换能器，微机生物信号采集处理器系统2、方法2.1 实验系统连接及参数设置用胶管连接流量头与气管插管，流量头连接呼吸流量换能器。
用胶管连接呼吸换能器测压口和气管插管，呼吸换能器输出线接微机生物信号处理系统。
启动系统软件，在系统软件窗口设置仪器参数。
2.2手术准备2.2.1麻醉固定家兔称重后，按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。
待兔麻醉后，将其仰卧，先后固定四肢及兔头。
2.2.2手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6～7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管及与气管平行的左、右血管神经鞘，细心分离两侧鞘膜内迷走神经，在迷走神经下穿线备用。
分离气管，在气管下穿两根粗棉线备用。
2.2.3气管插管在环状软骨下约1cm处，做“⊥”形剪口，用纱布将气管切口及气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺端插入，插时应动作轻巧，避免损伤气管黏膜引起出血，用一粗棉线将插管口结扎固定，另一棉线在切口的头端结扎止血。
2.3实验观察2.3.1记录正常呼吸曲线启动生物信号采集处理系统记录按钮，记录一段正常呼吸运动曲线作为对照。
辨认曲线上吸气、呼气的波形方向（呼气曲线向上，吸气曲线向下）。
2.3.2增加无效腔在气管插管一个测管上接一根长50cm胶管（流量法：接通气口），以增加无效腔。
观察和记录呼吸运动曲线的变化。
一旦出现明显变化，则立即去除胶管。
2.3.3增加吸入气中二氧化碳分压待呼吸曲线恢复正常，将气管插管的一个测管接通装有CO2的气袋，使家兔对于CO2气袋呼吸，观察并记录呼吸运动的变化。
机能实验学教学浅析——以“家兔呼吸运动调节”为例
机能实验学教学浅析———以“家兔呼吸运动调节”为例张伊（锦州医科大学医疗学院，辽宁锦州121001）信息时代为社会发展注入了全新的动力，改变了传统的生活、生产、经营方式，由此给教学工作带来了新的变革契机，顺应这种需求，教育界形成了求新求变的新气象，针对教育方法、教学模式的创新与尝试层出不穷[1]。
在这场变革中，学校的集体教育优势得以凸显，通过学校学习，学生更具有社会荣誉感和责任感，更加具有处理突发性事件和杂乱信息的能力，也代表着他们能够更加从容地面对未来社会上的种种问题。
这也是素质教育的目的所在，是提升学生今后工作与生活能力的最基础保障。
生物学课程从研究身边的植物、动物，延伸至对生命运作机理，对生命的探究，侧重于解释身边自然的关联关系和各自的运作原理。
由于源于生活中的常见物种，因此学生学习的入门门槛较低，容易引起学习兴趣。
依托这门课程独特的魅力，结合课程改革实践，在学生喜爱的实验课程中，增加能力培养的元素，引导学生思考，构建思维模式雏形，锻炼学生的动手能力，实现眼、脑、手的协调统一，从而提升学生的科学素质。
但如果学生在学习过程中缺少关于思维的专项发展训练，仅仅照本宣科，会导致知识面狭窄，不能构建知识体系的勾连关系，形成知识结构的偏颇、技能的缺失，如不改正，那么在以后的工作、生活中解决知识结构不良的问题会难上加难[2]。
基于此，借助生物学机能实验课教学的课程革新，引入思维发展的培养内容，从教学大纲的基本知识入手，通过引导，帮助学生独立思考，实现基本的解决实际问题能力，并形成触类旁通的思维习惯，全方位培养学生的综合素质。
