家兔动脉血压调节实验讲课教案
家兔动脉血压调节实验
8）用强度5~10V，频率30Hz，波宽0.3ms的电脉冲分别刺激减压神 经、减压神经中枢端和外周端，记录动脉血压变化，并分析其原 因；
9）将右侧迷走神经穿线结扎，在结扎上端切断该神经，用强度 5~10V，频率30Hz，波宽2ms的电脉冲刺激其外周端，观察血压变 化，并分析其原因； ；
• 动脉血压记录：在颈总动脉内插入内部充盈 抗凝生理盐水的玻璃管或者塑料管，并与压 力换能器相连，压力换能器将血压信号转换 为电信号输入生理信号记录系统。
实验依据
• 正常动物心血管受神经体液调节 • 心脏的传出神经有交感神经和迷走神经 • 心交感神经：正性作用；心迷走神经：负性作用；
• 支配血管神经有缩血管神经与舒血管神经；交感缩血管 兴奋血管平滑肌收缩，血管口径缩小，外周阻力增大， 动脉血压升高；
• 1.一项实验之后，须待血压恢复正常后再 进行下一项实验；
• 2.实验过程中动物如果苏醒，可补注1/3剂 量的麻醉剂；
• 3.实验结束后，压力换能器要清洗干净； • 4.麻醉使得动物体温过低，注意给动物保
温，保温不当易造成动物死亡。
实验十 神经体液因素对家兔动脉 血压的影响
一、目的要求
• 1.学习并掌握家兔耳缘静脉麻醉术； • 2.学习并掌握气管插管术； • 3.学习并掌握动脉插管术 • 4.观察不同因素对家兔动脉血压的影响；
二、基本原理
• 动脉血压的形成主要取决于心室收缩射血和 外周阻力两个主要因素，但凡影响心室收缩 射血(心输出量)与外周阻力的因素均可影响 动脉血压。
2.气管插管术
2.气管插管术
实验三家兔动脉血压的调节(讲课演示)课件
• 实验目的 • 实验原理 • 实验步骤 • 实验结果与分析 • 实验结论 • 参考文献
01
实验目的
了解家兔动脉血压的调节机制
总结词
理解家兔动脉血压的生理调节机 制，包括神经调节和体液调节。
详细描述
通过实验，学生将观察到家兔动 脉血压在神经和体液因素下的变 化，从而深入理解血压的生理调 节过程。
实验仪器准备
准备实验台和手术器械
准备药品
实验台应平稳、无尘，手术器械应清 洁、消毒。
根据实验需要准备各种药品，如麻醉 药、生理盐水、抗凝剂等。
准备实验仪器
包括血压计、注射器、动脉插管、血 管夹等，确保其性能良好，准确无误。
实验操作流程
手术准备
进行必要的手术准备，如剪毛、 消毒等。
固定家兔
将家兔固定在实验台上，确保 其稳定不动。
学习观察药物对家兔动脉血压的影响
总结词
学习并掌握如何使用药物来改变家兔 的动脉血压。
详细描述
在实验过程中，学生将学习使用各种 药物来改变家兔的动脉血压，并观察 这些变化对心血管系统的影响。
掌握实验操作技术和数据处理方法
总结词
掌握实验操作技术和数据处理方法，包括实验动物的准备、实验操作步骤、数 据记录和分析等。
数据分析与解释
数据分析
对实验数据进行统计分析，计算各项指标的平均值、标准差 等。
数据分析解释
根据统计分析结果，解释实验数据所反映的规律和趋势，以 及可能的原因。
结果讨论与总结
结果讨论
对实验结果进行深入讨论，探讨可能 的误差来源、实验方法的改进等。
总结
总结实验的主要发现和结论，强调实 验的意义和价值，提出进一步研究的 方向和建议。
实验三家兔动脉血压的调节(讲课演示)PPT课件
目录
• 实验目的 • 实验原理 • 实验步骤 • 实验结果与分析 • 结论与讨论
01
实验目的
掌握家兔动脉血压的调节机制
了解家兔动脉血压的 生理正常值及波动范 围。
掌握压力感受性反射 和化学感受性反射对 动脉血压的影响。
学习并掌握家兔动脉 血压的神经调节和体 液调节机制。
