聚磷菌的培养

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两株高效聚磷菌的筛选及其聚磷特性的研究2009

两株高效聚磷菌的筛选及其聚磷特性的研究2009

收稿日期:2008-9-19;修回日期:2008-10-17作者简介:傅宏兵(1970-),男,硕士研究生,专业方向为环境微生物技术;通讯作者:吴 涓(1969-),女,博士,副教授,研究方向为水污染控制及环境生物技术,E 2mail:wujuan@ustc .edu 。

基金项目:安徽省自然科学基金项目资助(070413132)doi ∶10.3969/j 1issn 11008-9632.20091061023两株高效聚磷菌的筛选及其聚磷特性的研究傅宏兵,吴 涓(安徽大学生命科学学院,合肥230039)摘 要:采用梯度驯化及平板分离技术,从巢湖底泥中筛选到两株高效聚磷菌,分别命名为P6与P8。

经过厌氧和好氧两个阶段的处理,两种菌株的聚磷率均达到80%以上。

实验结果表明,P8菌株在10℃~40℃以及pH 值4~11的较宽范围内都显示出稳定的聚磷效果,而P6菌株仅在30℃~35℃以及pH 值4~5的狭窄范围内达到较高的聚磷率。

不同碳氮源的影响实验表明,除了乳糖以外,P8菌株在所考察的多种碳氮源下都能表现出较高的聚磷率,当乙醇浓度为3.75g/L 时,聚磷率可达到92.9%;而P6菌株对碳氮源则有较严格的要求。

关键词:聚磷菌;筛选;生物量;聚磷率中图分类号:Q932335;X172文献标识码:A文章编号:1008-9632(2009)06-0023-04水体富营养化是全球普遍存在的严重环境问题,近些年来,随着工农业生产的高速发展和人们生活水平的不断提高,含磷的化肥、农药、洗涤剂的使用量不断上升。

水体中磷的含量日益增加。

虽然氮磷同为水体生物的重要营养物质,但是在所有的营养元素中,磷被认为是引起水体富营养化的最关键因素[1-3]。

然而,我国现有的污水处理厂主要集中于有机物的去除,对磷等营养物的去除率只达到10%~20%,其结果远达不到国家二级排放标准[4-5]。

因此,有效降低排放废水中的磷含量,已成为防治水体富营养化的重要途径之一。

污水处理知识之全面解析聚磷菌的除磷原理及影响因素

污水处理知识之全面解析聚磷菌的除磷原理及影响因素

污水处理知识之全面解析聚磷菌的除磷原理及影响因素污水处理工艺中,生物强化除磷中的聚磷菌利用比较普遍,目前也是生物除磷的主要研究方向,本文详细介绍聚磷菌的除磷原理及影响因素!一、除磷原理聚磷菌也叫做摄磷菌、除磷菌,是传统活性污泥工艺中一类特殊的细菌,在好氧状态下能超量地将污水中的磷吸入体内,使体内的含磷量超过一般细菌体内的含磷量的数倍,这类细菌被广泛地用于生物除磷。

如下图,在厌氧条件下,除磷菌能分解体内的聚磷酸盐而产生ATP,并利用ATP将废水中的有机物摄入细胞内,以聚b-羟基丁酸等有机颗粒的形式贮存于细胞内,同时还将分解聚磷酸盐所产生的磷酸排出体外。

而好氧条件下,除磷菌利用废水中的B0D5或体内贮存的聚b-羟基丁酸的氧化分解所释放的能量来摄取废水中的磷,一部分磷被用来合成ATP,另外绝大部分的磷则被合成为聚磷酸盐而贮存在细胞体内。

二、影响因素生物除磷的影响因素包括:温度、PH值、厌氧池DO、厌氧池硝态氮、泥龄、RBCOD含量、糖原。

(1)温度温度对除磷效果的影响不如对生物脱氮过程的影响那么明显,在一定温度范围内,温度变化不是十分大时,生物除磷都能成功运行。

试验说明,生物除磷的温度宜大于10℃,因为聚磷菌在低温时生长速度会减慢。

(2)PH值在PH在6.5—8.O时,聚磷微生物的含磷量和吸磷率保持稳定,当PH值低于6.5时,吸磷率急剧下降。

当PH值突然降低,无论在好氧区还是厌氧区磷的浓度都急剧上升,PH降低的幅度越大释放量越大,这说明PH降低引起的磷释放不是聚磷菌本身对PH 变化的生理生化反应,而是一种纯化学的“酸溶”效应,而且PH 下降引起的厌氧释放量越大,则好氧吸磷能力越低,这说明PH下降引起的释放是破坏性的,无效的。

PH升高时则出现磷的轻微吸收。

(3)溶解氧每毫克分子氧可消耗易生物降解的C0D3mg,致使聚磷生物的生长受到抑制,难以到达预计的除磷效果。

厌氧区要保持较低的溶解氧值以更利于厌氧菌的发酵产酸,进而使聚磷菌更好的释磷,另外,较少的溶解氧更有利予减少易降解有机质的消耗,进而使聚磷菌合成更多的PHB。

高效聚磷菌的筛选

高效聚磷菌的筛选

磷矿废水中高效聚磷菌的筛选近年来我国水体富营养化越来越严重,水体受到污染不仅破坏了环境与动植物的生存也影响了人们的生活和人们的工农业发展。

而水体富营养化都与水中的磷含量剧增有关,所以除去水中的磷对治理水体富营养化特别重要,这也是个社会非常关注的问题。

我校的南湖水体污染特别严重是我校的美中不足。

关键词:生物去磷聚磷菌筛选环境污染污水处理目前城市污水处理主要使用生物除磷,它是利用聚磷菌一类的微生物从水中摄取磷,并将磷存于体内,在水低形成高磷的污泥,达到了去磷防水体富营养化的效果。

