原代细胞的培养法
原代细胞培养过程
原代细胞培养过程细胞是生命的基本单位,是构成生物体的基本组成部分。
细胞的研究对于生命科学的发展具有重要的意义。
原代细胞是从组织或器官中分离出来的未经过传代的细胞,具有较高的生物学活性和生物学特性,是细胞学、生物学、医学等领域的重要研究对象。
原代细胞培养是将原代细胞在体外培养的过程,是细胞学研究的重要手段之一。
原代细胞培养的目的原代细胞培养的主要目的是为了研究细胞的生物学特性、生长和分化规律、细胞信号传导、细胞凋亡、细胞周期等方面的问题。
同时,原代细胞培养还可以用于药物筛选、毒性测试、细胞治疗等方面的研究。
原代细胞培养的步骤原代细胞培养的步骤主要包括细胞分离、细胞培养、细胞传代等。
1. 细胞分离细胞分离是将组织或器官中的细胞分离出来的过程。
常用的细胞分离方法有机械分离、酶消化、胶原酶消化等。
其中,酶消化是最常用的方法之一。
酶消化可以使细胞间的胶原纤维、基质等物质被消化,从而使细胞分离出来。
酶消化的时间和酶的浓度需要根据不同的组织和细胞类型进行调整。
2. 细胞培养细胞培养是将分离出来的细胞在体外培养的过程。
细胞培养需要提供适宜的培养基、培养条件和培养器具。
培养基是细胞培养的基础,包括营养物质、生长因子、激素等。
培养条件包括温度、湿度、氧气浓度、CO2浓度等。
培养器具包括培养皿、培养瓶、细胞培养箱等。
3. 细胞传代细胞传代是将原代细胞在体外培养的过程中,将细胞分离并继续培养的过程。
细胞传代的次数越多,细胞的生物学特性和生物学活性就越低。
因此,在进行原代细胞培养时,需要根据实验的需要和细胞的特性来确定细胞传代的次数。
原代细胞培养的注意事项1. 细胞分离时需要注意细胞的完整性和活性,避免对细胞造成损伤。
2. 细胞培养时需要注意培养基的配制和培养条件的控制,避免对细胞造成不良影响。
3. 细胞传代时需要注意细胞的生长状态和细胞的传代次数,避免对细胞造成不可逆的影响。
4. 细胞培养过程中需要注意细胞的无菌性和培养器具的消毒,避免细胞被细菌、真菌等微生物污染。
细胞原代培养细胞生物学实验报告
细胞生物学实验报告细胞原代培养姓名:学号:班级:专业:同组成员:一、实验原理细胞培养是生物学和医学研究中最常用的手段之一,可分为原代培养和传代培养两种。
原代培养是直接从生物体获取组织或器官的一部分进行培养。
由于培养的细胞刚刚从活体组织分离出来,故更接近于生物体内的生活状态。
这一方法可为研究生物体细胞的生长、代谢、繁殖提供有力的手段。
同时也为以后传代培养创造条件。
原代培养的方法:1、组织块法在平皿中用弯头剪把组织尽量剪碎,每个组织块小于1mm3大小。
用Hanks 液洗涤2—3次,自然沉淀。
用吸管吸去上清液。
将组织块贴于培养瓶进行培养。
2、酶消化法将1mm3大小的组织块放入1个三角瓶内加入10—30ml的%的胰蛋白酶。
370C磁棒搅拌消化20-30分钟。
然后终止消化。
用几层无菌纱布过滤。
取过滤液,离心800rpm 5—10分钟收集细胞。
弃上清,加入带有双抗的培养基,放入培养瓶培养。
取材注意事项:取材要注意新鲜和保鲜。
取材应严格无菌。
取材和原代细胞制作时,要用锋利的器械,如手术刀或剃须刀片切碎组织,尽可能减少对细胞的机械损伤。
要仔细去除所取材料上的血液(血块)、脂肪、坏死组织及结缔组织,切碎组织时应避免组织干燥,可在含少量培养液的器皿中进行。
取材应注意组织类型、分化程度、年龄等,一般来讲,胚胎组织较成熟个体组织容易培养,分化低的较分化高的组织容易生长,肿瘤组织较正常组织容易培养。
二、实验目的1、理解细胞原代培养原理2、熟悉细胞原代培养方法与过程3、了解细胞原代培养的应用4、独立进行细胞原代培养操作三、实验材料手术小直剪刀、眼科直镊子、眼科弯镊子、玻璃平皿、培养瓶、试管、移液管、巴斯德吸管、废液缸、75%酒精棉球、酒精灯。
动物:9-12日龄的鸡胚蛋四、实验步骤1、购买9-12日龄鸡胚蛋。
放入孵化箱中孵养待用。
2、取鸡胚蛋一枚放入超净工作台中,用酒精棉球擦拭鸡蛋壳后,气室处擦拭两遍,用镊子小心去除气室部分的蛋壳。
原代细胞培养的名词解释
原代细胞培养的名词解释在细胞生物学领域里,原代细胞培养是一种常见的实验技术。
它是通过从一个生物体内分离和培养细胞,使其在体外继续生长和繁殖的过程。
通过原代细胞培养,我们可以研究细胞的生理特性、功能和互作,有助于我们深入了解生物体内组织和器官的基本构成和功能,以及与疾病相关的异常细胞行为。
一、原代细胞的选择和分离方法要进行原代细胞培养,第一步是选择适合的原代细胞。
原代细胞是从组织或器官中分离出来的初代细胞,与体内的细胞相似,具有原始的细胞特性。