了解肾素-血管紧张素系统和一 氧化氮等体液因素对心血管活 动的调节作用。
02
实验原理
神经调节
交感神经和副交感神经
交感神经兴奋时，释放去甲肾上腺素，使心率加快、血管收缩，血压升高；副 交感神经兴奋时，释放乙酰胆碱，使心率减慢、血管舒张，血压降低。
压力感受器反射
当动脉血压升高时，颈动脉窦和主动脉弓压力感受器受到刺激，通过传入神经 将兴奋传至延髓心血管中枢，使心迷走紧张加强，心交感紧张和缩血管紧张减 弱，导致心率减慢、血管舒张、血压下降。
对未来研究的建议
未来研究可以进一步探讨不同因 素对动脉血压调节的具体作用机 制，例如深入研究肾素-血管紧 张素系统在高血压中的作用。
此外，可以研究其他动物模型或 人类中的类似机制，以便更好地 理解这些机制在心血管疾病中的
普遍性和特殊性。
同时，可以探索如何将这些发现 应用于临床实践，例如开发新的 药物或治疗方法来调节动脉血压。
使用药物阻断自主神经的调节作用，如使用阿托品阻断M受体，使用心得安阻断β受 体等。
体液调节阻断
注射药物阻断体液调节机制，如注射血管紧张素Ⅱ、去甲肾上腺素等。
药物注射与观察
药物注射
根据实验要求，将不同浓度的药物注 射到家兔体内，观察其对动脉血压的 影响。
观察记录
实验三：家兔动脉血压的测定课件
实验环境
确保实验环境安静、清洁， 温度和湿度适宜。
家兔麻醉与固定
麻醉
采用注射器注射戊巴比妥钠，按照 30mg/kg的剂量对家兔进行麻醉。
位。
动脉插管与血压测量
动脉插管
在手术显微镜下，分离家兔的颈总动脉，插入充满肝素的插管。
血压测量
连接压力换能器与生物信号采集系统，记录家兔的动脉血压。
通过对比实验前后的血压变化，我们可以深入理 解血压调节的机制和影响因素。
对实验内容的拓展与延伸
01
在本实验基础上，可以进一步研究不同药物对家兔血压的影响， 以及药物作用机制。
02
可以探索家兔在不同生理状态下（如妊娠、麻醉等）的血压变
化规律。
通过与其他动物（如鼠、犬等）进行比较，可以深入了解不同
03
数据记录与分析
数据记录
实时记录家兔的动脉血压数据，并保存到计算机中。
分析
对记录的数据进行分析，绘制血压波形图，计算血压的平均值、最大值和最小值等指标。
04
结果分析
实验数据整理与处理
数据记录
01
准确记录实验过程中家兔的各项生理指标，如收缩压、舒张压、
平均压等。
数据筛选
02
剔除异常数据，确保数据的准确性和可靠性。
了解动物实验的伦理原则，确保实验 过程中对动物的福利保护，遵循人道 主义原则。
导管插入技术
学习并掌握将导管插入家兔动脉血管 的技巧，确保导管的稳定性和血压测 量的准确性。
02
实验原理
血压的概念及测量方法
血压的概念
血压是指血液在血管内流动时对血管壁产生的侧压力。
血压的测量方法
通常采用间接测量法，即通过袖带加压阻断肱动脉血流，然后逐渐减压，用听诊 器监听肱动脉搏动声，听到第一声搏动时袖带内的压力即为收缩压，搏动声消失 时的压力为舒张压。
实验十一 家兔动脉血压的神经、体液调节
实验十一家兔动脉血压的神经、体液调节➢介绍一、实验目的1.学习家兔颈部手术与分离主动脉神经的方法。
2.学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法。
3.观察神经、体液因素对心血管活动的影响。
二、背景资料动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。
正常情况下，人和高等动物的心血管活动在神经、体液因素的调节控制下，保持相对稳定，动脉血压相对恒定。
改变神经、体液因素的影响，则可观察到动脉血压的相应变化。
在动物实验中，可利用动脉插管直接测量动脉血压，通过液体导联系统和压力传感器，将动脉血压的变化在计算机采集系统中描记下来。
