双向电泳PPT

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《双向电泳技术》课件

《双向电泳技术》课件

高通量
该技术可以同时分离大量蛋白质,提高了实 验的通量。
高稳定性
该技术具有较高的稳定性,实验结果重复性 好。
缺点
实验周期长
双向电泳技术的实验周期较长 ,需要耗费较多的时间和人力

对样品要求高
该技术需要大量的起始样品, 并且对样品的纯度要求较高。
对实验条件要求严格
双向电泳技术的实验条件较为 苛刻,需要精确控制实验参数 。
在药物研发中的应用
总结词
双向电泳技术为药物研发提供了高通量和高效率的蛋白质分离手段,有助于发现潜在的药物靶点和筛 选候选药物。
详细描述
在药物研发过程中,双向电泳技术可用于分析药物对蛋白质表达谱的影响,从而发现药物作用的靶点 。此外,通过比较不同物种或组织的蛋白质表达谱,可以发现潜在的药物靶点,为新药研发提供思路 和候选药物。
应用领域的拓展
疾病诊断与治疗
利用双向电泳技术分析疾病相关蛋白质,为疾病诊断 和治疗提供依据。
药物研发
通过双向电泳技术筛选药物作用靶点,加速新药研发 进程。
生物工程与农业
在生物工程和农业领域中应用双向电泳技术,优化生 物过程和育种。
未来发展方向与挑战
标准化与规范化
建立双向电泳技术的标准化操作流程和质量控制体系,提高实验 结果的可靠性和可比性。
CHAPTER 02
双向电泳技术的实验流程
样本制备
01
02
03
样本选择与处理
选择适当的组织或细胞样 本,进行适当的处理以提 取蛋白质。
蛋白提取
使用适当的缓冲液和试剂 ,从样本中提取蛋白质。
蛋白定量
使用蛋白质定量方法,确 定蛋白质的浓度。
蛋白质提取
溶解蛋白质

蛋白质组双向电泳原理及实验步骤ppt课件.ppt

蛋白质组双向电泳原理及实验步骤ppt课件.ppt

中国历史上吸烟的历史和现状、所采 取的措 施以及 由此带 来的痛 苦和灾 难,可 以进一 步了解 吸烟对 人民健 康的危 害,提 高师生 的控烟 意识
• 最高电压10,000 V • 10–25C 温度控制 • 7, 11, 17, 18, 和 24 cm的聚
焦盘,可以各放12根胶条 • 可以储存10个程序,每个程序有
中国历史上吸烟的历史和现状、所采 取的措 施以及 由此带 来的痛 苦和灾 难,可 以进一 步了解 吸烟对 人民健 康的危 害,提 高师生 的控烟 意识
实验操 作
Method
原理
Theory
应用
Application
中国历史上吸烟的历史和现状、所采 取的措 施以及 由此带 来的痛 苦和灾 难,可 以进一 步了解 吸烟对 人民健 康的危 害,提 高师生 的控烟 意识
中国历史上吸烟的历史和现状、所采 取的措 施以及 由此带 来的痛 苦和灾 难,可 以进一 步了解 吸烟对 人民健 康的危 害,提 高师生 的控烟 意识
二维SDS-PAGE
• 同普通SDS-PAGE类似。
• 但一般在垂直电泳系统中无需浓缩胶,因 为在IPG胶条中蛋白质区域已得到浓缩, 可以认为非限制性IEF胶(低浓度丙烯酰胺 胶)充当了浓缩胶。
l 设置等电聚焦时的温度。(17℃)
中国历史上吸烟的历史和现状、所采 取的措 施以及 由此带 来的痛 苦和灾 难,可 以进一 步了解 吸烟对 人民健 康的危 害,提 高师生 的控烟 意识
配制SDS-PAGE凝胶
配制12%的丙烯酰胺凝胶,直接用双向电 泳专用梳子;或在上部留0.5cm的空间, 用MilliQ水、乙醇或水饱和正丁醇封胶。 聚合30分钟。


