细菌室标本采集规范
微生物标本采集规范
• 2、下呼吸道标本
（1）自然咳痰法 以晨痰为佳。用清水反复漱口， 用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入无菌容 器中，尽快送检。否则有的细菌（如肺炎链球菌、 流感嗜血杆菌）在外界可能死亡。不能及时送检 的标本，室温保存≤2h。要求采到肺深部的痰液， 不要唾液。
• （2）诱导痰：在医护人员指导下，用3 NaCL诱导咳 出痰液，用于结核分枝杆菌和肺孢子菌检测。
临床常见微生物学检验标本通常有血液、 痰液、尿液、粪便、伤口的脓液、胸水、腹水、 脑脊液及泌尿生殖系统的分泌物等，下面分别 介绍各种标本的采集方法。
一、呼吸道标本采集规范
病原体种类繁多而复杂 使呼吸道感染病原诊断成为难题
➢细菌 ➢真菌（包括肺孢子菌） ➢病毒 ➢支原体、衣原体与立克次体 ➢原虫 ➢寄生虫
（二）采集方法
1、咽拭子及鼻拭子 采集前患者应用冷开水反复漱口， 拭子的选择：要求无菌、不含抑制剂； 预先沾湿拭子（非常重要）； 由检查者将舌向外拉，使腭垂尽可能向外牵引，将棉拭子 通过舌根到咽后壁或腭垂的后侧，涂抹数次以取得标本。 对化脓性扁桃体炎或口腔念珠菌病，直取病灶部位，拭 子要避免接触口腔及舌粘膜。减少污染。 立即送检。室温保存。 接种同痰
（一）采集指征 •凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性、粘稠或血 性，并伴有胸痛、气急，肺部闻及湿罗音，外 周白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，X 线检查提示肺部有炎性浸润或胸腔积液，甚至 出现感染性休克和呼吸衰竭等患者，应采集痰 液或下呼吸道标本。
•对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、肺炭疽、 肺鼠疫等）患者采集检验标本时必须注意生物 安全防护。
2．耻骨弓上膀胱穿刺采集尿 使用无菌注射器直 接从耻骨上经皮肤消毒穿入膀胱吸取尿液，是评 估 膀胱内细菌感染的“金标准”方法，但患者不 易接 受，主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的 婴儿尿 标本的采集。
细菌培养标本的正确采集1
细菌培养标本的正确采集方法正确的无菌采取、处理与运送是临床细菌检验成功的关键：标本采取与处理的规范化，减少污染是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础;反之，结果毫无意义血培养：细菌通常在畏寒、寒战和发热前1小时入血，此时为采集血培养标本进行病原菌培养的最佳时机。
应在使用抗菌药物之前，及早采集血培养标本若患者已行抗菌药物治疗，则在下一次抗菌药物应用前采血培养推荐同时或短时间间隔（30~60分钟）从不同部位（如双臂）采集2～3套血培养标本，即“四瓶双侧”，如难以达到，至少做到“双侧双瓶。
婴幼儿患者：应在短时间内收集2～3瓶（不同部位）血培养。
由于儿童患者厌氧菌感染少见，除特殊诊断外，推荐仅使用需氧瓶。
成年患者：推荐的采血量为20--30ml, 每套不少于10ml，每瓶不少于5ml。
婴幼儿患者推荐的采血量应少于患儿总血容量的1%，每瓶不少于2ml。
血培养瓶在接种前、接种后均不得冷藏或冷冻，否则会导致某些病原微生物死亡。
采血后应该立即送检。
如不能立即送检，需室温保存，切勿冷藏。
血培养延迟送检时间最长不能超过2小时。
痰培养：采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前宜采集清晨第二口痰液。
对于普通细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天。
不建议24 h内多次采样送检，除非痰液外观性状出现改变。
怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。
无痰或痰量极少者：可用3％～5％氯化钠溶液5 ml雾化吸人约5 min后留取痰液，嘱咐患者留取前摘去牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，置无菌容器内。
尿液培养：为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液清洁中段尿。
女性：采样前用肥皂水或0.1％的高锰酸钾溶液等冲洗外阴，用手指分开阴唇，弃其前段尿，不终止排尿，留取中段尿10--20 ml于无菌容器内。
男性：采样前用肥皂水或0.05％--0.1％的聚维酮碘(碘伏)溶液等消毒液清洗尿道口，擦于后上翻包皮，弃其前段尿，不终止排尿，留取中段尿10--20 ml 于无菌容器内。
细菌室标本采集及保存要求
细菌室标本采集及保存要求1、总则：用于细菌培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检，检测后标本应妥善保存。
2、临床标本的采集2.1、下呼吸道分泌物（痰液）令患者早上起床后用清水澈口，不要刷牙，立即从下部呼吸道咳出第一口痰，吐在无菌塑料痰盒中，及时送检。
2.2、尿液（中段尿）护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌塑料盒中，及时送检。
2.3、粪便取有粘液、脓血部分的粪便置无菌塑料盒中及时送检。
2.4、眼、耳、鼻、喉拭子将棉拭子沾取少许无菌生理盐水（如沾取的太多，可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份），然后采取可疑部位的分泌物，倒悬于无菌塑料盒中，及时送检。
2.5、脓液用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液，要尽量多取一些，然后将棉拭置于无菌塑料盒中，及时送检。
2.6、血液261、凡怀疑菌血症和败血病的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用抗菌素, 应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，应在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。
当然在病人发热或寒颤时采集也可。