三、相关观察资料1.家兔正常动脉血压曲线2.分别刺激迷走、交感、减压神经，观察血压、心率等参数的变化3.分别注射去甲肾上腺素、乙酰胆碱溶液，观察血压、心率等参数的变化四、实验假说1.正常家兔曲线呈现出两级波。
2.刺激迷走神经，平均动脉降低，脉压差升高，心率减慢。
3.刺激减压神经，平均动脉压降低，脉压差升高，心率变化不明显。
4.刺激交感神经，平均动脉压升高，脉压差升高，心率加快。
5.注射去甲肾上腺素，平均动脉压升高，脉压升高，心率加快。
6.注射乙酰胆碱，平均动脉压降低，脉压升高，心率减慢。
➢实验材料和方法一、实验材料1.实验对象健康家兔1只2.实验试剂25%氨基甲酸乙酯溶液，生理盐水，肝素（300 U/mL），去甲肾上腺素溶液（1:10000），乙酰胆碱溶液(1:10000)、石蜡油3.手术器械兔箱，手术台，绳子，常用手术器械，止血钳，剪毛剪，眼科剪，支架，双凹夹，动脉插管，三通管，动脉夹，玻璃分针，手术灯，纱布，棉球，棉线，注射器（1 mL, 20 mL）4.记录仪器RM6240多道生理参数记录仪，计算机采集系统，YP100血压换能器支架，三通管，保护电极二、实验步骤1.实验仪器的准备打开计算机采集系统RM6240，接通血压换能器从RM6240系统的“实验”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”，使显示器显示压力读数。
大学精品课件：Experiment-4-兔动脉血压的调节
步骤
• 称重
• 麻醉 4ml/kg
• 背位交叉固定
• 备皮 • 颈部切口
暴露气管和两侧的颈总动脉鞘
玻璃分针分离左侧减压神经、交感神经、迷走神经、颈总 动脉和右侧颈总动脉
• 颈总动脉插管 • 记录正常血压和心率
1. 夹闭一侧颈总动脉 2. 电刺激减压神经
3. 双线结扎减压神经后剪断，再分别电刺激 其中枢端和外周端
何调整以适应机体当时状态的需要？
家兔动脉血压的调节
实验目的
• 学习动物血压的记录方法 • 学习用急性动物实验方法观察血压和心率 • 观察神经和体液因素对动脉血压的影响
背景知识
• 血压：是指血管内流动的血液对单位面积 血管壁的侧压力。
• 血压形成的条件 足够的血液充盈 心脏的射血 外周阻力的存在
• 影响因素
动脉血压的调节
长期调节：
肾上腺素受体：，1，2
分布： 1—心脏 —皮肤，肾脏，肠胃，脾脏血管平滑肌 2—肝脏，冠脉，骨骼肌血管平滑肌
作用： 1—强心 —缩血管 2—舒血管
肾上腺素： （大剂量时），1，2（小剂量时）
去甲肾上腺素： ，1>2
实验对象
• 家兔
仪器和药品
• 手术器械的握持方法和玻璃分针的用途 • 乌拉坦 25% • 肝素0.2% • 肾上腺素0.04g/L
肾脏的调节
急性调节:
神经调节 体液调节
反射弧：感受器→传入神经→中枢神经→传出神经→效应器
高位中枢
压 力
颈动脉窦 舌咽神经
延
心迷走中枢
感
心交感中枢
受 器
主动脉弓 减压神经
髓
缩血管中枢
心迷走神经
骨 心交感神经 髓 交感缩血管神经血管ຫໍສະໝຸດ 心脏变时 变力 变传导
兔动脉血压的神经体液调节及其药物的影响【机能实验指导】