双向电泳--郭吉星PPT教学课件

双向电泳--郭吉星PPT教学课件

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利用双向电泳可以分辩出5000—10000个蛋白质组 分
分离得到的蛋白质组分纯度达到90%以上,可以 稳定地保存在凝胶上
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注意
双向电泳分离的结果使蛋白质点而不是条带。 根据
Cartesin坐标系统,从左到右是pI的增加,从下到上是分子
质量的增加。
PI增加
分 子 质 量 增 加
2020/12/09
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PPT精品课件
谢谢观看
Thank You For Watching
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蛋白质双向电泳技术
—— 基本原理
2020/12/09
姓 名:郭吉星 学 号:2010103024 任课老师:祝建波 教授

双向电泳 技术
双向电泳(two-dimensional gel electrophoresis, 2-DE) 是一种分析从细胞、组织或其他生物样本中提取 的蛋白质混合物的有力手段,是目前唯一能将数 千种蛋白质同时分离与展示的分离技术,其高分 辨率、高重复性和兼具微量制备的性能是其他分 离方法所无与伦比的。双向电泳技术、计算机图 像分析与大规模数据处理技术以及质谱技术被称 为蛋白质组研究的三大基本支撑技术。
2020/12/09
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第二向SDS-PAGE
SDS-PAGE是利用SDS使蛋白质变性,多肽链 变成长棒状,不同长短肽链间短轴基本相等,长 轴长度与肽链长度成正比。SDS与蛋白质形成复 合物,并且按1.4gSDS与1g蛋白质等比例结合(相 当于两个氨基酸残基结合一分子的SDS)使之带 上大量负电荷
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双向电泳技术
第一向按蛋白质等电点的不同,每个蛋白质分子 沿pH梯度迁移至与其等电点相等的位置

《蛋白质双向电泳》课件

《蛋白质双向电泳》课件
《蛋白质双向电泳》ppt课件
目录 Contents
• 蛋白质双向电泳概述 • 实验流程与技术 • 双向电泳的优缺点 • 双向电泳的应用实例 • 未来展望与研究方向
01
蛋白质双向电泳概述
定义与原理
定义
蛋白质双向电泳是一种分离和鉴定蛋白质混合物的技术,通过两次不同pH值 的电泳分离蛋白质。
原理
利用蛋白质的电荷和分子量差异,在电场中实现分离。在第一向电泳中,蛋白 质根据等电点不同被分离;在第二向电泳中,蛋白质根据分子量被分离。
蛋白质组学与其他技术的结合
与质谱技术联用
01
将蛋白质双向电泳技术与质谱技术联用,实现蛋白质
的精准鉴定和定量分析。
与基因组学、代谢组学等多学科交叉
02 将蛋白质双Hale Waihona Puke 电泳技术与基因组学、代谢组学等多学
科交叉,全面解析生命活动的调控机制。
与单细胞技术结合
03
将蛋白质双向电泳技术与单细胞技术结合,揭示单个
蛋白质定量
选择合适的蛋白质定量方法:如BCA 法、Lowry法等,确保准确性。
按照定量方法操作步骤进行定量,记 录数据并进行分析。
蛋白质溶解与分离
溶解蛋白质
将蛋白质样品溶解于适当的缓冲液中 ,以便进行电泳分离。
电泳分离
将溶解的蛋白质样品进行等电聚焦电 泳和SDS-PAGE电泳,实现蛋白质的 分离。
凝胶染色与图像分析
凝胶染色
采用银染、考马斯亮蓝染色等方法对凝胶上的蛋白质进行染 色。
图像分析
对染色后的凝胶进行拍照,并利用相关软件进行蛋白质点的 检测、匹配和比较分析。
03
双向电泳的优缺点
优点
高分辨率
双向电泳可以根据蛋白质的等电 点和分子量进行分离,具有较高 的分辨率,能够分离出更多的蛋 白质。