聚磷菌是生物除磷的决定生物,而聚磷菌的工作受到环境的影响,如氧浓度,PH值,温度等,且不同的聚磷菌的聚磷能力不同,所以要想达到高去磷的效果就必须筛选出聚磷效率高的菌种.实验材料与方法1.1主要的的仪器设备摇床,超净工作台,全自动高压灭菌锅,培养箱,电子天平,酸度计,离心机,可见分光光度计,培养皿20个,细菌过滤器,移液枪(100ul和1000ul),量筒(10ml和50ml各一个),锥形瓶(150ml,250ml和500ml),草酸铵结晶紫,革兰氏碘液,95%的酒精,石碳酸复染红,显微镜,载玻片及盖玻片。

1.2主要的试剂微生物分离纯化用的试剂均是国产分析纯,主要有牛肉膏,蛋白胨,琼脂,乙酸钠,磷酸氢二钾,硫酸镁,硫酸亚铁,氢氧化钠硫酸铵,钼酸钾,抗坏血酸,酒石酸锑钾,磷酸二氢钾,氢氧化钾过硫酸钾,MOPSHighPurityGrade,Tricine,X--Pi.1.3样本采集磷矿废水1.4培养基及溶液(1)YG培养液:酵母侵膏1g,葡萄糖1g,K2HPO4 0.3g KH2PO4 0.25g 七水硫酸镁0.2g, 蒸馏水1000ml.(2)MOPS培养基:100ml的10*MOPS 8.370g, tricine 0.717g, 30ml的去离子水,10mol/L KOH调PH到7.4. 总体积44ml. 0.01mol/L, 硫酸亚铁1ml,按下列加:氯化铵(1.9mol/L)5ml, 硫酸钾(0.276mol/L)1ml,二水氯化钙0.02mol/L)0.025ml, 六水氯化镁(2.5mol/L)0.21ml, NaCl(5mol/L)10ml, 微量元素混合液0.02ml, 葡萄糖0.1g, )取25ml置于两个500ml的三角瓶中,向一个三角瓶加0.0087gK2HPO4,成为限磷培养基。

聚磷菌的诱变选育及其生长特性2006

聚磷菌的诱变选育及其生长特性2006

1. 1 材料 1. 1. 1 菌种 :从巢湖底泥中已分离的菌株 G。 1. 1. 2 培养基 1. 1. 2. 1 聚磷培养液
MgSO4 (天津市大茂化学仪器供应站 ,分析纯) 0. 4g , FeSO4 (上海试剂四厂 ,分析纯) 0. 002g ,CaSO4 (天津市大茂化学仪器 供应站 ,分析纯) 0. 08g ,乙酸钠 (天津市大茂化学仪器供应站 , 分析纯) 0. 5g , 牛 肉 膏 ( 上 海 市 牛 奶 公 司 综 合 利 用 加 工 厂) 0. 22g , (NH4 ) 2 SO4 (上海试剂四厂 ,分析纯) 0. 2g ,水 1000ml ,分 别加入不同浓度的磷 。
1. 1. 2. 2 分离培养基 牛肉膏 (上海市牛奶公司综合利用加工厂) 5. 0g ,蛋白胨
(北京市海淀区微生物培养基制品厂) 10. 0g ,NaCl (宿州化学试 剂厂 ,分析纯) 5. 0g ,水 1000ml ,pH 7. 4~7. 6 ,琼脂 (石狮市狮头 琼脂有限公司) 15g ,分别加入不同浓度的磷 。 1. 1. 3 仪器
2003 ,21 :289 - 294. [5 ]柳李旺 ,龚义勤 ,黄浩 ,等. 新型分子标记 SRAP 与 TRAP 及其应用 [J ] . 遗传 ,2004 ,26 (5) :777 - 781. [ 6 ]Li G and Quiros C F. Sequence related amplified polymorphism(SRAP) , A new marker system based on a simple PCR reaction : its application to mapping and gene tagging in Brassica [J ] . Theor Appl Genet , 2001 , 103 : 455 - 461. [ 7 ] Hu J , Seiler GJ , Jan C C , Vick B A. Assessing genetic variability among sixteen perennial Helianthus species using PCR - based TRAP markers [ C ] . Procedings 25th Sunflower Research Workshop . 16 - 17 Jan. 2003 ,Fargo. ND.

聚磷菌的培养(借鉴材料)

聚磷菌的培养(借鉴材料)

聚磷菌的培养背景:污水中的磷和氮含量过高是造成水体富营养化的主要因素。

而其中的磷不像氮那样可以结合氧转化为气体,含磷的气态物质(PH3)又不易转化,所以污水除磷一直都用生物除磷法。

即用细菌等微生物来摄取水中的磷,达到除磷的效果。

而为了提高微生物除磷的效率、便于和其他材料协同使用,筛选、培养除磷细菌也是必不可少的工作。

培养菌种\菌落:聚磷菌(PAOs)菌落来源:废水除磷工艺中的活性污泥菌落组成:主要由β—2亚群紫色细菌、不动杆菌、红环菌属和绿单胞菌属组成;其中不动杆菌为主导细菌,除磷作用突出聚磷菌除磷机理:①好氧条件下,聚磷菌不断摄取并氧化分解有机物,产生的能量一部分用于磷的吸收和聚磷的合成,一部分则使ADP与H3PO4结合,转化为ATP而储存起来。