西安交通大学医学院教案课程名称机能实验学授课方式任课教研室机能中心任课教师授课年级2006（7）授课时间2009-3《机能实验学》第十六次课兔动脉血压的神经体液调节及其药物的影响［实验目的］：1.学习家兔动脉血压的直接测量方法2.通过动脉血压的变化间接观察心血管活动的神经体液调节3.观察药物对动脉血压的影响［实验原理］：1．神经调节：1〕交感和迷走神经：窦房结0期去极化加快→心率加快Ca2+ 内流增加房室交界0期去极化加快→传导加快交感兴奋→NE+β1受体心肌收缩力增强If增加→ 4期自动去极化加快→自律性增加窦房结0期去极化减慢→心率减慢Ca2+ 内流降低房室交界0期去极化减慢→传导减慢迷走兴奋→ACh+M受体心肌收缩力减弱静息电位绝对值增大→自律性降低K+外流增加4期Ik减弱→自律性降低2〕心血管中枢：脊髓可以完成最初级的心血管反射；延髓是基本的心血管中枢；延髓以上的心血管中枢参与对心血管活动和机体其他功能间的复杂的整合。
3〕心血管反射：◆颈动脉窦和主动脉弓压力感受性反射（减压反射）：是一种负反馈调节；对在正常范围内的血压变化最敏感（60～180mmHg，尤其是60～100 mmHg）；对在短时间内发生的血压变化起作用（持续性高血压时减压反射在一个高水平上进行，无法将血压调回正常水平）。
颈动脉窦+（－）窦神经→舌咽神经BP↑（↓）→压力感受器—————————————延脑心血管中枢主动脉弓+（－）主动脉弓N→迷走神经心交感中枢紧张性↓（↑）心脏活动↓（↑）→心输出量↓（↑）心迷走中枢紧张性↑（↓）→BP↓ 交感缩血管中枢紧张性↓（↑）血管平滑肌舒张（收缩）→外围阻力↓（↑）◆心肺感受器引起的反射：（作用比减压反射弱，对机械牵张和化学物质的改变敏感）调节血量及体液的量和成分。
过程：机械牵张和化学物质→心肺感受器↑→迷走紧张性↑，交感紧张性↓→血压↓◆化学感受性反射：（颈动脉体、主动脉体化学感受器）在正常情况下不起作用；在BP低于60mmHg时才起作用；对延髓的影响以影响呼吸中枢为主。
家兔血压的调节课件
【Discussion 】
4、刺激右侧完整减压N→血压↓ 减压N是降压反射的传入N
5、切断右侧减压N，刺激离中端→血压不变 没有冲动传入中枢，降压反射不能完成。
6、刺激右侧减压N中枢端→血压↓ 冲动可上传到中枢，使反射完成。
【Discussion 】
9、静脉注射 NE →血压↑ NE→皮肤血管、内脏血管平滑肌α
受体→血管收缩→外周阻力↑→血压↑
10、静脉注射ACh →血压↓ ACh→心肌M受体→心率↓、收缩
力↓→心输出量↓→血压↓
[结 论]
正常心血管活动需要神经体 液机制的调节。
3、实验动物品种、规格、数量
4、实验器材与药品
5、实验方法和操作步骤，包括实验 的技术路线、实验的进程安排、每 个研究项目的具体操作过程，以及 设立的观察指标和指标的检测手段。
6、实验结果的记录表格
7、指导教师修改完善实验方案
到迷走N，减压N， 将右侧迷走N穿一 条线、减压N下穿 两条线备用，左侧 颈总A穿两条线以 便A插管。 四、体内抗凝
耳缘静脉注射 肝素1ml/kg体重
右侧
左侧
【观察项目】
顺序 观察项目
血压变化
1、 正常曲线
2、 夹闭右侧颈总A 15s 3、 向心牵拉左侧颈总A结扎线 5s 4、 刺激右侧完整减压N
↑ ↓ ↓
5、 切断右侧减压N，刺激中枢端
↓
6、 刺激右侧减压N离中端
无变化
7、 切断右侧迷走N并刺激外周端 ↓
8、 耳缘V注射 E 0.3ml
↑
9、 耳缘V注射 NE 0.3ml
↑
10、耳缘V注射 ACh 0.3ml
家兔动脉血压的调节ppt课件
收缩压比较：
精选ppt
15
舒张压：
精选ppt
16
心率比较：
精选ppt
17
心率比较：
精选ppt
18
经验总结
1. 第一只家兔在麻醉过程中死亡。由于家兔 的角膜反射一直未消失，故多推入4ml乌拉 坦。死亡的原因可能为麻醉药注射过量或 推入的速度过快。也有可能为未正确摆放 家兔导致家兔窒息死亡。 总结：在以后的实验中需更仔细地进行麻醉， 注意正确摆放家兔，注意控制麻醉的速度 和药量。
最终家兔失血性休克，经抢救无效死亡。