262、成人每次采血5〜10ml,小儿采血3〜5ml。
2.6.3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀。
264、从抽血到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固，同时要及时送检。
2.7、穿刺液胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液，严格无菌抽取后，注入含肝素抗凝的无菌试管中，轻轻颠倒试管10余次，使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的, 或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。
2.8、胆汁由专科医生以无菌方法取引流液10ml注入无菌塑料盒内。
2.9、脑脊液以无菌方法取脑脊液3~5ml,置无菌试管内，常温保存送检，如只做培养可直接无菌注入血培养瓶内, 及时送检。
2.10、生殖器官标本阴道、子宫颈及前列腺等分泌物应由医师采集，收集于无菌塑料盒内送检。
如疑为淋病奈瑟菌感染，做培养检查时，采集的标本应床旁接种并及时放入孵箱培养。
细菌标本采集规范
临床微生物学标本采取和处理的规范化要求正确的采取、处理与运送用于细菌培养的标本是临床细菌检验成功的关键.标本采取与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础；而标本采取与处理不当将严重影响检验结果,给临床以误导，延误对患者的正确治疗。
为此，我们提出初步的参考意见，并希望在实践中不断完善。
一、血液细菌培养标本的采集和处理临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者,需做血液细菌培养以明确病原。
1．采集方法:静脉采血，以无菌操作方法抽取血液后,直接注入血培养瓶中，轻轻颠倒混匀，以防血液凝固.如果同时作需氧和厌氧培养，应先将标本接种到厌氧瓶中,再注入需氧瓶，严格防止将空气注入厌氧瓶中。
2。
采血时间以及血培养份数:在患者发热期间越早越好,最好在抗菌治疗前，用药前24小时内采集2～3次血液标本,可使细菌检出率高达99％.对间歇性寒战或发热的患者,应在寒战或体温高峰到来之前0。
5～1小时采血，亦可在寒战或发热后1小时采集血液标本。
特殊感染患者采血培养时应遵循以下原则：（1）可疑急性发热性菌血症、败血症患者：应在使用抗菌药物之前，在24小时内从不同部位采集2~3份血液标本培养.(2)可疑细菌性心内膜炎患者、感染性心内膜炎患者：在1～2小时内采集3份血标本培养,如果24小时后阴性,再采集两份血标本培养。
(3）不明原因发热患者：先采集2～3份血标本，抽血间隔60 min，24~36小时后体温升高之前，再采集2份血标本进行培养。
因为1次血培养不足以说明问题,可能会遗漏阳性结果。
（4）可疑菌血症但血培养持续阴性时;应改变血培养方法,以获得罕见或苛养的微生物。
（5）在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎,需马上做抗菌治疗;或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者,应立即从两臂分别取2份标本.3。
采血部位:采血部位通常为肘静脉。
疑为亚急性心内膜炎的患者，以肘动脉或股动脉采血为宜。
疑为细菌性骨髓炎或伤寒患者，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓。
标本采集、运送标准操作规程
4 7
血培养 淋球菌培养
立即 30分钟
1小时 30分钟
阳性结果3天以上，阴性结果7天 2天
8
真菌培养
1小时
2小时
3天后
细菌室项目检验周期表
9 解脲、人型支原体培养及药敏、衣原体培 养 1小时 2小时 2天后
11
一般涂片革兰氏染色
1小时
2小时
5小时
当天下午
12
涂片找抗酸杆菌
1小时
2小时
5小时
当天下午
Байду номын сангаас
查询申请医师，补足标本信息。
仅有申请单而无标本或无菌容器内无标本
与原送检部门联系，退回申请单，要求重送标本
标本外漏及明显受污染（如开塞） 标本收集不符合采集要求 样本混入消毒液 或防腐剂
与原送检部门联系，退回申请单，建议重送标本。 退回申请单，及时通知临床，告知正确收集方法，要求重送标本 退回申请单，及时通知临床，建议重送标本。
13
新型隐球菌墨汁染色
1小时
1小时
5小时
当天下午
• 注： 1. 细菌室正常上班时间为周一至周六
全天、周日上午；其他时间（包括中午、 夜班、周日下午、）常规培养请送急诊化 验室。 • 2．各类血清学检测周一至周五做；支原体、 衣原体检查周一至周六上午做，其余时间 标本一律不接收。 • 3． 空气培养、物表监测周六、周日不做， 于周一至周五打电话给细菌室告之数量。
【标准操作程序】
• 3. 粪便样本
养：
• 5.1采集指征： • 当腹泻患者出现以下任何一种情况时建议采集粪便标本，进行细菌培
粪便涂片镜检白细胞＞5/HP 体温＞38.5℃ 重症腹泻 血便或便中有脓液 未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人
临床细菌检验标本的采集、运送
物体表面采样检测
采样时间 :选择消毒处理后4h内进行采样. 采样面积: 被采表面<100cm2,取全部表 面;被采表面≥100cm2,取100cm2 . 采样方法:用5×5cm2的标准灭菌规格板, 放在被检物体表面,用浸有无菌生理盐水的 棉拭子在规格板内横竖往返各涂抹10次,, 剪去手接触部分,将棉拭子放入装2ml无菌 生理盐水的试管中送检.门把手等小型物 体则采用棉拭子直接涂抹物体的方法采样.
痰直接涂片查细菌,真菌:挑选痰液中脓性或带 血部分,涂成均匀薄片,进行革兰染色,镜检. 痰涂片查抗酸杆菌:把痰前处理液加入痰标本中, 两者比例约2:1,混合均匀,放室温静置1020min,待粘液完全液化,倒试管离心 3000r/min5-10min,取沉淀物涂片抗酸染色镜检. 培养基选择:血平板分离各类细菌特别溶血链 球菌,肺炎链球菌.加万古巧克力于CO2环境分 离嗜血杆菌,脑膜炎奈瑟菌.麦康凯分离革兰阴 性杆菌.真菌培养接种两个TTC-沙氏平板,分别 放室温22℃及35℃孵育24-48hr.均需分区划线.