细菌以聚磷的形式在细胞中储存磷,其量可以超过生长所需,这一过程称为聚磷菌磷的摄取。

处理过程中,通过从系统中排除高磷污泥以达到除磷的目的。

②在厌氧条件下,聚磷菌体内的ATP进行水解,放出H3PO4和能量,形成ADP。

这一过程称为聚磷菌磷的释放。

聚磷菌除磷则就是通过以上两种过程完成的。

培养过程:1、材料准备1.1取样:从实验室运行稳定的厌氧\缺氧SBR反应器中,取富含反硝化聚磷菌的活性污泥做为实验样品。

1.2培养基配方:( 1 ) 牛肉膏蛋白胨培养基(L1-):蛋白胨10 g;牛肉膏3 g;NaCl 5 g;琼脂20 g ;p H 7.2 ,用于反硝化聚磷菌的分离、纯化( 2) 缺磷培养基(L1-):CH3COONa 2g ;Na2HPO4·2H2O 23 mg;CaCL2·2H2O 11 mg;NH4C1 152.8mg;MgSO4·7H2O 81.12 mg;K2SO4 17.83 mg;HEPES缓冲液7 g;微量元素)1( 2 mL;p H 7.2( 3) 富磷培养基(L1-):CH3COONa 2g;K2PO4 25mg;NH4C1 305.52 mg;MgSO4·7H2O 91.26 mg;CaC12·2H2O 25.68mg;PIPES缓冲液8.5 g ;2 m L 微量元素;p H 7 .2( 4 ) 硝酸盐还原产气试验培养基(L1-):牛肉膏3 g ;蛋白胨5g ;KNO3 1 g ;p H 7.4 。

反硝化聚磷菌培养驯化分离方法及菌种特性的研究的开题报告

反硝化聚磷菌培养驯化分离方法及菌种特性的研究的开题报告

反硝化聚磷菌培养驯化分离方法及菌种特性的研究的开题
报告
一、研究背景
反硝化聚磷菌是一类重要的微生物资源,能够在低氧环境下利用硝酸盐等氧气供体进行反硝化过程,并且还能够利用无机磷酸盐合成多聚磷酸盐。

多聚磷酸盐是生物体内最重要的无机磷存储形式之一,对于维持生态系统的稳定性和生物循环具有重要的生态学和微生物学意义。

然而,由于反硝化聚磷菌数量较少、分布范围广、分离困难等因素,反硝化聚磷菌的研究受到了很大的限制。

因此,开展反硝化聚磷菌的培养驯化分离研究具有重要的理论和应用价值。

二、研究内容及方法
本研究计划采取以下方法开展反硝化聚磷菌的培养驯化分离及菌种特性研究:
1.采集不同环境样品,如沉积物、底泥等,建立样品库。

2.采用适当的营养基,如混合碳源、氮源、硫源等营养基,培养反硝化聚磷菌。

利用微生物毒性试验等方法筛选出适宜反硝化聚磷菌生长的培养条件。

3.筛选培养出的反硝化聚磷菌,根据形态和生理特性确定其分类和物种。

4.对分离得到的反硝化聚磷菌的多聚磷酸盐合成能力进行实验室研究。

通过测定多聚磷酸盐合成速率、酶活力等参数,分析不同反硝化聚磷菌合成多聚磷酸盐的差异及影响因素。

5.利用PCR技术对分离得到的反硝化聚磷菌的多聚磷酸盐合成相关基因进行克隆和测序,分析多聚磷酸盐合成途径的分子机制。

三、研究意义
本研究的开展将深入探究反硝化聚磷菌的生态学和微生物学特性,对于完善反硝化过程的基础理论和促进生态环境保护具有重要的理论和应用价值。

同时,本研究也可为反硝化聚磷菌资源的开发利用提供技术支持和理论指导。

约氏不动杆菌(Acinetobacter johnsonii)的分离及其聚磷特性的研究

约氏不动杆菌(Acinetobacter johnsonii)的分离及其聚磷特性的研究

约氏不动杆菌(Acinetobacter johnsonii)的分离及其聚磷特性的研究连丽丽;姜华;朱昌雄【摘要】采用定性、定量相结合的方法,从城市污水中筛选到一株高效聚磷菌(CH-1),经生理生化特征及16 rDNA序列分析,鉴定该菌株为不动杆菌属的约氏不动杆菌(Acinetobacter johnsonii).进行了该菌株的生长曲线、含磷培养液的pH、磷酸盐浓度变化及去磷效果等测定.结果表明:该菌在培养6~8 h时繁殖量达到最大(0.54 mg/L),培养液pH值达到最高(8.88),而磷酸盐浓度降至最低(1.08 mg/L).好氧条件下,含磷培养液培养72h后,培养液中磷浓度由10 mg/L降至3.476 mg/L,去磷率高达65.24%.CH-1菌处理模拟废水的除磷率高达68.88%,具有较强的聚磷能力.【期刊名称】《辽宁农业科学》【年(卷),期】2009(000)002【总页数】4页(P18-21)【关键词】聚磷菌;筛选;聚磷特性【作者】连丽丽;姜华;朱昌雄【作者单位】辽宁师范大学生命科学学院,辽宁,大连,116029;辽宁师范大学生命科学学院,辽宁,大连,116029;中国农业科学院农业环境与可持续发展研究所,北京,100081【正文语种】中文【中图分类】农业科学辽宁农业科学 2009(2):18~21 LiaoningAgriculturalSciences文章编号:1002-1728( 2009) 02-0018-04约氏不动杆菌( Acinetobacterjohnsonii )的分离及其聚磷特性的研究连丽丽1 ,姜(1 .辽宁师范大学生命科学学院,辽宁大连 116029 ;京 100081 )华 1 ,朱昌雄2 2.中国农业科学院农业环境与可持续发展研究所,北摘要:采用定性、定量相结合的方法,从城市污水中筛选到一株高效聚磷菌 (CH-1) ,经生理生化特征及16rDNA 序列分析,鉴定该菌株为不动杆菌属的约氏不动杆菌( Acinetobacterjohn,sonii )。

