红掌快繁技术优化研究
红掌组培快繁技术研究
（ ） ＋ 一 Ａ ２０ ／ Ⅲ ＭＳ ６ Ｂ ．ｍｇ Ｌ的培 养基 上进 行 继 代 培 养 ，诱 导
分 化 效 果．ｍｇ Ｌ＋ ＞（Ｉ） （ 。 ＋ － Ａ ２０ ／ Ｎ从
１ ０～５．ｍ ｇ Ｌ ＋Ｎ 从 ， ０ ／ ０。 ＂０。 ｍ ｇ／ ． Ｓ＋６一ＢＡ ， １－ ５ － Ｌ Ｍ １０～５． ｇ／ ＋ ０ｍ Ｌ
０５ ／ ．ｍｇ Ｌ的培养 基 上 培 养 １个 月后 ， 可产 生 胚 状体 。 同样 在 的培 养 基 上 约 １ 月 的继 代培 养 ， 状 体 顶 端 可 形成 再 生 个 胚 芽 （ 图 ２ 。实 验 表 明 ： 片 愈 伤 组 织 诱 导 再 生 芽 以附 加 见 ） 叶 ２，－ ＮＡ 和 ６ Ｂ 的培 养基 。比 单 独 使 用 ６ Ｂ 的效 ４ Ｄ、 Ａ 一 Ａ 一 Ａ
诱 导 愈 伤 组 织 启 动 培 养 基 Ｍｓ ６ Ｂ ．ｍｇ Ｌ ２ ４ ＋ 一 Ａ１ ０ ／ ＋ ，一 ＤＯ５ ／ ＭＳ ６ Ｂ ， ／ Ｎ从 ０５ ／ 愈 伤 组 织分 ．ｍｇＬ； ＋ 一 Ａ １ ｍｇＬ＋ ０ ．ｍｇ Ｌ；
化 培 养 基 Ｍ Ｓ ６ Ｂ ２０ ／ ＋ ＋ － Ａ ．ｍｇ Ｌ ＮＡＡ ０ ｍｇ Ｌ。 Ｓ ６ Ｂ ． ／ Ｍ ＋ － Ａ ５ ２０ ／ ２ ４ Ｄ 。 ／ 不 定 芽 的 诱 导 培 养 基 Ｍ Ｓ ６ Ｂ 。 ｍｇＬ＋ ，－ ０５ Ｌ； ｍｇ ＋－ Ａ
形 ， 色 青翠 ， 颜 佛焰 苞 片直 立开 展 ， 质 ， 红 色 外 ， 有粉 、 革 除 还 白等 色 ， 彩鲜艳 ， 色 花苞 亮丽 ， 这种 色彩 从花 期 开始 可 维持 ３ 个 月多 。可做 高 档切 花材料 ， 目前 国际 市场新 兴 的切 花之 是
红掌组培快繁技术研究概况
2346.7
2418.0
2506.9
2016.0
2088.8
1870.4
2598.4
2340.8
2497.6
2095.6
嫩的外植体较容易诱导出愈伤组织，且嫩叶的叶柄比 叶片更容易诱导出愈伤组织，但时间较长，约 60d。 1.3 激素条件对红掌腋芽初代培养的影响 激素条 件不仅影响着红掌腋芽分化能力，同时还决定着不定 芽分化的途径。在适宜的培养基条件下，红掌腋芽能通 过直接器官发生途径直接产生不定芽，试验证明，当培 养基中添加细胞分裂素 6-BA 1.0mg/L、生长素 IBA 0.1mg/L，此种培养基能很好地诱导腋芽分化。 2 红掌组培苗继代培养与壮苗技术
遗传稳定性，以红掌腋芽为外植体就属于此种类型。 1.1 红掌腋芽初代培养外植体处理方法的选择 在 红掌的再生体系建立的过程中，大多数外植体均选用 叶片、叶柄，因其易灭菌，再生体系易建立，虽然建立周 期普遍比较长，均需 2~3 月。而红掌腋芽因含有内生 菌难以彻底灭菌，采用常规升汞灭菌难以达到理想效 果，这主要是由于红掌为热带植物，茎段、腋芽部位含 有大量内生菌，升汞灭菌结合酸化的培养基可有效解 决以上问题。 1.2 红掌腋芽初代培养外植体类型的选择 外植体 是影响组织培养再生体系建立的重要因素之一，红掌 组织培养采用的外植体种类较多，主要有叶片、叶柄、 茎尖、侧芽、根、苞片、花序轴等，其中叶片和叶柄是普 遍的外植体类型。何贵整等人研究结果认为红掌较幼
2016 年第 8 期
现代园艺
试验研究
红掌组培快繁技术研究概况
朱奕豪 （聊城大学，山东聊城
252000）
：红掌作为一种室内观花观叶皆宜的花卉，颇受消费者青睐，其供不应求的问题愈发明显，利用组织培养技术快速繁殖红掌 苗已成为红掌生产应用中的重要课题。本文围绕红掌的腋芽培养、继代培养、生根条件 3 个方面作了详细叙述，明确了红掌组培快 繁技术研究的相关内容，发展前景。
粉女郎红掌组培快繁技术研究
（ ｕ ｎｈｕＬ ｏ ｉ ｕｊ ｎ ｉ ｒ ｔ ｏｅｎ ｎ， ｕｎｈｕ３２ １ ， ｈｎ ） Ｑ ａｚｏ ｕ Ｘ ｏａ ｇｄｓ ｃ ｇｖｒｍｅｔＱ ａ ｚｏ ６０ ５ Ｃ ｉ ｌ ｉ ｔ ｉ ａ
Ａ ｂ ｔ ａ ｔ： ｅ ｅ ｒ ｈ ｒ ｐ ｔｓｏ ｉｓ ｅ ｃ ｌｕ ｅ ｉ ｓ ｒ ｃ Ｔｈｅ ｒ ｓ ａ ｃ ｅ ｏ ｎ ｔｓ ｕ ｕ ｔｒ ｎ Ａｎｔｕｒｕｍ ｎｋ Ｌ ｓ ．， Ｔｈ ｕｉ ｂｌ ｔ ｒｌｚ ｄ ｔｍｅ ｉ １ —２ ｈ ｉ Ｐｉ ａ ｓ ｅ ｓ ｔ ｅ ｓｅ ｉｅ ｉ ｓ ５ ａ ｉ ０ｍ ｉ ｏ ｎ ｔ
安 徽 农 学 通 报 ， ｎｕ ． ｃ． ｕ１２ １ １ （ １ Ａｈｉ Ａ ＳｉＢ ｌ ０ ０，６ ２ ） ．
５ ５
粉 女 郎 红 掌 组 培 快 繁 技 术 研 究
陈 华 吴子平
（ １泉州市洛江区罗溪镇政府 ， 福建 泉州 ３ ２ １ ２泉州市洛江区生产力促进 中心 ， ６ ０５； 福建泉州 ３２１ ） ６ ０ １
根 过 程 添 加 土 豆 汁 、 蕉 汁容 易 滋 生 细 茵 。 香
关键词 ： 女郎红掌 ； 粉 组培快繁 ； 技术
中图 分 类 号 ￥２ ． ９ ６８１ 文献 标 识 码 Ａ 文章编号 １０ ７ ３ （０ ０ ２ ５ ０ ７— ７ １ ２ １ ） ｌ一 ５—０ ３
Ｓ ｕ ｎ ｓ ｕ ｔ ｄｙ ｏ Ｔｉｓ ｅ Ｃｕｌｕｒ ｆＡｎｔ ｕｒｕｍ ‘ ｎ Ｌａ ｓ ｔ ｅｏ ｈ ｉ Ｐｉ ｋ ｓ ’
叶柄 及茎 段切 口 １～ ｒｍ， 留茎段 约 １ｍ、 柄 ２～３ ｍ、 ２ ａ 保 ｃ 叶 ｃ 叶 片 ４ ｍ ４ ｍ进行 培养 。 ｍ ｘｒ ａ １２ ２ 愈 伤 诱 导 以 ＭＳ培 养基 为基 础 ， 加 不 同 的激 ．． 添 素进 行愈伤 诱导 ， 葡萄糖 ３ ／ 卡拉 胶 ６ ／ ，Ｈ ． 培 ０ｇ Ｌ， ｇ Ｌ ｐ ５ ８，
切花红掌的组培快繁技术
切花红掌的组培快繁技术红掌是一种受欢迎的观赏植物，通常生长在室内，在办公室或家中可以为人们提供美丽的视觉效果。
然而，红掌生长缓慢，繁殖也不易。