一、学生思维发展情况研究生物学课程是初中新增加的课程，是自然科学教学的组成部分，旨在增加学生生物学知识储备，培养探索自然、了解生命的科学精神，在知识结构层面上丰富学生的知识面，学习科学思维的能力。
由于初中课程体系对比小学，在知识量、涉及领域、思考方式、思维发展目标等方面都有了本质的提升，因此造成了一部分学生的不适应[3]。
实验三 家兔呼吸运动的调节PPT学习课件
素对呼吸运动的影响及其机制 ① 无效腔 ② 化学感受性反射：PCO2，PO2 ③ 气胸 ④ 肺牵张反射
2
实验原理 • 呼吸运动是受呼吸中枢调控的呼吸肌节律性收缩舒张引起的胸
做倒t形剪口清除血凝块后向心方向插入气管插管绑线固定在气管两侧识别颈总动脉及其周围神经束并游离一侧迷走神经穿线备用暴露并游离剑突用小钩钩住剑突细线连接张力换能器调节至适当高度运行机能实验系统程序在第一通道记录张力信号121314151617181920实验步骤
实验三 家兔呼吸运 动的调节
1
实验目的
廓容积变化，是肺通气的直接动力。
• 自动节律性呼吸运动受体内外各种因素的影响，它们主要通过 化学感受性神经反射和机械感受性反射在延髓呼吸中枢的整合 作用下对呼吸的频率和幅度进行适应性调节；血液中的PCO2 ， PO2和[H+]是主要的化学因素。
• 肺牵张反射的传入神经是迷走神经，此反射参与家兔节律性呼 吸的维持和调节。
• 胸膜腔的密闭性和负压的维持是呼吸运动正常进行的必要调节， 气胸是胸膜腔功能被破坏的临床表现。
3
4
实验动物、器械和仪器
• 实验动物：家兔 • 实验用具
1. 哺乳动物常规手术器械
2. 玻璃解剖分离针
3. 兔气管插管
4. 张力换能器
5. 金属钩及连线
6. 30cm橡胶管
7. 二氧化碳Βιβλιοθήκη 囊8. 碳石灰呼吸瓶注意：以上每一步骤施加实验因素时均需在呼吸曲线上添加标记
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家兔呼吸运动的调节与呼吸机能不全教学内容
呼吸 频率 幅度
心率 血压
窦反射
血气分析 PaO2 PaCO2 pH
全身情况
讨论
1 结合实验结果的描述和列表比较，分析实验现象 的机制；
2 分析实验成功失败的经验教训。
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（3）记录呼吸曲线、循环曲线，观察全身状况， 做窦反射；
（4）向胸腔注射１００～１５０ml空气侧胸内压；
（5）重复上面的操作(3) ；
（6）抽气抢救，侧胸内压、待家兔正常重复4-(1) ；
穿刺成功的标志
可见水检压计胸腔侧 玻管中液平面抬高并 随家兔呼吸上下波动
注意事项
1 胸腔穿刺术前注意先检查胸腔穿刺针确保针 头和管路通畅、不漏气；
实验步骤
5 阻塞性通气不足项目观察：
（1）夹闭通气胶管出口的１／３； （2）记录呼吸曲线、循环曲线，观察全身状况，
做窦反射； （3）夹闭通气胶管出口的２／３；
（4）重复上面的（2）操作
（5）恢复气道通畅，待家兔正常；
实验步骤
6 限制性通气不足项目观察： （1）于兔右侧锁骨中线第４、５肋间的肋骨上缘 进行胸腔穿刺,侧胸内压（穿刺成功的标志见下图）； （2）向胸腔注射５０ml空气,侧胸内压；
（3）停止释放二氧化碳气体，待家兔呼吸恢复正常
实验步骤
4 呼吸运动的影响因素观察：
（4）经气管插管开放的分支给家兔吸入低氧分压的 气体，观察其呼吸运动的变化；
（5）停止吸低氧分压气体，待家兔呼吸恢复正常；