中期考核-聚磷菌的分离鉴定及其聚磷特性的研究

中期考核-聚磷菌的分离鉴定及其聚磷特性的研究
(如脂肪酸)
合成
正磷酸盐
(类脂粒PHB、糖原) 等贮能物质
生物除磷—聚磷菌除磷机理
聚磷菌过量吸磷(好氧)
细胞内的(聚β -羟基 丁酸)PHB分解
废水中
Q
正磷酸盐
摄取
ATP+多聚磷酸盐Poly-P 储存在细胞内
生物法除磷的原 理是细菌交替地 处于厌氧与好氧 条件下,好氧时 吸收的磷大大的 超过了厌氧时释 放的磷,将剩余 污泥排出系统, 达到除磷的目的。
聚磷菌全基因组测序及其聚磷 基因比对研究
(1) 全基因组测序
上海生物生工有限公司
(2 )聚磷 相关 功能 基 因序列的比对分析
通 过 primer5.0 、 DNAMAN、SPDBViewer 等生物信息学软件完 成基因序列及结构分 析
(3)聚磷关键基因 的序列及结构分析 通过SOPMA对序列的 二级结构进行分析
PAM-TBO培养基褪色法
PAM-TBO培养基褪色原理:
甲苯胺蓝带正电荷,异染粒带负 电荷,亲和结合。
利用甲苯胺蓝颜色易观察,且吸 附后颜色变化明显。细菌体内多 聚磷酸盐被染色,离心后,颜色 变淡。
菌名 空白 WS-6 WS-16 WS-16-2 HS-2 HS-5 HS-12
染色率 0
0.425 0.457 0.553 0.538 0.75 0.693
不同初始pH下菌体的生长情况
MA-2 MA-5
1.5
X-24
吸 光
1

值 0.5
0 3 4 5 6 7 8 9 10 11
发酵液初始pH值
OD600
吸 光 度
不同温度值
培养温度
OD600


一株聚磷菌GP44的筛选、鉴定及其聚磷特性研究

一株聚磷菌GP44的筛选、鉴定及其聚磷特性研究

土 壤(Soils), 2009, 41 (5): 757~763一株聚磷菌GP44的筛选、鉴定及其聚磷特性研究①赵海泉, 胡子全(安徽农业大学生命科学学院,合肥 230036)摘要:采用纯培养结合蓝白斑筛选法从巢湖和南淝河底泥中分离筛选出能聚磷(P)的 11 株解 P 细菌,好氧培养时菌体吸 P 能力测定结果表明,GP44 的菌体含 P 量达到 11.92%,具有较高的聚 P 能力,对其初步鉴定为鉴定菌株 GP44 属肠杆菌科中的克雷伯氏菌属土生克雷伯氏菌(K.terrigena)。

GP44 在废水合成培养基上最佳聚 P 温度 30℃、初始 pH 为 7.5、最佳装液量为120 ml/250 ml 和最适 C 源是葡萄糖,Mg2+、K+ 和 Fe3+ 有利于菌株 GP44 的生物除P。

关键词:聚磷菌;筛选;鉴定;聚磷特性中图分类号: X172磷(P)是水体产生富营养化的主要营养物质,水体一旦富营养化,即使切断外界N、P 营养元素也难以自净恢复。

目前,国内外污水除P技术主要有物理法、化学法和生物法3类。

物理法除P效果较好,但其只适合处理流量较小,含P量较高的工业废水,成本又过高,技术复杂,因而无法得到普遍的应用[1]。

化学法对P的去除率较高,一般可达75% ~ 85%,处理效果稳定,污泥在处理和处置过程中不会重新释放P。

但是在化学方法处理过程中使用的化学试剂常会引起二次污染,且污泥产量大,远远不能满足现在大规模控P现实情况[2]。

生物法是利用微生物的生理活动实现除P,其处理效率高,运行成本较低,污泥产量较小,减少污泥膨化,对环境造成的副作用较小。

由于藻类除P和大型水生植物普遍应用也存在一定的困难,因此目前国内外的研究学者把目光集中在微生物除P的研究中。

但是大多数研究学者主要研究微生物的除P工艺的改进和创新,而对聚磷菌聚P机理研究进展比较缓慢。

对聚P机理研究的最大障碍是聚磷菌筛选的较少,分离纯化培养较为困难,而且筛选的聚磷菌稳定性较差,且纯化分离的菌种不能在聚P工艺中表现好氧聚P和厌氧释P的聚P特性[3]。