常用的原代细胞包括人类和动物的肌肉细胞、皮肤细胞、神经细胞等。
原代细胞的分离通常通过组织分块法或酶处理法进行。
组织分块法是将组织样本切割成小块,然后用细胞培养基将其浸泡,通过适当的培养条件,细胞会从组织中游离出来并生长扩增。
酶处理法则是使用特定的酶来消化组织,使细胞从基质中分离出来。
二、原代细胞培养的技术和条件原代细胞的培养需要提供适合其生长和繁殖的环境。
培养基是最基本的条件,通常包括营养物质、生长因子、补体和抗生素等。
细胞培养基中的成分要根据细胞类型的不同而调整,以满足其特定的营养需求。
细胞培养的环境因素也很重要。
温度、湿度和气体组成是常见的调节参数。
温度需要恒定在37摄氏度左右,以模拟体内的正常生理条件。
湿度的控制可以减少蒸发和细胞表面的沉积。
气体组成通常是5%二氧化碳和95%空气,以稳定酸碱平衡。
在原代细胞培养中,还需要注意细胞的传代。
传代是指将细胞从一个培养皿转移到另一个培养皿中,以保证细胞的生长和更新。
传代时要遵循适当的规程和技术,以确保细胞的稳定和增殖。
三、原代细胞培养的应用原代细胞培养在细胞生物学研究中具有广泛的应用。
通过原代细胞培养,我们可以研究细胞的分化、增殖、凋亡和信号传导等基本生理过程。
这对于揭示细胞发育和组织构建的机制非常重要。
此外,原代细胞培养还可以用于研究疾病的发生机制和治疗方法。
通过比较病变组织和正常组织的原代细胞,我们可以发现细胞中的异常变化,从而揭示疾病的发生和发展规律。
原代细胞培养和传代培养的方法及其注意事项
原代培养原理将动物机体的各种组织从机体中取出,经各种酶(常用胰蛋白酶)、螯合剂(常用EDTA)或机械方法处理,分散成单细胞,置合适的培养基中培养,使细胞得以生存、生长和繁殖,这一过程称原代培养。
仪器、材料及试剂仪器:培养箱(调整至37℃),培养瓶、青霉素瓶、小玻璃漏斗、平皿、吸管、移液管、纱布、手术器械、血球计数板、离心机、水浴箱(37℃)材料:动物组织块试剂:1640培养基(含20%小牛血清),0.25%胰酶,Hank′s液,碘酒原代消化培养法1. 准备:取各种已消毒的培养用品置于净化台面,紫外线消毒20分钟。
开始工作前先洗手、75%酒精擦拭手至肘部。
2. 布局:点燃酒精灯,安装吸管帽。
3. 处理组织:把组织块置于烧杯中,用Hanks液漂洗2~3次,去除血污;如怀疑组织可能污染,可先置于含有青链霉素的混合液中30~60分钟。
4. 剪切:用眼科剪把组织切成2~3毫米大小的块,以便于消化。
加入比组织块总量多30~50倍的胰蛋白酶液,然后一并倒入三角烧瓶中,结扎瓶口或塞以胶塞。
5. 消化:或用恒温水浴,或置于37℃温箱消化均可,消化中每隔20分钟应摇动一次,如用电磁恒温搅拌器消化更好。
消化时间依组织块的大小和组织的硬度而定。
6. 分离:在消化过程中见消化液发混浊时,可用吸管吸出少许消化液在镜下观察,如组织已分散成细胞团或单个细胞,立即终止消化,随即通过适宜不锈钢筛,滤掉尚未充分消化开的组织块。
低速(500~1000转/分)离心消化液5分钟,吸出上清,加入适量含有血清的培养液。
7. 计数:用计数板计数,如细胞悬液细胞密度过大,再补加培养液调整后,分装入培养瓶中。
对大多数细胞来说,pH要求在7.2~7.4范围,培养液呈微红色,如颜色偏黄,说明液体变酸,可用NaHCO3调整。
8. 培养:置于36.5℃温箱培养,如用CO2温箱培养,瓶口需用纱布棉塞或螺旋帽堵塞,纱布塞易生霉菌,每次换液时需要换新塞。
原代组织块培养法1. 剪切:把组织小块置于小烧杯或青霉素小瓶中,用Hanks液漂洗二三次以去掉表面血污,吸静Hanks液,用眼科剪反复剪切1mm3块为止。
细胞的原代培养
细胞原代培养【实验目的】1.理解细胞原代培养原理2.熟悉细胞原代培养方法与过程3.了解细胞原代培养的应用4.独立进行细胞原代培养操作【实验原理】1、原代培养实验原理细胞培养是生物学和医学研究中最常用的手段之一,可分为原代培养和传代培养两种。
原代培养是直接从生物体获取组织或器官的一部分进行培养,即组织直接从机体获取后,通过组织块长出单层细胞,或者用酶消化或机械方法将组织分散成单个细胞开始培养,在首次传代前的培养可认为是原代培养。
由于培养的细胞刚刚从活体组织分离出来,故更接近于生物体内的生活状态。
这一方法可为研究生物体细胞的生长,代谢,繁殖提供有力的手段。
同时也为以后传代培养创造条件。
原代培养的过程指动物的组织或器官从机体取出后,经机械法或各种酶类(常用胰蛋白酶)和鳌合剂(常用EDTA)处理,使之分散成单个细胞,加入适量培养基,置于合适的培养容器中,在无菌、适当温度和一定条件下,使之生存、生长和繁殖的过程。
