人类外周血淋巴细胞的培养及染色体标本制备
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人类染色体标本的制作
细胞与遗传学教研室
一、实验目的
1.掌握人类染色体标本的制作方法 2.了解人类染色体形态结构特征
24hrs 时加 入BrdU
人类外周血
体外培养
植物血球凝集素 ( PHA） 肝素、培养基、小牛血清
68 hrs 时加 入秋水仙素
72 hrs 后 收集细胞
制作玻片标本
固定
预固定
低渗处理
实验方法
（5）制备细胞悬液： 预留0.2～0.3ml固定液 ，加2滴新配固定液制成细胞悬
液
（6）滴片： 吸取细胞悬液，滴2～3滴于冰镇的载玻片上,于酒精灯火
焰上过火后，空气干燥。(每组源自文库张，只染1张） （7）染色：
Giemsa染液染色10分钟，自来水轻冲洗，晾干，镜检。
五、实验结果
• 在低倍镜下选择分散良好，长度适中的分 裂相，再转至油镜观察。
管、恒温水浴锅等 • 3.试剂：培养基、秋水仙素（12.5μg∕ml）、植物凝
集素（PHA）、肝素、0.075Mkcl低渗液、甲醇、冰乙 酸、PH6.8磷酸缓冲液、Giemsa原液。
四、实验方法
1.外周血细胞培养
（1）采血：无菌，肝素抗凝。 用无菌注射器抽取肝素0.2ml,润湿针筒,推出多
余肝素.消毒后,抽取受试者静脉血2ml。） （2）接种培养：每培养瓶加入0.3～0.5ml（10滴）,
接种于装有5ml培养基的培养瓶中，摇匀， 37℃培 养箱中培养68小时。 （20滴）
• • （3）秋水仙素处理：0.05～0.4μg∕ml培养基，轻
摇混匀后，继续培养至72小时 。
实验方法
2.染色体的制备
（1）收获细胞：用吸管吸取培养物，移至离心管中，以1500 转/分离心10分钟，弃去上清液，留下沉淀物约0.3ml。
经过短期培养后，用秋水仙素处理、低渗、固 定、滴片和染色，就可获得大量中期分裂相的 细胞，制片后可以清楚地对染色体进行观察.
这种培养方法是Moorhead于1960年建立的。
外周血淋巴细胞
PHA
37℃ 68h
G0期或G1期
秋水仙素 至72 h
三、实验用品
• 1.材料：人体外周血 • 2.器材：培养箱、培养瓶、离心机、刻度离心管、吸
每组上交2张未经染色染色体标本。
六、实验注意事项
1.接种的血样愈新鲜愈好 。
2.培养中成败的关键,除了至为重要的PHA的效 价外。培养的温度和培养液的酸碱度也十分 重要。
3.培养过程中，如发现血样凝集，可将培养瓶 轻轻振荡，使凝块散开，继续放回37℃恒温 箱内培养。
4.制片过程中，如发现细胞膨胀得不大，细胞 膜没有破裂，染色体聚集一团伸展不开,可将 固定时间延长。
紫外线照射
Giesma 染色 G—带
Ba(OH)2 处理
荧光染料染色 Q—带
染色体带的制作方法
Giesma染色 R—带
Giesma染色 C—带
二、实验原理
外周血中的淋巴细胞几乎都是处在G0期或G1期， 一般情况下是不分裂的。
当在培养基中加入植物凝集素（PHA）时，小淋 巴细胞受到刺激后转化为淋巴母细胞，并开始 进行有丝分裂。
（2）低渗处理：加入预温37℃的低渗液至8ml，用吸管轻吹打 混匀，置于37℃恒温水浴锅中低渗20分钟 。低渗后吹打要 轻,以防细胞破裂.