4,避免来自寄生菌的污染,应当保证每份 标本代表感染过程.如来自皮肤,呼吸道 的正常菌丛过早,过度生长,会干扰培养 结果.分离时应区别标本中是常居菌群的 污染还是致病菌. 5,分离细菌的目的:查找与疾病相关的微 生物及其对抗生素的敏感性,帮助临床诊 断,治疗,预后和流行病学的调查. 6,如疑似对低温敏感的淋病奈瑟菌,脑膜 炎奈瑟菌,流感嗜血杆菌感染标本应立即 处理.脑脊液,生殖道,眼睛,内耳标本 决不可冷藏. 7,根据标本来源选用培养基及孵育环境.
医院感染环境监测 标本的处理
各类环境空气,物体表面,医护人员手 培养菌落总数卫生标准
环 境病房
空气
cfu/m3
物体表面 手培养
细菌培养标本采集
细菌培养标本采集1、标本采集时间（1）一般原则应在寒战或高温高峰到来之前采集，因为细菌进入血流与寒战发作通常间隔1小时。
无论何时采集，原则上应选择在抗生素应用前，对已用抗生素而无法停药的病人，应在下次用药前采集。
（2）不明原因发热可于发热周期内多次采血作培养，如果24小时培养结果为阳性，应继续采血2～3份或更多血标本进行培养。
（3）心内膜炎急性心内膜炎：治疗前1～2小时内分别在3个不同部位抽血样，分别进行培养。
炎急性内膜炎：除在发热期采血外，应多次采血，第1天做3次培养，如果24小时培养阴性，应继续抽血3份或更多次进行培养。
（4）肺炎链球菌感染最佳时机是在寒冷、高热休克时，此时采集的标本阳性率较高。
2、标本送检时间采集好的血液培养瓶要及时送检。
如应某种原因不能及时送检，应将已采集好的血液培养瓶放在室温，切勿放在冰箱内，否则使阳性率降低送检要保温，并在化验单上标明采集血液标本的准确时间。
3、血液标本采集的量成人采血量一般为10mL，婴幼儿1～2Ml,儿童4～5Ml,在无法确定病人感染何种微生物时，应同时做多种生物培养，如需氧培养、厌氧培养和真菌培。
如病人应用抗生素时间较长，则应和检验科联系调整血液标本和培养基比例，一般血液标本和培养比例为1：10，如使用抗生素达10～15日以上，比例则为1：20或>1:20，儿童血液培养必须使用相应的儿童血液培养瓶。
4、标本采集部位和次数细菌培养阳性率与标本的采集部位和次数关系很大，而且一般成人菌血症感染率是非常低的，因此要多部位、多次采集血液标本进行培养，以提高阳性率。
通常从肘正中或股静脉抽取，不可从静脉注导管处抽血。
5、采集好的血液标本应更换针头，用酒精消毒培养瓶瓶盖后再将血液注入培养瓶。
细菌标本采集注意事项
细菌标本采集注意事项
嘿，你问细菌标本采集注意事项？这可挺重要呢。
采集细菌标本的时候啊，首先得保证干净。
就像你做饭得把锅碗瓢盆洗干净一样，采集标本的工具啊、容器啊都得干净，不能有别的细菌混进去。
要是不干净，那你采的标本就不准啦。
然后呢，得选对采集的部位。
不能瞎采一通。
比如说你要采喉咙里的细菌，那就得用专门的棉签在喉咙那里轻轻擦一下。
要是采错了地方，那也不行哦。
还有啊，采集的时候动作要轻。
不能太粗暴，不然会把组织弄伤，影响标本的质量。
就像你摘个果子，得轻轻地摘，不能硬拽。
另外，采集的时间也有讲究呢。
不同的细菌在不同的时间采集效果不一样。
比如说有些细菌在早上采集比较好，有些在晚上。
得按照要求来。
采集完了，得赶紧把标本送到实验室去。
不能拖拖拉拉的，时间长了细菌可能会变样。
就像你买了新鲜的菜，得赶
紧放冰箱，不然就坏啦。
我记得有一次，我们学校组织体检，要采集细菌标本。
有个同学采集的时候不小心把棉签弄脏了，结果医生说不行，得重新采。
还有个同学采集的部位不对，也得重来。
从那以后，大家都知道采集细菌标本得注意这些事儿啦。
总之呢，采集细菌标本要保证干净、选对部位、动作轻、注意时间、及时送检。
就像做一件精细的活儿，得小心谨慎，才能采到准确的标本。
咋样，明白了不？。
细菌培养标本的_采集、运送与处理
18
.
血液和无菌体液的处理
血液或无菌体液抽取后应立即放入血培养瓶,立即送检 或室温保存,不能放冰箱!
实验室接到标本应立即放入血培养仪。中夜班收到标 本放置室温,不用放置35℃温箱 。
对急诊室送来或室温久置的标本，应先检查瓶底有无 变化，如变黄，应先涂片并盲传，以防漏检。
导尿管导尿
无菌操作进行导尿可减少尿道污染。 对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用联空针筒的
细针斜穿管壁抽吸尿液；或拔去闭式引流的集尿袋，弃去导尿管前 段尿液，留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。 不可从集尿袋的下端管口留取标本。 长期留置导尿管者，应在更换新导尿管后留取尿标本 。
21
隔不少于60分钟。
13
.
采血方法
采血部位的局部皮肤应严格消毒。将采集的血 液注入血培养瓶前，应更换针头或过火消毒针 头。
血培养瓶口也要消毒，并待酒精挥发后（建议 用酒精灯烧灼瓶口）再注入血样, 。
14
.
采血量
每次采血量成人5～10ml，婴幼儿1～2ml， 培养基与血液之比以10：1为宜，以稀释血液 中的抗生素。
在安全性问题的容器内。
4
.
标本转运的原则
所有标本必须立即送交实验室，最好不要超过 2小时，如标本处理不得不延迟，应在合适的 条件下储存，但不超过24小时。
对环境敏感的微生物包括志贺氏菌（应立即处 理）、淋球菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌 （对低温敏感）。脑脊液、生殖器、眼或内耳 标本不要冷冻。
及时、准确地从患者血液中分离出病原菌，才 能正确实施有效地抗菌治疗，从而有助于提高 治愈率和降低医疗费用。
10
.