原代培养的方法有:a.组织块法:在平皿中用弯头剪把组织尽量剪碎,每个组织块小于1mm3大小。
用Hanks液洗涤2—3次,自然沉淀。
用吸管吸去上清液。
将组织块贴于培养瓶进行培养。
b.酶消化法:将1mm3大小的组织块放入1个三角瓶内加入10—30ml的0.125%的胰蛋白酶。
370C磁棒搅拌消化20-30分钟。
然后终止消化。
用几层无菌纱布过滤。
取过滤液,离心800rpm 5—10分钟收集细胞。
弃上清,加入带有双抗的培养基,放入培养瓶培养。
【实验仪器、材料、试剂及用品】1.仪器:荧光显微镜,CO2培养箱2.材料:孕鼠3.试剂:(1) 培养液:为DMEM,添加10%新生牛血清(NBS)、青霉素100 u/ ml 、链霉素100ug/ml。
(2)消化液:为0.125%胰蛋白酶—0.02%EDTA 混合消化液。
4.用品:镊子,剪刀,培养瓶,试管,移液管,巴斯德吸管,废液缸,75%酒精棉球,酒精灯、小指管。
【实验步骤】(一)小鼠胚胎的准备:1.取怀孕16~18d的母鼠,断颈处死,置于75%的酒精中。
细胞培养操作指南
细胞培养操作指南1,原代细胞培养原代培养需要严格要求:(1)取材时需要去除脂肪和坏死的组织(2)为减少对组织的损伤,需用锋利的器具(3)适度离心以去除用于解离的酶(4)由于原代培养组织细胞的存活率很低,故用于原代培养的细胞的密度应高于正常的传代培养的细胞密度。
(5)营养丰富的培养基比单一的培养基更可取,如果要添加血清,胎牛血清比牛马的血清更好。
(6)对于取材部位易于感染(如皮肤)应先用70%乙醇消毒,在无菌条件下切除组织,尽快转移入BSS或培养基中。
不要再培养室取材,因为动物可引入微生物污染。
若必须推迟,可保存在4℃,72h。
1. 剪切组织先将所取得的组织,用D-Hanks或Hanks液清洗,以去除表面血污,并用手术镊去除粘附的结缔组织等非培养所需组织。
再次清洗后,用手术剪将组织剪成若干小块,移入青霉素小瓶或小烧杯中,加入适量缓冲液,用弯头眼科剪,反复剪切组织,直到组织成糊状,约1mm3大小。
静置片刻后,用吸管吸去上层液体,加入适当的缓冲液再清洗一次。
2. 消化分离消化分离的目的是将细小的组织块消化分离成细胞团或分散的单个细胞,以利于进一步的培养,常用的消化酶有胰蛋白酶和胶原酶。
3. 培养细胞悬液用计数板进行细胞计数,用培养液将细胞数调整为2~5×105 cells/m1,或实验所需密度。
分装于培养瓶中,使细胞悬液的量以覆盖后略高于培养瓶底部为宜。
置CO2培养箱内,5%CO2,37℃静置培养。
一般3~5d,原代培养细胞可以粘附于瓶壁,并伸展开始生长,可补加原培养液量1/2的新培养液,继续培养2~3 d后换液,一般7~14 d可以长满瓶壁,进行传代。
注意事项:1. 无菌操作细菌或霉菌污染是培养失败的常见原因,必须加强各个环节的无菌操作观念,以预防为主,一旦污染,一般是很难消除。
2. 培养液所用的培养液必须满足细胞生存和生长的必要条件。
由于细胞来源的动物种类、组织类型不同,对培养液的要求有一定的差异,必要时可用预实验的方法选择适当的培养液。
原代和传代细胞的培养和维持
原代和传代细胞的培养和维持一、原代细胞的培养与维持1、静置贴壁细胞(包括半贴壁细胞的培养)凡经消化液处理实体组织来源的细胞要通过充分漂洗,以尽量除去消化液的毒性,细胞接种时浓度要稍大一些,至少为5×108细胞/L,培养基可用Eagle(MEM)或DNEM培养,小牛血清浓度为10%~80%.在起始的2天中尽量减少振荡,以防止刚贴壁的细胞发生脱落,漂浮。
贴壁细胞长成网状或基本单层时,由于营养缺乏,代谢产物增多,pH变酸,不适宜细胞生长,此时细胞还未长成单层,未达到饱和密度,仍需继续培养,因此,需采取换液方式来更新营养成分以满足细胞继续生长繁殖的需要。
其换液方法比较简单,即弃去旧液,加入与原培养液相同的等量完全培养基。
2、悬浮细胞的培养凡来自外周血、胸腹水、脾脏、淋巴结、骨髓的淋巴细胞、造血干细胞以及白血病细胞,在原代培养时要尽量去除红细胞.若要将淋巴细胞及白血病细胞进行长期培养,淋巴细胞中要加入生长因子,白血病细胞中要加入少量的原患者血清,以利细胞生长,待细胞开始增殖甚至结成小团块,培养基中pH变酸,说明细胞生长繁殖良好,一般每隔3天需半量换液一次(换液时尽量使细胞不丢失),待细胞增殖加快,浓度明显增加,pH发生明显变化时,此时可考虑传代。
悬浮细胞在未达到饱和密度时,但培养基中的营养成分并不能维持细胞的营养需求时,只能采用半量换液的方式.二、原代细胞培养的首次传代 (Subculture)这种使原代细胞经分散接种的过程称之为传代。