（6）延长气管插管分支的长度、增加无效腔，观察 其呼吸运动的变化；恢复
（7）恢复气管插管分支正常长度，等待其呼吸运动 的恢复；
U形水检压计
机能实验学-呼吸运动调节及急性呼吸功能不全PPT课件
1、实验准备
1）称重，麻醉（ 25%乌拉坦，参考剂量4ml/kg），固定。
2）按常规操作，分离气管，并插管。
2、复制肺水肿模型（耳缘静脉注射）
1）对照组： 生理盐水（ 0.3 ml/kg）
生理盐水（ 0.08 ml/kg）
2）实验组： 生理盐水（ 0.3 ml/kg）
油酸（ 0.08 ml/kg） 3）预防组： 1 c6m54-2（剂量 3 mg/kg在，气规管格分：叉1上0方mg1c/mml处) 结扎
2020年10月2日
3
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油酸 （剂量 0.08 ml/k剪Leabharlann 除）结扎线上方气管3、观察项目
消除气管长度不等的差异
1）观察呼吸、气管插管内有无泡沫样液体流出。
2）30min后放血处死家兔，打开胸腔，取肺脏，观察大体改变。
在气管分叉上方1cm处结扎，剪除结扎线上方气管称肺重，
计算肺系数[肺重(g)/兔体重(kg)]。正常肺系数4.0-5.0。
汇报人：XXX 汇报日期：20XX年10月10日
4
家兔实验性肺水肿
第一课件网网站
2020年10月2日
1
一、目的
1. 学习肺水肿家兔模型复制方法； 2. 观察肺水肿家兔的呼吸及肺的外观等指标； 3. 观察654-2对油酸所致肺水肿的预防作用。
家兔呼吸运动的调节与呼吸机能不全课件
家兔呼吸运动的调节
目的
通过研究家兔呼吸运动的调节和呼吸机能不全，深入了解呼吸系统的生理和病理机制，为临床治疗提供理论依据和实践指导。
目标
掌握家兔呼吸系统的基本结构和功能，理解呼吸运动的调节机制，掌握家兔呼吸机能不全的表现、原因和治疗方法，提高对呼吸系统疾病的认识和治疗水平。
02
CHAPTER
家兔呼吸运动的调节与呼吸机能不全课件
目录
引言家兔呼吸系统的基本结构家兔呼吸运动的调节机制呼吸机能不全的病理生理学家兔模型在呼吸机能不全研究中的应用总结与展望
01
CHAPTER
引言
研究家兔呼吸系统的生理机制，包括呼吸中枢、呼吸肌和呼吸道的结构和功能，以及如何调节呼吸运动的频率、深度和节奏。
探讨家兔在各种病理条件下，如肺炎、肺水肿、慢性阻塞性肺疾病等，出现的呼吸机能不全的表现、原因和治疗方法。
呼吸机能不全的防治
针对家兔呼吸机能不全，应采取综合防治措施，包括改善饲养环境、加强饲养管理、及时治疗呼吸道疾病等。
03
开发新型防治方法
针对家兔呼吸机能不全，开发新型的防治方法，如药物治疗、基因治疗等。
01
深入研究家兔呼吸运动的调节机制
进一步探讨中枢化学感受器在呼吸运动调节中的作用，以及物理因素如何影响呼吸运动。
03
CHAPTER
家兔呼吸运动的调节机制
血液中的CO2浓度是调节呼吸运动的重要化学因素。CO2刺激呼吸运动的作用是通过刺激中枢化学感受器实现的，它能够将CO2转化为H+，进而影响呼吸中枢的活动。
CO2
血液中的O2浓度也对呼吸运动产生影响，低氧刺激可以增加通气量，以维持足够的O2供应。
O2
家兔的呼吸肌（如膈肌和肋间肌）具有自身的收缩机制，能够根据需要调整肌肉张力，从而改变肺通气量。
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实验目的