聚磷菌的生长条件

聚磷菌的生长条件

聚磷菌是一类在生物处理系统中起着关键作用的微生物。

为了维持其正常的生理功能和生长繁殖,聚磷菌需要一系列特定的生长条件。

以下是对聚磷菌生长条件的详细阐述:首先,温度是影响聚磷菌生长的重要因素。

聚磷菌的最适生长温度通常位于20℃至35℃的范围内。

在这个温度区间内,聚磷菌的酶活性较高,能够有效地进行新陈代谢和繁殖。

当温度低于这个范围时,聚磷菌的代谢速率会减慢,甚至进入休眠状态;而当温度过高时,则可能导致其细胞结构受损,进而影响生长。

其次,pH值也是聚磷菌生长的关键因素。

聚磷菌偏好酸性的环境,最适宜的pH值一般在5.5至6.8之间。

在这个pH范围内,聚磷菌能够高效地吸收和利用环境中的营养物质。

当pH值偏离这个范围时,可能会对聚磷菌的生理活动产生不利影响,如营养吸收障碍或细胞膜功能受损。

此外,充足的营养物质对聚磷菌的生长至关重要。

在培养聚磷菌的过程中,需要向培养基中添加适量的氮、磷、钾等营养元素。

这些营养元素是构成聚磷菌细胞结构的基本成分,也是其进行新陈代谢和能量转换的必要物质。

缺乏这些营养物质会导致聚磷菌生长缓慢或停止生长。

除了上述基本生长条件外,聚磷菌还需要适宜的通气环境和光照条件。

通气良好的环境有助于聚磷菌进行有氧呼吸,从而释放更多的能量;而光照则可以刺激聚磷菌的光合作用,促进其生长和繁殖。

然而,需要注意的是,过强的光照或通气条件可能会对聚磷菌产生负面影响,因此在实际操作中需要根据具体情况进行调整。

综上所述,为了维持聚磷菌的正常生长和繁殖,需要提供适宜的温度、pH值、营养物质以及通气和光照条件。

这些条件的满足将有助于聚磷菌在生物处理系统中发挥更大的作用,提高废水处理的效率和质量。

国内外水体富营养化现状及聚磷菌研究进展

国内外水体富营养化现状及聚磷菌研究进展

国内外水体富营养化现状及聚磷菌研究进展一、本文概述随着全球经济的快速发展和人口规模的不断扩大,水体富营养化问题日益严重,已成为全球性的环境难题。

本文旨在全面概述国内外水体富营养化的现状,并深入探讨聚磷菌在控制水体富营养化过程中的研究进展。

文章首先分析了国内外水体富营养化的主要来源、影响因素及其引发的环境问题,随后重点综述了聚磷菌在去除水体中过量磷元素、抑制藻类过度生长以及改善水质等方面的研究现状。

通过对国内外相关文献的梳理和评价,本文旨在为水体富营养化治理提供科学依据和技术支持,促进环境保护和可持续发展。

二、国内外水体富营养化现状水体富营养化是一个全球性的问题,无论是发达国家还是发展中国家都面临着这一挑战。

近年来,随着人口增长、城市化进程加快以及工业、农业活动的不断增加,国内外许多水体都出现了不同程度的富营养化现象。

在国内,许多湖泊、河流和水库都受到了富营养化的影响。

例如,太湖、巢湖、滇池等大型淡水湖泊都出现了藻类大量繁殖、水质恶化、水生生物群落结构改变等问题。

这些问题不仅影响了水资源的可持续利用,还对周边生态环境和人体健康造成了威胁。

同时,随着农业和畜牧业的快速发展,农业面源污染也成为了国内水体富营养化的重要来源之一。

在国际上,水体富营养化问题同样严重。

许多国家的湖泊、河流和近海水域都受到了不同程度的富营养化污染。

特别是在一些工业化和城市化程度较高的地区,水体富营养化问题更加突出。

例如,北美五大湖、欧洲的波罗的海、亚洲的东海和南海等水域都面临着富营养化的挑战。

为了应对这一全球性问题,国内外都开展了大量的研究和治理工作。

在治理方面,采取了多种措施,包括减少污染源排放、改善水生态环境、加强水质监测等。

在研究方面,针对水体富营养化的成因、机制和防治策略等方面进行了深入研究,取得了一些重要的成果。

然而,由于水体富营养化问题的复杂性和长期性,仍需要进一步加强研究和治理工作,以实现水资源的可持续利用和生态环境的保护。

聚磷菌的除磷机理及影响因素

聚磷菌的除磷机理及影响因素

聚磷菌的除磷机理及影响因素污水生物除磷的原理就是人为创造生物超量除磷过程,实现可控的除磷效果。

整个过程必须通过创造厌氧与好氧交替环节利用聚磷菌的作用来实现生物除磷过程。

一、聚磷菌除磷机理聚磷菌也叫做摄磷菌、除磷菌,是传统活性污泥工艺中一类特殊的细菌,在好氧状态下能超量地将污水中的磷吸入体内,使体内的含磷量超过一般细菌体内的含磷量的数倍,这类细菌被广泛地用于生物除磷。

1)厌氧条件下释磷在没有溶解氧或硝态氮存在的条件下,兼性细菌通过发酵作用将可溶性BOD5转化为低分子挥发性有机酸VFA。

聚磷菌吸收这些发酵产物或来自原污水的VFA,并将其运送到细胞内,同化成胞内碳能源储存物质PHB,所需的能力来源于聚磷的水解以及细胞内糖的酵解,并导致磷酸盐的释放。

2)好氧条件下摄磷好氧条件下,聚磷菌的活力得到恢复,并以聚磷的形式存储超过生长所需的磷量,通过PHB的氧化代谢产生能量,用于磷的吸收和聚磷的合成,能量以聚磷酸高能键的形式捕集存储,磷酸盐从水中被去除。