每进行一次分离再培养称之为传一代,传至5~10代以内的细胞通常称为次代培养细胞,传至10~20代以上的细胞,通常确定为传代细胞(或称传代细胞系)。
传代细胞系的建立,关键是初代培养的首次传代。
应注意如下几点:(1)细胞生长密度不高时,或未能达到覆盖整个瓶底时不能急于传代。
(2)原代培养的贴壁细胞多为混杂细胞,形态各异,往往是上皮样细胞和成纤维样细胞并存,采用胰蛋白酶消化时要掌握好消化时间,因成纤维细胞易于脱壁,上皮细胞不易脱壁,因此,可根据需要选用适当的消化时间及时中止消化。
细胞的原代培养与传代培养
细胞的原代培养与传代培养原代培养通过组织块直接长出单层细胞或用酶或机械方法将组织分散成单个细胞开始培养,在首次传代前的培养可认为是原代培养。
原代培养最大的优点是,组织和细胞刚刚离体,生物性状尚未发生很大变化,在一定程度上能反映体内状态。
特别是在细胞培养会合时,原代培养的某些特殊功能表达尤为强烈。
在这样的培养阶段能更好地显示与亲体组织紧密结合的形态学特征。
在供体来源充分、生物学条件稳定的情况下,采用原代培养做各种实验,如药物测试、细胞分化等,效果很好。
但应注意,原代培养组织是由多种细胞成分组成的,比较复杂。
即使全为同一类型的细胞,如上皮细胞或成纤维细胞,也仍具有异质性,在分析细胞生物学特性时比较困难。
其次,由于供体的个体差异及其他一些原因,细胞群生长效果有时也不一致。
原代培养也是建立各种细胞系(株)必经的阶段。
假如原代培养能够维持几小时甚至更长,即可进行进一步筛选。
有的细胞具有继续增殖能力,有的细胞类型只是存活而不增殖,而另外一些细胞只是在特殊条件下应用而不存活,因而细胞类型的分布将会改变。
在单层培养的情况下,瓶底全部铺满细胞,达到会合以后,对密度有依赖性的细胞则逐渐减少生长,而失去密度依赖敏感性的细胞则生长增加,天然或自发转化的细胞则过度生长。
借助于频繁传代,保持细胞低密度生长,有利于保存细胞的正常表型(如小鼠成纤维细胞)。
而自发转化则倾向于高细胞密度的过度生长。
细胞密度过大,培养基消耗将尽,细胞代谢产物积聚过度,细胞增殖变慢,应进行传代培养。
传代培养原代培养形成的单层细胞汇合以后,需要进行分离培养,否则细胞会因生成空间不足或由于细胞密度过大引起营养枯竭,都将影响细胞的生长,这一程序常称为传代或传代培养。
原代培养在首次传代时即为细胞系,能连续培养下去的为连续细胞系;不能连续培养的为有限细胞系。
通常,传代培养是指扩大培养,也就是将一份细胞一分为二或者一分为三进行培养等。
但严格说来,不论稀释与否,将细胞从一个培养瓶转移或移植到另一个培养瓶即称为传代或传代培养。
原代细胞培养实验报告
3.1 材料和标本 乳兔、HeLa细胞(人宫颈癌细胞)
3.2 器材和仪器 手术器械、平皿、培养瓶、吸管、离心管(灭菌后备用)、酒精灯、烧杯、超净工作台、二氧化碳培养箱、倒置显微镜。
2.3 试剂 含有5%小牛血清的MEM培养液、0.01mol/L PBS,0.25%胰蛋白酶一0.02%EDTA混合消化液、75%乙醇。
③.将细胞悬液吸出2ml左右,加到另一个培养瓶中并向每个瓶中分别加3ml左右培养液,盖好瓶塞,送回二氧化碳培养箱中,继续进行培养。
4.2.3 结果
一般情况,传代后的细胞在2小时左右就能附着在培养瓶壁上,2~4天就可在瓶内形成单层,需要再次进行传代。
细胞培养可分为原代培养和传代(继代)培养。直接从体内获取的组织细胞进行首次培养为原代培养;当原代培养的细胞增殖达到一定密度后,则需要做再培养,即将培养的细胞分散后,从一个容器以1:2或其他比率转移到另一个或几个容器中扩大培养,为传代培养,传代培养的累积次数就是细胞的代数。
细胞培养是一种程序复杂、要求条件多而严格的实验性工作。所有离体细胞的生长都受温度、渗透压、pH值、无机盐影响,消毒、配液等均有严格的规范和要求,特别是无菌操作是细胞培养成败的关键。
4.1.3 结果
细胞接种后一般几小时内就能贴壁,并开始生长,如接种的细胞密度适宜,5天到一周即可形成单层。
4.2 传代细胞培养
4.2.1 原理
体外培养的原代细胞或细胞株要在体外持续地培养就必须传代,以便获得稳定的细胞株或得到大量的同种细胞,并维持细胞种的延续。培养的细胞形成单层汇合以后,由于密度过大生存空间不足而引起营养枯竭,将培养的细胞分散,从容器中取出,以1:2或l:3以上的比率转移到另外的容器中进行培养,即为传代培养。
原代细胞培养之--培养技术原代细胞的培养方法原代细胞的培养也叫
原代细胞培养之--培养技术原代细胞的培养方法原代细胞的培养也叫初代培养是从供体取得组织细胞在体外进行的首次培养,是建立细胞系的第一步,是一项基本技术。