（3）预固定：缓缓加入1ml新配制的固定液（甲醇：冰乙酸=3: 1），立即用吸管轻吹打混匀。以1500转/分离心10分钟，弃 上清液， 留约0.3ml沉淀物。
（4）固定：加入新鲜固定液至8ml，吸管吹打混匀，室温固定 20分钟， 1500转/分离心10min，去上清液。依上述方法再 重复固定1次。
细胞与遗传学教研室
一、实验目的
1.掌握人类染色体标本的制作方法 2.了解人类染色体形态结构特征
24hrs 时加 入BrdU
人类外周血
体外培养
植物血球凝集素 ( PHA） 肝素、培养基、小牛血清
68 hrs 时加 入秋水仙素
72 hrs 后 收集细胞
制作玻片标本
固定
预固定
低渗处理
实验方法
（5）制备细胞悬液： 预留0.2～0.3ml固定液 ，加2滴新配固定液制成细胞悬
液
（6）滴片： 吸取细胞悬液，滴2～3滴于冰镇的载玻片上,于酒精灯火
焰上过火后，空气干燥。(每组源自文库张，只染1张） （7）染色：
Giemsa染液染色10分钟，自来水轻冲洗，晾干，镜检。
五、实验结果
• 在低倍镜下选择分散良好，长度适中的分 裂相，再转至油镜观察。
管、恒温水浴锅等 • 3.试剂：培养基、秋水仙素（12.5μg∕ml）、植物凝
集素（PHA）、肝素、0.075Mkcl低渗液、甲醇、冰乙 酸、PH6.8磷酸缓冲液、Giemsa原液。
四、实验方法
1.外周血细胞培养
（1）采血：无菌，肝素抗凝。 用无菌注射器抽取肝素0.2ml,润湿针筒,推出多
余肝素.消毒后,抽取受试者静脉血2ml。） （2）接种培养：每培养瓶加入0.3～0.5ml（10滴）,
接种于装有5ml培养基的培养瓶中，摇匀， 37℃培 养箱中培养68小时。 （20滴）
• • （3）秋水仙素处理：0.05～0.4μg∕ml培养基，轻
摇混匀后，继续培养至72小时 。
实验方法
2.染色体的制备
（1）收获细胞：用吸管吸取培养物，移至离心管中，以1500 转/分离心10分钟，弃去上清液，留下沉淀物约0.3ml。
经过短期培养后，用秋水仙素处理、低渗、固 定、滴片和染色，就可获得大量中期分裂相的 细胞，制片后可以清楚地对染色体进行观察.
这种培养方法是Moorhead于1960年建立的。
外周血淋巴细胞
PHA
37℃ 68h
G0期或G1期
秋水仙素 至72 h
三、实验用品
• 1.材料：人体外周血 • 2.器材：培养箱、培养瓶、离心机、刻度离心管、吸
每组上交2张未经染色染色体标本。
六、实验注意事项
1.接种的血样愈新鲜愈好 。
2.培养中成败的关键,除了至为重要的PHA的效 价外。培养的温度和培养液的酸碱度也十分 重要。
3.培养过程中，如发现血样凝集，可将培养瓶 轻轻振荡，使凝块散开，继续放回37℃恒温 箱内培养。
4.制片过程中，如发现细胞膨胀得不大，细胞 膜没有破裂，染色体聚集一团伸展不开,可将 固定时间延长。
紫外线照射
Giesma 染色 G—带
Ba(OH)2 处理
荧光染料染色 Q—带
染色体带的制作方法
Giesma染色 R—带
Giesma染色 C—带
二、实验原理
外周血中的淋巴细胞几乎都是处在G0期或G1期， 一般情况下是不分裂的。
当在培养基中加入植物凝集素（PHA）时，小淋 巴细胞受到刺激后转化为淋巴母细胞，并开始 进行有丝分裂。
（2）低渗处理：加入预温37℃的低渗液至8ml，用吸管轻吹打 混匀，置于37℃恒温水浴锅中低渗20分钟 。低渗后吹打要 轻,以防细胞破裂.
（3）预固定：缓缓加入1ml新配制的固定液（甲醇：冰乙酸=3: 1），立即用吸管轻吹打混匀。以1500转/分离心10分钟，弃 上清液， 留约0.3ml沉淀物。
（4）固定：加入新鲜固定液至8ml，吸管吹打混匀，室温固定 20分钟， 1500转/分离心10min，去上清液。依上述方法再 重复固定1次。