组培快繁技术是一种有效的繁殖方法，利用这种技术可以更快速地繁殖出更多的红掌。
组培快繁技术的介绍组培快繁技术是一种基于植物组织培养的技术，通过分离幼苗的组织和对其进行营养和激素处理，使其在培养皿中快速生长并形成新植株，从而实现繁殖的目的。
组培快繁技术的优点是繁殖速度快、无显性突变和杂交引入、容易控制和精细调控生长环境、繁殖能力强等。
而且，该技术可以实现小量、大批量的繁殖，节约时间和空间。
快繁操作步骤1. 材料准备对于组培快繁技术，我们需要准备以下材料：•瓶子：透明的玻璃或塑料瓶，根据需要选择不同大小的瓶子；•导管：负责植株营养物质和激素的输送；•培养基：根据不同的植物需求选择不同的培养基；•搅拌器/遥控器：用于对瓶子中的培养基进行搅拌和控制营养液的温度和湿度；•去离子水/蒸馏水：用于制作培养基。
2. 培养基制备制备培养基时，应注意使用无菌器皿、器具和材料，并按照给定的配方精确配制。
培养基的基本配方包括植物素、蔗糖、氨基酸和矿物质元素等。
3. 组培快繁切花红掌组培快繁的过程分为三个阶段：3.1 幼苗材料准备从健康的红掌植株上选择不同长度的嫩枝茎段，剪去叶片和花序，将枝秆洗净消毒后，切成5-8mm左右的小段。
3.2 组培培养将幼苗茎段直接埋入培养基中，或者使用无菌的操作器械将茎段分离后置于培养基上。
将组培材料放置在无菌培养箱中，开启光照器照明，利用搅拌器摇动瓶子或使用遥控器来控制瓶子内营养液的温度和湿度。
3.3 移栽在培养基不断喷涂匀称分布的营养物质和激素的过程中，幼苗逐渐生长形成根系开始独立生长。
在幼苗长到一定程度后，从培养瓶中取出幼苗进行移栽，放置在适宜的土壤中。
注意事项组培快繁需要在无菌操作下进行，所以应注意以下几点：•操作工具、器皿和培养基都需要严格无菌处理，确保繁殖过程不受到细菌和病毒的污染；•操作过程应尽可能地简单流畅、迅速进行，避免长时间暴露在空气中，以免侵袭微生物；•繁殖过程需要放置在适宜的光强和温度下进行。
红掌茎段侧芽离体快繁技术研究
关键词：红掌；茎段侧芽；离体快繁
Ｄ ｉ１．９ ９ ．ｓ． ｏ －７ １ ０ １ ２０ ３ ｏ： ０ ６￣ｉ ｎ１ ９７ ９ ． １． ．１ ３ ｓ ０ ２ ０
中图分类号 ：Ｑ ４ ． ９ ３１ 文献标识码 ：Ａ 文章编号 ：１０ －７ １ ０ １０ —０ ２０ ０９７ ９ （ １）２０４ —２ ２
ｃ ｌｕ ｅ ｍｅ ｉ ｍ ｏ ｔ ｍ ｄ ｉ ｕ ｅ ｎ ｓ Ｍ Ｓ ＋ ６ ＢＡ ０ ｍｇ Ｌ 十 ＮＡＡ ５ ｍｇ Ｌ．ｗｉｈ ｔ ｅ ｕ ｔ ｒ ｄ ａ ｆ ｒ ｓｅ ｂｕ ｎｄ ｃ ｍｅ ｔｗａ － ２． ／ ０． ／ ｔ ｈ
ｇ ｒ ｉ ａｉ ｎｒ ｔ ｓ ７ ５ ： ｈ ｐ ｉ ａ ｕ ｔ ｒ ｄ ｕ ｆ ｒ ｒ ｌ ｅ ａｉ ｎ Ｗａ Ｓ＋６ Ｂ ｅｍ ｎ ｔ ｅＷａ ８ ．％ ｔ ｅ ｏ ｔ ｌ ｌ ｅ ｍｅ ｉ ｍ ｐ ｏｉ ｒ ｔ ｓ Ｍ ｏ ａ ｍ ｃ ｕ ｏ ｆ ｏ 一 Ａ０ ８ ｍｇ Ｌ ＋ ． ／
侧芽萌发 、增殖 、无 茵苗生根 的影响 以及增殖培养过程 中愈伤 组织的抑制等 因素。结果表 明，侧 芽诱导的适宜
培养基 为 ＭＳ ６Ｂ ．ｍ ／ ＋Ｎ Ａ０ ｇ ， ＋ ．Ａ２ ｇ ０ Ｌ Ａ ．ｍ ／ 萌发率达 ８． 最适增殖培养基 为 ＭＳ －Ａ０ ｇ ＋ Ａ ５ Ｌ ７ ％； ５ ＋６ Ｂ ．ｍ ／ Ｎ Ａ ８ Ｌ
Ｔ ｃ ｎ ｑ ｒｉ ／ ｏＲａ ｄ ｏ ａ ａｉｎ ｆＳ ｅ ｅ ｈ ｉ ｕｅｆ ｎ ｖｔ ｐｉ Ｐｒ ｐ ｇ ｔｏ ｏ ｔｍ Ｂｕｄ ｆ ｔ ｕ ｉ ｍ ｎ ｒ ｅ ｎｕ ｏ ｒ ｓｏ Ａｎ ｈ ｒｕ ａ ｄ ａ ａ ｍ
红掌快繁技术优化研究
【 关键词】 红掌 ； 品种 ； 离体培养 ； 快繁
红掌 ｎ ｔ ｈ ｕ ｒ ｉ ｕ ｍ ｍｄ ｒ 珊一 ｍ Ｌ ｉ ｎ ｄ １ ． ） 别名大叶花烛 、 安祖花等 。为
Ａ１ ２： ＭＳ ＋ ６ 一ＢＡ２ ｍｇ ／ Ｌ ＋ＮＡＡ０． ２ ｍｇ ／ Ｌ Ａ１ ３： ＭＳ ＋ ６ 一 ＢＡ２ ｍｇ ／ Ｌ ＋ＮＡＡ０ ． ０ ５ ｍｇ ／ Ｌ Ａ１ ４： ＭＳ ＋ ６ 一 ＢＡ２ ｍｇ ／ Ｌ ＋ＮＡＡ０ ． １ ｍｇ ／ Ｌ Ａ１ ５： ＭＳ ＋ ６ 一 ＢＡ２ ｍｇ ／ Ｌ ＋ＮＡＡ０． １ ５ ｍｇ ／ Ｌ Ａ１ ６： ＭＳ ＋ ６ 一 ＢＡ２ ｍｇ ／ Ｌ ＋ＮＡＡ０ ． ２ ｍｇ ／ Ｌ
１ ． ２ 试 验 方 法
１ ． ２ ． １ 外植体材料的选取 选取 ３ 个 品种红掌 的展开二周 的叶片及叶柄作为供试材料 。 １ ． ２ ． ２ 外植体表面消毒 取上述品种健壮植株 （ 高２ ． ５ ａ ｍ左 右 ） 的叶片及 叶柄 ． 作 为组织 培 养材料 。 将培养材料消毒后置于消毒瓶 中备用 。 培养基在 １ ． ２ ｋ ｇ ／ ｃ ｍ ￣ 压 力下 １ ２ １ ℃灭菌 １ ８ ｍ ｉ ｎ ．接种 时先 在无 菌纸上将叶片切为带 主叶脉 大 小为 １ ． ５ ｃ ｍｘ ｌ ｃ ｍ长方块 ， 茎、 叶柄 切为 ｌ ｃ ｍ左右 的小段 ． 叶面朝上 接 种在灭过菌的培养基上 １ ． ２ ＿ ３ 培养条件 在试验 中， 如无 特殊说 明 ， 培养条件均 为温度 ２ ５ ± ２ ℃， ｐ Ｈ值 ５ ． ８ ， 光照强度 １ ０ ０ Ｏ ｌ ｘ ， 每 日１ ４ ｈ光照 ． １ ０ ｈ黑 暗。 １ ． ２ ． ４ 初代培养 １ ） 激素种类 及浓度配比对 愈伤组 织诱 导的影 响 在 筛选出的基本培养基上 ． 选择 ６ 一 Ｂ Ａ和 Ｎ Ａ Ａ两种对 红掌 的愈 伤组织诱 导效果显著的植物生长调 节物质 ，进行激素组合筛选 。６ ０ ｄ 后 统计 愈伤组 织诱导率
红掌组织培养与快速繁殖技术综述
红掌组织培养与快速繁殖技术综述摘要综述了红掌组织培养与快速繁殖技术方面的研究成果，并针对存在的问题对今后的发展前景进行了展望。