采血时机
细菌标本的采集原则
细菌标本的采集原则
1.选择合适的采集部位：根据患者病情和临床症状选择合适的采集部位，如口腔、咽喉、鼻腔、耳朵、皮肤、泌尿生殖系统等。
2. 采集标本时要避免被污染：在采集标本之前，要保证采集部位干净，并注意避免手部、器具等的污染。
3. 采集标本时要注意采集量：采集标本时要尽可能多地采集，以免产生假阴性结果。
4. 采集标本时要注意采集时间：采集标本的时间应该尽可能在病情发生之后，以便更准确地检测出病原菌。
5. 采集标本时要注意保存温度：采集后的细菌标本应该及时送到实验室检测，并在长时间保存时注意保存温度，避免影响检测结果。
以上是细菌标本的采集原则，医护人员在进行细菌标本采集时应当严格遵守。
- 1 -。
临床微生物标本规范化采集和送检
四)标签及申请单
每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关 临床资料。包括病人情况（病区、病人姓名、住院号）、标本情况（标本类 型、检验目的、采集部位、采集方法、采集时间等）和病人用药等信息。
五)标本运输
标本应在室温下15分钟内送到检验科。如果超过2小时送达，冷藏保存。
六)实验室拒收标准
烧伤患者的创面、组织活检、血培养等的细菌学检测结果对临床医生进行烧伤感染的诊断和治 疗十分重要。创面的拭子标本或组织活检标本都可以进行细菌定量培养。出现全身感染症状时，应 同时采集血培养标本。在采集表面拭子或组织活检标本之前，应对创面彻底清洁，且未局部应用抗 菌药物。
一)临床采样指征：
由于烧伤的早期创面无菌，烧伤后12小时勿采集标本。当患者出现发热、创面恶化时， 考虑采样。
二)采样要求 1.病原体培养应在抗菌药物应用前或停药一周后采集标本。 2.生殖器是开放性器官，标本采集过程中应遵循无菌操作以减少杂菌 污染。 3.阴道内有大量正常菌群存在，采取宫颈标本应避免触及阴道壁。 4.沙眼衣原体在宿主细胞内繁殖，采集时尽可能多的取上皮细胞。
尿道分泌物
三）采集方法
（1）男性：取样前至少1小时内不要小便。 用无菌生理盐水清洗尿道口，用灭菌纱布 或棉球擦干，用男性拭子采取从尿道口溢 出的脓性分泌物或将男性拭子插入尿道内 2～4厘米取分泌物，置无菌试管中。如无 脓液溢出，可从阴茎的腹面向龟头方向按 摩，促使分泌物溢出。
应尽量送检无菌部位的标本，尤其是血培养。有菌部位标本应避免“正常菌群导致 标本的污染”。人体很多部位，如下呼吸道（痰液标本）、鼻窦、皮肤伤口等处的正常 菌群极易污染标本。因此，从这些部位采集标本，要尽可能降低这些部位正常菌群或定 植细菌对标本污染的可能性。有菌部位的标本不是最理想的微生物标本。
细菌标本的采集和运送
1
．所有标本的采集、运送和处理应在无菌操作，防止污染原则下认真进行。
2
．已采集原始标本都应置于、密封的容器中运送，含有明显区分各部门文字标
志。
3
．带针头的注射器运送标本到实验室，用无菌试管或防护装置套住注射针，再
置于防漏塑料袋中运送。
4
．避免来自寄生菌的污染，应当保证每份标本代表感染过程。健康宿主在感染
时，
可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上送检。
幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，
以诱发咳痰。
粪便标本的采集
当腹泻患者出现以下任何一种情况时建议采集粪便标本，进行细菌培养：
(1)
粪
便涂片镜检白细胞
>5
／
HP
；
(2)
重症腹泻；
(3)
体温大于
38.5
℃；
(4)
血便；
(5)
便中
有脓液；
(6)
未经抗菌药物治疗的持续性腹泻患者；
30s
或
10
％碘伏
60s
，从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域
直径达
3cm
以上。
3)70
％酒精脱碘。对碘过敏的患者，用
70
％酒精消毒
60s
，待酒精挥发干燥后采
血。
9
．培养瓶消毒程序
1)70
％酒精擦拭血培养瓶橡皮塞，作用
60s
。
2)
用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞子表面残余酒精，然后注入血液。如果是自
配带塞子的三角瓶，此步骤可免去。
2
～
3
份血标本，
24
～
36 h
后估计体温升高之前
微生物样本采集的标准化与规范化ppt课件
子从患者病变部位假膜及其边缘取材立刻送检。 肉汤拭子≤2小时，室温；拭子：≤1小时，室温， 1次/天。
咽拭子标本采集
3. 尿
外尿道多寄居有正常菌群，故采集尿液时 更应注意无菌操作，常用清洁中段尿作为 送检标本。中段尿用于细菌培养，最好用 晨尿。诊断泌尿系感染的细菌学标准一般 为菌落计数≥105CFU/ml。针对于老年人多 重症及卧床患者排尿困难，可相应采用导 尿管采集标本。采集和容器为无菌尿瓶， 标本量≥1毫升，条件≤2小时，室温，1次/ 天。
3）肛拭子：小心将拭子插入肛门，大约在括约肌之 上2-3厘米；轻轻旋转拭子采集肛门隐窝的标本；
要在拭子上明显看到粪便，才能检测腹泻病原体 。拭子采集，≤2小时，室温，1次/天。除了长期
卧床、无便（如中毒性痢疾）患者及频繁腹泻患
者，不推荐做拭子常规培养。用于检测淋病奈瑟 菌、志贺菌、弯曲菌、B群链球菌的肛携带者以及 不能留取粪便标本的患者。可检测霍乱弧菌。
培养瓶消毒程序：
用75％酒精擦拭血培养瓶橡皮塞（不能用含碘消 毒剂），作用60s。用无菌纱布或无菌棉签清除橡 皮塞表面残余液体．然后注入血液。
血 培 养 标 本 采 集 流 程 需氧和厌氧血培养瓶
采集次数
急性脓毒血症 10分钟内从不同部位抽血2-3次； 急性感染性心内膜炎 从不同部位抽血3次，每次
10. 褥疮
褥疮拭子培养的临床意义不大。应选择供 活检组织或注射器吸出物。以无菌盐水清 洗褥疮表面；如不做活检，用力以拭子抹 取褥疮基底部；将拭子置入肉汤培养基中 。≤2小时，室温，1次/天/来源。
参考文献
汪复 张婴元 吴菊芳等，实用抗感染治疗学 ，北京： 人民卫生出版社，2004，24 ~33.