总结：操作需更规范更仔细。失血过多时可
考虑补充生理盐水维持血压。考虑到胶体
渗透压的维持，可收集血液重新回注如家
兔体内。实验中据情况补充麻醉剂。
精选ppt
21
实验结论
动脉血压可有神经调节和体液调节。 神经调节过程中：
刺激迷走神经，可使动脉血压降低 体液调节过程中：
家兔动脉血压的调节
精选ppt
1
实验原理阐述 实验结果波形分析 实验结果数据分析 实验操作经验总结
精选ppt
2
实验原理分析:
（以下图片参考浙江大学医学院《家兔动脉血压的神经体液调节》）
电刺激迷走神经：
精选ppt
3
去甲肾上腺素i.v.
精选ppt
4
乙酰胆碱i.v.
精选ppt
5
总结：
电刺激迷走神经外周端，心率下降，心输 出量减少，血压下降
外周阻力增加
control
mSP(mmHg) mDP(mmHg)
116.49
88.46
mAP(mmHg) 100.09
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告(精品课件)
[目的与要求］1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法2观察神经，体液因素对心血管活动的影响［基本原理］在正常人体内，任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦—主动脉弓压力感受性反射最为重要。
此反射即可使升高的血压下降，又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称。
家兔的主动脉神经在解剖上独成一支，易于分离与观察起作用。
...文档交流本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通，其内充满抗凝液体,构成液导系统，将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器，由计算机采集系统记录下来。
.。
.文档交流［动物与器材]家兔，手术台，常用手术器械，止血钳，眼科剪，支架,双凹管, 气管插管,动脉插管，三道管, 动脉夹,计算机采集系统，压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线，注射器（1ml，5ml，20ml），生理盐水，4%柠檬酸钠,20%—25%氨基甲酸已酯，肝素(200U/ml）,肾上腺素(1:5000）,已酰胆碱(1:10000)..。
.。
文档交流【方法与步骤】1、实验仪器的准备打开计算机采集系统，接通压力传感器。
从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数....。
.。
文档交流2、连通液导系统并制压将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。
上侧管供制压时排除管内空气使用。
先用装有20ml 4％柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。
然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。
继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。
当加压到120mmHg时既可关闭三通管。
观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。
实验九家兔动脉血压的调节