关键词红掌；组织培养；快速繁殖中图分类号S682.1+9 文献标识码B文章编号1007-5739（2008）22-0084-01红掌为天南星科花烛属多年生附生常绿草本植物，是世界名贵花卉，原产于南美洲热带雨林。
红掌的花朵独特，佛焰苞明艳华丽，色彩丰富，极富变化，且花期长，四季开花不断，瓶插寿命很长，尤其供切花水养可长达1个月，盆栽单花期可达4～6个月，可供室内观花赏叶，深受消费者的青睐。
红掌常规繁殖为分株繁殖，因其萌蘖不多，故繁殖率极低；也可用种子繁殖，但是种子不易获得，且人工授粉较难，人力耗费量大，而利用组织培养繁殖可以在较短的时间获得大量的种苗，服务于生产。
近年来，对红掌组织培养及快速繁殖技术方面的研究颇多，现综述如下，以期为红掌组织培养与快速繁殖技术的进一步推广、红掌试管苗的工厂化生产和规模化种植提供科学的理论依据。
1外植体的选择与处理国内外对红掌愈伤组织诱导的绝大多数的研究报道是：外植体—愈伤组织—愈伤组织增殖—芽—完整植株。
同一成熟度的外植体，不同取材部位的愈伤组织诱导率各不相同，叶柄的诱导率最高，茎段的次之，而叶片的诱导率最低。
在取材时间上，当红掌新抽出的叶片展叶2周时，叶片、叶柄对愈伤组织的诱导效果最好，诱导率最高，诱导所需的时间也最短。
外植体使用前要进行消毒处理，常规消毒方法是：采用洗洁精溶液浸泡并搅拌10min后，再用自来水冲洗15 min，接着在无菌条件下，用体积分数为75%的乙醇消毒30s，然后浸泡在质量浓度为1g/L的升汞溶液中灭菌8～10min，最后用无菌水冲洗5～6次。
对红掌叶片来说，这种消毒方法较好，污染率低于30%。
2愈伤组织的诱导适合红掌愈伤组织诱导的基本培养基为MS培养基，叶柄培养以N6、KC和1/2MS培养基为佳，叶片培养则以P、N6和1/2MS为好，适宜的激素组合及浓度配比为BA 2.0mg/L+2，4-D 0.2mg/L；当激素配比为BA 2.0mg/L+NAA 0.25mg/L 时能很好的诱导不定芽的发生。
切花红掌组培快繁技术
切花红掌组培快繁技术红掌，是天南星科花烛属多年生常绿植物，叶革质光亮，单花顶生，花期长达1个半月左右。
利用常规播种、分株法繁殖切花红掌，繁殖率极低，播种繁殖所需时间长，且易产生变异。
利用组织培养快速繁殖切花红掌，可满足市场的大量需求。
材料与方法材料来源为河南濮阳世锦公司自行选育的优质红掌切花品种。
外植体灭菌处理取切花红掌的幼嫩叶片及叶柄作为供试材料，首先在流水下冲洗1小时，同时用毛刷轻轻刷洗，在消毒前先将叶片切成1.5cm×1.5cm左右的小片，将叶柄切成1.5cm左右长的小段，将其放入灭过菌的广口瓶中，用75%酒精浸泡30秒后，再用0.1%HgCl2浸泡消毒8分钟，用无菌水冲洗5次，在无菌纸上把叶片切成1cm×1cm 左右的小片，叶柄切成1cm左右的小段，接种在灭过菌的培养基上，所有无菌操作必须在超净工作台内进行。
培养基及培养条件基本培养基为MS加蔗糖30g/L、琼脂6g/L，pH值5.8。
在不同培养阶段添加不同种类和浓度的植物生长调节剂，培养温度为25℃±1℃，光照强度2000～3000lux，每日光照14小时。
结果与分析不同外植体脱分化程度比较将2种不同外植体分别接种于MS+6-BA1.5+NAA0.7的同一培养基上，培养3周后，叶片外植体首先明显膨大，长出愈伤组织块，5周后，叶片外植体都长出了愈伤组织块(见表1)。
观察发现2种不同外植体都能被诱导出愈伤组织，只是叶片较容易被脱分化。
6-BA对愈伤组织诱导的影响将消过毒的叶片接种于加有不同浓度6-BA的MS+6-BA+NAA0.7的培养基上进行培养，观察不同浓度6-BA对叶片外植体愈伤组织诱导的影响(见表2)。
由表2可看出，不同浓度的6-BA对切花红掌叶片的诱导有明显不同。
在无6-BA的培养基上，不能诱导出愈伤组织。
当6-BA浓度低于1.5mg/L时，随着6-BA浓度的增大，愈伤组织诱导率及增殖率都随之增大；而较高浓度的6-BA又抑制了愈伤组织的诱导及增殖。
盆栽红掌离体快繁简化培养基的研究
要生 长 ２年左右 才 能 开 花 ， 入 花 期后 ， 进 叶与 花 依 次 生长 ， 片 叶下 着 生 一 枝 花 ， 期 寿命 较 长 。其 繁 殖 一 花
１ 材 料 与 方 法
张 伟
（ 阳师 范学 院 生命科学 学院 ， 信 河南 信 阳 ４ ４ ０ ） ６ ００
红掌组织培养快繁技术研究
Ｊ ｏ ｕ ｒ ｎ ａ ｌ ｏ ｆ Ｇ ｒ ｅ ｅ ｎ Ｓ ｃ ｉ ｅ ｎ ｃ ｅ ａ ｎ ｄ Ｔ ｅ ｃ ｈ ｎ ｏ ｌ ｏ ｇ ｙ
绿 色科 技
第 ３期
红掌组 织培养快繁技术研究
祝剑峰， 李 芬， 汪焱军
（ 湖北 生 态工程职 业技 术 学 院 ， 湖北 武 汉 ４ ３ ０ ２ ０ ０ ）
种 名 贵 花卉 ］ ， 市 场需 求量很 大 ， 在 全 球 热 带 花 卉 中
销 量 仅 次 于 兰花 ＿ ３ ］ 。随 着 我 国人 们 生 活 水 平 的 不 断 提 高， 对 红 掌 盆 花 和切 花 的需 求 也 越 来 越 大 ， 由 于 红 掌 象 征喜庆 ， 是 十分 畅销 的 年 宵 花 。
摘要 ： 分别 采 用 红 掌 叶 片 和 茎 尖 作 为 外 植 体 ， 建 立 了组 织培 养 快 繁 技 术 体 系 ， 结果表 明： 以０ ． Ｉ Ｈｇ Ｃ １ 作 为 消 毒 剂 最 佳 的 消毒 时 间 均 为 ８ ｍｉ ｎ ， 叶 片愈 伤组 织 诱 导、 不 定 芽 分 化 和 增 殖 最 佳 培 养 基 分 别 为 ＭＳ ＋
一
增殖系数 。
２ ． ３ 茎 尖 培 养 取 材 和 消毒 方 法 与 叶片 培 养 相 同 。经 消 毒 的 顶 芽 ，
在无菌滤纸上用解剖刀和镊子将茎 尖生长点 连同 ２ ～３ 个 叶原 基 切 割 下 来 ， 接 种 于不 定 芽 诱导 培 养 基 中， 于 ２ ５ ℃下光照培养 ， 光 照强 度 ２ ０ ０ ０ １ ｘ ， １ ５ ｄ后 茎 尖 开 始 萌 发， 并 在 基 部 形 成 小 的芽 丛 ， 将 芽 丛 切 割 转 入 增 殖 培 养