3)富磷污泥的排放产生的富磷污泥通过剩余污泥的形式排放,从而将磷去除。

从能量角度来看,聚磷菌在无氧条件下释放磷获取能量以吸收废水中溶解性有机物,在好氧状态下降解吸收溶解性有机物获取能量以吸收磷。

除磷的关键是厌氧区的设置,聚磷菌能在短暂的厌氧条件下,由于非聚磷菌吸收低分子基质并快速同化和储存这些发酵产物,即厌氧区为聚磷菌提供了竞争优势。

这样一来,能吸收大量磷的聚磷菌就能在处理系统中得到选择性增殖,并可通过排除高含磷量的剩余污泥达到除磷的目的。

这种选择性增殖的另一好处是抑制了丝状菌的增殖,避免了产生沉淀性能较差的污泥的可能,因此厌氧/好氧生物除磷工艺一般不会出现污泥膨胀。

二、聚磷菌代谢的影响因素生物除磷中通过聚磷菌在厌氧状态下释放磷,在好氧状态下过量地摄取磷。

经过排放富磷剩余污泥而除磷,其影响聚磷菌代谢的影响因素包括:温度、pH值、厌氧池DO、厌氧池硝态氮、泥龄、CP比、RBCOD含量、糖原、HRT等。

反硝化聚磷菌的培养及其脱氮除磷特性

反硝化聚磷菌的培养及其脱氮除磷特性

[关键词] 反硝化聚磷菌;胞内聚合物;糖原;厌氧阶段;缺氧阶段
[中图分类号] X703
[文献标志码] A
[文章编号] 1006-1878(2019)02-0158-05
[DOI] 10.3969/j.issn.1006-1878.2019.02.008
Cultivation of denitrifying phosphorus accumulating organisms and their characteristics of nitrogen and phosphorus removal
传统脱氮除磷工艺还存在某些缺陷,开发新 的脱氮除磷工艺是水处理领域研究重点之一。反硝 化除磷是一种高效低能耗生物脱氮除磷技术,在厌 氧、缺氧交替运行的条件下能产生一类聚磷菌,利 用厌氧合成的胞内聚β-羟基丁酸(PHB)为碳源, 以硝酸盐代替氧作为电子受体进行反硝化,同时达 到脱氮除磷的目的,而且还具有节省曝气量、减小 污泥产量的优点[1]。内碳源驱动反硝化可以解决 污水处理过程中外部碳源缺乏的问题,不需后续添
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化工环保 ENVIRONMENTAL PROTECTION OF CHEMICAL INDUSTRY
2019年第 39卷第 2期
反硝化聚磷菌的培养及其脱氮除磷特性
黄 靓,郭海燕,刘小芳
(大连交通大学 环境与化学工程学院,大连 116021)
[摘要] 采用SBR反应器驯化培养反硝化聚磷菌,考察了厌氧-缺氧-好氧和厌氧-缺氧运行模式下反硝化聚磷菌
HUANG Liang,GUO Haiyan,LIU Xiaofang
(School of Environmental and Chemical Engineering,Dalian Jiaotong University,Dalian 116021,China)

【CN109757608A】聚磷菌在饲料中的应用及添加剂、饲料和饲料的制备方法【专利】

【CN109757608A】聚磷菌在饲料中的应用及添加剂、饲料和饲料的制备方法【专利】

(19)中华人民共和国国家知识产权局(12)发明专利申请(10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201910281124.4(22)申请日 2019.04.09(71)申请人 晟丰(烟台)农业科技有限公司地址 264006 山东省烟台市开发区长江路212号科信大厦615室(72)发明人 杨丽丽 王雷 高敏 王宝华 (51)Int.Cl.A23K 10/18(2016.01)A23K 20/189(2016.01)A23K 20/142(2016.01)A23K 20/105(2016.01)A23K 20/168(2016.01)A23K 10/30(2016.01)A23K 10/37(2016.01)A23K 10/26(2016.01)A23K 20/20(2016.01)A23K 20/26(2016.01)A23K 20/158(2016.01)A23K 20/174(2016.01)A23K 20/22(2016.01)A23K 20/24(2016.01)A23K 50/80(2016.01)A23K 10/22(2016.01)C12N 1/20(2006.01)(54)发明名称聚磷菌在饲料中的应用及添加剂、饲料和饲料的制备方法(57)摘要本发明涉及聚磷菌在饲料中的应用及添加剂、饲料和饲料的制备方法,其特征在于,将聚磷菌应用于饲料中。

本发明能够抑制动物体内有机酸过高,减少有机酸过高引起的肝脏、肠胃疾病,提高动物免疫力。

权利要求书1页 说明书9页CN 109757608 A 2019.05.17C N 109757608A权 利 要 求 书1/1页CN 109757608 A1.聚磷菌在饲料中的应用。

2.一种饲料添加剂,其特征在于,包含聚磷菌。

3.如权利要求2所述饲料添加剂,其特征在于,还含有产酸菌、有机酸和酶中的一种或任意比例的两种及其以上;所述产酸菌包括乳酸菌、梭菌、酵母菌和芽孢杆菌中的一种或任意比例的两种以上;所属酶包括植酸酶、纤维素酶、蛋白酶和7α羟化酶中的一种或任意比例的两种及其以上;所述有机酸包括胆汁酸、氨基酸、乳酸和苹果酸中的一种或任意比例的两种及其以上。

聚磷菌的培养

聚磷菌的培养

聚磷菌的培养背景:污水中的磷和氮含量过高是造成水体富营养化的主要因素。

而其中的磷不像氮那样可以结合氧转化为气体,含磷的气态物质(PH3)又不易转化,所以污水除磷一直都用生物除磷法。

即用细菌等微生物来摄取水中的磷,达到除磷的效果。

而为了提高微生物除磷的效率、便于和其他材料协同使用,筛选、培养除磷细菌也是必不可少的工作。

培养菌种\菌落:聚磷菌(PAOs)菌落来源:废水除磷工艺中的活性污泥菌落组成:主要由β—2亚群紫色细菌、不动杆菌、红环菌属和绿单胞菌属组成;其中不动杆菌为主导细菌,除磷作用突出聚磷菌除磷机理:①好氧条件下,聚磷菌不断摄取并氧化分解有机物,产生的能量一部分用于磷的吸收和聚磷的合成,一部分则使ADP与H3PO4结合,转化为ATP而储存起来。

细菌以聚磷的形式在细胞中储存磷,其量可以超过生长所需,这一过程称为聚磷菌磷的摄取。

处理过程中,通过从系统中排除高磷污泥以达到除磷的目的。

②在厌氧条件下,聚磷菌体内的ATP进行水解,放出H3PO4和能量,形成ADP。

这一过程称为聚磷菌磷的释放。

聚磷菌除磷则就是通过以上两种过程完成的。

培养过程:1、材料准备1.1取样:从实验室运行稳定的厌氧\缺氧SBR反应器中,取富含反硝化聚磷菌的活性污泥做为实验样品。

1.2培养基配方:( 1 ) 牛肉膏蛋白胨培养基(L1-):蛋白胨10 g;牛肉膏3 g;NaCl 5 g;琼脂20 g ;p H 7.2 ,用于反硝化聚磷菌的分离、纯化( 2) 缺磷培养基(L1-):CH3COONa 2g ;Na2HPO4·2H2O 23 mg;CaCL2·2H2O 11 mg;NH4C1 152.8mg;MgSO4·7H2O 81.12 mg;K2SO4 17.83 mg;HEPES缓冲液7 g;微量元素)1( 2 mL;p H 7.2( 3) 富磷培养基(L1-):CH3COONa 2g;K2PO4 25mg;NH4C1 305.52 mg;MgSO4·7H2O 91.26 mg;CaC12·2H2O 25.68mg;PIPES缓冲液8.5 g ;2 m L 微量元素;p H 7 .2( 4 ) 硝酸盐还原产气试验培养基(L1 ):牛肉膏3 g ;蛋白胨5g ;KNO3 1 g ;p H 7.4 。