细菌培养标本采集方法
细菌培养标本采集方法
血液及骨髓培养
1、适应症：血培养主要用于检测菌血症、真菌血症患者血液中的微生物，健
康人血液中是无菌的。
骨髓培养主要使适用于骨髓炎者。
2、标本采集：应在病人发热初期1-2天内（治疗前）无菌采集，采集量约为
培养液的1/10，通常5-6ml，已用过抗生素的患者，在48小时内取6个标本，每次均在使用抗生素前采集。
以上操作均采用无菌技术采集标本，诸如培养瓶后送实验室。
呼吸道标本培养
痰培养
1、适应症：适用于气管炎、支气管炎及肺部感染的患者。
2、标本采集：一般以清晨第一次痰液为佳，支气管扩张或支气管相通的空洞
者，清晨起床后进行体位引流，可采集大量痰液。
3、咽拭子：在留取标本前要用清水反复漱口，以减少正常菌群的污染，应在
采集部位（咽喉壁或悬雍垂后侧）反复涂抹数次，单咽拭子药避免接触皮肤粘膜。
4、自然咯痰法：以清晨第一次痰液为宜，采集前漱口。
脓液及创伤感染分泌物培养
1、适应症：适用于术后感染或局部感染的患者。
2、标本采集：用无菌棉拭子取脓液及病灶分泌物送检，也可以以无菌手续取
组织碎片送检。
尿液培养
1、标本采集：以清晨第一次中段尿为佳，女性要清洗外阴部位，男性清洗尿
道口，取中段尿约10ml。
夏季不超过一个小时，冬季不超过2小时。
2、适应症：适用于泌尿系感染的患者。
大便标本培养
1、适应症：适用于肠道感染的患者。
2、标本采集：多采用自然排便或结肠拭子采集法，应采集发病初期用药前的
新鲜的、脓血或粘液便。
杞县人民医院护理部
2011年8月10日。
细菌和真菌标本的采集指南
八细菌和真菌标本的采集指南标本类型采集时间和温度重复采样限制说明原则装置和最小量转运储存脓肿用无菌盐水或70％乙醇拭去表面渗出物组织或体液优于拭子标本，如必须用拭子，采集2个，1个培养，1个做革兰氏染色。
开放性尽可能抽取或将拭子深入伤口，紧贴伤口前沿取样拭子送捡系统≤2h，常温≤24h，常温1/d/来源从脓肿底部或脓肿壁的取样，结果最好封闭性用针及注射器抽吸脓肿壁，将所有物质无菌转入厌氧转运装置厌氧送捡系统≥1ml≤2h，常温≤24h，常温1/d/感染来源取样时，可能会带入与感染过程无关的定植细菌咬伤见脓肿不要培养≤12h的动物咬伤伤口（通常不能分离到感染性病原体，除非位于脸上或手上，或有感染的指征存在）血培养培养瓶的消毒：加70％异丙基乙醇到橡胶塞1min细菌：血培养瓶≤2h，常温≤24h，常温或按说明3套/24h急性脓毒病：10min内从不同部位采2－3套成人，5-10ml/套急性心内膜：1－2h内从3个不同部位采3套首先触摸静脉婴儿，3－5ml/套亚急性心内膜炎：从3个分离部位采3套，间隔≥15min，如24h内为阴性，要再采3套型采样限制说明原则装置和最小量转运储存血培养静脉穿刺消毒：1.用70％乙醇清洗采集体位2.使用蘸碘拭子，次女嘎中心开始呈同心圆式涂抹3.让碘制剂晾干4.不要触摸该点5.采血6.穿刺后，用乙醇将皮肤上的碘除去原因不明发热：从不同部位采2－3套，间隔≥1h，如24h内为阴性，要再采3套骨髓对穿刺一侧准备同外科切口接种血培养瓶≤24h，常温，≤24h，常温1/d少量骨髓可直接接种培养基烧伤标本采集前，先清洗和清创烧伤伤口将组织放入有旋帽的容器内用拭子取渗出物≤2h，常温≤24h，常温1/d/感染只需进行需氧培养，烧伤表面的培养可能会有误导导管1.用乙醇清洗导管周围的皮肤2.将导管末端距夹子5cm无菌移入无菌管3.直接转运微生物实验室，以防干燥无菌或有旋帽的管或杯≤15min，常温≤24h，4℃无对半定量培养，导管是可以接受的，如静脉导管（Maki法）：中心的、CVP、Hickman、Broviac、外周的、动脉的、Foley 由于培养物代表尿道末端的菌群，不要培养要求培养是不能接受的型采样限制说明原则装置和最小量转运储存蜂窝组织炎1.用无菌生理盐水或70%乙醇擦拭2.用细针头和注射器抽吸发炎的区域（一般是中心而不是边缘）3.往注射器吸入少量无菌生理盐水，将标本抽入无菌旋帽管无菌管（不要用注射器转运）≤15min，常温≤24h，常温无只有25－30%可产生潜在的致病菌CSF 1.用2%碘酒消毒采集体位2.用带L3－L4，L4－L5或L5－S1通管丝的针头插入3.进入蛛网膜下腔后，移去通管丝，采集1－2ml液体，分别放入3个防漏管无菌旋帽管所需的最小量：细菌，≥1ml真菌，≥2ml细菌：不要冷冻；≤15min，常温≤24h，常温无也可采血进行培养。
细菌培养标本的采集、转运储存方法
细菌培养标本的采集、转运和储存方法一、痰标本1、采集时间：最好于应用抗菌药前，采集清晨第一口新鲜痰液。
2、采集方法：（1）自然咳痰：用清水漱口（包括咽喉部）3次后用力咳痰，从呼吸道深部咳出第一口新鲜痰液于无菌容器内或输送培养基中。
（2）帮助咳痰：不易获得痰的患者可雾化吸入加温的氯化钠（45℃10％氯化钠水溶液）。