实验九家兔动脉血压的调节一、实验目的1、掌握测量家兔动脉血压的方法；2、了解家兔血压的测量结果；3、探讨家兔动脉血压的调节机制。
二、实验原理1、家兔动脉血压家兔动脉血压取决于心脏泵血量和外周阻力大小。
血压测量通常用毫米汞柱表示，正常的家兔血压在70~140mmHg之间。
2、血压调节机制血压调节机制包括神经调节和体液调节两种。
神经调节主要由交感神经和副交感神经组成。
交感神经兴奋可引起心力增强和周围阻力增加，副交感神经兴奋可引起心率和心输出量降低。
体液调节主要由肾素-血管紧张素-醛固酮系统和利钠激素-醛固酮-茶碱酸系统组成。
肾素释放可引起血管收缩和外周阻力增加，醛固酮能够增加钠的重吸收与钾的排泄，这同样会增加循环血容量。
利钠激素释放可引起肾小球滤过率降低，重吸收增加，这也能增加循环血容量。
三、实验器材1、兔用麻醉机；2、双腔球管；3、中央静脉导管；4、动脉压力传感器；5、脑水肿治疗仪；6、观察兔生命指标的监测仪。
四、实验步骤1、麻醉兔：将兔放在兔用麻醉机中，调节麻醉气体的流速，使兔迅速进入麻醉状态。
2、置入中央静脉导管：在右颈部穿刺，将中央静脉导管经过右心房进入右心室，在右心室与肺动脉交汇处置入。
3、置入动脉压力传感器：在右股动脉穿刺，将动脉压力传感器置入。
4、记录基线血压：稳定之后，记录家兔的基线血压。
5、进行干预：可以通过改变麻醉气体浓度、刺激交感神经、增加循环血容量、抑制抗利尿激素来对血压进行调节。
6、记录干预后血压：记录家兔在干预后的血压，并对实验所得数据进行分析。
五、注意事项1、在麻醉过程中应注意兔的呼吸、心率和血压等生命指标的监测；2、穿刺操作要轻柔、准确；3、干预方法需要慎重，尽量避免影响兔的生命体征。
六、实验结果分析1、记录每一次干预后家兔的心率和血压的变化情况；2、分析家兔的血压调节机制；七、实验思考题1、在测量家兔血压时，动脉压力传感器的位置很关键，你知道将它放在何处比较准确吗？2、实验操作步骤中如何注射药物改变兔的生理状态？3、利尿激素可以调节家兔的循环血容量，你知道减少循环血容量对家兔体内哪些器官有影响吗？。
家兔动脉血压的调节PPT课件
M、N胆碱受体激动药。
静注小剂量Ach，可激动血管的M3 胆碱受体，导致一氧化氮 （NO）的释放，引起血管平滑肌松弛，从而引起血管舒张 而造成血压短暂的下降。同时，由于激动窦房结以及心房、 心室的M2型胆碱受体，导致窦房结舒张期自动除极延缓、复 极化电流增加，从而引起心率减慢，心输出量减少，亦为血 压下降因素之一。综合效应为心率减慢，血压短暂下降。
房室肌后壁
房室肌少量
递质 受体 阻断剂
NE β1 心得安
Ach M 阿托品
中枢 分布 递质 受体 作用
特点
阻断剂
血管的N支配与生理作用
交感缩血管N
延髓的缩血管中枢 (T1-L2-3侧角) 绝大多数血管 （多为单一支配）
NE α（主血管
Ach Ｍ
α受体→血管缩 ∨
④ 颈总动脉分离及插管(插管肝素化、排气泡)：Bp
3. 连接BL-420生物信息采集与处理系统，打开“循环实验” 内“兔动脉血压调节”模块，监测正常血压。
耳缘V 头皮针(充满NS)，固定（动脉夹） 保持静脉通道的通畅，以免凝血
处理 因素
1. 夹闭一侧颈总动脉 2. 多巴胺： 0.15ml/kg 3. 肾上腺素： 0.15ml/kg 4. 去甲肾上腺素： 0.15ml/kg 5. 异丙肾上腺素： 0.15ml/kg 6. 酚妥拉明： 0.2ml/kg 7. 去甲肾上腺素： 0.15ml/kg 8. 普 萘 洛尔（心得安）： 0.5ml/kg 9. 肾上腺素： 0.15ml/kg 10. 乙酰胆碱1： 0.1ml/kg 11. 阿托品： 0.1ml/kg 12. 乙酰胆碱2： 0.1ml/kg 13. 刺激迷走神经外周端