《双向凝胶电泳 》课件

《双向凝胶电泳 》课件
它结合了等电聚焦和SDS-聚丙烯酰胺 凝胶电泳的原理,能够分离出成千上 万的蛋白质。
双向凝胶电泳的原理
等电聚焦
在第一向电泳中,蛋白质根据其等电点进行分离,聚焦在相应的pH区域。
SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳
在第二向电泳中,已经分离的蛋白质加入SDS(十二烷基硫酸钠)后带负电荷,在聚丙烯酰胺凝胶中按分子量大 小进行分离。
生物标志物发现
通过双向凝胶电泳技术寻 找新的生物标志物,用于 疾病预警、监测和治疗。
药物研发
利用双向凝胶电泳技术分 析药物作用机制和靶点蛋 白质,为新药研发提供支 持。
研究展望
蛋白质组学研究
随着蛋白质组学研究的深入,双 向凝胶电泳技术有望在更广泛的 领域发挥重要作用。
跨学科合作
加强与其他学科领域的合作,共 同推动双向凝胶电泳技术的发展 和应用。
样品上样
将处理好的蛋白质样品上样到第一向 等电聚焦凝胶中。
等电聚焦
在第一向等电聚焦凝胶中进行等电聚 焦,分离蛋白质。
固相pH梯度第二向分离
将第一向分离后的蛋白质从凝胶中转 移到第二向SDS-PAGE凝胶中进行第 二向分离。
图像分析
染色与脱色
01
对第二向分离后的凝胶进行染色和脱色,以便观察和检测蛋白
研究疾病的发生和发展机制,为疾病的诊断和治疗提供依据。
03
生物标志物发现
利用双向凝胶电泳技术可以发现与疾病相关的生物标志物,如肿瘤标志
物、感染性疾病相关蛋白等,有助于疾病的早期诊断和预后评估。
在医学研究中的应用
1 2 3
药物作用机制研究
通过双向凝胶电泳技术分析药物作用前后蛋白质 表达谱的变化,有助于揭示药物的作用机制和靶 点。
数据共享和分析

双向电泳操作双向电泳的技术流程和样品制备ppt课件

双向电泳操作双向电泳的技术流程和样品制备ppt课件
第二步:把未溶解的pellet用标准IEF样品液溶解提取 高疏水性蛋白;
第三步:用含复合表面活性剂的蛋白溶解液,最后抽 提前两次抽提后不能溶解的膜蛋白约占整个样品的 11%(W/W)。
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的,应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失,增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的,应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失,增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
增加样品溶解性的手段
变性剂:通过改变溶液中的氢键结构使蛋白质充分伸 展,将其疏水中心完全暴露,降低接近疏水残基的能 量域。其典型代表是尿素和硫尿。
双向电泳分析中的样品制备
制备原则:
应使所有待分析的蛋白样品全部处于溶解状态(包括 多数疏水性蛋白),且制备方法应具有可重现性。
防止样品在聚焦时发生蛋白的聚集和沉淀。 防止在样品制备过程中发生样品的抽提后化学修饰
(如酶性或化学性降解等)。 完全去除样品中的核酸和某些干扰蛋白。 尽量去除起干扰作用的高丰度或无关蛋白,从而保证
Amount 4.1ml of 8.5 stock or 2.1g urea in 3ml H2O 760mg
50ul of 200mM TBP stock
200mg See table 10ul of 0.1% stock To 5ml
Multiple surfactant solution preparation 经营者提供商品或者服务有欺诈行为的,应当按照消费者的要求增加赔偿其受到的损失,增加赔偿的金额为消费者购买商品的价款或接受服务的费用
IPG pH Range 3-10 4-7