Ｉ ＡＡ２ ． Ｏ ｍｇ ／ Ｌ ＋６ 一Ｂ Ａ ０ ． ２ ｍｇ ／ Ｌ 、 Ｍｓ ＋ ＮＡ Ａ０ ． ５ ｍｇ ／ Ｌ ＋６ 一Ｂ Ａ２ ． ０ ｍｇ ／ Ｌ， 茎 尖 不 定 芽诱 导 与 增 殖 最 佳 培 养 基 为 Ｍｓ ＋Ｉ ＡＡ０ ． ２ ｍｇ ／ Ｌ ＋ ＫＴ ２ ． Ｏ ｍｇ ／ Ｌ ， 最佳的生根培养基为 １ ／ ２ Ｍｓ ＋Ｉ ＡＡ ０ ． ５ ｍｇ ／ Ｌ ＋６ 一Ｂ Ａ ０ ． ２ ｍｇ ／ Ｌ。 关键词 ： 红掌 ； 组织培养 ； 技 术
红掌组织培养技术研究进展
红掌组织培养技术研究进展摘要红掌是一种珍贵的观叶和观花兼具的植物，既可用于切花，又可以盆栽，已成为全球销售量仅次于热带兰的第二大商品花卉。
目前红掌主要通过组织培养技术大量繁殖。
对红掌组织培养的研究进展进行了综述，包括从外植体取材、愈伤组织诱导、不定芽分化和增殖、生根培养、炼苗移栽等方面内容，并提出了红掌组织培养存在的问题和今后研究的方向。
关键词红掌；外植体；愈伤组织；不定芽；生根；炼苗移栽红掌（Anthurium andraeanum）又名花烛、安祖花、火鹤花，天南星科花烛属多年生附生常绿草本植物，原产于南美洲的热带雨林中。
红掌的佛焰苞颜色多样，叶片赋有天鹅绒的光泽，是少有的观花和观叶兼备的植物，主要用于切花，也可以盆栽。
目前，红掌已成为销售量仅次于热带兰的第二大热带花卉商品，在国际商品花开市场中占有十分重要的地位。
自从1974年Pierik et al[1]首次通过愈伤组织诱导不定芽的形成进行快速繁殖红掌以后，经过人们不断的改进和优化，红掌的组织培养技术已经广泛地运用于生产。
到目前为止，国内外红掌组织培养的研究报道有很多，取得了一定的进展。
该文综述了红掌组织培养技术的研究进展，主要对红掌的组培过程、存在的问题以及今后研究的方向加以总结，以为红掌产业化生产和育种提供技术参考。
1 外植体取材1.1 外植体的类型目前，国内外报道红掌组织培养采用的外植体有叶片[2]、叶柄[3]、茎尖[4]、侧芽[5]、根[6]、苞片[7]和花序轴[8]，其中叶片和叶柄是主要的外植体。
1.2 外植体取材的部位、大小和生理年龄外植体的部位、大小和生理年龄不同，诱导愈伤组织的效果也不同。
叶片基部靠近叶柄处、带叶脉的叶片、叶脉集中的部位[9-11]容易诱导愈伤组织。
从愈伤组织诱导率来看，叶片基部>叶片中部>叶尖[12]，不含叶缘叶片>含叶缘叶片[13]，叶片大小以1 cm×1 cm为宜。
红掌新抽出的叶片展叶2～3周，愈伤组织诱导率最高，诱导所需的时间也最短[14-15]；初展开叶片诱导愈伤组织能力最强，其余依次为未展开叶片，刚转绿成熟叶片和深绿色老叶片[16]。
红掌新品种组培快繁技术研究
红掌新品种组培快繁技术研究摘要以红掌新品种阿拉巴马的幼叶为外植体，进行植株再生研究，以建立红掌叶片愈伤组织诱导和高效组织培养快繁体系。
结果表明：1/2 MS+6-BA 1.0 mg /L+NAA 0.1 mg /L红掌诱导愈伤组织的效果最佳，愈伤组织诱导率达50.0%；N6+6-BA 2 mg /L+2，4-D 0.5 mg/L，产生丛生芽的效果最好，愈伤分化率高达90%；适合诱导生根的培养基为1/2 MS+NAA 0.5 mg/L。
关键词红掌；组织培养；愈伤组织；体系建立红掌（Anthurium andraeanum Lind.）是天南星科花烛属多年生常绿草本植物[1-2]。
近年来，插花艺术蓬勃发展，红掌因其花色鲜艳、花期持久而成为国际流行的高档切花材料及盆栽品种[3-4]。
其市场销路广泛，需求量日益增加，但是红掌属于肉质根系，分蘖少，常规的分株繁殖难以满足规模化种苗生产的需求[5]。
因此，红掌高效组培快繁技术的研究与开发对满足国内外花卉市场的需求及出口具有重要意义[6]。
该试验以红掌新品种阿拉巴马幼叶为接种材料，研究了红掌植株再生的途径。
1 材料与方法1.1 试验材料供试红掌品种为国外引进优选的阿拉巴马，选择温室盆栽红掌新抽出的长势旺、无病斑且完全伸展的幼叶为试验材料。
1.2 试验方法1.2.1 材料处理。
将外植体用自来水冲洗干净，然后在超净工作台下先用无菌水冲洗3～4次，再用75%酒精处理30 s后置于0.1%升汞溶液灭菌8～10 min （轻轻摇晃，使消毒液与外植体充分接触），最后再用无菌水冲洗4～5次，用无菌滤纸吸干，再将幼叶分别剪成带主脉的叶片小块（1 cm×1 cm），以备接种。
1.2.2 不同时期培养基条件。
基本培养基为改良MS、1/2 MS和N6培养基，根据不同培养时期要求调整激素浓度。
下述培养基pH值5.8，琼脂为4.8 g/L，于120 ℃、1.1 MPa下杀菌20 min。
红掌组培快繁技术研究
现代农业科技2021年第4期林业科学摘要以红掌品种阿拉巴马为试验对象,对其组织培养中的丛生芽增殖、壮苗培育、瓶外生根技术进行了研究。
结果表明:6-BA 在红掌阿拉巴马丛生芽增殖中具有重要作用,6-BA 浓度与增殖倍数成正相关,在试验浓度范围内,随着6-BA 浓度的增加,红掌丛生芽的增殖率增高;在红掌壮苗培养过程中,6-BA 浓度与组培苗高度增加量成负相关,但过高的6-BA 浓度抑制红掌阿拉巴马苗高生长;NAA 浓度是影响红掌组培苗叶片数量增加的主要因素,NH 4NO 3浓度是影响小苗重量增加的主要因素,当NH 4NO 3浓度为1650mg/L 时,小苗重量增加值最大。
关键词红掌;丛生芽;增殖;壮苗;生根中图分类号S682.14文献标识码A 文章编号1007-5739(2021)04-0111-02DOI :10.3969/j.issn.1007-5739.2021.04.046开放科学(资源服务)标识码(OSID ):红掌组培快繁技术研究周志雁1田瑞钧1谢利2郭和蓉2王栋1(1佛山市农业科学研究所,广东佛山528000;2华南农业大学风景园林学院,广东广州510000)红掌是天南星科花烛属多年生附生常绿草本花卉,节间短,株高可达1m ,叶片单生,长圆状、心形或卵圆形,深鲜绿色,有光泽。
