最新3核酸和核仁组织区的组织化学汇总
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3核酸和核仁组织区的组织化学
核酸和核仁组织区的组织化学
核酸的分布与组成成分
核酸的分布:
细胞质
细胞核
染色质
核仁
核酸
多核苷酸
单核苷酸┌磷酸
┌戊糖:核糖或脱氧核糖
└核苷
└碱基:A, T, C, G, U
核酸的种类与染色应用
RNA:胞质及核内
戊糖:核糖
腺嘌呤(A),鸟嘌呤(G),胞嘧啶(C),尿嘧啶(U)
DNA:核内
戊糖:脱氧核糖
腺嘌呤(A),鸟嘌呤(G),胞嘧啶(C),胸腺嘧啶(T)
核酸的种类与染色应用
核酸染色应用
免疫性疾病的诊断与研究
免疫缺损
AID
过敏性反应
肿瘤的诊断与研究
淋巴瘤
反应性病变
瘤样病变
核酸的染色方法
1,Feulgen法
2,甲基绿--派洛宁法
Feulgen-Rossenbeck法
原理:
脱氧核糖核酸→→脱氧戊糖与碱基断开,戊糖端形成醛基(CHO-CHO)与Schiff试剂(无色)反应→→紫红色(DNA部位)
PAS法:用过碘酸强氧化剂使六碳糖中的1,2乙二醇基(—CHOH-CHOH—)变成二醛基(—CHO)然后与Schiff试剂反应,形成紫红色的化合物,在有多糖的部位,就会呈现紫红色阳性反应。
原理
Schiff试剂中的酸浓度对两个反应的效果不同
pH在3.0和4.2: 对Feulgen反应染色好
pH2.4: 适宜于作PAS反应
Schiff试剂置于棕色瓶,放冰箱,染色效果好,保存时间长
HCL水解
作用:
嘌呤碱基的去除,醛基暴露,醛基与Schiff试剂以共价键结合,一种特殊的细胞化学反应(染色强度增加)
核内DNA产生游离醛基成为无嘌呤核酸(APA) 和将大分子APA解聚成小片断游离出细胞核,被HCL溶解(染色强度减弱)
注意事项:
1.水解时间 60℃ 1N HCL
固定液Carnoy 8min
Zenker 5min
Formalin 8min
无水乙醇 5min
Bouin 不能用
2.固定液组织块用Carnoy,涂片用甲醇
3.预实验
经典的Feulgen法是用1N HCL 60℃中水解。
改良的方法是5N HCL室温下进行或60℃5分钟。
试剂配制
1.schiff氏试剂:清而透明的浅黄色,0-5℃保存。粉红色的弃之。
2.亚硫酸水(洗涤剂)
3.5N HCl(水解用) (改良法)
4. 1%亮绿
染色步骤
1.切片脱蜡至水、蒸馏水
2.5N HCl 60℃ 5min或室温20-40min
3.蒸馏水洗(使水解停止)
4. Schiff试剂中染色60min 室温
5.用0.5%亚硫酸盐溶液洗3~5次(以洗去多余的非特异性色素及扩
散染料)
6.流水冲洗5 min
7.蒸馏水洗
8.1%亮绿复染2min
9.蒸馏水洗
10.脱水、透明、封片
实验结果
1. 细胞核中的DNA呈鲜亮的紫红色反应
2. 细胞质被亮绿复染成绿色
应用
Feulgen法的产物与DNA的含量呈正相关,主要用来检测产物定量DNA,测细胞的倍体数(多倍体、异倍体)用于肿瘤细胞和精子的定量分析。
甲基绿-派洛宁法
methyl green-pyronin
甲基绿—派洛宁为碱性染料,它分别能与细胞内的DNA、RNA结合呈现不同颜色。甲基绿与派洛宁作为混合染料
甲基绿与染色质中DNA选择性结合显示绿色或蓝色;
派洛宁与核仁、细胞质中的RNA选择性结合显示红色
甲基绿-派洛宁染色机制
电离作用
电离后甲基绿在五价氮处产生二个正电荷,碱性较强,与细胞核结合,派洛宁电离后仅产生一个正电荷较弱与胞质结合
聚合作用
甲基绿与高聚合的DNA结合,派洛宁与聚合低的RNA结合
甲基绿-派洛宁法
methyl green-pyronin
染色步骤:
1.切片脱蜡如常,水洗
2.0.2M醋酸缓冲液稍洗
3.甲基绿派洛宁液染色1—2小时
4.倾去染液,用滤纸吸干切片上多余水分
5.用正丁醇迅速分化10—20秒
6.经丙酮迅速脱水,二甲苯透明,中性树胶封片。
结果:DNA呈绿色,RNA呈红色。
甲基绿-派洛宁法
methyl green-pyronin
2%甲基绿储存液:
甲基绿 2g, dd H 2 O 100ml
2%派洛宁储存液:
派洛宁2g, dd H 2 O 100ml
甲基绿用氯仿抽提5-6次
分液漏斗,加等量氯仿
充分摇荡数分钟后静置
液体分层,放掉分液漏斗中下层的紫色氯仿
直至氯仿洗不下紫色为止
派洛宁用氯仿抽提5-6次
同上用氯仿抽提数次,待氯仿不显红色为止
工作液:
2%甲基绿储存液(抽提后) 9ml
2%派洛宁储存液 4ml
用0.2M醋酸盐缓冲液(pH 4.8)调PH到4.8
甲基绿-派洛宁法
methyl green-pyronin
注意事项:
1.新鲜组织染色效果较好,应尽早选取新鲜组织固定。
2.以Carnoy氏液固定的组织最为理想。
4℃,2-4小时,超过一天则染色效果不理想