原代细胞因刚从组织中分离开,生物学特性未发生很大变化,仍保留原来的遗传特性,也最接近和反映体内生长特性,适宜用于药物敏感性试验、细胞分化等实验研究。
原代细胞往往有多种细胞组成,比较混杂,即使从形态上为同一类型(上皮样或成纤维样),但细胞间仍有很大差异。
如果供体不同,即使组织类型、部位相同,个体差异也照样存在,原代细胞生物特性尚不稳定,如需做较为严格的对比性实验研究,还需进行短期传代培养。
1、组织块培养法组织块培养是常用、简便易行和成功率较高的原代培养方法,也是早期采用培养细胞的方法,故原先被称为组织培养。
其方法:为将剪成的小组织团块接种于培养瓶(或皿)中,瓶壁可预先涂以胶原薄层,以利于组织块粘着于瓶壁,使周边细胞能沿瓶壁向外生长,方法简便,利于培养,部分种类的组织细胞在小块贴壁24小时后细胞就从组织块四周游出,然后逐渐延伸,长成肉眼可以观察到的生长晕,5~7天后组织块中央的组织细胞逐渐坏死脱落和发生漂浮,此漂浮小块可随换液而弃去,由组织块周围延伸的贴壁细胞也逐渐形成层片,可在显微镜下观察形态和用于实验研究。
其培养方法如下:(1)按照前述方法取材,将组织剪成或切成1mm3大小的小块,并加入少许培养基使组织湿润。
(2)将小块均匀涂布于瓶壁,每小块间距0.2 cm~0.5cm,一般在25mL培养瓶(底面积为17.5cm2)可接种20~30小块为宜,小块放置后,轻轻翻转培养瓶,使瓶底朝上,然后于瓶内加入适量培养基盖好瓶塞,将瓶倾斜放置在37℃温箱内。
(3)培养2~4小时,待小块贴附后,将培养瓶缓慢翻转平放,静置培养,动作要轻,严禁摇动和来回振荡,以防由于冲动而使小块漂起而造成培养失败,若组织块不易贴壁可预先在瓶壁涂一薄层血清、胎汁或鼠尾胶原等。
开始培养时培养基不宜多,以保持组织块湿润即可,培养24小时后再补液,培养初期移动和观察时要轻拿轻放,开始几天尽量不去搬动,以利贴壁和生长,培养3~5天时可换液,一方面补充营养,一方面去除代谢产物和漂浮小块所产生的毒性作用。
原代细胞培养
二、实体组织材料的分离方法
• 实体组织细胞间结合紧密,为了使组织中的细 胞充分分散,形成细胞悬液,可采用: • (一)机械分散法 • (二)消化分离法
(一)机械分散法
• 适用组织:纤维成分少的软组织。如脑组织,部 分胚胎组织 • 方法: • 采用剪刀剪切、用吸管吹打分散组织细胞 • 将已充分剪碎分散的组织放在注射器内使细胞通 过针头压出 • 在不锈钢网内用钝物压挤使细胞从网孔中压挤出。 • 特点:简便、快速,但对组织机械损伤大,而且 细胞分散效果差。
细胞培养之
---原代细胞的培养
基本概念
• 来源于胚胎、组织器官及外周血,经特殊分离方 法制备而来的原初培养的细胞称之为原代细胞。 • 能稳定生长传至10~20代以上的细胞可确立为细胞 系。
• 经单细胞克隆、纯化,大量扩增后所形成的生物 学特性稳定的克隆化细胞群,称之为细胞株。
原代细胞的培养
• 原代细胞的培养是从供体取得组织细胞在体外
第二节 原代细胞的分离和制作
• 一、悬浮细胞的分离方法 • 组织来源:血液、羊水、胸水或腹水 • 方法:1000r/min的低速离心10 min→沉淀用 无钙、镁PBS洗两次,培养基洗一次→调整适 当细胞浓度→分瓶培养 • 若选用悬液中某些细胞,加入细胞分层液,经 离心后由于各种细胞的比重不同可在分层液中 形成不同层。 • 如:淋巴细胞分离
注意事项
• (1)组织块必须漂洗2-3次以除去组织中的钙、 镁离子和血清对胰酶和EDTA的抑制作用。
• (2)胰酶浓度不宜过高,作用时间不能太长, 以避免毒性作用。 • (3)消化后组织不仅要尽量弃去消化液,以 避免毒性产生,而且动作要轻,以避免膨松的 细胞随漂洗而丢失。
第三节 原代细胞的培养方法
原代造血干细胞培养
原代造血干细胞培养
1. 细胞来源,造血干细胞可以从骨髓、外周血或者胎盘等多种来源获得,不同来源的细胞可能有不同的特性,需要根据实验目的选择合适的来源。
2. 细胞分离,从原代组织中分离出造血干细胞需要使用适当的分离方法,比如密度梯度离心、免疫磁珠分选等,以保证分离的细胞具有较高的纯度和活力。
3. 培养条件,原代造血干细胞在体外培养时需要提供适当的营养物质、生长因子和培养基,同时也需要控制适当的温度、湿度和气体环境,以提供良好的生长条件。
4. 培养监测,在培养过程中需要定期观察细胞的形态、增殖情况和表型特征,以及对细胞进行鉴定和纯度检测,确保培养的细胞符合实验要求。
5. 应用领域,原代造血干细胞培养在干细胞治疗、造血系统疾病研究、药物筛选等领域具有重要的应用前景,可以为相关疾病的治疗和研究提供重要的实验材料。