佛焰苞直立张开,蜡质,卵圆形或圆形,深红色或橙色。
其变种的佛焰苞有不同的颜色,如镶嵌白绿色、五彩色、乳白色及有精巧红边等,极富变化[1]。
红掌的果实是小浆果,果内有种子,粉红,2~4粒。
红掌的种子成熟需6~7个月,易失去活力,不易保存,常用的分株繁殖方式难以扩大生产。
因此,离体快繁成为红掌产业化生产的理想途径。
红掌是天南星科植物中较为珍稀的观花观叶兼宜的观赏植物,极具市场开发前景。
前人的研究成果表明,红掌组织培养中外植体诱导技术已经成熟,但存在再生系统建立缓慢和增殖率不高的问题[2-3]。
本试验在前人研究的基础上,进一步研究红掌阿拉巴马丛生芽团块增殖和壮苗培育的问题,以期找出一条缩短红掌繁育周期的途径,促进红掌阿拉巴马的商品化生产。
39李国丽红掌组培快繁的研究.doc8
兰州交通大学化学与生物工程学院综合能力训练Ⅰ——文献综述题目:红掌的组培快繁技术研究进展作者：李国丽学号：201107239指导教师：谢放完成日期：2013-7-21红掌组培快繁技术的研究进展兰州交通大学化学与生物工程学院生物工程2011级摘要：本文介绍了红掌组培快繁方面的研究进展，对红掌外植体的来源、消毒、培养基成分及影响、外源激素的影响、炼苗移栽、生根壮苗等进行了综述，同时还指出了红掌组培快繁的研究意义、市场前景及种苗繁殖方面存在的问题。
关键词：红掌;组培快繁;培养基;激素1. 引言红掌是天南星科花烛属，原产地热带雨林，是典型的热带花卉。
因为它的花色艳、花形比较独特、瓶插寿命比较长、及周年开花的特性已成为一种代表时尚和潮流的鲜花，在国外被视为与洋兰一样的高级花材，并且是一种很有发展前景的室内装饰绿化植物，深受消费者的青睐，在全球热带花卉贸易中，红掌的销售量仅次于兰花，名列全球第二。
然而红掌的主要繁殖方式为分株繁殖。
当红掌植株基部长出吸芽，产生根系后就可以分株，每年可分3～4株，繁殖系数比较低，很难满足规模化生产所需的种苗，所以现在主要通过组织培养的方法进行红掌种苗的快速繁殖，这样可以在较短的时间内生产整齐一致的优质种苗，供应生产的需要。
所以采用组织培养快繁技术是大量、快速、整齐一致繁殖红掌种苗的一条有效途径。
而且组培快繁红掌也有明显的有点，比如可以节省育苗用地，节省繁殖材料，提高繁殖系数，还可以保持优良品种特性，提高质量和欣赏价值，也可以培育优良品种并进行基因改良等发面都有明显的优势，所以自1974年Pierik对红掌的组织培养获得成功以后，国内外学者对红掌组织培养进行了大量的研究，但绝大多数的研究报道只是仅限于某一个单一的品种或某一个单一器官的培养。
而在1986年Keller用MS.skoog培养基作叶插培养研究，1～2个月后形成了愈伤组织。
在1990年，Lightboarn用0.5mg/L的2,4-D对愈伤组织进行诱导，发现其诱导效果最好，然后又加大NH4NO3浓度发现可以使叶片愈伤组织的增殖速度加快。
红掌组织培养与快速繁殖产业化技术的研究
3、作品分类请按作品的学术方向或所涉及的主要学科领域填写；
作品全称
（ D ） A．机械与控制（包括机械、仪器仪表、自动化
控制、工程、交通、建筑等）
B．信息技术（包括计算机、电信、通讯、电子 作
等） 品
C．数理（包括数学、物理、地球与空间科学等） 分
D．生命科学（包括生物、农学、药学、医学、 类
健康、卫生、食品等）
第2期 审查、评价所申报
[6]聂振明 温明霞等红掌组织培养与快繁技术综述[M] 作品具有参考价
《现代农业科技》2008 年第 22 期 值的现有技术及
[7]李志林 红掌研究综述[J] 《云南农业大学学报》 1997 技术文献的检索
[8]贾永芳 安祖花组织培养研究[M] 河南师范大学学报 目录
2007 [9]王梅 李铭等 安祖花的外植体选择技术研究[J]
姓名张罗国性别男出生年月1988年4月学院生命科学学院专业年级生物科学2007级学历本科学制四年入学时间07年9月作品名称红掌组织培养与快速繁殖产业化技术的研究毕业论文题目邮政编码730070通讯地址西北师范大学生命科学学院办公电话邮政编码730070住宅电话1365949申报者代表情况常住地联系地址兰州市安宁区兰天公寓11802室2949姓名性别年龄学历所在单位张丽女21本科西北师范大学生命科学学院韩瑞娜女22本科西北师范大学生命科学学院唐文菊女21本科西北师范大学生命科学学院王凡红女23本科西北师范大学生命科学学院合作者情况资格认定学籍管理部门意见以上作者是否为2008年7月1日前正式注册在校的全日制非成人教育非在职的本科生和硕士研究生或博士研究生
A2．申报者情况（集体项目）
说明：1、必须由申报者本人按要求填写； 2、申报者代表必须是作者中学历最高者，其余作者按学历高
红掌新品种组培快繁技术研究
２ ． ２ 愈伤 组 织 的 增 殖
均 为 ３条／ 株， 生根期间 ， 小 苗可持续生长 。 生根培 养 ４ ０ ｄ
后， 苗 高度 可达 ３ ｃ ｍ左右， 根长 ２ ～ ３ ｃ ｍ， 根 系数 量 ３条 以上 （ 适合移 栽 ） 。 移 栽前将 培养瓶 置于温 室 自然 光下炼 苗 ７ ～ １ ０ ｄ 。
由表 １可知 ， １ ／ ２ ＭＳ培养 基诱 导 愈伤效 果 优于 ＭＳ培养 基． 其中 １ ／ ２ ＭＳ ＋ ６ 一 Ｂ Ａ １ ． ０ ｍｇ ／ Ｌ ＋ Ｎ Ａ Ａ ０ ． １ ｍｇ ／ Ｌ为 最佳 培 养
基 ， 对 愈伤 组 织的形 成 有较大 的促 进 作用 ， 幼叶 经 １ ４ ｄ暗培 养， 边 缘 出现 黄 色粒 状 的愈伤 组 织 。 试 验每 组 接 １ ０瓶 ， 每 瓶
接 种 ３个 材料 。