（3）支气管镜或支气管毛刷：由医生采集，建议直接种入输送培养基。
（4）胃内采集痰标本：婴幼儿不会咳痰而且常把痰误咽入胃中。
可在清晨，用胃管插入胃内，用注射器抽出胃液。
（5）小儿采集痰标本：用压舌板刺激咳嗽使肺部和器官的分泌物喷出，用拭子采取标本送检，如不能立即送检应种入输送培养基。
3、转运和储存：如在2小时内送检，可常温下放置；如不能立即送检，可放置4℃冰箱，但最好不要超过24小时。
二、血液标本1、采集时间：尽可能在用抗菌药前，心内膜炎除外；对已应用抗菌药物而病情不允许停药的患者应在下一次用药前采血。
2、采集方法：依次使用75%酒精、碘伏、75%酒精清洁采集部位皮肤；一般选取肘静脉，疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉为宜。
注意：不要与血气和血沉标本一起采集；不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜在静脉导管或静脉留置口采血。
3、采血量：两套4瓶，分需氧和厌氧，从两个部位抽血。
成人每套血量不少于16-20ml，先将10ml注入需氧瓶，再将剩余血注入厌氧瓶。
儿童每套血1-10ml，采血量是总血量的1％(儿童败血症含菌量是成人的10-100倍)。
4、采血间隔：如第一次采集2套（4瓶）血培养标本，在以后的2-5天不必采血，但除外心内膜炎和导管相关性败血症。
5、转运和储存：血培养瓶务必立即送至细菌室，因故不能立即送检时，应将已接种的瓶放在室温，切勿放在冰箱存放。
三、粪便标本1、采集时间：腹泻患者应在用抗菌药前、急性期采集；沙门菌感染、肠热症应在2周内采集；厌氧菌感染出现症状即可采集。
2、采集方法：自然排便者可用小木棒挑取有脓血和黏液部位的粪便2-3克，如液状粪便取絮状物盛于无菌的、密封的、不吸水的、容器内或直接盛于增菌液或保存液中；对不易获得粪便患者及幼儿，可用直肠拭子采集后置保存液或输送培养基中送检。
临床微生物标本采集和运送规范
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
18
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
2024版临床微生物标本采集规范
临床微生物标本采集规范•微生物标本采集意义与原则•临床常见微生物标本采集方法•微生物标本采集注意事项与操作规范•微生物标本运输、保存和处理流程目录•临床微生物实验室检测技术应用与进展•总结回顾与拓展思考01微生物标本采集意义与原则准确诊断指导治疗监测病情变化预防和控制感染通过采集微生物标本，可以对病原体进行准确鉴定和分类，为医生提供准确的诊断依据。
通过对微生物标本的连续检测，可以及时了解患者病情的变化情况，为医生调整治疗方案提供依据。
根据微生物标本的检测结果，医生可以选择针对性的治疗药物和方法，提高治疗效果。
通过对微生物标本的检测和分析，可以及时发现和控制感染源，防止感染的扩散和传播。
无菌操作正确选择采集部位采集足量标本及时送检01020304在采集微生物标本时，必须严格遵守无菌操作原则，避免污染标本和引入外源性微生物。
根据不同的病原体和感染类型，选择正确的采集部位，以提高标本的阳性率和准确性。
采集足够量的标本，以保证检测的准确性和可靠性。
采集后的微生物标本应及时送检，避免延误诊断和治疗。
血液标本通过静脉采血或末梢采血获得，用于检测血液中的病原体和抗体等。
尿液标本通过患者自行排尿或导尿获得，用于检测泌尿系统感染等。
粪便标本通过患者自行排便或灌肠获得，用于检测肠道感染和寄生虫病等。
呼吸道标本通过鼻咽拭子、喉拭子、痰液等获得，用于检测呼吸道感染和肺部感染等。
生殖道标本通过阴道分泌物、宫颈分泌物、前列腺液等获得，用于检测生殖道感染和性传播疾病等。
其他标本如脑脊液、穿刺液、组织活检等，用于检测相应部位的感染和病变情况。
微生物标本类型及来源02临床常见微生物标本采集方法血液及骨髓标本采集建议在患者寒战或发热初起时采集，同时在使用抗生素之前采集。
成人一般选择肘静脉，新生儿和婴儿选择颈静脉或股静脉。
成人一般采集8-10ml，儿童采集3-5ml，婴儿采集1-2ml。
严格无菌操作，避免污染，同时防止溶血。
采集时间采集部位采集量注意事项一般建议清晨第一次尿，即晨尿。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
血样采集和培养瓶接种（一）采血指征对入院的危重病人未进行系统性抗生素治疗时，应及时进行血液培养，病人出现以下临床表现时可作为采集血培养的重要指征。