2. 学习家兔血压的直接测量法
3. 观察神经、体液因素以及传出神经系统药物对家兔 动脉血压的影响，从而加深对动脉血压调节及作用机 制的理解。
实验三-家兔动脉血压的调节(讲课演示)
消了皮肤粘膜血管的收缩作用，因而出现后降压
作用。综合效应为血压下降（血压可先升后降）、 心率加快
实验机能学 实验三
家兔动脉血压的调节
14护本3班 刘家铭
1411020311
一、实验目的
学习动脉血压的直接描记方法 观察神经体液因素对动脉血压的影响 加深对动脉血压形成原理的理解
二、实验原理（1）
动脉血压的定义：
动脉血管内的血液对于单位面 积血管管壁产生的压力。
二、实验原理（2）
影响动脉血压的因素：
结果分析
珍惜每一天， 从现在开始！
心脏每搏输出量 心率 外周阻力 主动脉与大动脉的顺应性 循环血量和血管系统的比例
二、实验原理（3）
动脉血压是心血管系统活动的反映
影响心血管系统的神经与体液因素
交感神经 迷走神经 交感缩血管神经 肾上腺素 去甲肾上腺素
二、实验原理（4）
减压反射是神经调节主要方式：
减压反射的构成
感受器：颈动脉窦与主动脉弓 传入神经：减压神经与迷走神经 神经中枢：延髓 传出神经：交感神经与迷走神经 效应器：心肌细胞膜上的受体
插管充满肝素生理盐水
• 如果漏液—续灌传导液 先用注射器堵住， 再打开开关； 用力缓慢、匀力 将血液赶回血管
3. 观测项目
① 观察和记录正常血压曲线 ② 夹闭颈总动脉5-10 S ③ 牵拉颈总动脉 ④ 刺激减压神经 ⑤ 刺激迷走神经 ⑥ 静注肾上腺素 ⑦ 静注去甲肾上腺素
正常动脉血压曲线
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家兔动脉血压调节实
验
一、家兔动脉血压调节
（一）实验目的
本实验通过动脉血压的变化来反映心血管活动的变化。
目的在于间接地观察心血管活动的神经体液性调节和学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法。
（二）实验原理
心脏受交感神经和副交感神经支配。
心交感神经兴奋使心跳加快加强，传导加速，从而使心输出量增加。
支配心脏的副交感神经为迷走神经，兴奋时心率减慢，心房收缩力减弱，房室传导减慢，从而使心输出量减少。
支配血管的植物性神经，绝大多数属于交感缩血管神经，兴奋时使血管收缩，外周阻力增加。
同时由于容量血管收缩，促进静脉回流，心输出量亦增加。
心血管中枢通过反射作用，调节心血管的活动，改变心输出量和外用阻力，从而调节动脉血压。
心血管活动除受神经调节外，还受体液因素的调节，其中最重要的为肾上腺素和去甲肾上腺素。
它们对心血管的作用既有共性，又有特殊性。
肾上腺素对α与β受体均有激活作用，使心跳加快，收缩力加强，传导加快，心输出量增加。
它对血管的作用取决于两种受体中哪一种占优势。
去甲肾上腺素主要激活受体α，对β受体作用很小，因而使外周阻力增加，动脉血压增加。
其对心脏的作用远较肾上腺素为弱。
静脉内注入去甲肾上腺素时，血压升高，可反射性地引起心动过缓。
（三）实验材料
1.实验对象：兔。
2.器材：四道生理记录仪、血压换能器、电刺激器、保护电极、兔手术台、哺乳动物手术器械、照明灯、铁支架、双凹夹、烧瓶夹、试管夹、气管插管、动脉夹、三通管、塑料动脉插管、放血插管、注射器（lml、5ml、
20ml），有色丝线、纱布、棉花、1％戊巴比妥钠、1：1000肝素、1：10000去甲肾上腺素、12．5U/ml肝素生理盐水，生理盐水。
（四）实验方法
1.实验记录装置
将血压换能器固定在铁支架上，换能器的位置大致与心脏在同一水平。