外 植 体 充 分 接触 ） ， 最 后 再 用 无 菌水 冲 洗 ４ ～ ５次 ， 用 无 菌滤 纸 吸干 ， 再将 幼叶 分别 剪成 带 主脉 的叶 片 小块 （ １ ｃ ｍｘ １ ｃ ｍ） ，
表 １ 不 同培 养基 及激 素 配 比对 外 植体 诱导 愈伤 的影 晌
发 对满 足 国 内外 花卉 市 场 的需 求及 出 口具 有 重要 意 义昀 。 该 试验 以红 掌新 品种 阿拉 巴马幼 叶 为接种材 料 ． 研 究了 红掌 植
株 再生 的途 径 。
１ 材 料 与 方 法 １ ． １ 试 验 材 料
０ ． １ ｍｇ ／ Ｌ、 ＭＳ ＋ ６ － Ｂ Ａ １ ． ０ ｍ ｇ／ Ｌ ＋ ２ ， ４ 一 Ｄ ０ ． １ ｍＣＬ 、 １ ／ ２ ＭＳ ＋ ６ 一 Ｂ Ａ
红掌 （ Ａｎ ｔ ｈ ｕ ￣ ｕ ｍ ａ ｎ ｄ ｒ ａ ｅ ａ ｎ ｕ ｍ Ｌ ｉ ｎ ｄ ． ） 是 天 南 星 科 花 烛 属
红掌快速繁育最适培养条件的筛选研究
红掌快速繁育最适培养条件的筛选研究摘要从愈伤组织、不定芽、生根等培养指标筛选红掌快速繁育的最适培养条件，结果表明：外植体最佳消毒时间是70%酒精浸泡60 s，红掌愈伤组织诱导的最佳基本培养基为MS培养基，适宜的激素组合及浓度配比为6-BA 1.0 mg/L+2，4-D 0.4 mg/L，添加5 g/L琼脂，光照强度1 000 ~1 500 lx，13 h/d的光照时间，NAA添加量为1.0 mg/L。
筛选到的最佳培养条件适宜红掌的快速繁育需求。
关键词红掌；快速繁育；培养条件；筛选红掌为天南星科花烛属多年生附生常绿草本花卉，又称花烛、安祖花、蜡烛花、灯台花等。
其株高1 m，不开花时是非常好的观叶植物。
红掌成年植物1年每株可以开5~8 枝花，花大、花形奇特、颜色鲜艳。
花的色彩变化也多，叶片优美，既能观花又可赏叶。
近年来，红掌在园林中的应用是越来越广泛[1-3]。
当前应用比较多的红掌品种有广红、Alexis、Evita等10余个品种。
由于红掌品种多样且观叶观花俱佳，加上其象征着热情向上，深受人们的喜爱，为花中珍品，成为仅次于热带兰的第二大热带花卉[4-5]。
目前，红掌常规的繁殖方法为分株繁殖，但难以扩大生产，红掌快速繁殖的最理想途径是组织培养[6]。
本文探讨了红掌的快速繁殖条件，优化了各繁育元素的组合，以更好地开发利用红掌资源。
1材料与方法1.1试验材料试验所用的材料购自西南大学苗木繁育中心的广红红掌品种，由实验室自行进行繁育并培植保存。
1.2试验方法1.2.1表面消毒时间对叶片成活率的影响。
在组培的过程中，由于培养基中的营养物质丰富且培养条件适宜，微生物繁殖的速度远快于外植体的繁殖速度，其可与外植体进行养分的争夺，阻碍外植体的生长，因此在进行组培之前，应对外植体进行消毒灭菌。
选取新引进的广红品种长出的新叶作为研究对象。
首先对叶片进行消毒处理：新叶先用自来水冲洗30 min，然后在超净工作台上用70%酒精分别设置浸泡处理30、60、90 s，分别用无菌水冲洗处理后的叶片3次，置于消毒瓶中备用。
红掌组培快繁体系建立的探讨
姿 奇 特 美 妍 ，且 花 期 持 久 ；其 叶 暗 绿 ，具 金 属 光 泽 ， 既可 盆 栽 观
赏 ，又 是 名 贵 的 鲜 切 花 材 料 。 现在 欧 洲 、 亚 洲 、 非 洲 均 有 广 泛 栽 培 。 我 国 于２ ０世 纪７ ０年代 开 始 引种 栽培 。红 掌 不 易结 实 ， 一般 采
下 ， 接 种 到 Ｍ Ｓ＋６ Ａ （ ． 、 ２５、 ３． ）＋２４一Ｄ （ ． 、 Ｏ５ ）的 一Ｂ ２Ｏ ． Ｏ ， Ｏ２ ．
２ Ｃ～３ ｏ ６ｏ ２Ｃ，夜 温２ １℃ 一３ ２℃ ：所 能忍 受的最 高温度 为３ Ｃ，可 ５ｏ 忍 受 的 低 温 为 １ Ｃ：光 照 度 以 １ ０ Ｉ ４ｏ ６０ ｘ～２ ０ ０ Ｉ ０ ０ ｘ为宜 ， 空气 相 对湿度《 ＲＨ） ０％ ～８ 以７ ０％ 为佳 ；其 株 高 一般 为 ５ ｍ ～８ ｍ。 ０ｃ ０ｃ 红 掌 原 产 于 南 美 洲 热 带雨 林 潮 湿 、 半 荫 的 沟 谷 地 带 等 地 区 的热 带
途径 。
芽 增 殖 系数 （ 个 瓶 内丛 生 芽 数／ 个 瓶 原 有 接种 芽 数 ／ 继代 次数 每 每 芽 和 每个 瓶 内的 有效 苗 （ 出３ 片 ～４ 片 叶 ，叶 绿 而平 展 ，生长 正 常 长
外 植体 。
试 验 方 法
无菌材料的建立 选 择 红 掌 变 色 期 （即 新
生 叶 展 开 后 约 ２ 周 ）的 幼 嫩 叶 片Βιβλιοθήκη ， 流 ７ 冲 洗 Ｋ引言
红 掌 （ ｔ Ｕ ｉｍ ｎ ｒ ｅ ｎ ｍ ） 名 安 祖 花 、 大 叶 花 烛 ， 为 天 Ａｎ ｈ Ｕ ａ ｄ ａ ａ ｕ 又 ｒ
计 ，基本培 养基 为 ＭＳ；生长调 节 物质 ： ６ Ａ （ ＿、２Ｏ ． ＋Ｋ 一Ｂ １５ ．、２５） Ｔ
盆栽红掌新品种组培快繁技术研究
盆栽红掌新品种组培快繁技术研究摘要红掌新品种组培快繁技术研究结果表明，不同激素配比对愈伤组织诱导、芽分化、生根等有影响。
温度25±2℃、光照强度1 500Lx、光照时间12h/d 的培养条件下，在MS培养基+蔗糖30g/L+琼脂粉 5.6g/L中，添加6-BA 1.0mg/L+2，4-D 0.2mg/L诱导愈伤组织效果最好，诱导率可高达90%以上；6-BA 1.5mg/L+KT 1.0mg/L有利于芽诱导；6-BA 2.0mg/L+NAA 0.2mg/L不定芽的增殖效果最好，增殖倍数可达25；NAA有利于生根；珍珠岩∶泥炭（2∶1）混合基质瓶苗移栽成活率可达94%。
关键词红掌；组织培养；种苗快繁；激素近几年来，红掌品种不断更新，市场对新品种种苗需求量大。
为了满足市场需要，2005年以来，我们选择市场俏销的红掌新品种进行组培快繁研究，并进行了规模化生产。
现将试验研究工作总结如下。