《双向电泳》PPT课件

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Analytical Load (silver staining)
Preparative Load (Coom staining)
7cm 10~100 g /125 l 200~500ug/125 l
11cm 17cm
50~200 g /185 l 250~1000ug/185 l
100~300 g/300 l 1~3mg/300 l
pH 10
Second Dimension:
SDS Polyacrylamide Gel Electrophoresis in discontinuous gradient gel
pH 3
pH 10
pH 3
Separation acc. to Isoelectric Points (charge)
Separation acc. to Molecular Weight (mass)
IPG IEF 中pH梯度的选择
常用方法: • 先宽后窄 • 先线性后非线性 • 先短后长
凝胶的图像处理分析和典型流程
• 凝胶图像的扫描: • 图像加工: • 斑点检测和定量: • 凝胶配比: • 数据分析: • 数据呈递和解释: • 2-DE数据库的建立:
LCM-DIGE (cy3-Lgreen, cy5-Kred)
固相pH梯度
为拥有CH2=CH-CO-NH-R结构的8种丙烯 酰胺衍生物系列,其中R包含羧基或叔氨基团, 它们构成了分布在pH3~10不同值的缓冲体系。
不产生阴极漂移、PH梯度稳定、分辨率高、重复性好。
第二向:SDS-PAGE
• 同普通SDS-PAGE类似。 • 一般在垂直电泳系统中无需浓缩胶,因为在
• 2. 对于某ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ抗体而言,其质量衡量指标主要有_______、______ _和________。

双向电泳培训课程PPT课件

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优化电泳条件
优化电泳参数,如电流、电压和 时间,以获得更好的分离效果。
提高检测灵敏度
采用荧光标记技术
利用荧光标记技术对蛋白质进行染色,提高检测 灵敏度和分辨率。
优化染色方法
改进染色步骤和条件,降低背景噪声,提高检测 灵敏度。
开发新型检测器
研发更灵敏的检测器,提高检测下限,降低检测 误差。
自动化与智能化发展
设置参数
根据实验需求设置电泳参 数,如电流、电压、时间 等。
开始电泳
接通电源,启动电泳程序, 开始电泳分离。
染色与检测
固定
电泳结束后,将凝胶固定在染色 架上,用脱色摇床进行固定。
染色
根据实验需求选择合适的染色方法, 如银染、考马斯亮蓝染色等。
检测
通过凝胶成像系统或数码相机对染 色后的凝胶进行拍照和记录,以便 后续分析。
03
比较不同物种间蛋白质的差异,揭示生物进化的奥秘。
临床应用前景
个体化医疗
通过对个体蛋白质组的分析,为个体化医疗提供依据。
精准诊断
利用蛋白质组学技术对疾病进行精准诊断,提高诊断的准确性和 可靠性。
药物疗效评估
通过监测药物治疗前后蛋白质组的变化,评估药物疗效和安全性。
THANKS FOR WATCHING
高分辨率和高灵敏度检测技术
提高蛋白质的检测灵敏度和分辨率,有助于发现 更多蛋白质。
3
生物信息学
对蛋白质组学数据进行深入分析,挖掘更多生物 学意义。
蛋白质组学研究
疾病标志物研究
01
寻找与疾病相关的蛋白质标志物,为疾病的诊断和治疗提供依
据。
药物靶点研究
02
发现潜在的药物靶点,为新药研发提供支持。

蛋白质的双向电泳.ppt

蛋白质的双向电泳.ppt

生物学问题的解释
双向电泳(2DE/DIGE)
目前进行蛋白质组学分析的最常规实验技术
能实现多达10000种不同蛋白质进行分离分 析
双向电泳(2DE)示意图
等电聚焦,实现蛋白质按等电点进行分离
提取的总蛋 白溶液
大 分子量
SDS-PAGE 分离,使得 蛋白质按分 子量大小排 序