将换能器电缆与二道生理记录仪的血压放大器输人插座相连（图6－18）。
按照前述二道记录仪的使用方法调整记录仪。
对血压放大器定标，校正选择开关拨至 13.3kPa（100mmHg），灵敏度置于50，记录描笔上移2cm。
通过三通管向换器压力小室及动脉插管内注满肝素生理盐水，排尽气泡，并预先加压至
13.3kPa，检查有无漏液。
四道生理记录仪——血压换能器装置
记录仪灵敏度一般置于 50或 100档，计时置 10s，走纸速度 0.5～lmm／s。
2.手术
动物的麻醉与固定：用l％戊巴比妥钠以30～35mg／kg体重的剂量由耳缘静脉缓慢注入。
动物麻醉后，背位固定于手术台上。
气管插管：剪去颈部的毛，沿颈正中线作5～7cm的皮肤切口。
分离皮下组织及肌肉，暴露、分离气管。
在气管下方穿一丝线，于甲状软骨下方2～3cm处作”“⊥”形切口，插入气管，以丝线结扎固定。
分离内脏大神经：将动物右侧卧位。
在腰三角作一长4～5cm的斜行切口，逐层分离肌肉，直至见到腹膜，然后从腹膜后找到左肾，将左肾向下推压，在其右上方可见到一粉红色黄豆大小的肾上腺。
沿肾上腺向上寻找内脏大神经．分离后穿
分离颈部神经和血管：在气管两侧辨别并分离颈总动脉、迷走神经、交感神经和降压神经。
三条神经中，迷走神经最粗，交感神经次之，降压神经最细，常与交感神经紧贴在一起。
分别在各神经下方穿以不同颜色的丝线备用。
分离时特别注意不要过度牵拉，并随时用生理盐水湿润。
颈总动脉下方穿两条线备用。
插动脉插管：静脉注射肝素（1OOOU／kg体重）以抗血凝。
在左侧颈总动脉的近心端夹一动脉夹，并在动脉夹远心端距动脉交约3cm处结扎。
用小剪刀在结扎线的近侧剪一小口，向心脏方向插入动脉插管，由备用的线结扎固定（注意此时血压换能器内的压力应保持在13.3kPa左右）。
记录血压：小心松开动脉夹，即可见血液冲进动脉插管。
拨通二道记录仪“测量”开关，记录血压曲线。
（五）实验结果记录
观实正常血压曲线：辨认血压液的一级波和二级波，有时可见三级波。
夹闭颈总动脉：用动脉夹夹闭右侧颈总动脉15s，观察血压的变化。
电刺激降压神经：以中等强度电流刺激降压神经15～20s，观察血压的变化。
在神经中部结扎剪断，分别刺激其中枢端与外周端，观察电压的变化。
电刺激迷走神经：结扎并剪断右侧迷走神经．电刺激其外周端，观察血压的变化。
静脉注射去甲肾上腺素：由耳缘静脉注入1：10000去甲肾上腺素0.3ml，观察血压的变化。
放血、补液：从右侧颈总动脉（或股动脉）插管放血20～5Oml，观察血压的变化。
然后迅速补充37℃生理盐水，观察血压的变化。
（六）注意事项
1.麻醉药注射量要准，速度要慢，同时注意呼吸变化，以免过量引起动物死亡。
如实验时间过长，动物苏醒挣扎，可适量补充麻醉药。
2.在整个实验过程中，要保持动脉插管与动脉方向一致，防止刺破血管或引起压力传递障碍。
3.每项实验前要有观察对照，施加条件时要手按“标记”，实验完毕后加以注释。
4.注意保护神经不要过度牵拉，并经常保待湿润。
5.实验中,注射药物较多，注意保护耳缘静脉。
最后一项观察因放血后血压降低，血管充盈不良，静脉穿刺困难，应在放血前作好补液准备。
（七）思考题（选择一到两个问题进行讨论）
1. 夹闭一侧颈总动脉，血压发生什么变化？机制如何？
2. 刺激兔完整的降压神经及其中枢端和外周端，血压各有何变化？为什么？
3. 正常血压的一级波、二级波及三级地各有何特征？其形成机制如何？
4. 刺激内脏大神经，血压有何变比？为什么？
5. 静脉注射去甲肾上腺素，血压有何变化？为什么？
6.为什么？液时血压有何变比？为什么？
7. 放血后及补为何预先切断迷走神经，再刺激其外周端？血压有何变化？。