1材料和方法1.1材料火焰、阿拉巴马、粉冠军等优良品种的植株刚展开的新叶，以及愈伤组织、不定芽、瓶苗等。
1.2试验方法1.2.1酒精灭菌不同时间对叶片成活率的影响。
选取刚展开的新叶，用75%的酒精擦拭后，在超净工作台上切成3cm×3cm的叶块，用75%的酒精分别浸泡10s、30s、60s，用无菌水冲洗后，再用0.05%的升汞浸泡6min，最后用无菌水冲洗4次，将叶块切边后，接种在MS培养基上，15d后调查灭菌效果。
1.2.2不同激素配比组合对愈伤组织形成的影响。
以刚展开的新叶为材料，经上述常规灭菌和处理后，接种在不同激素配比组合的培养基上。
试验设4个处理，2，4-D浓度分别是0.02mg/L、0.05mg/L、0.10mg/L、0.20mg/L，各加入6-BA 1.0mg/L。
每个处理接种100个叶块。
培养温度25±2℃，暗培养30d后调查愈伤组织诱导情况。
1.2.3不同激素配比组合对愈伤组织芽诱导的影响。
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红掌快繁技术优化研究【摘要】本研究以红掌的三个品种（alabama、dakota、pink champion）的叶片和叶柄为外植体，进行多种条件下的愈伤组织诱导、不定芽的分化、生根诱导进行试验，为工厂化生产提供技术支持。
愈伤组织诱导适宜的诱导激素组合和浓度配比为：6-ba1.0mg/l+naa0.15mg/l。
当激素配比为6-ba2.0mg/l+naa0.2mg/l时，对诱导产生不定芽的效果最好。
生根的组培苗高3～4cm时，小叶3～4枚，有3条以上粗壮根时进行炼苗移栽，基质的ph值以5.5为宜，温室内要求空气湿度80%～100%。
【关键词】红掌；品种；离体培养；快繁红掌（anthurium andraeanum lindl.）别名大叶花烛、安祖花等。
为天南星科花烛属多年生附生常绿草本植物，其叶色亮绿，革质，长心型。
花葶自叶腋抽出，花梗超出叶上，佛焰苞直立开展，革质，阔心脏形，其颜色随品种不同而异，均具蜡质光泽且光滑艳丽。
红掌是天南星科红掌属植物中较为珍稀的观花观叶两者兼宜的观赏植物，是现今最为名贵的切花品种之一，具有较高的观赏价值和经济价值，很具市场开发前景。
国外生产上大量繁殖采用组织培养法。
在对红掌组培苗生产技术的研究和开发中，生根难和成活率低一直是红掌工厂化生产的最大问题。
本人通过对原有培养基配方进行两年的实验，结果不太理想，存在的问题有：（1）试管苗移植后平均成活率不高；（2）生长速度缓慢，瓶苗培养周期长：（3）移植后较容易感病。
为了突破这几个难题，特进行本次研究，一方面，对红掌离体培养时的外部条件温度、光照、进行调控，同时对红掌愈伤组织诱导和不定芽分化、增殖的培养基及激素浓度配比进行改良与优化，找出适合红掌愈伤组织诱导和不定芽分化、增殖的配方和培养条件，加速红掌种苗的生产，以优化红掌生产技术，解决红掌快速繁殖过程中存在的难题，实现红掌组培苗生产的工厂化。
1 材料与方法1.1 材料本次实验所用的外植体材料均来自云南昆明安祖公司基地从荷兰引进的温室盆栽红掌苗，共3个品种，分别为阿拉巴马（alabama）、粉冠军（pink champion）、大哥大（dakota）。
1.2 试验方法1.2.1 外植体材料的选取选取3个品种红掌的展开二周的叶片及叶柄作为供试材料。
1.2.2 外植体表面消毒取上述品种健壮植株（高2.5cm左右）的叶片及叶柄，作为组织培养材料。
将培养材料消毒后置于消毒瓶中备用。
培养基在1.2kg/cm2压力下121℃灭菌18min，接种时先在无菌纸上将叶片切为带主叶脉大小为1.5cm×1cm长方块，茎、叶柄切为1cm左右的小段，叶面朝上接种在灭过菌的培养基上。
1.2.3 培养条件在试验中，如无特殊说明，培养条件均为温度25±2℃，ph值5.8，光照强度1000lx，每日14h光照，10h黑暗。
1.2.4 初代培养1）激素种类及浓度配比对愈伤组织诱导的影响在筛选出的基本培养基上，选择6-ba和naa两种对红掌的愈伤组织诱导效果显著的植物生长调节物质，进行激素组合筛选。
60d 后统计愈伤组织诱导率。
a1：ms+6-ba0.5mg/l+naa0.05mg/la2：ms+6-ba0.5mg/l+naa0.1mg/la3：ms+6-ba0.5mg/l+naa0.15mg/la4：ms+6-ba0.5mg/l+naa0.2mg/la5：ms+6-ba1mg/l+naa0.05mg/la6：ms+6-ba1mg/l+naa0.1mg/la7：ms+6-ba1mg/l+naa0.15mg/la8：ms+6-ba1mg/l+naa0.2mg/la9：ms+6-ba2mg/l+naa0.05mg/la10：ms+6-ba2mg/l+naa0.1mg/la11：ms+6-ba2mg/l+naa0.15mg/la12：ms+6-ba2mg/l+naa0.2mg/la13：ms+6-ba2mg/l+naa0.05mg/la14：ms+6-ba2mg/l+naa0.1mg/la15：ms+6-ba2mg/l+naa0.15mg/la16：ms+6-ba2mg/l+naa0.2mg/l2）不同品种、不同部位、不同成熟度的红掌外植体愈伤组织的诱导将三个红掌品种经消毒处理外植体分别接种在最佳培养基上，检测各品种的愈伤组织诱导率及愈伤组织质量。
同时，对不同成熟度的红掌叶片和叶柄在最佳培养基上愈伤组织诱导情况进行观察。
1.2.5 不定芽的增殖和分化1）基本培养基对不定芽诱导的影响选择将三个品种所得到的生长一致、直径5～8mm大小的愈伤组织块，分别接种在ms、1/2ms、b5、n6四种基本培养基上，研究培养基对不定芽诱导的影响。
2）不同激素组合对不定芽分化及增殖的影响愈伤组织诱导90天后，将诱导出来的愈伤组织切成5～8mm大小接入诱导不定芽的培养基中，进行不定芽的诱导。