1. 发热（>38℃）或低温（<36℃）2. 寒战3. 白细胞增多（>10×10^9/L，特别有“核左移”未成熟的或杆状的白细胞增多）4. 粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×10^9/L）5. 血小板减少6. 皮肤、粘膜出血7. 昏迷8. 多器官衰竭9. 血压降低10. 呼吸加快或同时具备上述几种临床表现时应采集血培养。
在评估可疑新生儿败血症时，除发热或低温外，很少培养出细菌，应该增加尿液和脑脊液培养。
肺炎链球菌与流感嗜血杆菌菌血症患儿（特别是2岁或2岁以下的幼儿）一般在门诊就诊，常伴有明显发热（>38.5℃）和白细胞增多（>20×10^9/L）。
老年菌血症病人可能不发热或不低温，如伴有身体不适、肌痛或中风，可能是感染性心内膜炎的重要指征。
（二）消毒程序要点：防止皮肤寄生菌或环境微生物引起的污染是血培养的关键问题。
由污染菌引起的假阳性增加了病人抗生素的使用量。
然而，在理想的消毒条件下，仍有3%-5%血培养中混有污染菌，它们来源于皮肤（表皮葡萄球菌、痤疮丙酸杆菌、梭杆菌属、类白喉群）或环境（革兰阳性芽孢杆菌属、不动杆菌属），故进行血培养阳性统计处理时，通过将单次血培养生长革兰阳性芽孢杆菌属、棒状杆菌属、痤疮丙酸杆菌或凝固酶阴性葡萄球菌的标本视为污染，一次血培养的阳性瓶数对区分真正的病原菌和污染菌无太大帮助。
皮肤消毒：血培养为防止皮肤寄生菌污染，可使用消毒剂[碘酊或聚维酮碘(碘伏)]对皮肤进行严格仔细的消毒处理，最大限度地降低皮肤污染。
培养瓶消毒：用70%酒精消毒血培养瓶橡皮塞子；酒精作用待60S；在血液注入血培养瓶之前，用无菌纱布或棉签清除橡皮塞子表面剩余的酒精，然后注入血液。
（三）采血量和血培养的数量采血量：对从菌血症或真菌菌血症病人血培养中获得的微生物，每个培养瓶抽取的血量是唯一重要的变量。
对婴幼儿和儿童，一般采血1-5ml用于血培养。
成人血培养的标本量为10ml，血液和肉汤比一般推荐为1:5~10。
每增加1ml血量平均提高阳性率3.2%。
血培养的数量：血培养的数量和采血时间关系到菌血症的病理生理学，一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份血培养。
一般而言，采集血培养都应该在使用抗生素之前进行，推荐同时采集2~3份血。
(四) 采血时机：应在用抗菌素治疗前，最好在患者发冷发热前半小时采血为宜。
(五)采血次数与间隔1. 急性感染患者：从两臂分别采2份血样。
2. 感染性心内膜炎患者：24h内采血3次，每次间隔不少于30分钟。
(六) 采血部位：多次采血时，应在不同部位进行。
(七) 培养条件：视患者的感染、用药情况选用不同的培养瓶。
尿液标本1、标本采集：应在用药前或停药5天后留取标本，并使尿液在膀胱内停留6-8h以上（给细菌足够的繁殖时间）。
（1）清洁排尿法：冲洗尿道口后用无菌容器留取中段尿送检。
（2）膀胱穿刺法：此法是收集尿液的最好方法，尤其对厌氧菌检查。
（3）肾盂尿采集法：应请泌尿科医生采取，左右侧的标本要标记明确。
（4）留置导管取尿法：应穿刺导尿管壁抽取尿液。
结核分枝杆菌的检查，应留取24小时尿；检测衣原体时，尿液标本不能代替尿（阴道分泌物；巨细胞病毒的检测，需多次检测标本，因其释放是周期性的。
2、标本的运送和保存：用无菌带螺帽的容器盛标本，标本应在1小时内送检。
痰标本众所周知，传统习惯程序的痰标本细菌学检验其临床符合率并不高,其原因是多方面的。
除了痰标本采集不规范导致的不合格标本带来的培养结果与病人感染不相符外，还因为微生物和人体的相关性本身就具有复杂性：源自细菌的致病与条件致病的辨证性，如致病菌可能为正常携带，而细菌在肺通气功能异常病人的下呼吸道的可以发生单纯定植或感染，要证明培养结果与感染的相关性是医学微生物学所面临的难题，这也使得一直以来在对于痰培养的标准化进展十分缓慢，以至在各版《全国临床检验操作规程》上也未提出相应详细可行的令全国同行公认的统一规范的标准化操作程序（SOP）和完整的痰液培养的质量控制办法。
目测：黄色、灰色、血性、铁锈色，浑浊、稠厚，呈现团块状的标本为合格标本；而无色透明、有灰白片状物或黑色小点，有明显食物渣滓、纸屑灰尘的为不合格标本。
标本留取质量的好坏直接影响到对下呼吸道病原学的诊断，导致抗菌治疗失败,以及造成耐药菌的出现。
应在用药前或停药1天后留取标本。
1、自然咳痰：要求患者留痰前用清水漱口3次，用力咳出。
首先用灭菌生理盐水将痰液洗3次，然后将痰块打碎，制成悬液后再接种。
2、气管穿刺法：适用于昏迷患者。
3、纤维支气管镜抽取法：适用于纤维支气管镜检查或治疗的患者。
4、胃液抽取法：适用于婴幼儿患者。
咽拭子1、拭子的选择：要求无菌、不含抑制剂；2、预先沾湿拭子；3、直取感染部位，减少污染。
生殖道标本1、男性患者：（1）尿道标本：清洗龟头,用碘伏等消毒后,挤出分泌物或以专用细拭子插入尿道口旋转采取分泌物送检。