综上所述,原代造血干细胞培养是一项复杂而重要的实验技术,需要在细胞来源、分离方法、培养条件和监测等方面进行严格的操
作和控制,以确保获得高质量的细胞用于后续的研究和应用。
原代细胞的培养与鉴定方法
1、大鼠骨髓来源肥大细胞原代培养并鉴定:脱颈法处死SD大鼠(体重约200g),75%酒精浸泡消毒3min。
转入超净工作台内操作,剪开后肢皮肤,去除腿部肌肉,暴露出股骨,尽可能将股骨外部肌肉剥离干净,剪下股骨。
剪去股骨两端的股骨头,使用5ml注射器吸取RPMI 1640基础培养基后将骨髓吹打出来,吹打过程中尽可能将骨髓冲洗干净。
使用巴氏吸管将骨髓吹打成单细胞悬液,1000rmp/min离心5min收集细胞如发现收集的细胞中有大量红细胞时需使用红细胞裂解液处理。
使用肥大细胞专用培养基重悬细胞,接种至T25瓶内培养。
培养过程中每2-3天换液一次,当发现有细胞变圆脱落时,收集脱落细胞至新的T25瓶内诱导培养,培养四周时肥大细胞诱导成熟,取成熟的肥大细胞进行甲苯胺蓝染色鉴定;取脱落细胞培养一周、二周、三周、四周的细胞培养上清进行组胺含量检测。
2、小鼠骨髓来源肥大细胞原代培养与鉴定:小鼠经脱颈椎处死,75%酒精消毒后,取完整股骨,用1mL注射器吸取无菌PBS从股骨一端刺入,将骨髓细胞洗出,直到骨髓腔变白。
离心收集细胞,加入3mL红细胞裂解液,室温裂解3min之后,用PBS漂洗2次。
采用现配的原代细胞培养工作液(含青、链霉素各1000U/mL,10% FBS,IL-3 10 ng/mL,SCF 10ng/mL的RPMI-1640培养基培养液)将细胞重悬,按照106个/mL接种于六孔板中,每孔加3mL培养液,置于37℃,5% CO2的培养箱中培养,每7d 将悬浮细胞按照106个/mL转移到新的培养板中,继续培养,4-6周细胞分化成熟。
四周后收集悬浮细胞,部分细胞用于流式检测纯度,部分用含10% FBS的RPMI-1640培养基重新接板。
纯度检测:向诱导分化细胞中按1:200加入肥大细胞表面标志物APC-CD117 ,FITC- FcεRIα,4℃孵育60min ,无菌PBS 漂洗3次,流式检测肥大细胞纯度。
(SCF:Stem cell factor,干细胞因子;又称肥大细胞生长因子MGF)3、大鼠腹腔肥大细胞的分离与培养:选用体重220-250g的SD大鼠。
原代滋养层细胞的分离培养及鉴定
一、概述原代细胞是从组织或器官中分离得到的未经过传代培养的细胞,通常被用于研究细胞的特性和生物学行为。
在细胞生物学研究中,原代细胞的分离、培养及鉴定是非常重要的步骤,它们可以为科学家提供更加真实的细胞生理功能和反应。
本文将讨论原代滋养层细胞的分离培养及鉴定方法。
二、原代滋养层细胞的分离1. 准备工作在进行原代滋养层细胞的分离前,先准备必要的材料和试剂,包括消毒器械、胰酶、培养基和培养皿等。
2. 组织样本的处理将所需的组织样本取出并进行消毒处理,然后用无菌工具将其切割成小块。
3. 酶解和分离将组织样本块放入含有适量胰酶的培养基中,进行酶解和振荡分离,以获得细胞悬浮液。
4. 细胞分离通过离心等方法,将细胞悬浮液离心沉淀,然后将上清液中的细胞转移到新的培养皿中。
三、原代滋养层细胞的培养1. 培养基的准备根据原代滋养层细胞的类型和特性,选择适当的培养基,并添加相应的生长因子和营养成分。
2. 细胞的培养条件将分离得到的原代滋养层细胞接种于含有培养基的培养皿中,放置在恒温培养箱内,保持适当的温度和湿度条件,定期更换培养基。
3. 细胞的观察和维护利用显微镜观察细胞的生长情况和形态特征,定期对细胞进行传代培养,确保细胞的健康和稳定生长。
四、原代滋养层细胞的鉴定1. 形态学鉴定采用显微镜观察细胞的形态特征,包括大小、形状、胞浆及核的结构等,与已知的细胞形态进行比对鉴定。
2. 免疫细胞化学鉴定利用免疫细胞化学染色技术,检测细胞内特定蛋白的表达情况,例如细胞信号分子或细胞骨架蛋白等,来确定细胞的类型和特性。
3. 分子生物学鉴定通过PCR、Western blot等分子生物学技术,检测细胞内特定基因的表达情况,以确定细胞的遗传特性和分子水平特征。
五、结论原代滋养层细胞的分离培养及鉴定是细胞生物学研究中的重要环节,操作规范和技术熟练对于获得高质量的原代细胞至关重要。
只有通过严格的分离和培养条件,并结合形态学、免疫细胞化学及分子生物学鉴定等手段,才能得到真实、可靠的实验结果,并为细胞生物学研究提供可靠的资料。
细胞培养的方法及注意事项
细胞培养的方法与注意事项细胞培养是将动物某一器官、组织如肝脏、肺、肾脏等取出,将其分散成单个细胞,在人工条件下,使之存活、生长和增殖的技术。
细胞培养可分为原代培养和传代培养。