选择6-ba、naa 为主要植物生长调节物质，进行不同激素组合配比试验，选择出最佳诱导、增殖及高生长培养基。
b1：ms+6-ba0.5mg/l+naa0.2mg/lb2：ms+6-ba0.5mg/l+naa0.5mg/lb3：ms+6-ba1.0mg/l+naa0.2mg/lb4：ms+6-ba1.0mg/l+naa0.5mg/lb5：ms+6-ba2.0mg/l+naa0.2mg/lb6：ms+6-ba2.0mg/l+naa0.5mg/l1.2.6 生根培养红掌不定芽切割为带3～4枚叶片的小块，接种到含有不同浓度的naa的生根培养基上，进行培养。
一个月后，统计生根率和生根系数。
1.2.7 组培苗的移栽试验基质为泥炭+珍珠岩+砻糠灰（2∶2∶1）的混合物。
2 结果与分析2.1 初代培养2.1.1 基本培养基中不同的碳源及碳源浓度对红掌愈伤组织诱导的影响本试验取切好的红掌品种的叶片及叶柄为外植体，经表面消毒后接种于不同碳源（蔗糖、葡萄糖）和不同糖浓度（15g/l，30g/l，45g/l）的培养基中对红掌的愈伤组织诱导进行试验。
从试验结果可知，对于红掌的愈伤组织诱导结果来说，葡萄糖作为碳源对愈伤组织的诱导效果要显著高于蔗糖，而且葡萄糖的愈伤组织诱导率要明显高于蔗糖。
以葡萄糖做为碳源30g/l的葡萄糖浓度用于诱导愈伤组织效果最好，诱导率较高，愈伤组织块较大。
2.1.2 激素种类及浓度配比对愈伤组织诱导的影响根据试验所确定的最佳培养条件为基础，选择6-ba和naa两种对红掌的愈伤组织诱导效果显著的植物生长调节物质，进行激素组合筛选。
综合表1、表2的实验结果可见，单独使用6-ba能明显促进外植体体积增大，但外植体质地较硬。
在6-ba浓度不变的情况下，加入naa有利于提高愈伤组织诱导率，也可以减少愈伤组织发生时间。
表1 不同浓度6-ba和naa对愈伤组织分化的影响表2 不同浓度梯度6-ba的培养基中愈伤组织分化及生长情况不同溶度配比的6-ba和naa组合对红掌愈伤组织诱导和分化影响比较明显。
综合上述试验可知，在对所用红掌品种的组培试验中适宜的愈伤组织培养的培养基成分为：ms+6-ba1.0mg/l+naa0.15mg/l+葡萄糖30g/l。
2.1.3 不同光照条件对愈伤组织诱导的影响观察中发现，以1000lx-1500lx的散射光对红掌生长很好，愈伤组织诱导率较高，且分化早。
虽然1500lx光照下愈伤组织诱导发生时间上较1000lx光照早，但1500lx光照下的愈伤组织诱导率远比1000lx光照下的诱导率低。
综合考虑，还是以1000lx光照强度作为红掌愈伤组织诱导的光照模式。
2.1.4 不同品种、不同部位、不同成熟度红掌外植体对愈伤组织的诱导的影响将红掌四种成熟度的叶片和叶柄（未展叶片及叶柄、展开一周的叶片及叶柄、展开二周的叶片及叶柄，完全成熟叶片及叶柄）分别接种后培养， 35d后观察愈伤组织发生情况。
结果见表3。
表3 不同成熟度叶片、叶柄对愈伤组织诱导的影响本试验再次证明了外植体不同发育阶段对红掌离体培养的关键作用：未展开叶片可能因过于幼嫩、组织形态发育不完全、不能适应离体培养环境而导致诱导率不高；完全成熟的老叶可能因为细胞老熟，功能下降，污染程度高而影响愈伤组织诱导效果；适度成熟的叶片（展开二周）具有较高的愈伤组织诱导效果。
2.2 不定芽的分化和增殖2.2.1 基本培养基对愈伤组织分化不定芽的影响三种红掌的芽分化效果在ms培养基上表现最好，其芽分化率最高，芽发生时间最短，平均每块愈伤组织分化出的芽数量最多。
n6培养基其次，b5培养基再次，1/2ms培养基分化效果最差。
芽发生时间最长，且分化出的芽数量偏少。
所以，在不定芽的分化和增殖试验中，使用ms培养基作为基本培养基。
2.2.2 不同激素组合对不定芽分化及增殖的影响将红掌外植体诱导出的愈伤组织接种在附加有不同浓度的6-ba 和naa的ms培养基上进行培养，寻求最佳的浓度组合，以获得最佳的诱导率并且植物生长健壮。
结果见表4。
表4 不同浓度6-ba和naa对不定芽分化的影响分化结果表明：红掌愈伤组织分化效果，在ms+6-ba2.0mg/l+naa0.2mg/l+葡萄糖30g/l的培养基组合中，各品种生长分化出芽的时间最短，且不定芽生长良好。
当6-ba浓度在0.5～1.0mg/l范围内，分化率随naa浓度的增加而呈上升趋势，初始分化时间则显著递减；当6-ba浓度上升到2.0mg/l时，分化率随naa浓度的增加而递减，而初始分化时间则显著增加。
在各种浓度配比中，以6-ba2.0mg/l+naa0.2mg/l最好。
另外，在继代增殖培养中发现，随继代次数的增加，从5～6代开始，愈伤组织增殖数开始下降，而前4带培养愈伤组织产生芽的能力比较强。
因此，愈伤组织增殖4代以后，应全部用于芽诱导，而不应继续增殖下去。
2.3 生根培养待幼苗长高到2～3cm，具有4～5片叶时，自底部将已经分化叶片与芽的培养物切割为带3～4枚叶片的小块，转入含不同浓度naa 的生根培养基上，10天后开始观察生根情况，结果见下表。
表5 不同浓度naa对红掌生根的影响在所有浓度组合中，低浓度的naa（0.01～0.05）也能有效诱导根的产生，这可能是外源激素在苗体内累积的效果，但诱导出的根细而长，生长比较缓慢。
而随着naa浓度的逐渐增加（1.0mg/l～2.0mg/l），平均生根时间逐步缩短，根系逐渐变的短而粗壮。
且根周围形成新的愈伤组织，阻碍了根系的进一步生成，且根易与植株脱离。
因此，较高浓度的naa是不利于根的诱导产生。
根据试验结果综合分析，naa浓度在0.5mg/l时，生根时间短，根长而粗壮，生长速度快，诱导率高，是最有利于红掌生根的。
在此时期宜适当增加光照，使苗更为粗壮。
2.4 炼苗移栽所用的基质为泥炭+珍珠岩+砻糠灰（2∶2∶1）的混合物，提前一周用0.1%～0.2%kmno4溶液浇灌灭菌，外用塑料薄膜封住。