（2）前列腺标本：应由医师按摩前列腺,以无菌手续自尿道口采取前列腺液送检。
2、女性患者：（1）成年患者：应在扩阴器的支持下，以无菌棉拭子取分泌物送检。
（2）未成年患者：不应使用扩阴器，应以无菌拭子在阴道口处采取分泌物送检。
厌氧菌检查厌氧菌是人体许多部位（如皮肤、口咽部、肠道和泌尿生殖道）正常菌群中的一部分，因此下列材料无需做厌氧菌培养：（1）咽、鼻、尿道或直肠拭子。
（2）咳出的痰，通过支气管镜取的分泌物，排出或导出的尿、粪及胃内容物。
1、正确地选择标本：为排除或尽量减少正常菌群中厌氧菌的污染，用注射器抽取标本比用拭子更好，特别适用于下列临床情况：（1）从未开放的脓肿抽取脓液。
（2）通过胸腔穿刺抽出的胸腔液。
（3）从耻骨联合上方做膀胱穿刺吸出或从肾造口管收集的尿。
（4）气管切开吸取的肺分泌物。
（5）穿刺抽出的腹腔液。
（6）通过腰椎穿刺抽出的脑脊液。
（7）窦道标本可插入小导管用注射器吸出，注射器和针头内的气体应全部排出，将其内容物直接注入一个已排出气的无菌试管内。
也可自窦道损伤部位取材做活组织检查。
如果必须使用拭子，应尽快接种于适宜的培养基中。
2、正确地运送厌氧菌标本：临床标本一旦离开人体部位，在进入厌氧环境前，必须防止大气中氧的毒性作用。
应及时将取材的拭子、塑料导管内的少量液体、吸入注射器的标本装入厌氧生物袋或管，在运送过程中要保持厌氧状态。
培养基内不应含有肝素，因它会抑制细菌生长。
脑膜炎奈瑟菌的检查根据病期不同，采集的标本也有所不同。
菌血症期病人可采取血液；出现出血点或瘀斑者，可挑取瘀斑渗出液；如出现脑脊髓膜刺激症状者，必要时可抽取脑脊液；上呼吸道感染期的疑似病人和带菌者，可取鼻咽腔分泌物进行检查。
因该菌易自溶，故应立即送检，最好在床边接种。
支原体及衣原体检查支原体和衣原体主要在人的呼吸道及泌尿生殖道的上皮细胞内生长，应该以专用棉拭子采取标本。
尿标本应离心取沉淀。
粪便标本1、标本采集：应在发病早期并且尽量在用抗生素治疗前采集，稀便不少于1ml，固体便不少于1克，无便患者可用直肠拭子采集标本。
2、显微镜检查：粪便直接涂片革兰染色，可作为艰难梭菌、弧菌、弯曲菌、葡萄球菌、念珠菌等的初步筛查，更能作为菌群失调的直观判断。
伤口分泌物采集方法开放脓肿：用无菌生理盐水擦洗病灶表面后，用蘸有无菌生理盐水的灭菌拭子采取脓液和病灶深部的分泌物，置无菌试管内送检。
注意尽量取化脓组织与正常组织交界处的脓汁，因为脓汁中心的细菌大部分已死亡，交接处的活菌较多，会提高阳性率。
开放病灶不能做厌氧培养。
闭锁脓肿：一般采用穿刺或手术引流的方法采取。
采集前先用2.5-3%的碘酊和75%的酒精消毒周围皮肤后，用无菌注射器抽取脓液送检；也可于切开排脓时用无菌棉拭子采样。
要消毒脓肿表面皮肤后用无菌注射器抽取，针刺入无菌橡皮塞后送检。
烧伤伤口：清创，出现渗出物后用拭子用力采集病灶基底部或边缘的标本，仅做需氧培养。
也可送组织标本。
脓疱或水疱：酒精消毒，干燥，用针头（小儿用23号针头）挑破脓疱，用拭子采集脓疱液和基底部标本。
采集过程中的注意事项：①采样前病灶局部应避免用抗菌药物或消毒剂，应在用药之前采取。
②对大多数开放伤口，采集前应先清创，去除表面菌群。
③除非有渗出物，干燥、结痂伤口一般不做培养。
④闭合脓肿应取渗出物和脓肿壁标本，不能用拭子采集。
开放脓肿处理同开放伤口。
⑤不要仅仅送检脓液，应在病灶活动区域或基底部采集标本，最好是组织标本。
生殖道标本当疑为生殖道感染性疾病时，首先排除是否有不洁性交史，然后根据症状确定检查方向。
对于男性患者来讲，先检查尿道是否有脓性分泌物，再依次是前列腺液、精液。
采集标本时应清洗尿道口，再用无菌拭子擦取尿道口脓性分泌物或深入尿道内2-4厘米取分泌物，检查精液患者应禁欲5天以上，采用体外排精法射精于灭菌容器送检。
对于女性患者，先用窥器扩张阴道，然后用灭菌棉拭子取阴道后穹隆处或宫颈分泌物作培养或涂片镜检。
注意事项：①生殖器是开放性器官，标本采集过程中应遵循无菌操作以减少杂菌污染。
②阴道内有大量正常菌群存在，采取宫颈标本应避免触及阴道壁。
③疑产妇有宫腔感染，待胎儿娩出后取宫腔分泌物，并同时取婴儿耳拭子一同送检。
④沙眼衣原体在宿主细胞内繁殖，采集时尽可能多的取上皮细胞。
穿刺液穿刺液主要包括脑脊液、胆汁、胸水、腹水、心包液、关节液及鞘膜液等。
在正常人体中，上述体液均是无菌的，有感染的情况下检出的细菌，应视为病原菌，应给予及时正确的治疗。
怀疑为脑膜炎的病人，用腰穿方法采集脑脊液2 ml左右，在常温下15分钟内送检。
标本不可置冰箱内保存，否则会使病原菌死亡。
胆汁及其它穿刺液采集到无菌针管或无菌试管内立即送检。
注意事项：①标本采集应在用药之前。
②严格无菌操作，避免污染。
③作脑脊液培养时，建议同时作血培养。
④为防止穿刺液的凝固，最好在无菌试管中先加入灭菌肝素。