通过双向电泳使得不同等电点和分子量的 蛋白质根据其自身特性分布到凝胶的不同
蛋白质组学(proteomics)
概念:是从整体角度分析生物体蛋白质组动 态变化的一门科学
研究内容:蛋白质的识别、定量;蛋白质的 定位、修饰;蛋白质之间的相互作用并根据 这些研究最终确定它们的功能
技术流程
提出 生物学问题
实验组和对照组 样品制备
双向电泳(2DE/DIGE)
凝胶图像分析
差异蛋白点选取 蛋白酶解及质谱分析 差异蛋白点的成功鉴定
位置从而实现蛋白质的双向分离
2DE图谱
硝酸银染色图谱
考马斯亮蓝染色图谱
双向电泳(DIGE)示意图
样品1: Cy3标记
将标记的 样品混合
双向电泳分离
样品2: Cy5标记
荧光扫描仪扫描
图像重叠分析
DIGE图谱
ห้องสมุดไป่ตู้
样品制备
双向电泳的最关键步骤之一
制备原则:尽可能多地提取出总蛋白质, 尽可能简单的操作步骤,注意防止样品 提取过程中的各种化学修饰,去除样品 中核酸、盐离子等干扰物质。
胶条平衡
等电聚焦结束后进行SDS-PAGE电泳 之前需进行胶条平衡,以便于被分离 的蛋白质与SDS充分结合,保证SDSPAGE电泳的顺利进行
步骤:一般采用两步平衡法,用含 SDS、DTT、尿素和甘油等的缓冲液 先平衡一次,再用碘乙酰胺取代DTT 后再平衡一次
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样品的溶解
是2-DE成功分离蛋白质的最关键因素之一。 溶解的目标: 1、样品中非共价结合的蛋白质复合物和聚积体完 全破坏,从而形成各个多肽的溶解液(否则样品 中结合牢固的蛋白复合物可能使2-DE中出现新的 蛋白点,相应的表示单个多肽的点的强度会下 降); 2、溶解方法必须允许可能干扰2-DE分离的盐、脂 类、多糖和核酸等物质的去除; 3、溶解方法要保证样品在电泳过程中保持溶解状 态。
目前进展: 1.双向电泳试验流程已掌握熟练,基本摸清 7cm胶条第一向等电聚焦的设置程序与第 二向凝胶电泳起始电压与终止电压大小。 2.通过观察凝胶电泳上蛋白点的分布,大致 了解到肾脏蛋白的等电点范围与分子量大 小范围。 3.采用相同蛋白提取方案及相同的双向电泳 条件,比较了使用不同除杂方法(①加入 RNase及DNase②冷丙酮沉淀③不做任何 除杂处理)纯化蛋白对结果的影响。
两维间的平衡
一维结束后可马上进行二维电泳,也可保存在两片 塑料膜间于-80°C保存数月。 但在二维电泳前一定要进行胶条的平衡,以便于被 分离的蛋白质与SDS完整结合,从而在SDS-PAGE 是电泳能顺利进行。 平衡过程导致蛋白丢失约5%-25%,还会使分辨率 降低,平衡30min时蛋白带变宽40%,缩短平衡时 间可以减少扩散,但同时会减少向第二向的转移, 所以平衡时间要充分长(至少2×10min),但不要 超过2×15min。
一维固相pH梯度等电聚焦(IEF with IPG):
IPG胶的材料是Immobilines,为拥有 CH2=CH-CO-NH-R结构的8种丙烯酰胺衍生物 系列,其中R包含羧基或叔氨基团,它们构成 了分布在pH3~10不同值的缓冲体系。根据公 布的配方计算后,将适宜的IPG试剂添加至混 合物中用于凝胶聚合,在聚合中缓冲基团通过 乙烯键共价聚合至聚丙烯酰胺骨架中而形成pH 梯度。通过这种方式生成的IPG不会发生电渗 透作用,因而可以进行特别稳定的IEF分离达 到真正的平衡状态。
凝胶的图像处理分析和
典型流程
凝胶图像的扫描: 图像加工: 斑点检测和定量: 凝胶配比: 数据分析: 数据呈递和解释: 2-DE数据库的建立:
蛋白质的胶内酶切
包括感兴趣蛋白点的挖取、含蛋白质凝 胶的脱色、胶内蛋白质的酶切等过程
样品制备
与IPG胶条水化 胶内直接染色
IPG电泳
双向电泳分析中的样品制备
制备原则:
应使所有待分析的蛋白样品全部处于溶解状态(包括 多数疏水性蛋白),且制备方法应具有可重现性。 防止样品在聚焦时发生蛋白的聚集和沉淀。 防止在样品制备过程中发生样品的抽提后化学修饰 (如酶性或化学性降解等)。 完全去除样品中的核酸和某些干扰蛋白。 尽量去除起干扰作用的高丰度或无关蛋白,从而保证 待研究蛋白的可检测性。
2、双向电泳 定义:
双向电泳(two-dimensional electrophoresis)是等电聚焦电泳和SDSPAGE的组合,即先进行等电聚焦电泳 (按照PI分离),然后再进行SDS-PAGE (按照分子大小),经染色得到的电泳图 是个二维分布的蛋白质图。 2-DE技术是大多数蛋白质组研究中分 离复杂蛋白质混合物的首选技术。