原代培养:第一次培养,将培养物放置在体外生长环境中持续培养,中途不分割培养物,不更换培养物的生长器皿的培养过程。
传代培养:在培养过程中培养物分裂生长,长满培养空间,细胞之间相互接触而发生接触抑制,生长速度减慢甚至停止。
在这种情况下,需要将培养物分割成小的部分,重新接种到另外的培养器皿中,再进行培养一、原代培养的方法:1、取材对于水产动物,取材的方法为:无脊椎动物取材用消毒海水或淡水暂养24小时;用酒精棉消毒体表;解剖需培养的组织和器官,放到消毒液中处理一段时间;取出,用灭菌BSS清洗3次鱼的取材用酒精棉消毒体表;打开腹腔(注意不能碰破肠道);体表组织,处理方法同无脊椎动物。
原代培养过程技术路线图:①准备工作:实验台面用紫外灯照、70%酒精棉球擦;所用各种器械、培养液无菌;操作者用新洁尔灭和酒精擦手,穿衣、戴帽、口罩;实验动物体表用酒精消毒或放入无菌海水中。
②取材:在无菌条件下取出需要培养的器官或组织;如果是有菌的器官或组织需进行灭菌处理;取材要准确③培养材料的制备:欲培养的器官或组织洗去血污,剔掉多余成分。
剪成1mm3大小,用于外置块培养。
用胰蛋白酶消化,终止消化后,机械法吹打组织块,筛网过滤,过滤液离心1000rpm,10min,用培养液悬浮细胞,计数细胞密度,用于细胞培养。
④接种:外植块:用吸管将小的组织块均等地在培养瓶底排列好;反过培养瓶加入培养基,或5-6h后再加培养基;放入CO2培养箱培养;2-3d更换培养液或颜色变黄时更换;记录、每2-3d观察。
结果:1-3d,细胞从外植块中迁移出来分离细胞:将已分散的细胞悬液加到培养瓶或培养板中,并加少量培养液,细胞浓度为105-106个/ml。
不能少于5000个。
24h后加足培养液(防漂浮)。
原代细胞培养概念原理方法举例
3.过滤与洗涤:将 消化的组织块吹打 均匀,用80到200目 不锈钢筛网过滤, 离心洗涤过滤的细 胞与细胞团
4,根据细胞计数用 培养基制备适当浓 度(一般为0.5到2 乘以10的6次方每毫 升) 5.分装培养瓶,37 度或者加5%二氧化 碳,进行培养。
6.长成单层后可换 乘维持液应用,或 者最好进行传代后 再应用
基本的程序:
织洗涤,剪碎成12mm大小的组织碎 片
以鸡成纤维细胞培养为 实验目的 例,初步了解原代细胞 培养的操作程序和要点。
9-11日龄鸡胚1只,营养 实验材料 液,Hank液,碘酒,酒 精,蛋架,手术器械, 平皿,吸管,培养瓶等
5.用吸管将小组织快吸
入装有10ml的1.125%胰
酶消化液体的三角瓶中, 4.无菌小剪刀将鸡胚剪 2.用消毒弯剪刀剪去气 成1-2mm的小块,用 Hanks液体洗涤2-3次, 充分洗去红血球,吸弃 扎进瓶口,置于37度水 浴静止消化10到15 分钟, 期间可摇动1-2次,观察 消织快周边出现 微绒毛状,此时稍加摇 动即有大量细胞游离, 液体变混,取出三角瓶, 用吸管吹打数次,以助 细胞分散。悬液经四层 纱布过滤后,滤液用 500到1000转每分钟离 心5分钟,吸去上清, 加营养液吹打,分散细 胞,制成均匀悬液。
原代细胞的培养
原代细胞的培养:供体获取组织后进行的首次培养。
最大的优点:细胞刚离开机体,生物学性状与原体内细胞比较接近,适用于做药物检测等实验,同时初代 细胞培养也是建立各种细胞株(系)必须经过的阶段,因此它是组织培养工作者应该熟知和掌握的技术。
2.用分散剂消化分 1.处理组织,将组 散组织块,如加入 组织量大30到50倍 的胰酶消化液,消 化30到60分钟(冷 消化过夜)
7.取细胞悬液计数后,
肿瘤细胞原代培养实验具体方法及步骤
肿瘤细胞原代培养实验具体方法及步骤肿瘤细胞原代培养实验具体方法及步骤肿瘤细胞的原代培养与正常细胞的原代培养的条件基本相似。
一般常用原代细胞的基础培养基,10%血清浓度即可,在原代培养时需加入原代细胞培养的特制添加物,或原患者血清(1%-2%)以利细胞生长。
用细胞生长因子如胰岛素、氢化可的松、雌激素等等。
也可以考虑动物媒介培养。
根据细胞种类不同选用不同的促细胞生长因子。
具体步骤一、将取得的瘤组织去除脂肪、结缔组织及坏死部分。
二、在平皿中用Hanks液洗3次,剪碎组织,切成1-2 mm3小块。
三、接种于培养瓶(或皿)中,37℃、5%CO2或加盖并塞在普通恒温箱中培养。
注意一、注意污染1、严格进行动物皮肤消毒,使用三套器械取材。
新生动物皮肤先用2%碘酒液消毒,成年鼠先用3%——5%碘酒液消毒后用75%酒精消毒。
2、严格进行无菌操作,防止细菌、霉菌、支原体污染,避免化学物质污染。
自取材开始,保持所有组织细胞处于无菌条件。
细胞计数可在有菌环境中进行。