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聚磷菌的培养背景:污水中的磷和氮含量过高是造成水体富营养化的主要因素。

而其中的磷不像氮那样可以结合氧转化为气体,含磷的气态物质(PH3)又不易转化,所以污水除磷一直都用生物除磷法。

即用细菌等微生物来摄取水中的磷,达到除磷的效果。

而为了提高微生物除磷的效率、便于和其他材料协同使用,筛选、培养除磷细菌也是必不可少的工作。

培养菌种\菌落:聚磷菌(PAOs)菌落来源:废水除磷工艺中的活性污泥菌落组成:主要由β—2亚群紫色细菌、不动杆菌、红环菌属和绿单胞菌属组成;其中不动杆菌为主导细菌,除磷作用突出聚磷菌除磷机理:①好氧条件下,聚磷菌不断摄取并氧化分解有机物,产生的能量一部分用于磷的吸收和聚磷的合成,一部分则使ADP与H3PO4结合,转化为ATP而储存起来。

细菌以聚磷的形式在细胞中储存磷,其量可以超过生长所需,这一过程称为聚磷菌磷的摄取。

处理过程中,通过从系统中排除高磷污泥以达到除磷的目的。

②在厌氧条件下,聚磷菌体内的ATP进行水解,放出H3PO4和能量,形成ADP。

这一过程称为聚磷菌磷的释放。

聚磷菌除磷则就是通过以上两种过程完成的。

培养过程:1、材料准备1.1取样:从实验室运行稳定的厌氧\缺氧SBR反应器中,取富含反硝化聚磷菌的活性污泥做为实验样品。

1.2培养基配方:( 1 ) 牛肉膏蛋白胨培养基(L1-):蛋白胨10 g;牛肉膏3 g;NaCl 5 g;琼脂20 g ;p H 7.2 ,用于反硝化聚磷菌的分离、纯化( 2) 缺磷培养基(L1-):CH3COONa 2g ;Na2HPO4·2H2O 23 mg;CaCL2·2H2O 11 mg;NH4C1 152.8mg;MgSO4·7H2O 81.12 mg;K2SO4 17.83 mg;HEPES缓冲液7 g;微量元素)1( 2 mL;p H 7.2( 3) 富磷培养基(L1-):CH3COONa 2g;K2PO4 25mg;NH4C1 305.52 mg;MgSO4·7H2O 91.26 mg;CaC12·2H2O 25.68mg;PIPES缓冲液8.5 g ;2 m L 微量元素;p H 7 .2( 4 ) 硝酸盐还原产气试验培养基(L1 ):牛肉膏3 g ;蛋白胨5g ;KNO3 1 g ;p H 7.4 。

2~4类培养基用于反硝化聚磷菌的筛选。

2、培养基制作2.1牛肉膏蛋白胨培养基A 根据需要计算每个培养基所需要的药品质量B 按培养基配方、具体计算量和比例依次准确地称取牛肉膏、蛋白胨、NaCl放入烧杯中。

(牛肉膏可用玻棒挑取,放在小烧杯或表面皿中称量,用热水溶化后倒入烧杯)C先在上述烧杯中加入少于所需要的水量,用玻棒搅匀,再将称好的琼脂放入已溶化的药品中,然后在石棉网上加热使其溶解、溶化。

(在琼脂溶化的过程中,需不断搅拌,以防琼脂糊底使烧杯破裂)最后补足所失的水分到所需的总体积。

D 用精密pH试纸测量培养基的原始pH值,如果pH偏酸,用滴管向培养基中逐滴加入1mol/L NaOH,边加边搅拌,直至pH达7.2。

反之,则用1mol/L HCl进行调节。

(注意pH值不要调过头,以避免回调)E 将或加热融化后的培养基冷至50℃左右,以无菌手续倾人灭菌平皿内,轻摇平皿底,使培养基平铺于平皿底部,再次高压灭菌,之后待其凝固即可。

(灭菌后的培养基要放入37℃养箱中培养24小时,以检验灭菌的效果)F 检验合格的培养基编号待用。

可放在4℃冰箱内保存,但是不宜存放时间过久2.2缺磷培养基A 根据需要计算每个培养基所需要的药品质量B 按培养基配方、具体计算量和比例依次准确地称取各类药品。

先在三角烧瓶中加入少量蒸馏水,再加入各种称量好的药品C 搅拌、适当加热使药品溶解,并加蒸馏水至所需体积D用精密pH试纸测量培养基的原始pH值,如果pH偏酸,用滴管向培养基中逐滴加入1mol/L NaOH,边加边搅拌,直至pH达7.2。

反之,则用1mol/L HCl进行调节。

(注意pH值不要调过头,以避免回调)E用滤纸过滤,直至液体培养基清晰便于观察即可F根据需要将培养基分装于各个三角烧瓶中,高压灭菌。

(灭菌后的培养基要放入37℃养箱中培养24小时,以检验灭菌的效果)G检验合格的培养基编号待用。

可放在4℃冰箱内保存,但是不宜存放时间过久2.3富磷培养基同“缺磷培养基”2.4硝酸盐还原产气试验培养基A根据需要计算每个培养基所需要的药品质量B按培养基配方、具体计算量和比例依次准确地称取牛肉膏、蛋白胨、KNO3放入烧杯中。