去除杂质 ——关键是尽量不丢失蛋白和减少蛋白修饰 在样品中常常会含有像核酸、多糖、去污剂和代谢物 等非蛋白质杂质,需要去除,否则会影响双向电泳的结果, 这个过程有时会造成蛋白的丢失以及蛋白的化学修饰和解 聚,特别是后者会导致双向电泳图谱中蛋白点的增多(由 于电荷的改变),所以操作中要多加注意。 1. 核酸的清除 Ø 对电泳的影响:增加样品粘度、与蛋白质形成复合物 后会出现假象迁移和条纹。 Ø 解决的方法:用适量纯的不含蛋白酶的核酸内切酶进 行降解,或是利用合成载体两性电解质(SCA)同核酸 结合形成复合物的能力,再通过超速离心来去除复合物。
增加样品溶解性的手段
1.变性剂:通过改变溶液中的氢键结构使蛋白质充分 伸展,将其疏水中心完全暴露,降低接近疏水残基的 能量域。其典型代表是尿素和硫尿。 2.表面活性剂:经过变性剂处理而暴露蛋白质的疏水 基团后,还常需至少一种表面活性剂来溶解疏水基团。 常用的表面活性剂有离子去污剂SDS、非离子去污剂 Triton X-100和NP-40、两性离子去污剂CHAPS、 OBG等。其中CHAPS和SB3-10最好。 3.还原剂:在变性剂和表面活性剂联用条件下,加用 还原剂可使已变性的蛋白质展开更完全,溶解更彻底。 常用含自由巯基的DTT或-巯基乙醇,以及不带电荷 的三丁基膦(TBP)进行还原。
Western Blot与Southern印迹杂交或Northern杂 交方法类似,但Western Blot采用的是聚丙烯酰 胺凝胶电泳,被检测物是蛋白质,“探针”是抗 体,“显色”用标记的二抗。 经过PAGE分离的蛋白质样品,转移到固相 载体(例如硝酸纤维素膜NC膜)上,固相载体以 非共价键形式吸附蛋白质,且能保持电泳分离的 多肽类型及其生物学活性不变。以固相载体上的 蛋白质或多肽作为抗原,与对应的抗体起免疫反 应,再与酶或同位素标记的第二抗体起反应,经 过底物显色或放射自显影以检测电泳分离的特异 性目的基因表达的蛋白成分。该技术也广泛应用 于检测蛋白水平的表达。
与上样缓冲液浸润 SDS-PAGE
染色
转PVDF膜
取出蛋白点
浓缩于多孔吸附柱上 胰酶等消化 反向HPLC分离 MALDI-MS, PSD片段分析 示知 ESI-MS-MS、微测序
MALDI-MS肽指纹图
数据库查询 已知 蛋白质鉴定
质谱技术进行蛋白质鉴定的基本流程
Western Blot中文一般称为蛋白质印迹。 它是分子生物学、生物化学和免疫遗传学 中常用的一种实验方法。其基本原理是通 过特异性抗体对凝胶电泳处理过的细胞或 生物组织样品进行着色。通过分析着色的 位置和着色深度获得特定蛋白质在所分析 的细胞或组织中的表达情况的信息。
2. 多糖的清除 Ø 对电泳的影响:带负电的多糖会与蛋白形成复合物, 导致拖尾和影响聚焦。 Ø 解决的方法:利用超离心和高pH,高离子强度,和 TCA等沉淀法。
3. 去污剂的清除
Ø 对电泳的影响:SDS能与蛋白形成带负电的复合物, 对等电聚焦影响大,需要清除。 Ø 解决的方法:用含载体两性电解质或两性离子去污剂 (CHAPS、Triton X-100或NP-40)的溶胀液稀释,或者 丙酮沉淀法。 4. 盐离子和外源带电小分子的清除 Ø 对电泳的影响:样品中的盐会增加凝胶条的电导,使 其无法达到设置的电要,从而影响蛋白质聚焦,带电小分 子会引起水的流动,使胶条的一端肿胀而另一端变干,导 致两端的酸、碱性蛋白无法聚焦,造成拖尾或丢失。 Ø 解决的方法:常用透析去除盐成分,TCA-丙酮沉淀法 可以清除小分子。
IPG胶条的水化
泡胀的实质:是让样品能完全以可溶性的形 式进入IPG内,从而能进行接下来的IEF。 不同的加样方法和加样量会导致最终结果的 差异:主动水化 被动水化 时间:12-16h
蛋白载样量
影响IPG胶条对蛋白载样量的因素包括: 待分析的蛋白点的量应满足随后的质谱分析。 电泳的目的:如果只是得到一张好的图片,则无需 考虑太多其它因素。 待研究蛋白的丰度: 样品的复杂度:复杂度较高的样品,为了尽可能的 了解所包含的每种蛋白,需要反复实验才能完成。 如果将待检样品被富集以后则更易分析。 IPG胶条的pH范围及长度:
存在问题: 1.蛋白纯化方法还有待进一步摸索。 2.二向凝胶上得到的蛋白点数量较少,有拖 尾现象,且点与点的分离度不好,具体原 因有待进一步研究。
实验计划: 1.继续使用7cm胶条摸索样品的制备流程。 2.条件摸索成熟后,改用窄PH范围的非线性 长胶条来分离目的蛋白。并改变染色方法。 3.分析比较各处理组,找到差异蛋白后,进 行质谱分析,并用western blot验证。
4.起载体作用的两性电解质: 即便在变性剂和表面活性剂存在的情况下, 某些蛋白质也需要在盐离子的作用下才能保持 其处于溶解状态,否则这些蛋白质在其处于PI 点时会发生沉淀。 Carrier ampholytes的作用在于捕获样品 中的少量盐分,从而保证蛋白质的溶解性。应 用时,两性电解质的浓度应小于0.2%(w/v)。 浓度过高会使IEF的速度降低。另外,为了保 证实验的精确性,在选择不同pH范围的IPG胶 条时,也应使两性电解质的pH值与之相符合。
实验进展情况汇报
研究生:罗珊珊 导 师:可 燕 副研究员
一、