3、吸取液体前,瓶口和吸管进行火焰消毒;吸取液体时,避免瓶口和吸管碰撞。
4、离心管入台前,管口、管壁应消毒。
5、实验者离开超净台时,要随时用肘部关闭工作窗。
6、使用过的器械用酒精棉球擦去血污后,移入另一个器皿中继续消毒,在浸泡器械时剪刀口要叉开放,镊子弯头要向下放,并加盖消毒。
凡在超净台外操作的步骤,各器皿需用盖子或橡皮塞,以防止细菌落入。
二、器材使用时既要注意用火焰消毒,又要防止烫伤、烫死细胞。
经火焰消毒后的吸管一定要用Hanks液冷却。
总结经验一、对肿瘤细胞系或细胞株的评价已建成的各种肿瘤细胞系或细胞株,无疑都是可用的实验对象。
近年我国已建成的肿瘤细胞系已非常多,并获得越来越广泛的应用。
但根据研究者的经验,在使用这些细胞系时,应持特别审慎态度,主要是应考虑到这些细胞在长期传代中有否发生遗传性改变的可能。
众所周知,长期传代细胞系染色体核型常是不稳定的。
另外也可能发生如基因突变、基因易位或缺失等变化。
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原代细胞的培养法
组织块培养法
组织块培养是常用、简便易行和成功率较高的原代培养方法,也是早期采用培养细胞的方法,故原先被称为组织培养。
其方法:为将剪成的小组织团块接种于培养瓶(或皿)中,瓶壁可预先涂以胶原薄层,以利于组织块粘着于瓶壁,使周边细胞能沿瓶壁向外生长,方法简便,利于培养,部分种类的组织细胞在小块贴壁24小时后细胞就从组织块四周游出,然后逐渐延伸,长成肉眼可以观察到的生长晕,5~7天后组织块中央的组织细胞逐渐坏死脱落和发生漂浮,此漂浮小块可随换液而弃去,由组织块周围延伸的贴壁细胞也逐渐形成层片,可在显微镜下观察形态和用于实验研究。
其培养方法如下:
(1)按照前述方法取材,将组织剪成或切成1mm3大小的小块,并加入少许培养基使组织湿润。
(2)将小块均匀涂布于瓶壁,每小块间距0.2 cm~0.5cm,一般在25mL培养瓶(底面积为17.5cm2)可接种20~30小块为宜,小块放置后,轻轻翻转培养瓶,使瓶底朝上,然后于瓶内加入适量培养基盖好瓶塞,将瓶倾斜放置在37℃温箱内。
(3)培养2~4小时,待小块贴附后,将培养瓶缓慢翻转平放,静置培养,动作要轻,严禁摇动和来回振荡,以防由于冲动而使小块漂起而造成培养失败,若组织块不易贴壁可预先在瓶壁涂一薄层血清、胎汁或鼠尾胶原等。
开始培养时培养基不宜多,以保持组织块湿润即可,培养24小时后再补液,培养初期移动和观察时要轻拿轻放,开始几天尽量不去搬动,以利贴壁和生长,培养3~5天时可换液,一方面补充营养,一方面去除代谢产物和漂浮小块所产生的毒性作用。
原代细胞培养-2
2、消化培养法
该方法是采用前述的消化分散法,将妨碍细胞生长的细胞间质(包括基质、纤维等)去除,使细胞分散形成细胞悬液,然后分瓶培养。
某些特殊类型细胞,如内皮细胞、骨细胞等的消化手段和步骤,将在有关章节中叙述。
3、悬浮细胞培养法
对于悬浮生长的细胞,如白血病细胞、淋巴细胞、骨髓细胞、胸水和腹水中的癌细胞和免疫细胞无需消化,可采用低速离心分离,直接培养,或经淋巴细胞分层液分离后接种培养。
4、器官培养
器官培养是指从供体取得器官或组织块后,不进行组织分离而直接在体外的特定环境条件下培养,其特性仍保持原有器官细胞的组织结构和联系、并能存活,器官培养的目的和技术均与单层细胞培养不同,但可利用器官培养对器官组织的生长变化进行体外观察。
并观察不同培养条件研究对器官组织的影响。
器官培
的生物调节作用。
体外器官培养为临床上的器官移植创造了便利的条件。
器官培养的条件与细胞培养不同,要有特殊的要求。
1、器官培养的特殊的要求
(1)需要特殊的培养条件因器官离体培养,其营养和氧气仅靠自然渗透来供给,因此,培养时为了确保中心不发生缺乏氧和营养而造成坏死,其厚度或直径不宜超过1mm.
(2)器官内部细胞需要有足够的氧气渗入常采用以下两种方法:
a. 将器官组织块置于培养基气液面以利于气体交换。
b. 提高培养基中的氧分压,一般需加注纯氧,提高氧分压时仍需保持5% CO2,以维持pH.
2、器官培养的方法
(1)将不锈钢网做成的支架,放置于培养皿中,高度为1/2皿高,使其表面铺上0.5mm孔径的滤膜。
(2)将培养基加入平皿中,使培养液刚刚接触到滤膜,但不要使滤膜浮起。
(3)将要培养的器官组织平放在滤膜上,一般厚度不要超过200μm,水平面积不超过10mm2,如为肝、肾不能大于1mm2.
(4)将培养物置于CO2培养箱内,并加注氧气,调整氧分压达90%,培养时注意使液面与膜保持在一致的水平上。
(5)上述器官培养1~3周(每隔2~3天换液一次)后可用于实验和检测。