(牛肉膏可用玻棒挑取,放在小烧杯或表面皿中称量,用热水溶化后倒入烧杯)C搅拌、适当加热使药品溶解,并加蒸馏水至所需体积D 用滤纸过滤E根据需要将培养基分装于各个三角烧瓶中,高压灭菌。

(灭菌后的培养基要放入37℃养箱中培养24小时,以检验灭菌的效果)F 检验合格的培养基编号待用。

可放在4℃冰箱内保存,但是不宜存放时间过久2、菌株的分离、纯化、筛选2.1菌株的分离、纯化:A)取10m L污泥至装有90mL无菌水三角瓶中,加入玻璃珠,将三角瓶放入空气振荡器中,把污泥充分摇匀打碎。

B)打碎后的污泥经倍比稀释,在牛肉膏蛋白胨培养基上采用涂布平板法)2(分离、纯化)3(。

2.2菌株初筛:A)选取分离、纯化后所得斜面菌种,首先在缺磷的乙酸合成培养基中进行预培养(按分组):先用1 mol/L的氢氧化钠将pH值调到7,然后各组培养物在30℃、140r/min的摇床)4(上过夜培养。

B)菌体细胞以10000r/min离心出来,之后用无菌蒸馏水洗涤、离心,重新悬浮于富磷培养基中(整个过程均在无菌操作台上进行),然后在30℃摇床中进行扩大培养,C)培养24h后,每组大约取10 mL菌液,滤纸过滤取澄清的无菌液体培养基,利用钼锑抗分光光度法测定接种后 3PO-P 含量的变化。

4D)取摄磷率高于50%的菌株分别进行硝酸盐还原产气试验)5(、异染颗粒染色)6(和聚—β—羟丁酸(PHB)颗粒染色)7(试验。

既能过量摄磷又具有反硝化功能并有异染颗粒和PHB颗粒的菌株即为高效DNPAOs2.3*菌株复筛(本步骤是为了筛选耐低温的聚磷菌,若对低温没有要求则可以省去):A)通过设置温度梯度的方法对各株菌进行降温驯化培养。

驯化培养过程按30℃一25℃一18℃一11℃一8℃温度梯度进行(模拟自然降温)。

B)接种采用10%梯度接种的方法,即:将上一梯度上培养48h的菌液取出10%接种于下一个温度梯度的培养基中,在恒温培养箱培养。

C)各菌在每个温度梯度上采用上述方法分别测定培养24h后的生长量、培养基中磷含量的变化。

D)将生长量受温度影响较小且除磷能力变化幅度较小的菌株选出。

这样的菌株就是耐低温高效DNPAOs。

3*、菌株鉴定(若只需要使用细菌,不需要研究特性,该步骤可以省略)将复筛中生长量受温度影响较小且除磷能力变化幅度较小的菌株选出。

通过电镜照片观察其单个细菌形态、细菌群落形状和颜色;测试其葡萄糖氧化特性、淀粉水解特性、酶水解特性等,结合《细菌鉴定手册》确定细菌种类。

4、扩大培养将复筛过程中选出的耐低温高效聚磷菌重新接种于培养基中,在恒温培养箱内进行扩大培养。

5、注释(1)微量元素混合液配方:取材(L1 ):FeSO4·7H2O 40g;MnSO4·n H20 10g,A1C13·6H20 10g,CoC124g,ZnSO4·7H2O 2g,Na2MoO4·2H20 2g,CuC12·2H2O 1g,H3BO4 0.5g 。

溶解于5mol/L HC1溶液当中(2)涂抹平板法:先将培养基熔化后趁热倒入分好组的无菌平皿中待其凝固(培养基制作工序已完成),用无菌吸管吸取稀释了的菌液对号接种在不同编号的平皿或平板上,再用无菌刮铲将菌液在平板上涂抹均匀。

将涂抹好的平板平放于桌上20—30min,使菌液渗透入培养基内,然后将平板倒转,保温培养(可放在恒温培养箱内),至长出菌落。

(3)分离、纯化:初次用稀释液进行涂布平板法进行培养后,培养皿上的原稀释液中的单一细胞经过多次增殖后形成一个菌落,即不同培养基上会形成不同菌落。

取单个不同菌落制成悬液,重复涂布平板法分离数次,便可得到纯培养物,即培养基上只生长单种菌落。

分离出该类菌落并编号以便于筛选。

(4)摇床:这里所指的摇床是指在实验室使用的生物细胞培养摇床。

摇床通过摇动来培养微生物或细胞,同时进行温度和二氧化碳控制。

一般多为悬浮细胞培养。

它不但具备温度控制、湿度控制、二氧化碳控制功能,还具有光照控制以及高性能的保温密封功能及可消毒灭菌的功能。

(5)硝酸盐还原产气试验:准备甲液(对氨基苯磺酸0.8g+5mol/L醋酸100ml;乙液(α-奈胺0.5g+5mol/L醋酸100ml)将细菌接种于硝酸盐培养基中,于35℃培养1~2d;将甲、乙液等量混合后(约0.1ml)加入培养基内,观察结果。

出现红色为阳性,即硝酸盐被还原,细菌具有反硝化作用。

(6)异染颗粒染色:可以购买专门的异染颗粒染色剂进行染色,也可以用甲苯胺蓝、次甲基蓝染色(不呈蓝色而呈紫红色则证明有异染颗粒)(7)聚—β—羟丁酸(PHB)颗粒染色:苏丹黑B染色,PHB颗粒呈黑绿色材料制作整理:刘冬指导老师:刘德启。

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