二、
实验设计 目前进展 总 结
三、
四、
五、
实验计划
前言:
1、高血压与肾脏的关系
肾脏是高血压损害的重要靶器官,目前, 在蛋白质水平对高血压肾损害的发病机制还相当 有限。 蛋白质组学:可视为分子生物学的大规模筛 选技术,目的在于归类细胞中的蛋白质的整体分 布,鉴定并分析感兴趣的个别蛋白,最终阐明它 们的关系与功能。
IPG IEF 中pH梯度的选择
常用方法:先宽后窄,先线性后非线性, 先短后长,预试验确定。
聚焦时间的优化
理论上讲,要获得最好的图谱质量和重复性所需 最佳时间是IEF分离达到稳定态所需的时间。 聚焦时间太短,会导致水平和垂直条纹的出现。 过度聚焦虽然不会导致蛋白质向阴极漂移,但会 因为活性水转运而导致过多水在IPG胶表面渗出 (电渗)而造成蛋白图谱变性,在胶条碱性端产 生水平条纹以及蛋白丢失。 最佳时间的确定需要根据不同蛋白样品、上样量、 pH范围和胶条长度通过经验来确定。
生物学问题 的提出
实验模型 的设计 感兴趣 蛋白点 的切取
实验组和对照组 样品的制备
蛋白样品的IEF和PAGE电泳分离 图像扫描和初步分析
胰酶对脱色后蛋白质的消化 质谱的多肽指纹图、微测序分析 质谱结果的生物信息学分析和比对 新蛋白质的发现
蛋白信息的 初步获得
其它实验的进一步 验证(western blot 等)
二维SDS-PAGE
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