通过本实验过程，学习和掌握用微机化生物信 号采集处理系统记录家兔呼吸运动的方法。观察健 康家兔的呼吸运动及各种刺激因素对呼吸运动的影 响。掌握机体正常呼吸运动的规律和调节机制。
实验步骤
1 固定与麻醉
：保持家兔颈部舒展、端正，沿中线剪去颈
实验步骤
3 连接呼吸和血压记录装置，设置并运行操作系统软件；
气管插管一分 叉连接呼吸换 能器
动脉插管连接 血压换能器
实验步骤
4 呼吸运动的影响因素观察： （1）记录正常a呼吸曲线、b循环曲线，观察c全身 状况，e做窦反射；
（2）经气管插管开放的分支给家兔吸入少量二氧 化碳气体，观察呼吸运动的变化；
呼吸 频率 幅度
心率 血压
窦反射
血气分析 PaO2 PaCO2 pH
全身情况
讨论
1 结合实验结果的描述和列表比较，分析实验现象 的机制；
2 分析实验成功失败的经验教训。
此课件下载可自行编辑修改，仅供参考！ 感谢您的支持，我们努力做得更好！谢谢
U形水检压计
穿刺针
T形玻璃三通管
兔气胸实验主要器材
实验结果
1 先保存微机中记录的全部实验数据，再对图形数据 进行编辑、重构，输出重构的曲线、保存并打印。
2 将上述实验结果合并填入下表1。
表1 家兔通气功能障碍实验结果
处理因素
正常 夹闭 1/3 夹闭 2/3
恢复 注入少量空气
注更多空气 抽气 全夹闭
实验步骤
5 阻塞性通气不足项目观察：
（1）夹闭通气胶管出口的１／３； （2）记录呼吸曲线、循环曲线，观察全身状况，
做窦反射； （3）夹闭通气胶管出口的２／３；
（4）重复上面的（2）操作
（5）恢复气道通畅，待家兔正常；
实验步骤
6 限制性通气不足项目观察： （1）于兔右侧锁骨中线第４、５肋间的肋骨上缘 进行胸腔穿刺,侧胸内压（穿刺成功的标志见下图）； （2）向胸腔注射５０ml空气,侧胸内压；
实验中，对家兔每进行一次处理，都要注意在显
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示屏的通道中同步将处理因素的名称标记在运行 中的曲线上，以便于实验效应的观察、比较及数 据处理等；
注意事项
3 在胸腔穿刺和测定胸内压时，别忘记先将T形玻 璃三通管与大气相通分支开口处的橡皮管夹闭， 以免提前造成家兔气胸；而在由该开口处向胸腔 内注气前则应先夹闭三通管与水检压计间的连接管， 以免将检压计管中的水驱出管外（见下图）。
部腹面正中皮肤上的毛，以3～5mL的1%普鲁卡因 在颈部腹面沿中线皮下进行局部麻醉，麻醉药用 量按切口长度1mL/cm；
实验步骤
2 手术 （1）分离气管，在气管下方留置一根扎底线。
（2）暴露和分离两侧颈总动脉，一侧做动脉插管（详 见后面示意图），另侧下方放置一根丝线备用；
（3） 进行气管插管术：
动脉插管手法示意
（3）记录呼吸曲线、循环曲线，观察全身状况， 做窦反射；
（4）向胸腔注射１００～１５０ml空气侧胸内压；
（5）重复上面的操作(3) ；
（6）抽气抢救，侧胸内压、待家兔正常重复4-(1) ；
穿刺成功的标志
可见水检压计胸腔侧 玻管中液平面抬高并 随家兔呼吸上下波动
注意事项
1 胸腔穿刺术前注意先检查胸腔穿刺针确保针 头和管路通畅、不漏气；
（3）停止释放二氧化碳气体，待家兔呼吸恢复正常
实验步骤
4 呼吸运动的影响因素观察：
（4）经气管插管开放的分支给家兔吸入低氧分压的 气体，观察其呼吸运动的变化；
（5）停止吸低氧分压气体，待家兔呼吸恢复正常；
（6）延长气管插管分支的长度、增加无效腔，观察 其呼吸运动的变化；恢复
（7）恢复气管插管分支正常长度，等待其呼吸运动 的恢复；